Methodenartikel

Visual Evoked potentiële opnamen in muizen met behulp van een niet-invasieve meerkanaals droge hoofdhuid EEG Sensor

DOI:

10.3791/56927

⸱

12 januari 2018

 ,  ,  , 
1Department of Biomedical Science and Engineering (BMSE), Gwangju Institute of Science and Technology (GIST), 2School of Electrical Engineering and Computer Science (EECS), Gwangju Institute of Science and Technology (GIST), 3School of Mechanical Engineering (SME), Gwangju Institute of Science and Technology (GIST)

In dit artikel

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

We ontwierpen een droog-type 16 kanaals EEG sensor die niet-invasief, vervormbare en opnieuw bruikbaar is. Dit witboek beschrijft het gehele proces van productie de voorgestelde EEG elektrode signaal verwerking van visual evoked potentieel (VEP) signalen op een muis-hoofdhuid met behulp van een droge niet-invasieve multi-kanaals EEG sensor gemeten.

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Voor hoofdhuid EEG onderzoek omgevingen met laboratorium muizen ontwierpen we een droog-type 16 kanaals EEG sensor die niet-invasieve, vervormbare en herbruikbaar is vanwege de plunjer-lente-vat structurele facet en de mechanische krachten die voortvloeien uit metaal materialen. Het hele proces voor het verkrijgen van de VEP reacties in vivo een muis bestaat uit vier stappen: (1) de sensor montage, (2) dierlijke voorbereiding, (3) VEP meting en (4) de signaalverwerking. Dit document stelt representatieve metingen van VEP reacties van meerdere muizen met een resolutie van submicrome-spanning signaal en sub honderd milliseconden temporele resolutie. Hoewel de voorgestelde methode is veiliger en gemakkelijker in vergelijking met andere eerder gemeld dierlijke EEG verwervende methoden, er zijn nog kwesties, waaronder het verbeteren van de signaal-/ ruisverhouding en het toepassen van deze techniek met vrij bewegende dieren. De voorgestelde methode maakt gebruik van gemakkelijk beschikbare middelen en toont een repetitieve VEP reactie met een goede signaalkwaliteit. Daarom is deze methode kan worden gebruikt voor longitudinale experimentele studies en betrouwbare translationeel onderzoek exploitatie van niet-invasieve paradigma's.

Inleiding

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Als het aantal patiënten met seniele degeneratieve hersenziekten zoals dementie, Alzheimer en Parkinsonian syndromen beroerte gestegen met een verouderende bevolking en een toenemende levensverwachting, heeft de lange termijn maatschappelijke last van deze ziekten ook steeg1,2,3. Daarnaast, de meeste neurologische ziekten zoals schizofrenie en autisme, vergezeld gaan van cognitieve en gedragsmatige stoornissen waardoor een patiënt hele leven2,3,4. Om deze reden, hebben onderzoekers moeite om het verbeteren van de diagnose, preventie, pathologische begrip, op lange termijn observatie en behandeling van hersenziekten. Problemen blijven echter afkomstig uit de hersenen complexiteit en ziekte pathologieën. Translationeel onderzoek wellicht een veelbelovende instrument voor het identificeren van oplossingen, omdat hierdoor de overdracht van fundamenteel onderzoek naar klinische toepassingen binnen een korter tijdsbestek, tegen lagere kosten en met een hoger slagingspercentage in de neurowetenschappen velden5 ,6,7. Een ander doel van translationeel onderzoek is het onderzoeken van de toepasbaarheid bij menselijke proefpersonen, waarbij niet-invasieve experimentele benaderingen in dieren die het mogelijk maken van vergelijkingen met dezelfde methode voor de mens. Deze voorwaarden hebben geleid tot verscheidene grote behoeften voor de ontwikkeling van niet-invasieve dierlijke bereidingswijzen. Een methode is elektro-encefalografie (EEG), die onthult corticale hersenen connectiviteit en activiteit two-dimensionally met hoge temporele resolutie, en welke uitkeringen uit een niet-invasieve protocol. De gebeurtenis-gerelateerde potentiële opname (ERP) is één van de typische experimentele paradigma's die gebruik maken van de EEG.

