Method Article

Bioindication testen van Stream milieu geschiktheid voor jonge zoetwater parel van mosselen met behulp van In Situ blootstelling methoden

DOI:

10.3791/57446

⸱

September 5th, 2018

 ,  ,  ,  ,  , 
1Faculty of Environmental Sciences, Czech University of Life Sciences Prague, 2T. G. Masaryk Water Research Institute, 3Department of Zoology and Fisheries, Faculty of Agrobiology, Food and Natural Resources, Czech University of Life Sciences Prague

In This Article

Summary

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

In situ bioindications inschakelen bepaling van de geschiktheid van een omgeving voor bedreigde Mossel soorten. Beschrijven we twee methoden op basis van de jonge Gasbedwelming met behulp van zoetwater parel mosselen in kooien oligotrofe rivierhabitats. Beide methoden zijn geïmplementeerd in de varianten voor open water en hyporheic water omgevingen.

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kennis van habitat geschiktheid voor zoetwater mosselen is een belangrijke stap in het behoud van deze bedreigde diersoorten-groep. We beschrijven een protocol voor het verrichten van in situ jeugdige blootstelling proeven binnen oligotrofe rivier stroomgebieden een maand en drie maanden durende periode. (In beide wijzigingen) op twee manieren worden voorgesteld om te evalueren van de jonge groei en overleving tarief. De methoden en wijzigingen verschillen in waarde voor de plaats bioindication en elk heeft zijn voordelen evenals beperkingen. De zanderige kooi methode werkt met een grote verzameling van individuen, maar slechts een deel van de personen worden gemeten en de resultaten worden geëvalueerd in bulk. In de mesh kooi methode, de personen moeten worden bewaard of afzonderlijk gemeten, maar een individueel nummer aan de laag wordt geëvalueerd. De wijziging van de blootstelling open water is relatief eenvoudig toe te passen; het toont de jonge groei potentieel van sites en ook effectief voor het testen van de toxiciteit van de water kan zijn. De binnen-bed blootstelling wijziging moet een hoge werklast, maar dichter bij de voorwaarden van een jonge natuur en het is beter voor het melden van de echte geschiktheid van plaatsen. Aan de andere kant, zijn meer replicaties nodig in deze wijziging te wijten aan de hoge-hyporheic milieu variabiliteit.

Introduction

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De blootstelling van experimentele organismen in situ met de latere evaluatie van hun toestand is een mogelijke manier om informatie te krijgen over de kwaliteit van het milieu en (vooral) de geschiktheid van de site voor een soort. Binnen dieren geldt een dergelijke bioindication vooral voor kleine ongewervelden die kunnen leven in een beperkte begrensde ruimte. Jonge stadia van tweekleppigen (Bivalvia) zijn een dergelijke geschikt organisme groep1.

Tweekleppigen van de familie Unionidae zijn een zeer belangrijk onderdeel van aquatische ecosystemen2. Deze soorten zijn echter vaak kritisch bedreigde, vooral in de beken en rivieren. Sommigen van hen worden gekenmerkt als 'paraplu species' waarvan instandhouding is nauw verwant aan het behoud van de hele stream biotoop en waarvoor een alomvattende aanpak3. Deze dieren hebben een levenscyclus die vele onderdelen van de omgeving, van water chemie4,5 tot veranderingen van de populaties van vis die als Mossel larven hosts6 dienengekoppeld. Omdat Mossel jonge exemplaren vaak een kritieke fase van de levenscyclus van de Mossel vertegenwoordigen, is de geschiktheid van de site voor hun ontwikkeling in dit stadium cruciaal voor een succesvolle soorten demografische ontwikkeling in een plaats.

De Beekparelmossel (FWPM, Margaritifera margaritifera; Unionida, Bivalvia) is een bedreigde tweekleppige die zich voordoen in oligotrofe Europese stromen. Hun nummers zijn drastisch gedaald tijdens de 20ste eeuw door het gebied voorkomen. Het lijkt erop dat de huidige daling van de voortplanting van de soorten in de meerderheid van de centrale Europese populaties voornamelijk door zeer laag nul voortbestaan van jonge exemplaren tijdens de eerste jaren van hun leven veroorzaakt wordt. Er wordt verondersteld dat de jonge FWPMs voor vele jaren in de ondiepe hyporheic zone7 leven, waarvan de voorwaarden en hun variabiliteit nog steeds niet goed beschreven zijn. Bovendien tot hun tweede jaar van het leven hebben de jonge exemplaren alleen een afmeting van maximaal ongeveer 1 mm, zodat ze zeer moeilijk te vinden in grote hoeveelheden sediment onder natuurlijke omstandigheden8. Experimenten met gevangen jonge vis zijn dus nodig voor de studie van hun ecologie.

