Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Een nieuwe benadering voor het toezicht op Graft Neovascularization in de menselijke tandvlees

6.5K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/58535

⸱

12 januari 2019

 ,  ,  ,  , 
1Department of Conservative Dentistry, Faculty of Dentistry, Semmelweis University

In dit artikel

Samenvatting

Deze studie introduceert een protocol voor het meten van de microcirculatie in menselijke mondelinge mucosa tegen laser spikkel contrast denkbaar. Het toezicht op wondgenezing na vestibuloplasty gecombineerd met een prothese xenogene collageen wordt gepresenteerd op een klinisch geval.

Samenvatting

Laser spikkel contrast imaging (LSCI) is een nieuwe methode voor het meten van oppervlakkige bloedverspreiding over grote gebieden. Aangezien het is niet-invasief en direct contact met het gemeten gebied vermijdt, is het geschikt voor het volgen van bloed stroom veranderingen tijdens de wondgenezing in menselijke patiënten. Vestibuloplasty is parodontale chirurgie aan de mondelinge vestibule, gericht op het herstellen van vestibulaire diepte met gelijktijdige uitbreiding van de keratinized tandvlees. In deze speciale klinische gevallen, een split dikte flap op de eerste bovenste premolaar werd verheven en een xenogene collageen matrix werd aangepast aan het resulterende geadresseerden bed. LSCI werd gebruikt voor het controleren van de re- en neovascularization van de prothese en de omliggende mucosa gedurende één jaar. Een protocol is ingevoerd voor de juiste afstelling van de meting van de microcirculatie in mondelinge mucosa, waarbij zij problemen en mogelijke storingen.

De klinische case studie gepresenteerd aangetoond dat — na het juiste protocol — LSCI is een geschikte en betrouwbare methode voor de opvolging van de microcirculatie in een genezing van de wond in de menselijke mondelinge mucosa en geeft nuttige informatie over de integratie van de prothese.

Inleiding

Bewaking van veranderingen op lange termijn van menselijke gingival microcirculatie in een klinische situatie is een hot topic in mondelinge en parodontale chirurgie. Betrouwbare beoordeling van perfusie kan echter moeilijk. Er zijn slechts een paar methoden die doen niet gebeurt het meten van veranderingen in de bloedsomloop van de menselijke mucosa. Twee van deze dienst een laser beam1,2,3,4, maar op een andere manier. Laser doppler flowmetrie (LDF) maakt gebruik van de Doppler shift in een laser beam5,6, terwijl de laser spikkel contrast imaging (LSCI) methode berust op de spikkel patroon van de terugverstrooide laserlicht te meten van de snelheid van rood bloed cellen7.

LDF maatregelen slechts in één aanspreekpunt en reproduceerbare standaardisatie van de sensoren positie is een wenselijk maar moeilijke taak. Een ander probleem is dat de sonde van de LDF kleine diameter (1 mm2). Meten op vooraf bepaalde punten voor de operatie is te specifiek, en kan blind voor postoperatieve bloedsomloop wijzigingen, terwijl oedeem, verwijdering van het weefsel, weefsel beweging of de geïmplanteerde prothese leiden tot significante veranderingen in de postoperatieve geometrie van de getroffen weke delen. De meetafstand van LDF is minder dan 1 mm die gebruik van een tandheelkundige splint met een vooraf bepaalde gat voor de sonde in geval van volumetrische verandering van het weefsel verbiedt. LSCI vereist geen speciale gereedschappen voor lokalisatie en kunnen meten in gebieden van verschillende cm2. Dientengevolge, kan wondgenezing worden gevolgd in de chirurgische site. Daarnaast kan LSCI bloedverspreiding weergeven in gekleurde beelden tegen een fractie van een seconde, met een resolutie van maximaal 20 μm.