Talrijke eerdere studies werknemer niet-invasieve EEG methodes voor het targeten van mensen onderwerpen, overwegende dat invasieve methoden, zoals implantaat schroeven en paal type elektroden, zijn gebruikt in dierstudies8,9,10 , 11 , 12. de signaalkwaliteit en de kenmerken van deze methoden zijn sterk afhankelijk van de invasiviteit van de plaatsing van de sensor. Voor succesvolle translationeel onderzoek, Garner benadrukt met behulp van dezelfde voorwaarden voor dierlijke studie als die worden gebruikt voor menselijke onderzoek13. Voor fundamenteel onderzoek met behulp van dieren, zijn niet-invasieve EEG methoden echter niet gangbaar. Een nieuwe benadering met behulp van een niet-invasieve hoofdhuid EEG sensorsysteem gericht op laboratorium muizen zou een betrouwbaar en efficiënt hulpmiddel voor translationeel onderzoek dat kan worden toegepast op de niet-invasieve paradigma's voor de mens, ook.

Talrijke studies van de muis EEG leidde de weg door het commercialiseren van PCB (printed circuit board) gebaseerd meerkanaals elektroden14,15,16. Hoewel zij een invasieve methode, had ze een beperkt aantal kanalen (3-8), waardoor het moeilijker te observeren dynamiek van de grote hersenen. Bovendien kunnen toepassingen worden beperkt door hun invasiviteit en hoge kosten. In een ander onderzoek, de KIST (Korea Institute of Science and Technology) een 40 kanaal polyimide gebaseerde dunne-film elektrode ontwikkeld en deze vervolgens gekoppeld aan een muis schedel17,18,19,20 . Dit werk verwierf het hoogste aantal muis EEG kanalen. Het was echter mechanisch zwak en niet makkelijk te hergebruiken; het was dus niet geschikt voor langdurige observaties, wat leidt tot een verzwakte signaal, mogelijk veroorzaakt door een immune reactie. Ondertussen Troncoso en Mégevand verworven een sensory evoked potentieel (SEP) op knaagdieren doodshoofden met tweeëndertig RVS elektroden beveiligd door een geperforeerde Poly(methyl Methacrylate) (PMMA, acrylglas) raster21,22 , 23. ondanks hun hoge signaalkwaliteit, waren de elektroden mechanisch flexibel en teder; Daarom hadden ze problemen op meerdere experimenten wordt toegepast. Bovendien, was deze methode nog steeds minimaal invasieve. Hoewel deze methoden bieden goede signaalkwaliteit, de oppervlakte van de schedel van een muis is beperkt, dus het aantal elektroden is beperkt met behulp van een elektrode RVS paal-type. Een aantal eerdere EEG studies voor muizen toonde verscheidene beperkingen. In deze studie, zullen wij een nieuwe methode voor het meten van de EEG die van toepassing zijn in de pre-klinische translationeel onderzoek met behulp van een niet-invasieve droog-type multi-kanaals sensor tonen.

Om te overwinnen van de beperkingen van eerdere dierlijke EEG methodologieën, waaronder de intrinsieke complexiteit van dierlijke voorbereiding, invasiviteit, hoge kosten, verspilling en zwakke mechanische sterkte, we gestreefd naar de ontwikkeling van een nieuwe elektrode dat vertoont flexibiliteit, droge type status, multi-kanaals mogelijkheden, niet-invasiviteit en herbruikbaarheid. In het volgende protocol beschrijven we het proces voor het meten van visual evoked potentiële (VEP) opnames op de hoofdhuid van een muis met behulp van een droge, niet-invasieve, multi-kanaals EEG-sensor. Deze methode maakt gebruik van gemakkelijk beschikbare middelen, dus het verlagen van de belemmering voor de indienststelling van dierproeven op het gebied van de biomedische technologie.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Verzorging van de dieren en de behandeling gevolgd de institutionele richtsnoer van het Gwangju Instituut voor wetenschap en technologie (GIST).

Opmerking: De procedure voor het verkrijgen van het VEP-signaal van een muis in vivo bestaat uit vier stappen: (1) de sensor montage, (2) dierlijke voorbereiding, (3) VEP meting en (4) de signaalverwerking.