Binnen de Tsjechische Action Plan for Freshwater Pearl Mossel9, er zijn duizenden jonge exemplaren stijgende jaarlijks een semi-natuurlijke kweekprogramma. Er is echter een vraag van die plaatsen en habitats geschikt voor succesvolle bevolking ondersteuning door deze jonge exemplaren of voor eventuele soorten herinvoering zijn. In situ bioindications presenteren een manier om het antwoord te vinden.

Ondanks het feit dat inconsistent overlevingskansen van jonge mosselen in het blootstelling kooien werden waargenomen in sommige eerdere werken die de geschiktheid van jonge mosselen als wijzen10ondervraagd, verschillende recente studies hebben bevestigd dat de toepasbaarheid van jeugdige blootstelling methoden voor waterkwaliteit testen11,12,13. Bovendien is gebleken dat verschillende factoren worden overwogen moeten bij de interpretatie van de resultaten van deze bijzondere studies, zoals de voorraad oorsprong14 en de aanhoudende effecten van larvale voorwaarden15.

De vraag van het installeren van experimentele jonge exemplaren in geteste plaatsen en hoe hun toestand zo effectief mogelijk te evalueren. De eerste strenge toepassing van de in situ blootstelling methoden met jonge FWPMs werd gepubliceerd door Buddensiek16. Jonge FWPM personen werden gehouden in blad kooien, blootgesteld in het vrij stromend water van beken, en hun overleving en groei werden gekwantificeerd na verscheidene weken van blootstelling. De aanpak werd oorspronkelijk ontwikkeld als een semi-kunstmatige kweek methode, maar de auteur benadrukt ook de toepasbaarheid ervan voor de beoordeling van de eisen van de habitat en de waterkwaliteit. Hoewel het FWPM jonge voortbestaan is natuurlijk erg laag op een schaal van maanden/jaren en slechts een zeer klein aantal dieren zullen overleven, de overlevingskans kunnen een goede marker van het milieu-effect op een schaal van verscheidene weken16. Jaren van onderzoek, zijn blootstelling methoden ontwikkeld naar aanleiding van de greep experimentele jonge Mossel in-stream habitats en voor beoordeling van hun groei en overleving tarieven; het gaat hierbij om zanderige vakken17, Mossel silo's op basis van een opwelling beginsel18, en verschillende andere blootstelling kooien (samengevat door het tandvlees is gebroken en collega's)11. Omdat jonge exemplaren, zijn van nature in ondiepe hyporheic zone7, is de toepassing van experimentele apparaten binnen de stroom onder zeer wenselijk.

In ons artikel, beschrijven we het gebruik van twee blootstelling apparaten voor FWPMs: ik) bewerkt Buddensiek blad kooien ("mesh kooien") ook inschakelen bioindication testen in hyporheal voorwaarden; en ii) Hruška zandstrand vakken ("zanderige kooien"). Het protocol wordt de toepassing van beide methoden in open water en hyporheic voorwaarden beschreven (dat wil zeggen, vier varianten van de blootstelling worden beschreven). De methoden werden geleidelijk gewijzigd en uitgebreid in meer dan 15 jaar van toepassing binnen het actieplan voor de Tsjechische voor zoetwater parel Mossel9 en geverifieerd door een aantal experimenten.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. mesh kooi

Opmerking: Zie Figuur 1.