Het apparaat van de LSCI gepresenteerd in deze paper wordt meestal gebruikt voor dierlijke onderzoek toepassingen waar hoge resolutie in kleine meting gebieden gewenst is. Aangezien de structuur en de histologie van de menselijke mondelinge mucosa verschillen van gebied tot gebied (bijgevoegde tandvlees, marginale tandvlees, vestibulaire mucosa), is bloedsomloop echter ook heterogene8. Hoge resolutie LSCI heeft dus een groot voordeel ten opzichte van normale resolutie LSCI die meestal bij het testen van de mens gebruikt wordt.

De LSCI-instrument maakt gebruik van een onzichtbare laserstraal (golflengte 785 nm). De bundel is afweek om te verlichten van het gebied van de meting, maken een spikkel patroon. Een CCD camera afbeeldingen de spikkel patroon in het verlichte gebied. De CCD-camera gebruikt in dit systeem heeft een actieve opnamegebied van 1386 x 1034 pixels en zijn resolutie is tussen 20 – 60 µm/pixel afhankelijk van de grootte van het gebied van de meting en de instelling van de software (laag, gemiddeld, hoog). Het kan beelden met een snelheid van 16 beelden per seconde, of zelfs meer, tot 100 beelden per seconde, duren als de beeldgrootte is verminderd. Bloedverspreiding wordt berekend door de ingebouwde software. Het analyseert variaties in het patroon spikkel en kwantificeert het contrast. De resulterende flux is kleur gecodeerd om een perfusie-beeld te produceren. Volgens de resultaten van onze vorige beoordeelt LSCI de bloed perfusie van het tandvlees met goede herhaalbaarheid en reproduceerbaarheid9. Dit betekent dat er een betrouwbaar instrument voor toezicht wijzigingen in de microcirculatie van de orale mucosa niet alleen in korte experimenten, maar ook tijdens lange termijn studies moeten worden bijgehouden van de progressie van de ziekte of wond genezing10.

In deze paper presenteren we een klinische gevallenrapport om aan te tonen dat de hoge ruimtelijke resolutie van LSCI maakt het mogelijk om te onthullen het neovascularization patroon van een prothese xenogene collageen. Deze zaak geeft bovendien aan dat LSCI, vanwege haar hoge betrouwbaarheid, gevoelig dat individuele variatie detecteren kon. Dit is belangrijk als belangrijke lokale anatomische variatie en een andere systemische achtergrond tussen de gevallen bemoeilijkt het standaardiseren van de chirurgische interventie in klinische proeven van parodontale chirurgie.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

De gerapporteerde methode werkte in een klinische proef die ethische goedkeuring was verleend van de Hongaarse Commissie van de registratie van de gezondheid en Training Center (erkenningsnummer: 034310/2014/OTIG).

1. LSCI Setup

  1. Zet de computer en alle randapparatuur.
  2. Schakel de LSCI-instrument moet worden gebruikt met de schakelaar op het achterpaneel.
  3. Het toestaan van het instrument te warm gedurende minstens 5 min. Het instrument is klaar voor meting als beide LED op het achterpaneel hebben niet meer knippert.
  4. Start de software door te dubbelklikken op het pictogram van de software op het bureaublad of via het menu Start.
  5. Wacht tot zowel de gele als de groene LED op het achterpaneel zijn gestopt met knipperen, wat aangeeft dat de laser warm is en initialisatie is voltooid.
    Opmerking: Bij het opstarten van het systeem, een soms gevraagd voor het uitvoeren van de keuringsprocedure voor het systeem.

2. controle van het systeem

  1. Gebruik het vak van de kalibratie geleverd. Verwijder het deksel van het vak kalibratie en schud het Voorkom sedimentatie in de colloïdale suspensie.
  2. Laat het deksel uit voor 30 s te vermijden bubbels.
  3. Zet het deksel terug op het vak van de kalibratie.
  4. Klik op Geavanceerd | Verificatie | Controleer of instrument.
  5. Selecteer Routine controle | Volgende.
  6. Draai het hoofd 90°, zet vast de doos van de kalibratie met behulp van de geïntegreerde magneten en klik op volgende.
  7. De kamertemperatuur invoeren in het tekstvak, selecteer ° C en klikt u op Start.
  8. Wacht totdat de wizard is voltooid de verificatieprocedure.
  9. Na een geslaagde verificatie-procedure door de wizard te sluiten door te klikken op Voltooien.