1. sensor vergadering

  1. Zestien pinnen voorbereiden op een niet-invasieve elektrode.
    Opmerking: Elke pin-type elektrode bestaat uit drie delen: een sonde hoofd plunjer, een interne voorjaar en een vat, zoals weergegeven in Figuur 1a. De lengte van elke pin is 13 mm en de lengte verstelbare voorjaar vóór belasting is 1 mm.
  2. Knip twee stukken van glasvezel substraten (dikte: 1,5 mm) met de grootte van 15 mm × 17 mm (breedte × hoogte).
    Opmerking: De niet-geleidend glasvezel substraat functies als een isolator, die de meerdere signalen scheidt tegelijkertijd uit verkregen van de muis hoofdhuid.
  3. De zestien gaten maken met diameter van elke 1.2 mm met behulp van een precisie gravure machine, zoals aangegeven in Figuur 1 c.
    1. Verspreid de coördinatie van de sonde gelijkmatig met een tussenpoos van 2 mm op de vlakke ondergrond: HALSLENGTE + 7/0, + 2 + /-2, 2/0, + 2 / + 2, 0 /-4, 0 /-2, 0/0 (bregma), 0 / + 2, 0 / + 4, -2 /-3, -2 /-1, -2 / + 1-2 / + 3, -4 /-2, -4/0 , -4 / + 2 (anteroposterior/laterale met basis van bregma, in mm)24,25,26.
  4. Stack twee substraten en één druppel snelwerkende lijm lijm tussen substraat lagen, produceren een dubbele laag van 3 mm dikte ondersteuning van zestien stabiel en parallelle elektroden tijdens signaal overname van toepassing.
  5. Monteren van de elektroden op het substraat één-door-één van de zestien handmatig.
    Opmerking: De kleinere diameter van de gat stopt elke elektrode op de dezelfde lengte. Elk gat diameter is iets kleiner dan de dikste diameter van een vat binnen de enkele pin (1.3 mm), waardoor de strakke vaststelling van elektroden zonder enige versoepeling.
  6. Soldeer en koppelen van elke elektrode einddatum soldeer-cup deel aan de aanraking bewijs connector.
  7. Cover en verbergen van de naakte kruispunten met warmte-shrink tubing voor elektrische isolatie.

2. dierlijke voorbereiding

  1. Anesthetize van de muis met een injectie intraperitoneaal (i.p.) van ketamine:xylazine 100:10 (100 mg / mL:10 mg/mL) mengsel met het bedrag van 10 µL/gram lichaamsgewicht.
    Opmerking: Controleren van het dier verdoving voldoende door te trekken van een been of tweaken van de staart voordat voorbereiding.
  2. Toepassing oog zalf om te houden van de muis hoornvlies vochtig met een wattenstaafje.
  3. Verwijder de haren rond de kop en schouders met een-haartrimmer, dan verspreid verkrijgbare ontharende room en houden op dit gebied voor 3-4 min.
  4. De toegepaste ontharende verwijderen met een spatel, en vervolgens veeg de rest met natte doekjes water meerdere keren toe te passen.

3. VEP meting

Opmerking: De hele VEP meten proces vond plaats in een donkere kooi van Faraday (breedte × hoogte × diepte: 61 × 61 × 60 cm).

  1. Monteren van de muis hoofd op het stereotaxic frame door te plaatsen oor bars in de muis de oorkanalen en aanscherping van hen precies op zijn plaats.
  2. De sensor in de op maat gemaakte elektrode-houder (Figuur 1b) monteren en bevestigen van de houder van de sensor naar het stereotaxic frame, zoals afgebeeld in Figuur 1 d.
  3. Zoek de flexibele sensor van de EEG, gelet op zowel het referentiepunt voor de elektrode en de bregma positie27. Na dat, verlagen zeer zorgvuldig de sensor in verticale richting, zodat de gekleed elektrode plunjers Neem contact op met de muis de hoofdhuid gelijkmatig op de gebogen marge.
    Opmerking: De verlaagde afstand is kleiner dan 1 mm, oftewel de verstelbare lengte van de zuiger.
  4. Controleer of de impedances binnen het juiste bereik van 100 kΩ tot 2 MΩ. Verplaats de elektrode wordt elke waarde van de impedantie van de pin uit de reeks28.
  5. Plaats de foto stimulator 20 cm afstand van de ogen van de muis.
  6. Voordat u het experiment start, passen de muis gedurende 10 minuten in de donkere kooi voor donkere visuele aanpassing.
    1. De parameters van de experimentele apparaten als volgt ingesteld: Sampling-frequentie: 500 Hz; Inkeping filteren: 60 Hz; Inter stimulans interval: 10 s; Flash duur: 10 ms; nummer van flash stimuli: 100 proeven/onderwerp.
      Opmerking: Het flitslicht is een wit licht LED-verlichting heeft 550 ± 20% lx met een afstand van 20 cm.