  1. Voorbereiden van materiaal
    1. Bereiden van het materiaal voor het deel van de in-laboratorium van het experiment: ~ 1-2 L van rivier water per mesh kooi, mesh kooien (1 belangrijkste kunststof behuizing, 2 plastic hoesjes, 2 vellen met speciale technische zeef met 340 µm poriën, 4 bouten en moeren van de 4 per korf), tangen , roet, Pasteur pipetten, een zeef, een digitale camera, een trinocular ontleden de stereomicroscoop zoom, een kalibratie-raster (Microscoop apparatuur), 5 petrischalen van 50 mm diameter, bekers, 2 plastic gerechten (~ 25 x 15 cm x 3 - 5 cm), en een plastic doos.
    2. Voor het uitvoeren van de installatie van hyporheal, een rubberen slang en een maaswijdte van 100-µm-porie, en een spuit fles voorbereiden. Voor de bouw van het apparaat, Zie aanvullende bestand 1: S.1. Mesh kooien bouw.
  2. Het monteren van de onderkant en het centrale deel van de mesh kooien. Het deel van de kooi die in het bezit van de personen te monteren. Plaatst u een plastic dopje eerst, dan één vel van het plastic zeef, en tot slot de belangrijkste body bovenop. Gebruik vier bouten om het te beveiligen.
  3. Bereiden van biologisch materiaal
    1. Zet de kooi met gaas in de kunststof schotel met rivierwater. Ervoor zorgen dat de kamers halfvol. Neem de FWPM jonge exemplaren (Zie aanvullende bestand 1: S.6. Biologisch materiaal) uit het vak geïsoleerd en leg ze in de petrischaal.
      Opmerking: Zorg ervoor dat plotselinge temperatuurveranderingen ~ 2 ° C. niet overschrijden
    2. Met behulp van een spuit fles en zeef, stofdicht door de jonge exemplaren te wissen van de detritus.
  4. Instellen van de Microscoop en een camera. Uitvoeren van een kalibratie van de instrumenten (Zie aanvullende File1: S. 5. Microscoop en phototechnics). Plaats een petrischaal met een beetje water onder de Microscoop.
  5. Zet de jonge exemplaren in kooien (experimenteel laboratoriumwerk)
    1. Gebruik een pipet van Pasteur van te verwijderen een individu een petrischaal en zorgvuldig plaatst u deze in de petrischaal onder de Microscoop.
    2. De individuele fitness controleren door te kijken naar het oculair (~ 40 X vergroting).
      Opmerking: "Goed" fitness betekent dat het individu zich beweegt, draait van links naar rechts, duwt de voet uit de shell, etc. verwijderen dode of lage fitness individuen met een Pasteur Pipetteer en plaats ze in een aparte petrischaal (FWPM exemplaren met een geopende Shell, geen beweging, de voet is niet teruggetrokken, een gefragmenteerde shell, jonge exemplaren die ongecontroleerd in het water zweven, een zichtbare decompositie van de shell, gedeeltelijke botontkalking).
    3. Twee foto's nemen van een FWPM individuele tonen goede fitness met behulp van een constante vergroting van ~ 80 X. Zie aanvullende bestand 1: S.5. Microscoop en phototechnics. De foto's opslaan.
      Opmerking: Voor een goede meting van de lengte, de jeugdige moet worden gelegd in de lengte (laterale weergave). Het belangrijkste doel is om een kwalitatief hoogwaardige foto van de maximale shell lengte goed genoeg om een foto-analyse daarna.
    4. Plaats de jeugdige in de juiste kamer in de kooi, zodra de foto's zijn genomen. Noteer de nummers van de foto's en de kamer.
    5. Herhaal deze stap met elk individu voor alle de gebruikte kamers in de kooi met gaas.
      Opmerking: Zie aanvullende bestand 1: S.1. Mesh kooien bouw.
    6. Zodra alle van de gebruikte kamers parel mosselen, zet de plastic zeef op de kooi, dan zachtjes de plastic dekking zetten en beveiligen van alle onderdelen samen met de noten.
    7. In het geval van een installatie in een hyporheic zone, passeren een van de uiteinden van de slang een van zijn kamers en repareren in deze positie, dan nemen de anti-clogging Maas en binden op de onderkant (Zie aanvullende bestand 1: S.1. Mesh kooien bouw).
  6. Winkel jonge exemplaren
    1. Zet de kooi in de plastic doos met het rivierwater, zodat de jonge exemplaren zijn volledig ondergedompeld, en bewaar deze op de thermobox. Vóór de installatie, laat de minderjarigen aan te passen aan de in situ rivier watertemperatuur op de plaats van installatie (geleidelijke koeling, max. 5 ° C in 24 h).
