Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Stroom Cytometry om te schatten leukemie cellen van de stam in primaire Acute myeloïde leukemie en patiënt-afgeleid-xenografts, bij diagnose en Follow Up

14.2K weergaven

DOI:

10.3791/56976

26 maart 2018

In dit artikel

Samenvatting

Duidelijk naar voren komt een protocol voor het detecteren van gelijktijdige uitdrukking van leukemie stamcel merkers op primaire acute myeloïde leukemie cellen door stroom cytometry. We laten zien hoe te kwantificeren drie voorlopercellen populaties en een vermeende LSC bevolking met de toenemende mate van rijping. We hebben bevestigd dat de aanwezigheid van deze populaties in overeenkomstige patiënt-afgeleid-xenografts.

Samenvatting

Acute myeloïde leukemie (AML) is een heterogene, en indien niet behandeld, dodelijke ziekte. Het is de meest voorkomende oorzaak van leukemie-geassocieerde mortaliteit bij volwassenen. In eerste instantie is AML een ziekte van hematopoietische stamcellen (HSC) wordt gekenmerkt door de arrestatie van differentiatie, latere accumulatie van leukemie blast cellen, en verminderde productie van functionele hematopoietische onderdelen. Heterogeniteit strekt zich uit tot de aanwezigheid van cellen van de stam van de leukemie (LSC), met deze dynamische cel compartiment evolueren om te overwinnen van verschillende selectie druk opgelegd tijdens leukemie progressie en behandeling. Als u wilt verder definiëren de LSC-bevolking, kunt de toevoeging van CD90 en CD45RA de discriminatie van normale HSCs en multipotente voorlopercellen binnen het CD34 + CD38-cel compartiment. Hier duidelijk naar voren komt een protocol voor het detecteren van gelijktijdige expressie van verschillende vermeende LSC markers (CD34 CD38, CD45RA, CD90) op primaire blast cellen van menselijke AML door multiparametric stroom cytometry. Bovendien tonen we hoe te kwantificeren drie voorlopercellen populaties en een vermeende LSC bevolking met de toenemende mate van rijping. We hebben bevestigd dat de aanwezigheid van deze populaties in overeenkomstige patiënt-afgeleid-xenografts. Deze methode voor de detectie en kwantificering van vermeende LSC mogen worden gebruikt voor klinische follow-up van chemotherapie reactie (dwz., minimale residuele ziekte), zoals residuele LSC AML terugval kan veroorzaken.

Inleiding

Acute myeloïde leukemie (AML) is de meest voorkomende oorzaak van leukemie-geassocieerde mortaliteit. AML is in eerste instantie een klonale ziekte van hematopoietische stamcellen (HSC) wordt gekenmerkt door de arrestatie van differentiatie, latere accumulatie van blast cellen, en verminderde productie van functionele hematopoietische onderdelen. Onlangs, klonen heterogeniteit van de blast-celpopulatie is opgezet in wezen met behulp van de volgende generatie sequencing (NGS) strategieën en toont het bestaan van intra klonale evolutie van tumor cellen1.

Heterogeniteit strekt zich uit tot de aanwezigheid van leukemisch....

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

We volgen de Europese normen voor het gebruik van dieren voor wetenschappelijke doeleinden worden gebruikt. Deze studie werd goedgekeurd door de lokale ethische Commissie (#3097-2015120414583482v3).

1. de monstervoorbereiding

  1. Het beenmerg (2 mL) ophalen door DOVO AML in buizen met de anticoagulatie ethyleendiamminetetra azijnzuuroplossing (NA2EDTA) met een concentratie van 1,8 mg per mL beenmerg.
  2. Uitvoeren van densiteitgradiënt scheiding, een dichtheid verlopende scheiding te isoleren mononucleaire cellen van rode bloedcellen en granulocyten, als volgt. Verdun het beenmerg in 3 delen fosfaat buffer zoutoplossing....

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Hier presenteren we een methode om te bepalen van voorlopercellen populaties in normale en kwaadaardige beenmerg menselijke monsters. Wij het beenmerg en de milt van een succesvolle PDX verzameld en multiparametric stroom cytometry uitgevoerd zoals hierboven beschreven. We vergeleken de verschillende subpopulaties van cellen van de blast tussen het diagnostische patiënt monster en de bijbehorende PDX en in het bijzonder de CD34 + CD38-voorlopercellen compartiment, met name in de vermeende LSC verrijkt. We hebben vastgest.......

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Een nauwkeurige en reproduceerbare evaluatie van membraan of cytoplasmatische markeringen door stroom cytometry vereist dat de instrumentele instellingen elke dag voor optische uitlijning, goede werking van de fluidic systeem, optische gevoeligheid en normalisatie worden geverifieerd met behulp van kalibratie kralen.

Detectie van blast cel populaties in AML met behulp van CD90 en CD45RA door multi parametrische stroom cytometry analyse is een relatief eenvoudige en betrouwbare methode. Een cru.......

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

Dit werk werd gedeeltelijk ondersteund door de Franse Vereniging Laurette Fugain, LigueContre le Cancer (Noord-Midden), Fondation de France (leukemie Committee), SIRIC Oncolille en Frans National Cancer Institute.

....

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
PancollPAN-BiotechP04-60500
RBC Lysis Buffer (10x)OzymeBLE420301RBC Lysis solution A : 8,29 g van NH4Cl + 0,037 g van Na2EDTA in 100 mL steriele H2O en RBC Lysis solution B: 1 g van KHCO3 in 100 mL steriele H2O
NOD/SCID/IL2Rγcnull  (NSG)  muizenJACKSON LABORATORYStock No: 005557
PBSGibco by life technologies14190-144
AutoMACS Running Buffer – MACS Separation BufferMACS Buffer Miltenybiotec130-091-221
Anti-CD36-FITC (clone FA6-152, Iotest)Beckman CoulterPN IM0766U
Anti-CD33-PC5.5 (clone D3HL60.251, Iotest)Beckman CoulterB36289
Anti-CD90-APC (clone 5E10)Biolegend328114
Anti-CD19-ECD (clone J3-119, Iotest)Beckman CoulterA07770
Anti-CD34-AA700 (clone 581, Iotest)Beckman CoulterB92417
Anti-CD45RA-APC-H7 (clone HI100) Beckton Dickinson560674
Anti-CD38-Pacific Blue (clone LSI98-4-3, Iotest)Beckman CoulterB92396
Anti-CD45-KO (clone J.33, Iotest)Beckman CoulterB36294
Anti-CD3-PEBeckman CoulterIM1451
Anti-CD20-PEBeckman CoulterA07747
Anti-CD123-PC7Beckman CoulterB13647
Flow-SetBeckman CoulterA63492
Flow-CheckBeckman CoulterA63493
NaviosBeckman CoulterDS-14644A
LSR Fortessa X20BD Biosciences
CST BDBD Biosciences655051
FacsFlow BD Biosciences336911
Anti-hCD45-FITCBiolegendBLE304006
Anti-mCD45-APCBiolegendBLE103112
EasySep human PE selection kitStem Cell Technologies18000
EasySep  magnet Stem Cell Technologies18551

Referenties

  1. Shlush, L. I., et al. Tracing the origins of relapse in acute myeloid leukaemia to stem cells. Nature. , (2017).
  2. Terwijn, M., et al. Leukemic stem cell frequency: a strong biomarker for clinical outcome in acute myeloid leukemia. PLoS One.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Tags

CD34CD38CD45RACD90minimale residueziektemultiparametrische flowcytometrieisolatie uit beenmergceloppervlaktemarkers