3. deelnemer voorbereiding

  1. Zorg ervoor dat de meting wordt uitgevoerd in een temperatuurgevoelig kamer (26 ° C).
  2. Plaats van de patiënt in een comfortabele liggende positie in een tandheelkundige stoel en plaats een vacuüm kussen onder zijn hoofd (Figuur 1).
  3. Laat de patiënt ongestoord gedurende 15 minuten voordat alle metingen zijn verricht.

4. de microcirculatie afbeelding meting

  1. In het menu extra , selecteer en klik op de Redacteur van het Project. Er wordt een nieuw venster geopend waarin de gebruikte instellingen kunnen worden opgeslagen.
  2. In het vak projecten, klikt u op Nieuw om een nieuw project te maken. Voer de "Vestibulum" en klik op OK.
  3. In het vak Sites, klik op New om een nieuwe site maakt. Voer "Tand 14" en klik op OK.
  4. Onder het deelvenster inhoud van tand 14 "10 cm" toevoegen als de vereiste afstand voor de Afstand werken en voer een breedte van 3 cm en een hoogte van 2 cm in de vakken van de meting.
  5. De resolutie van de dichtheid van de punt ingesteld op normaal en de framerate tot 16 beelden/s en selecteert u tijd in de vervolgkeuzelijst duur de opnametijd instellen op 0:30.
  6. Selecteer "Record met geen gemiddeld" en stelt de kleur foto vastleggen tarief tot 1 per seconde.
  7. Klik vervolgens op "Apply" en "OK" om op te slaan van de Project-parameters.
  8. Selecteer in het menu bestand en klikt u op New opnemen. Een nieuwe Image-venster wordt geopend met het instellingenpaneel getoond.
  9. Onder Opname Setup, selecteer "Vestibulum" voor het Project en de "Tooth 14" voor de 4.9. Website.
  10. Open het onderwerp drop-down menu, klik op Nieuw in het dialoogvenster Selecteer onderwerp , en typ de naam van de patiënt.
  11. Klik op OK en typ een naam voor de opname in het veld Naam van de Rec : bijvoorbeeld dag 1 (dagen verstreken na de operatie) en de naam van de exploitant op het gebied van de Operator .
  12. Voordat u begint met de microcirculatie afbeelding meting, de bloeddruk en de pols van de patiënt van de maatregel.
  13. De lucht van het vacuüm kussen hoofd van de patiënt vast in een positie passend naar het gebied onderzochte te evacueren.
  14. Vraag de patiënt zijn mond open.
  15. Intrekken lippen zachtjes door twee tandheelkundige spiegels (Figuur 1).
  16. Aanpassen van het instrument hoofd parallel aan het gemeten gebied van het tandvlees. Een ingebouwde zichtbaar (650 nm) indicator laser vergemakkelijkt de positionering van de imager ten opzichte van de mond van de patiënt.
  17. De afstand tot 10 cm aanpassen door het instrument ten opzichte van het weefsel te bewegen. De afstand wordt continu gemeten door de LSCI-apparaat en het door de software wordt weergegeven als werkende afstand/gemeten waarde onder Beeldinstelling.
  18. Instrueer het onderwerp te blijven nog steeds voor de duur van de meting.
  19. Klik op de knop opnemen te beginnen met opnemen. De kleur van het afbeeldingsvenster wordt nu gewijzigd in rood, die aangeeft dat opname bezig is. Het instellingenpaneel wordt vervangen door het paneel van de opname. Opname stopt automatisch na 30 s. Wanneer opname is voltooid, wordt de kleur van de afbeelding webvenster verandert naar blauw en de opname-paneel vervangen door het Review panel.
  20. Verwijderen van tandheelkundige spiegels en laat de patiënt zijn mond dicht en slikken.
  21. Ga terug naar het live beeld door op de knop hervatten van de opname .
  22. Herhaal de stappen van 4.14 om 4.21 tweemaal.
  23. Sluit het bestand. De gegevens worden automatisch opgeslagen.
  24. Meten van de bloeddruk en pols na de LSCI-metingen.