  7. Installeren van mesh kooien
    1. Voorbereiden het veld materiaal met inbegrip van de mesh kooien met de jonge exemplaren, staal spikes, bouten en metalen noten, roet, veld Temperatuur dataloggers (Zie Tabel van materialen en aanvullende bestand 1: S.4.2. Water meten), een tekenreeks, een camera, het veld protocol, een hamer, en een spade.
    2. Vervoer van de exemplaren van de FWPM naar de site in een veld thermobox (geïsoleerde doos), houden van een stabiele watertemperatuur met variaties < ~ 2 ° C. Zet de thermobox met de mesh kooien in de rivier op de site te laten van de minderjarigen aan te passen aan de plaatselijke milieuomstandigheden (pH, geleidbaarheid, enz.).
    3. Installeer de kooi met gaas.
      1. Verwijder de mesh kooi uit het veld thermobox. Voorzien van twee staal spikes en vastmaken van het veld datalogger. Het verankeren van de kooi in een habitat met typische voorwaarden voor FWPMs in het studiegebied (b.v., aan de rand van de hoofdstroom stroom, niet in directe waterstroom, niet in stilstaand water, niet in direct zonlicht).
        1. Voor open water, met behulp van een paar van de stalen spikes, vast de kooi aan de bodem van de rivier; Leg het op zijn kant en het niveau met de bodem van de rivier, stroomafwaarts onder een hoek van 45° met de stroom van de rivier, naar het midden van de rivier. De onderste horizontale rand moet ongeveer 10-15 cm boven de onderkant van de rivier. Handhaven van een minimumafstand van 2 m tussen elke kooi op één plaats (Zie aanvullende bestand 1: S.4. Kooien onderhoud).
        2. Voor de hyporheic zone, graven de kooien in de bodem van de rivier in loodrecht landschap staat loodrecht op de stroom van water, zodat de bovenste horizontale rand van de kooi parallel aan de onderkant van de rivier is en de kamers zich op de hyporheic bevinden diepte die moet worden getest. Neem het bovenste uiteinde van de rubberen slang boven het oppervlak van de bodem voor de mogelijkheid van Watermonstername tijdens het experiment (Zie aanvullende bestand 1: S.4.2. Water meten).
          Opmerking: Het wordt aanbevolen voor het uitvoeren van regelmatige controles en onderhoud op de kooien (Zie aanvullende bestand 1: S. 4. Kooien onderhoud).
  8. Verwijder de kooien en transport van de jonge exemplaren na de blootstelling. Hiervoor trekken de kooien uit het water, duidelijke ze van fijne sediment alsook vanaf dreven materiaal en ze in het veld thermobox gevuld met rivierwater. Vervoer van de kooien onmiddellijk naar het laboratorium en de mortaliteit en groei tarief-evaluatie beginnen.
    Opmerking: Zie aanvullende bestand 1: S.3. Blootstellingsduur. In het geval van een temperatuurverschil van meer dan 5 ° C tussen de kooien en de labo-omgeving is het eerst nodig om te laat de temperatuur gelijk te trekken.
  9. Evalueren van het experiment door het controleren van de LifeFitness van elke jeugdige (zie stap 1.5.2 en 1.5.3) en neem 2 beelden van elke levende juveniele in een petrischaal met behulp van een constante vergroting van ~ 80 X. Het opnemen van de geschiktheid en de nummers van de foto's en kamers.
  10. Voltooien van het experiment (gemeenschappelijk aan alle methoden)
    1. Het uitvoeren van de metingen in de software van de analyse van de afbeelding. Gebruik de software van de analyse van de afbeelding voor de bepaling van de maat van het lichaam van elke beoordeeld op juveniele op zowel de invoerafbeeldingen (stap 1.5.3) en op de uitvoer afbeeldingen (stap 1.9). Gebruik de maximale totale shell lengte opgenomen in zowel foto's als lichaam grootte waarden in zowel invoer als uitvoer.
    2. Invoegen van de gemeten waarden in de tabel processor en bereken de groei toename (%) voor elke overleven jonge.
    3. Schatten de overlevingskans (%) per mesh kooi met behulp van de verhouding van het aantal overlevende individuen aan alle experimentele personen in de kooi met gaas.
      Opmerking: Na het experiment, de overlevenden terugkeren naar het fokprogramma
      (Zie aanvullende bestand 1: S.6. Biologisch materiaal).