4. VEP reacties Signal Processing Procedures

  1. Epoching
    1. Pak elk tijdperk single-proef VEP om segmenten te maken uit de pre stimulans periode (-300 ms) voor de periode na stimulans (600 ms), gebaseerd op het begin van de flash stimulans voor het continu meten seriële data.
      Opmerking: Aangezien wij herhaaldelijk flash stimulatie meer dan 100 trials voor elk onderwerp, een totaal van 100 VEP tijdperken voor elke muis worden geëxtraheerd in deze stap. EEG-epoching is een proces waarin specifieke tijd-windows de continu gemeten EEG signaal gegevens worden uitgepakt.
  2. Opnieuw (gemiddelde verwijzing) verwijst naar
    1. Berekent het gemiddelde van EEG signalen over alle veertien elektrode kanalen op elk moment wijs en trek daar vervolgens het gemiddelde waarde van elk kanaal. Herhaal deze procedure voor alle tijdperken van de VEP.
  3. Uitvoeren van band pass filter van signaal van ~ 1-100 Hz met behulp van een eindige impulse response (FIR) filteren.
  4. Correctie van de basislijn
    1. Het gemiddelde berekenen van de EEG-signalen in de periode vóór stimulans (basislijn periode, -300 ~ 0 ms) voor elk kanaal, dan aftrekken van dit gemiddelde van elk punt in de golfvorm (-300 ~ 600 ms). Dit past de as van de amplitude van VEP reacties op het vergemakkelijken van de waarneming van de hersenengolf wijzigingen na stimulatie. Herhaal deze stap voor alle van de VEP-tijdperken.
  5. Grand VEP reacties
    1. Gemiddelde de single-proef VEP tijdperken maken van single-onderwerp gemiddeld VEP golfvormen voor elk kanaal. Dan het gemiddelde van de grand ensemble van VEP Responsie voor elk kanaal ten aanzien van alle onderwerpen te berekenen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

We berekend het ensemble gemiddelde van VEP reacties van elf muizen zoals afgebeeld in Figuur 2. Dit resultaat toont de VEP reacties verkregen door middel van dit experiment uit de periode vóór stimulatie (-300 ms) voor de periode na stimulatie (600 ms), zoals de stimulatie wordt gegeven op tijd 0 s. Het is merkbaar dat het signaal slechts voor een tijdje schommelt (minder dan 300 ms) na de stimulatie, terwijl het signaal gestaag na verloop van tijd in de per...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

We in de eerste plaats gericht op het ontwerp van de sensor, prioriteren bruikbaarheid door het minimaliseren van complexe chirurgische ingrepen. De vervormbare EEG-sensor bestaat uit zestien pinnen: veertien voor opname, één voor de grond, en de laatstgenoemde voor verwijst naar elektroden. Elke elektrode heeft de plunjer-lente-vat-structuur, die vervormbaarheid op van de elektrode contactoppervlak, geldt dus zij homogeen en bestendig signaal overname van gebogen en inschrijving van de muis hoofdhuid vergemakkelijken. R...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dit werk werd gedeeltelijk ondersteund door het GIST Research Institute (GRI), het GIST-Caltech onderzoeksproject samenwerking door middel van een subsidie verstrekt door GIST in 2017. Ook ondersteund door onderzoeksbeurs (NRF-2016R1A2B4015381) van de National Research Foundation (NRF) gefinancierd door de Koreaanse overheid (MEST), en door KBRI basisonderzoek programma via Korea Brain Research Institute gefinancierd door het ministerie van wetenschap, ICT en toekomst Plan (17-BR-04).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Ketamine 50 Inj. (Vial)Yuhan-Ketamine HCl 57.68 mg
Zoletil 50 Inj.Virbac-Tiletamina 125 mg/ Zolazepam 125 mg
Rompun 2% Inj.BAYER-Xylazine hydrochloride 23.32mg/mL
Hycell solution 2%Samil-Hydroxypropylmethylcellulose 20 mg
Puralube Vet Ointment 3.5 mgPharmaderm-
Saline solution Inj. JW Pharmaceutical -NaCl 9 g/1000 mL
Veet Hair Removal Cream – Legs & Body - Sensitive SkinReckitt Benckiser-depilatory
Skins - Surgical Skin MarkerSurgmedS-3000STERILE - Multi-Tip Fine Marker with ruler and label set
Stainless Steel Micro SpatulasHEATHROW SCIENTIFICHS15907 One Round Flat End, 2L x 5/16W"
cotton swap
Stereotaxic, Desktop Digi SingleRWD Life Science68025
Mouse AdapterRWD Life Science68010
Ear Bar for Mouse Non-RuptureRWD Life Science68306
Mitsar-EEG 202-24 MITSARamplifier
EEGStudio EEG acquisition softwareMITSAR
White flash stimulator MITSARMITSAR Flash stimulator
BCI2000 softwareSchalk lab
g.USBampg.tec0216
g.Power-g.USBampg.tec0247
 441 style straight body Touch Proof connectorPlasticsOne441000PSW080001441 - 000 PSW 80" (BLACK)
Standard probeLEENOSK100CSWhttp://www.globalinterpark.com/detail/detail?prdNo=2114277241&dispNo=001851006012
Precision engraving machine toolsTINYROBOTinyCNC-6060C
Heat shirink3MFP301