5. off line analyse

  1. Het analyseren van de beelden van de LSCI met behulp van de ingebouwde software. Ga naar afbeelding of gesplitste weergave (Figuur 2).
  2. Gebieden van belang (ROI) te definiëren. Opmerking: de waarden van de perfusie van pixels in een ROI zijn gemiddeld en gedefinieerd als de waarde van de stroom bloed van de ROI, uitgedrukt in een willekeurige waarde met de naam Laser spikkel perfusie Unit (LSPU).
  3. Selecteer de gewenste ROI shape binnen de ROI tools palet aan de rechterkant.
  4. Selecteer de optie toepassen in de ROI tools palet, die ROI bewerkingen is van toepassing op alle beelden van de opname.
  5. Trekken de ROI door te klikken op en houd de muisknop in het beeld van de intensiteit, de ROI uit naar de gewenste grootte te slepen en houd de muisknop knop (klikken en dubbelklikken voor vrije-vorm ROIs). Pas de positie van de ROI, de grootte of draaien, indien nodig.
  6. Herhaal de stappen van 5.3. naar 5.5 zo vaak als het gewenste aantal ROIs (Figuur 3).
  7. Perioden van belang (TOI) definiëren. Dit zorgt voor gemiddeld perfusie in een ROI over een bepaalde periode van tijd (Figuur 2).
  8. Ga naar grafiek of gesplitste weergave. Selecteer de knop toevoegen TOI.
  9. Klik en houd op de grafiek op de positie waar u de TOI te beginnen en sleep de cursor naar de gewenste eindpositie. Laat de muisknop vervolgens los.
  10. Exporteer gegevens uit de tabel van de gemiddelde waarde voor verdere verwerking.
  11. Construeren bloed stroom curven door een geschikte software gebruikt voor statistische analyse.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Vestibuloplasty is parodontale chirurgie aan de mondelinge vestibule, gericht op verhoging van het vestibulair diepte, de zone van tandvlees keratinized en weke delen dikte voor verbeterde esthetiek en functie. De apically verplaatst split dikte flap in combinatie met een collageen-matrix is een veelgebruikte vestibuloplasty procedure. Xenogene collageen matrix is een levensvatbaar alternatief voor Autogeen gingival prothese voor het verhogen van de hoeveelheid keratinized tandvlees

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Het doel van deze studie was om een nieuwe techniek voor het toezicht op de neovascularization van een prothese in de menselijke tandvlees. Volgens de resultaten van onze vorige beoordeelt LSCI de bloed perfusie van het tandvlees met goede herhaalbaarheid en reproduceerbaarheid9, wanneer strikte toepassing van elke stap van het geplande protocol als een essentiële vereiste wordt voldaan. LSCI wordt beschouwd als een semi-kwantitatieve techniek waarvoor kalibratie periodiek aan nauwkeurigheid en st...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