2. de Sandy Cage

Opmerking: Zie Figuur 2.

  1. Voorbereiden van materiaal
    1. Bereiden van het materiaal voor het deel van de in-laboratorium van het experiment: 2 petrischalen (diameter ~8.5 cm) met Pasteur pipetten, een zeef, 25 L van rivierwater, een plastic doos, zeef (maaswijdte maat 1 en 2 mm), een grote plastic doos (25 L), een zanderige kooi (Zie aanvullende bestand 1 : S.2. Sandy kooien bouw), een digitale camera, een trinocular ontrafeling van zoom stereo microscoop, een kalibratie-raster (Microscoop apparatuur), gesorteerd op rivier zand uit het studiegebied (zie stap 2.1.3), en het protocol. Zie tabel van materialen en aanvullende bestand 1: S. 2. Sandy kooien bouw.
    2. Bereiden van het materiaal voor het proces van isolement: ronde van containers (1 voor elke kooi plus 1 extra), 2 petrischalen (diameter ongeveer 14 cm), een pipet van Pasteur, vergrootglazen en 1 L rivierwater.
    3. De rivier zand stofdicht door een zeef van 2 mm zeef: 1 mm om een korrelgrootte van 1-2 mm. het drogen van het zand en sla het op in een droge vorm totdat vereist.
  2. Nemen van de minderjarigen (Zie aanvullende bestand 1: S.6. Biologisch materiaal) uit de thermobox en leg ze in de petrischaal. Met behulp van een spuit fles en zeef, stofdicht door de jonge exemplaren te wissen van de detritus.
  3. Instellen van de Microscoop en een camera (Zie aanvullende bestand 1: S.5. Microscoop en phototechnics).
  4. Jonge exemplaren gestoken kooien (experimenteel laboratoriumwerk)
    1. Plaats de zandige kooi in de plastic doos. Strooi het gesorteerde zand (zie stap 2.1.3) omhoog tot eenderde van de hoogte van de zanderige kooi. Giet water in het vak. Zorg ervoor dat het zand oppervlak ongeveer 10 mm onder het waterniveau is. De zanderige kooi invoegen in het vak van de 25 L van rivierwater en worden blootgesteld aan dezelfde temperatuur als de jonge FWPMs (Zie aanvullende bestand 1: S.6.2. Opslag van het biologisch materiaal) voor 12 h. Vermijd eventuele blootstelling van het zand aan zonlicht.
    2. Neem de petrischaal met de bereid FWPM jonge exemplaren.
    3. Controleren van de individuen fitness door te kijken naar de ooglens (zie stap 1.5.2).
    4. De fotografische documentatie als volgt uitvoeren. Neem een foto van alle individuen ontdekt (zie stap 1.5.3) en 10 van de grootste personen kiezen. Als alternatief, neem foto's van alle jonge exemplaren samen met lage vergroting (~ 40 X) voor de evaluatie van een bulk en kies de 10 grootste personen. Alle foto's opslaan en opnemen van hun nummers.
    5. Met behulp van een spuit fles, verplaats de FWPM jonge exemplaren in de bereid zandstrand kooi.
  5. Winkel jonge exemplaren
    1. Zet de kooi in de grote plastic doos met rivierwater, zodat de kooi is volledig ondergedompeld en bewaar deze in de thermobox. Laat de minderjarigen aan te passen aan de in situ rivier watertemperatuur (geleidelijke koeling, max. 5 ° C gedurende 24 uur) vóór de installatie.
  6. Installeren van zandstrand kooien
    1. Het materiaal voor de veld-installatie voor te bereiden: Zandige kooien, een ~ 25-L veld thermobox, een platte steen (minimale gewicht 1 kg), een net (mesh formaat 10 x 10 mm), een spuit fles, veld Temperatuur dataloggers (Zie Tabel van materialen en aanvullende bestand 1: Meting van de S.4.2. Water), een spade, en het veld protocol.
    2. Transport kooien met de jonge exemplaren naar de site in het veld thermobox, houden van een stabiele watertemperatuur (~ 2 ° C wijzigen). Zet het veld thermobox met de zanderige kooien in de rivier in het veld site te laten van de exemplaren van de FWPM aan te passen aan de plaatselijke milieuomstandigheden (pH, geleidbaarheid, enz.).
    3. Installeer de zandige kooien in habitats met typische voorwaarden voor FWPMs (bijvoorbeeld, aan de rand van de hoofdstroom stroom in een meander niet in directe waterstroom, niet in stilstaand water, niet in direct zonlicht).