Referenties

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Alzheimer's Association. Alzheimer's disease facts and figures. Alzheimers Dement. 12 (4), 459-509 (2016).
  2. Birbeck, G. L., Meyer, A. C., Ogunniyi, A. Nervous system disorders across the life course in resource-limited settings. Nature. 527 (7578), S167-S171 (2015).
  3. World Health Organization. Neurological disorders: public health challenges. , World Health Organization. (2006).
  4. Meyer, U., Feldon, J., Dammann, O. Schizophrenia and Autism: Both Shared and Disorder-Specific Pathogenesis Via Perinatal Inflammation? Pediatr Res. 69 (5), 26r-33r (2011).
  5. Freedman, L. P., Cockburn, I. M., Simcoe, T. S. The Economics of Reproducibility in Preclinical Research. PLoS Biol. 13 (6), e1002165(2015).
  6. Cummings, J. L., et al. Alzheimer's disease drug development: translational neuroscience strategies. CNS Spectr. 18 (3), 128-138 (2013).
  7. Roelfsema, P. R., Treue, S. Basic neuroscience research with nonhuman primates: a small but indispensable component of biomedical research. Neuron. 82 (6), 1200-1204 (2014).
  8. Wu, C., Wais, M., Sheppy, E., del Campo, M., Zhang, L. A glue-based, screw-free method for implantation of intra-cranial electrodes in young mice. J Neurosci Methods. 171 (1), 126-131 (2008).
  9. Yu, F. H., et al. Reduced sodium current in GABAergic interneurons in a mouse model of severe myoclonic epilepsy in infancy. Nat Neurosci. 9 (9), 1142-1149 (2006).
  10. Parmentier, R., et al. Anatomical, physiological, and pharmacological characteristics of histidine decarboxylase knock-out mice: evidence for the role of brain histamine in behavioral and sleep-wake control. J Neurosci. 22 (17), 7695-7711 (2002).
  11. Handforth, A., Delorey, T. M., Homanics, G. E., Olsen, R. W. Pharmacologic evidence for abnormal thalamocortical functioning in GABA receptor beta3 subunit-deficient mice, a model of Angelman syndrome. Epilepsia. 46 (12), 1860-1870 (2005).
  12. Wu, C., Wais, M., Zahid, T., Wan, Q., Zhang, L. An improved screw-free method for electrode implantation and intracranial electroencephalographic recordings in mice. Behav Res Methods. 41 (3), 736-741 (2009).
  13. Garner, J. P. The Significance of Meaning: Why Do Over 90% of Behavioral Neuroscience Results Fail to Translate to Humans, and What Can We Do to Fix It? Ilar Journal. 55 (3), 438-456 (2014).
  14. Naylor, E., Harmon, H., Gabbert, S., Johnson, D. Automated sleep deprivation: simulated gentle handling using a yoked control. Sleep. 12 (1), 5-12 (2010).
  15. Naylor, E., et al. Simultaneous real-time measurement of EEG/EMG and L-glutamate in mice: A biosensor study of neuronal activity during sleep. J Electroanal Chem (Lausanne). 656 (1-2), 106-113 (2011).
  16. Naylor, E., et al. Molecules in Neuroscience. Proceedings of the 13th International Conference on In Vivo Methods, , 12-16 (2010).
  17. Choi, J. H., et al. A flexible microelectrode for mouse EEG. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc, , 1600-1603 (2009).
  18. Choi, J. H., Koch, K. P., Poppendieck, W., Lee, M., Shin, H. S. High resolution electroencephalography in freely moving mice. J Neurophysiol. 104 (3), 1825-1834 (2010).