Dit werk werd uitgevoerd ten dele van ondersteuning door de Hongaarse Fonds voor wetenschappelijk onderzoek onder Grant nummer K112364, door het Hongaarse ministerie van menselijke capaciteiten, hogeronderwijs excellentie programma Semmelweis University, therapie onderzoek Module en door de Nationale onderzoek, ontwikkeling en innovatie Office KFI_16-1-2017-0409.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
PeriCam PSI-HRPerimed AB, Stockholm, SwedenHet PeriCam PSI-systeem is een beeldvormingssysteem gebaseerd op LASCA-technologie (LAser Speckle Contrast Analysis). Het systeem meet oppervlakkige bloedperfusie over grote gebieden met snelle opnamefrequenties. Dit maakt het ideaal voor onderzoek naar zowel de ruimtelijke als temporele dynamica van de microcirculatie in bijna elk weefsel.
PIMSoftPerimed AB, Stockholm, SwedenPIMSoft is een software voor gegevensverwerving en -analyse, bedoeld voor gebruik samen met het PeriCam PSI-systeem en het PeriScan PIM 3-systeem, voor meting en beeldvorming van oppervlakkige bloedperfusie.
Geistlich MucograftGeistlich, ZwitserlandHet is een unieke 3D collageenmatrix speciaal ontworpen voor weke weefselregeneratie. Het is geïndiceerd voor het verkrijgen van keratineweefsel en recessiedekking.
Omron M4Omron Healthcare Inc., Kyoto, JapanBloeddrukmeter, die nauwkeurige metingen geeft.
Nikon D5200Nikon Corportation, Tokyo, JapanHet nemen van intra-orale foto's
MS ExcelMicrosoft Corporation, Redmond, Washington, USADe software die wordt gebruikt voor gegevensbeheer
IBM SPSS Statistics 25IBM Corp., Armonk, NY, USADe software die wordt gebruikt voor statistische analyse