      1. Voor open water, de zandige kooien op een platte steen met behulp van een net fasten en plaats deze op de bodem van de rivier. Ervoor zorgen dat de grootste zijde van de kooi een hoek van 45° met de stroom vormt.
      2. Voor Hyporheal, graven de kooien in de rivier bodem loodrecht op de stroom van water zodat het deksel van de kooi niveau met de onderkant van de rivier is.
        Opmerking: Het wordt aanbevolen voor het uitvoeren van regelmatige controles en onderhoud op de kooien (Zie aanvullende bestand 1: S. 4. 1. controles site).
  7. Kooien en transport juvenielen verwijderen na blootstelling
    Opmerking: Zie aanvullende bestand 1: S.3. Blootstellingsduur.
    1. De kooien uit het water trekken, duidelijke ze van dreven materiaal en zet ze in het veld thermobox gevuld met rivierwater.
    2. Vervoer van de kooien naar het laboratorium en de mortaliteit en groei tarief-evaluatie beginnen.
      Nota: In het geval van een temperatuurverschil van meer dan 5 ° C tussen de kooien en de labo-omgeving is het noodzakelijk om te laten de temperaturen egaliseren.
  8. Aparte FWPM jonge exemplaren uit zand
    1. Bereiden van een ronde container met een waterdiepte van 50 mm (voor elke kooi afzonderlijk) en een extra ronde container. Breng het zand uit de kooi in de ronde container. Gebruik een wervelende beweging te spoelen uit de lichtere deeltjes in een extra container.
    2. Proef van de inhoud van deze container geleidelijk en zoekt jonge exemplaren stapsgewijze met behulp van een pipet van Pasteur en een vergrootglas. Zet de jonge exemplaren in de petrischaal met behulp van de Pipet van Pasteur. Herhaal deze stap totdat de laatste juveniele is gevonden en dan nog eens 10 x na de eerste negatieve bevinding. Toevoegen na elke stap wassen schoon rivierwater naar de oorspronkelijke container met zand.
      Opmerking: Vooral na de eerste spoelen, goed de inhoud en het ballast zoals fijne sediment en andere alluvia schoon.
  9. Evalueren van het experiment
    1. Controleren van de geschiktheid van elke jeugdige (zie stap 2.4.3 en 1.5.2) en Tel het aantal overlevenden.
    2. Neem een foto (zie stap 2.4.4.) van elk individu apart, hoewel dit betekent dat er is geen duidelijke identiteit van elk individu. Als alternatief, bulk foto's nemen en kies een subset van de 10 Best volwassen individuen van de eindresultaten.
      Opmerking: Beide mogelijkheden hebben een gelijksoortige rapportage waarde. Mogelijkheid 1 heeft een beperking van een hogere werklast, maar ook het voordeel van de hoogste vergroting van de foto en dus ook grotere nauwkeurigheid.
  10. Het experiment voltooien
    1. Voer metingen in de software van de analyse van de afbeelding. Het experiment voltooien zoals gedaan in de kooien van de Maas (zie stap 1.10) met de volgende uitzondering: niet de groei (%) voor elke jeugdige evalueren maar evalueren van de groep als geheel in de zandige kooi-experiment.
      Opmerking: Na het experiment, de overlevenden moeten worden teruggestuurd naar het fokprogramma
      (Zie aanvullende bestand S.6.1. Seling van biologisch materiaal).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De vier methoden van de bioindication (open water zandstrand kooien, binnen-bed zandstrand kooien, open water mesh kooien en binnen-bed mesh kooien) werden toegepast voor het onderzoek naar de geschiktheid van de voorwaarde milieu voor FWPMs in de bovenste Vltava River Basin (Bohemer Woud, Tsjechië Republiek). Deze rivier vertegenwoordigt één FWPM residuele stadsdeel in Centraal Europa19. Hier presenteren we een speciaal geselecteerde set van resultaten de belangri...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Belichtingstijd:

Zelfs één maand blootgesteld mesh kooien Toon een zichtbare groei als gevolg van verschillen tussen plaatsen (Figuur 3), dus ze zeer bruikbaar voor de snelle en gemakkelijke opsporing van de karakterisering van een plaats zijn. De relevantie van de resultaten is echter afhankelijk van de korte termijn staat van de voorwaarden, die kunnen schommelen. Korte neerslag gebeurtenissen kunnen met name een rol spelen. In tegenstelling, kan onvoorspelbare epi...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs hebben niets te onthullen.

Acknowledgements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Michal Bílý en Ondřej P. Simon werden ondersteund door subsidies van de Tsjechische Universiteit van Life Science [interne Grant Agentschap van faculteit Ruimtelijke Wetenschappen, CULS Praag (42110 1312 3175 (20164236))]. Ondersteuning voor Karel Douda kwam uit de Tsjechische Science Foundation (13-05872S). Gegevens over de bioindication en het huidige exemplaar van parel mosselen zijn verzameld tijdens de uitvoering van het actieplan voor de Tsjechische voor zoetwater parel mosselen beheerd door het Agentschap instandhouding natuur van Tsjechië, dat wordt gefinancierd door de regering van de Tsjechië en is beschikbaar op

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
onderhoud en zorg voor biologisch materiaal
Jonge zoetwaterparelmoermuschelalleNAvan een FWPM-kweekprogramma
Kunststof dozenalleNA
thermoboxMERCI212,070,600,030Er zijn veel mogelijkheden. Dit is slechts een voorbeeld.
veldthermobox (ca25 l)alleNAkoude doos (geïsoleerde doos) die gewoonlijk wordt gebruikt voor voedseltransport
rivierwateralleNA
PetrischalenalleNA
kunststof Pasteur-pipetten met ballonnetje (druppelaars)alleNAgatdiameter 1 mm
waterstofperoxidealleNA
kunststof container (ca 50 l) voor rivierwateralleNA
kunststof theezeefalleNAgewoonlijk gebruikt in de keuken
constructie van gaaskooien
belangrijkste kunststof lichamenalleNA
kunststof dekselsalleNA
speciale technische zeef 340 µmSilk &ProgressUHELON 20 T
speciale technische zeef 100 µmSilk &ProgressUHELON 67 M
rubberen slang (diameter 5,5 mm)alleNA
stalen boutenalleNA
stalen moerenalleNA
sleutelalleNA
stalen puntenalleNA
tangalleNA
bekersalleNA
kunststof schalen (ca. 25x15x3-5cm)alleNA
spuitflesalleNA
veldprotocollenalleNA
kantoorartikelenalleNA
kunststof containeralleNA
touwalleNA
hameralleNA
constructie en gebruik van zandkooien
zeef 1 mmalleNA
zeef 2 mmalleNA
speciale technische zeef 340 µmSilk &ProgressUHELON 20 T
kunststof dozen met goed passende dekselalleNA
heetmeltlijmalleNA
kunststof doos (ca 250 x 150 x 100 cm)
grote kunststof doos (ca 25 l)alleNA
platte steenalleNA
netalleNA
rivierzandalleNA
ronde containersalleNA
vergrotingsglazenCarsonCarson CP 60Er zijn veel mogelijkheden. Dit is slechts een voorbeeld.
installatie en onderhoud van kooien
veldtemperatuurdataloggersONSETUA-001-64http://www.onsetcomp.com/products/data-loggers/ua-001-64
schopalleNA
tandborstelalleNA
evaluatie van experiment
trinoculair dissectie-zoom-stereomicroscoopBresser opticICD 10x-160xEr zijn veel mogelijkheden. Dit is slechts een voorbeeld.
digitale camera/elektronisch oculairBresser opticMikroCamLab 5MEr zijn veel mogelijkheden. Dit is slechts een voorbeeld.
CalibratierandAm ScopeSKU: MR100Er zijn veel mogelijkheden. Dit is slechts een voorbeeld.
externe stroombron met twee beweegbare lichtgeleidersArsenalK1309010150021Er zijn veel mogelijkheden. Dit is slechts een voorbeeld.
AfbeeldingssoftwareImageJ softwareEr zijn veel mogelijkheden. Dit is slechts een voorbeeld.
tabelprocessorMS excelEr zijn veel mogelijkheden. Dit is slechts een voorbeeld.