  19. Lee, M., Shin, H. S., Choi, J. H. Simultaneous recording of brain activity and functional connectivity in the mouse brain. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc, , 2934-2936 (2009).
  20. Lee, M., Kim, D., Shin, H. S., Sung, H. G., Choi, J. H. High-density EEG recordings of the freely moving mice using polyimide-based microelectrode. JoVE-J Vis Exp. (47), e2562(2011).
  21. Mégevand, P., Quairiaux, C., Lascano, A. M., Kiss, J. Z., Michel, C. M. A mouse model for studying large-scale neuronal networks using EEG mapping techniques. Neuroimage. 42 (2), 591-602 (2008).
  22. Megevand, P., et al. Long-term plasticity in mouse sensorimotor circuits after rhythmic whisker stimulation. J Neurosci. 29 (16), 5326-5335 (2009).
  23. Troncoso, E., Muller, D., Czellar, S., Zoltan Kiss, J. Epicranial sensory evoked potential recordings for repeated assessment of cortical functions in mice. J Neurosci Methods. 97 (1), 51-58 (2000).
  24. Bauschatz, J. D., Guido, V. E., Marden, C. C., Davisson, M. T., Donahue, L. R. Preliminary skull characterization and comparison of C57BL/6J, C3H/heSnJ, BALB/cByJ and DBA/2J inbred mice. , http://craniofacial.jax.org/characteristics.html (2014).
  25. Keith, B., Franklin, G. P., Paxinos, G. The mouse brain in stereotaxic coordinates. , Academic. California. (2008).
  26. Kawakami, M., Yamamura, K. I. Cranial bone morphometric study among mouse strains. Bmc Evol Biol. 8, (2008).
  27. Strain, G. M., Tedford, B. L. Flash and pattern reversal visual evoked potentials in C57BL/6J and B6CBAF1/J mice. Brain Res Bull. 32 (1), 57-63 (1993).
  28. Schalk, G., McFarland, D. J., Hinterberger, T., Birbaumer, N., Wolpaw, J. R. BCI2000: A general-purpose, brain-computer interface (BCI) system. Ieee Transactions on Biomedical Engineering. 51 (6), 1034-1043 (2004).
  29. Kim, D., Yeon, C., Kim, K. Development and Experimental Validation of a Dry Non-Invasive Multi-Channel Mouse Scalp EEG Sensor through Visual Evoked Potential Recordings. Sensors. 17 (2), 326(2017).
  30. Yeon, C., Kim, D., Kim, K., Chung, E. SENSORS, 2014 IEEE. , IEEE. 519-522 (2014).
  31. Kim, D., Yeon, C., Chung, E., Kim, K. SENSORS, 2015 IEEE. , IEEE. 1-4 (2015).
  32. Lin, C. T., et al. Novel dry polymer foam electrodes for long-term EEG measurement. IEEE Trans Biomed Eng. 58 (5), 1200-1207 (2011).
  33. Lopez-Gordo, M. A., Sanchez-Morillo, D., Pelayo Valle, F. Dry EEG electrodes. Sensors (Basel). 14 (7), 12847-12870 (2014).
  34. Fang, Q., Bedi, R., Ahmed, B., Cosic, I. Engineering in Medicine and Biology Society, 2004. IEMBS'04. 26th Annual International Conference of the IEEE. 2995-2998 IEEE, , 2995-2998 (2004).
  35. Maffei, L., Fiorentini, A., Bisti, S. Neural correlate of perceptual adaptation to gratings. Science. 182 (4116), 1036-1038 (1973).
  36. Ernst, M., Lee, M. H., Dworkin, B., Zaretsky, H. H. Pain perception decrement produced through repeated stimulation. Pain. 26 (2), 221-231 (1986).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

EEG van de hoofdhuid bij muizendroge EEG sensornon invasieve EEGmulti channel EEGVEP metingsignaalverwerkingstereotaxisch frameopstelling fotostimulatorpreparatie van geanestheseerde muis

Gerelateerde artikelen