Referenties

  1. Nakamoto, T., et al. Two-Dimensional Real-Time Blood Flow and Temperature of Soft Tissue Around Maxillary Anterior Implants. Implant Dentistry. 21 (6), 522-527 (2012).
  2. Kajiwara, N., et al. Soft tissue biological response to zirconia and metal implant abutments compared with natural tooth: microcirculation monitoring as a novel bioindicator. Implant Dentistry. 24 (1), 37-41 (2015).
  3. Kemppainen, P., Forster, C., Handwerker, H. O. The importance of stimulus site and intensity in differences of pain-induced vascular reflexes in human orofacial regions. Pain. 91 (3), 331-338 (2001).
  4. Kemppainen, P., Avellan, N. L., Handwerker, H. O., Forster, C. Differences between tooth stimulation and capsaicin-induced neurogenic vasodilatation in human gingiva. Journal of Dental Research. 82 (4), 303-307 (2003).
  5. Riva, C., Ross, B., Benedek, G. B. Laser Doppler measurements of blood flow in capillary tubes and retinal arteries. Investigative ophthalmology. 11 (11), 936-944 (1972).
  6. Humeau, A., Steenbergen, W., Nilsson, H., Stromberg, T. Laser Doppler perfusion monitoring and imaging: novel approaches. Medical & Biological Engineering & Computing. 45 (5), 421-435 (2007).
  7. Briers, J. D., Webster, S. Laser speckle contrast analysis (LASCA): a nonscanning, full-field technique for monitoring capillary blood flow. Journal of Biomedical Optics. 1 (2), 174-179 (1996).
  8. Fazekas, R., et al. Functional characterization of collaterals in the human gingiva by laser speckle contrast imaging. Microcirculation. 25 (3), 12446(2018).
  9. Molnar, E., Fazekas, R., Lohinai, Z., Toth, Z., Vag, J. Assessment of the test-retest reliability of human gingival blood flow measurements by Laser Speckle Contrast Imaging in a healthy cohort. Microcirculation. 25 (2), (2018).
  10. Molnar, E., et al. Evaluation of Laser Speckle Contrast Imaging for the Assessment of Oral Mucosal Blood Flow following Periodontal Plastic Surgery: An Exploratory Study. BioMed Research International. 2017, 4042902(2017).
  11. Sanz, M., Lorenzo, R., Aranda, J. J., Martin, C., Orsini, M. Clinical evaluation of a new collagen matrix (Mucograft prototype) to enhance the width of keratinized tissue in patients with fixed prosthetic restorations: a randomized prospective clinical trial. Journal of Clinical Periodontology. 36 (10), 868-876 (2009).
  12. Nevins, M., Nevins, M. L., Kim, S. W., Schupbach, P., Kim, D. M. The use of mucograft collagen matrix to augment the zone of keratinized tissue around teeth: a pilot study. The International Journal of Periodontics and Restorative Dentistry. 31 (4), 367-373 (2011).
  13. Lorenzo, R., Garcia, V., Orsini, M., Martin, C., Sanz, M. Clinical efficacy of a xenogeneic collagen matrix in augmenting keratinized mucosa around implants: a randomized controlled prospective clinical trial. Clinical Oral Implants Research. 23 (3), 316-324 (2012).
  14. Perry, D. A., McDowell, J., Goodis, H. E. Gingival microcirculation response to tooth brushing measured by laser Doppler flowmetry. Journal of Periodontology. 68 (10), 990-995 (1997).
  15. Yamaguchi, K., Nanda, R. S., Kawata, T. Effect of orthodontic forces on blood flow in human gingiva. Angle Orthodontist. 61 (3), 193-203 (1991).
  16. Molnár, E., et al. Assessment of heat provocation tests on the human gingiva: the effect of periodontal disease and smoking. Acta Physiologica Hungarica. 102 (2), 176-188 (2015).
  17. Gleissner, C., Kempski, O., Peylo, S., Glatzel, J. H., Willershausen, B. Local gingival blood flow at healthy and inflamed sites measured by laser Doppler flowmetry. Journal of Periodontology. 77 (10), 1762-1771 (2006).
  18. Hinrichs, J. E., Jarzembinski, C., Hardie, N., Aeppli, D. Intrasulcular laser Doppler readings before and after root planing. Journal of Clinical Periodontology. 22 (11), 817-823 (1995).
  19. Svalestad, J., Hellem, S., Vaagbo, G., Irgens, A., Thorsen, E. Reproducibility of transcutaneous oximetry and laser Doppler flowmetry in facial skin and gingival tissue. Microvascular Research. 79 (1), 29-33 (2010).
  20. Sasano, T., Kuriwada, S., Sanjo, D. Arterial blood pressure regulation of pulpal blood flow as determined by laser Doppler. Journal of Dental Research. 68 (5), 791-795 (1989).
  21. Ikawa, M., Ikawa, K., Horiuchi, H. The effects of thermal and mechanical stimulation on blood flow in healthy and inflamed gingiva in man. Archives of Oral Biology. 43 (2), 127-132 (1998).
  22. Baab, D. A., Oberg, P. A., Holloway, G. A. Gingival blood flow measured with a laser Doppler flowmeter. Journal of Periodontal Research. 21 (1), 73-85 (1986).