References

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Goldberg, E. D. The mussel watch-a first step in global marine monitoring. Marine Pollution Bulletin. 6 (7), 111-114 (1975).
  2. Vaughn, C. C. Ecosystem services provided by freshwater mussels. Hydrobiologia. , In Press (2017).
  3. Lopes-Lima, M., et al. Conservation status of freshwater mussels in Europe: state of the art and future challenges. Biological Reviews. 92 (1), 572-607 (2017).
  4. Strayer, D. L., Malcom, H. M. Causes of recruitment failure in freshwater mussel populations in southeastern New York. Ecological Applications. 22 (6), 1780-1790 (2012).
  5. Douda, K. Effects of nitrate nitrogen pollution on Central European unionid bivalves revealed by distributional data and acute toxicity testing. Aquatic Conservation: Marine and Freshwater Ecosystems. 20 (2), 189-197 (2010).
  6. Modesto, V., et al. Fish and mussels: importance of fish for freshwater mussel conservation. Fish and Fisheries. , In Press (2017).
  7. Ecology and evolution of the freshwater mussels Unionoida. Bauer, G., Wächtler, K. 145, Ecological Studies. 1-394 (2001).
  8. Neves, R. J., Widlak, J. C. Habitat ecology of juvenile fresh-water mussels (Bivalvia, Unionidae) in a headwater stream in Virginia. American Malacological Bulletin. 5, 1-7 (1987).
  9. Švanyga, J., Simon, O. P., Mináriková, T., Spisar, O., Bílý, M. Záchranný program pro perlorodku říční v ČR (Action plan for the endangered freshwater pearl mussel in the Czech Republic). , NCA CR. Prague, Czech Republic. (2013).
  10. Schmidt, C., Vandré, R. Ten years of experience in the rearing of young freshwater pearl mussels (Margaritifera margaritifera). Aquatic Conservation: Marine and Freshwater Ecosystems. 20 (7), 735-747 (2010).
  11. Gum, B., Lange, M., Geist, J. A critical reflection on the success of rearing and culturing juvenile freshwater mussels with a focus on the endangered freshwater pearl mussel (Margaritifera margaritifera L.). Aquatic Conservation: Marine and Freshwater Ecosystems. 21 (7), 743-751 (2011).
  12. Denic, M., Taeubert, J. E., Lange, M., Thielen, F., Scheder, C., Gumpinger, C., Geist, J. Influence of stock origin and environmental conditions on the survival and growth of juvenile freshwater pearl mussels (Margaritifera margaritifera) in a cross-exposure experiment. Limnologica. 50, 67-74 (2015).
  13. Černá, M., Simon, O. P., Bílý, M., Douda, K., Dort, B., Galová, M., Volfová, M. Within-river variation in growth and survival of juvenile freshwater pearl mussels assessed by in situ exposure methods. Hydrobiologia. , In Press (2017).
  14. Denic, M., Taeubert, J. E. Trophic relationships between the larvae of two freshwater mussels and their fish hosts. Invertebrate Biology. 134 (2), 129-135 (2015).
  15. Douda, K. Host-dependent vitality of juvenile freshwater mussels: implications for breeding programs and host evaluation. Aquaculture. 445, 5-10 (2015).
  16. Buddensiek, V. The culture of juvenile freshwater pearl mussels Margaritifera margaritifera L. in cages: a contribution to conservation programmes and the knowledge of habitat requirements. Biological Conservation. 74 (1), 33-40 (1995).
  17. Hruška, J. Experience of semi-natural breeding program of freshwater pearl mussel in the Czech Republic. Die Flussperlmuschel in Europa: Bestandssituation und Schutzmaßnahmen. , Albert-Ludwigs Universität: Freiburg. Kongressband. WWA Hof 69-75 (2001).
  18. Barnhart, M. C. Buckets of muckets: a compact system for rearing juvenile freshwater mussels. Aquaculture. 254 (1), 227-233 (2006).
  19. Simon, O. P., Vaníčková, I., Bílý, M., Douda, K., Patzenhauerová, H., Hruška, J., Peltánová, A. The status of freshwater pearl mussel in the Czech Republic: several successfully rejuvenated populations but the absence of natural reproduction. Limnologica. 50, 11-20 (2015).
  20. R Core Team. A language and environment for statistical computing. , R Foundation for Statistical Computing. Vienna, Austria. Available from: https://www.r-project.org/ (2013).
  21. Hastie, L. C., Yang, M. R. Conservation of the freshwater pearl mussel I: captive breeding techniques. 2, Natural England. Peterborough, UK. Conserving Natura 2000 Rivers Conservation Techniques Series No. 2 (2003).
  22. Hruška, J. Nahrungsansprüche der Flußperlmuschel und deren halbnatürliche Aufzucht in der Tschechischen Republik. Heldia. 4 (6), 69-79 (1999).
  23. Scheder, C., Lerchegger, B., Jung, M., Csar, D., Gumpinger, C. Practical experience in the rearing of freshwater pearl mussels (Margaritifera margaritifera): advantages of a work-saving infection approach, survival, and growth of early life stages. Hydrobiologia. 735 (1), 203-212 (2014).
  24. Braun, A., Auerswald, K., Geist, J. Drivers and spatio-temporal extent of hyporheic patch variation: implications for sampling. PLoS ONE. 7 (7), e42046(2012).
  25. Franken, R. J. M., Storey, R. G., Williams, D. D. Biological, chemical and physical characteristics of downwelling and upwelling zones in the hyporheic zone of a north-temperate stream. Hydrobiologia. , 183-195 (2001).
  26. Roley, S. S., Tank, J. L. Pore water physicochemical constraints on the endangered clubshell mussel (Pleurobema clava). Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 73 (12), 1712-1722 (2016).
  27. Larson, J. H., Eckert, N. L., Bartsch, M. R. Intrinsic variability in shell and soft tissue growth of the freshwater mussel Lampsilis siliquoidea. PLoS ONE. 9 (11), e112252(2014).
  28. Lavictoire, L., Moorkens, E., Ramsey, A. D., Sinclair, W., Sweeting, R. A. Effects of substrate size and cleaning regime on growth and survival of captive-bred juvenile freshwater pearl mussels, Margaritifera (Linnaeus, 1758). Hydrobiologia. 766 (1), 89-102 (2015).
  29. Hruška, J. Experience of semi-natural breeding programme of freshwater pearl mussel in the Czech Republic. Die Flussperlmuschel in Europa: Bestandssituation und Schutzmassnahmen. , 69-75 (2000).
  30. Bayne, B. L. Physiological components of growth differences between individual oysters (Crassostrea gigas) and a comparison with Saccostrea commercialis. Physiological and Biochemical Zoology. 72 (6), 705-713 (1999).
  31. Tamayo, D., Azpeitia, K., Markaide, P., Navarro, E., Ibarrola, I. Food regime modulates physiological processes underlying size differentiation in juvenile intertidal mussels Mytilus galloprovincialis. Marine Biology. 163 (6), (2016).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Freshwater Pearl MusselsIn Situ ExposureJuvenile GrowthSurvival RateSandy Cage MethodMesh Cage MethodHyporheic ZoneOpen Water ExposureWithin Bed ExposureRiver Bottom Installation

Related Articles