  23. Fazekas, A., Csempesz, F., Csabai, Z., Vág, J. Effects of pre-soaked retraction cords on the microcirculation of the human gingival margin. Operative Dentistry. 27 (4), 343-348 (2002).
  24. Csillag, M., Nyiri, G., Vag, J., Fazekas, A. Dose-related effects of epinephrine on human gingival blood flow and crevicular fluid production used as a soaking solution for chemo-mechanical tissue retraction. Journal of Prosthetic Dentistry. 97 (1), 6-11 (2007).
  25. Tanaka, M., Hanioka, T., Kishimoto, M., Shizukuishi, S. Effect of mechanical toothbrush stimulation on gingival microcirculatory functions in inflamed gingiva of dogs. Journal of Clinical Periodontology. 25 (7), 561-565 (1998).
  26. Rothamel, D., et al. Biodegradation pattern and tissue integration of native and cross-linked porcine collagen soft tissue augmentation matrices - an experimental study in the rat. Head & Face Medicine. 10, 10(2014).
  27. Schwarz, F., Rothamel, D., Herten, M., Sager, M., Becker, J. Angiogenesis pattern of native and cross-linked collagen membranes: an immunohistochemical study in the rat. Clinical Oral Implants Research. 17 (4), 403-409 (2006).
  28. Vergara, J. A., Quinones, C. R., Nasjleti, C. E., Caffesse, R. G. Vascular response to guided tissue regeneration procedures using nonresorbable and bioabsorbable membranes in dogs. Journal of Periodontology. 68 (3), 217-224 (1997).
  29. Oliver, R. C., Loe, H., Karring, T. Microscopic evaluation of the healing and revascularization of free gingival grafts. Journal of Periodontal Research. 3 (2), 84-95 (1968).
  30. Janson, W. A., Ruben, M. P., Kramer, G. M., Bloom, A. A., Turner, H. Development of the blood supply to split-thickness free ginival autografts. Journal of Periodontology. 40 (12), 707-716 (1969).
  31. Mormann, W., Bernimoulin, J. P., Schmid, M. O. Fluorescein angiography of free gingival autografts. Journal of Clinical Periodontology. 2 (4), 177-189 (1975).
  32. Busschop, J., de Boever, J., Schautteet, H. Revascularization of gingival autografts placed on different receptor beds. A fluoroangiographic study. Journal of Clinical Periodontology. 10 (3), 327-332 (1983).
  33. Fazekas, R., et al. A proposed method for assessing the appropriate timing of early implant placements: a case report. Journal of Oral Implantology. , (2018).
  34. Briers, J. D., Fercher, A. F. Retinal blood-flow visualization by means of laser speckle photography. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 22 (2), 255-259 (1982).
  35. Srienc, A. I., Kurth-Nelson, Z. L., Newman, E. A. Imaging retinal blood flow with laser speckle flowmetry. Front Neuroenergetics. 2, (2010).
  36. Choi, B., Kang, N. M., Nelson, J. S. Laser speckle imaging for monitoring blood flow dynamics in the in vivo rodent dorsal skin fold model. Microvascular Research. 68 (2), 143-146 (2004).
  37. Ayata, C., et al. Laser speckle flowmetry for the study of cerebrovascular physiology in normal and ischemic mouse cortex. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 24 (7), 744-755 (2004).
  38. Armitage, G. A., Todd, K. G., Shuaib, A., Winship, I. R. Laser speckle contrast imaging of collateral blood flow during acute ischemic stroke. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 30 (8), 1432-1436 (2010).
  39. Lindahl, F., Tesselaar, E., Sjoberg, F. Assessing paediatric scald injuries using Laser Speckle Contrast Imaging. Burns. 39 (4), 662-666 (2013).
  40. Mirdell, R., Iredahl, F., Sjoberg, F., Farnebo, S., Tesselaar, E. Microvascular blood flow in scalds in children and its relation to duration of wound healing: A study using laser speckle contrast imaging. Burns. , (2016).
  41. Zotterman, J., Bergkvist, M., Iredahl, F., Tesselaar, E., Farnebo, S. Monitoring of partial and full venous outflow obstruction in a porcine flap model using laser speckle contrast imaging. Journal of Plastic, Reconstructive & Aesthetic Surgery. 69 (7), 936-943 (2016).
  42. Hecht, N., Woitzik, J., Dreier, J. P., Vajkoczy, P. Intraoperative monitoring of cerebral blood flow by laser speckle contrast analysis. Neurosurgical Focus. 27 (4), E11(2009).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Meer artikelen verkennen

Laser speckle contrast-beeldvorminggingivale microcirculatievestibuloplastiek-chirurgiemeting van bloedperfusiemonitoring van het mondslijmvliesniet-invasieve beeldvormingvolgen van wondgenezinganalyse van regio van interessepostoperatieve bloeddoorstroming
Een nieuwe benadering voor het toezicht op Graft Neovascularization in de menselijke tandvlees
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan de bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleidsoverzicht

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.