Methodenartikel

Beoordeling van de autonome en gedragseffecten van passieve beweging bij ratten met behulp van Elevator Vertical Motion en Ferris-Wheel Rotation

DOI:

10.3791/59837

⸱

7 februari 2020

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1School of Biomedical Engineering, Faculty of Engineering, University of Sydney, 2Department of Physics, City University of Hong Kong, 3Department of Nautical Injury Prevention, Faculty of Navy Medicine, Second Military Medical University, 4State Key Laboratory of Marine Pollution (SKLMP), City University of Hong Kong, 5Department of Biomedical Sciences, College of Veterinary Medicine and Life Sciences, City University of Hong Kong, 6Department of Materials Science and Engineering, City University of Hong Kong

In dit artikel

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Protocollen worden gepresenteerd om de autonome en gedragseffecten van passieve beweging bij knaagdieren te beoordelen met behulp van lift verticale beweging en reuzenrad rotatie.

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Het algemene doel van deze studie is het beoordelen van de autonome en gedragseffecten van passieve beweging bij knaagdieren met behulp van de lift verticale beweging en reuzenrad rotatie-apparaten. Deze tests kunnen helpen bevestigen de integriteit en de normale werking van het autonome zenuwstelsel. Ze zijn gekoppeld aan kwantitatieve maatregelen op basis van ontlasting tellen, open-veld onderzoek, en balans balk kruising. De voordelen van deze testen zijn hun eenvoud, reproduceerbaarheid en kwantitatieve gedragsmaatregelen. De beperkingen van deze tests zijn dat de autonome reacties epifenomenen van niet-vestibulaire aandoeningen kunnen zijn en dat een functionerend vestibulair systeem vereist is. Onderzoek van aandoeningen zoals reisziekte zal sterk worden geholpen door de gedetailleerde procedures van deze tests.

Inleiding

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Reisziekte (MS) als gevolg van abnormale visuo-vestibulaire stimulatie leidt tot autonome reactie, het uitlokken van symptomen zoals epigastrische ongemak, misselijkheid en/of braken1. Volgens de huidige theorieën kan reisziekte worden veroorzaakt door een zintuiglijk conflict of neuronale mismatch van het ontvangen van geïntegreerde bewegingsinformatie die verschilt van het verwachte interne model van de omgeving2,3 of posturale instabiliteit zoals zou optreden op een gierend schip4,5. Ondanks aanzienlijke vooruitgang op het gebied van reisziekte en vestibulaire autonome werking6,7,8,9,10,11,12, kan toekomstig onderzoek worden ondersteund door gestandaardiseerde evaluatieprotocollen. De beoordeling van de autonome effecten van standaard passieve bewegingen zal de onderzoeken naar de oorzaken en de preventie van reisziekte ten goede komen. Het algemene doel van deze studie is het beoordelen van de autonome en gedragseffecten van passieve beweging bij knaagdieren. Diermodellen, zoals knaagdieren, maken eenvoudige experimentele manipulatie (bijvoorbeeld passieve beweging en farmaceutische) en gedragsevaluatie mogelijk, die kunnen worden gebruikt om de etiologie van reisziekte te bestuderen. Hier presenteren we een gedetailleerde batterij voor het testen van de effecten van passieve beweging en de integriteit van vestibulaire werking.

De huidige studie beschrijft twee testen, lift verticale beweging (EVM) en Reuzenrad rotatie (FWR), die autonome reacties op de passieve beweging induceren. De tests zijn gekoppeld aan drie kwantitatieve gedragsmaatregelen, de balansbalk (op muizen13 en ratten14,15,16,17), open-veld onderzoek, en ontlasting tellen. De EVM (vergelijkbaar met de toonhoogte en rol van een schip dat een golf tegenkomt) beoordeelt de vestibulaire werking door het stimuleren van de otolietsensorische organen die lineaire versnellingen coderen (d.w.z. de saccule die reageert op bewegingen in het verticale vlak)18. Het FWR (centrifugale rotatie of sinusoïdale beweging) apparaat stimuleert de otolietorganen door lineaire versnelling en de halfronde kanalen door hoekversnelling19,20. Het reuzenrad/centrifugaalrotatieapparaat is uniek in zijn autonome beoordeling. Tot op heden is het enige soortgelijke apparaat in de literatuur de off-vertical axis rotation (OVAR) draaitafel, die wordt gebruikt om de vestibulo-oculaire reflex (VOR)18,21,22, geconditioneerde vermijding23,24, en de effecten van hyperzwaartekracht25,26,27te onderzoeken . De EVM-test en de FWR-apparaattest veroorzaken vestibulaire stimulatie die leidt tot autonome reacties. We koppelen de EVM en FWR aan kwantitatieve metingen zoals balansbundel, ontlasting tellen, en open-field analyse28,29,30, om robuuste en reproduceerbare resultaten te garanderen. Vergelijkbaar met die eerder beschreven in muizen13 en ratten14,15,16,17, de balans balk test is een 1,0 m lange balk opgehangen 0,75 m van de grond tussen twee houten ontlasting met behulp van een eenvoudige black-box modificatie aan het eind van het doel (finish). De balansbalk is gebruikt om angst (obscure zwarte doos) te beoordelen14,17, traumatisch letsel15,16,17, en hier, autonome reacties die het evenwicht beïnvloeden. We hebben eerder ontlastinggeteld voor de beoordeling van de autonome respons in het reisziektemodel, en het is een betrouwbare kwantitatieve meting die gemakkelijk kan worden uitgevoerd en ondubbelzinnig wordt beoordeeld6,8,9,11. De open-field analyse maakt gebruik van een eenvoudige black box open-field gedragsbeoordeling met behulp van Ethovision28, Bonsai30, of een eenvoudige video-analyse in Matlab29 om gedrag te kwantificeren, zoals beweging. In het huidige protocol gebruiken we de totale afgelegde afstand, maar we merken dat er verschillende paradigma's bestaan (bijvoorbeeld verlenging, bewegingszone, snelheid, enz.) 28,29,30. Gezamenlijk vormen deze procedures een korte batterij van beoordelingen voor het onderzoek en de evaluatie van autonome reacties op passieve beweging, bijvoorbeeld bij reisziekte6,7,8,9,10,11. De huidige testen kunnen worden aangepast aan een verscheidenheid van dierlijke modellen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De huidige studie en procedures werden goedgekeurd door de Ethische Commissie voor Dierproeven van de Tweede Militaire Medische Universiteit (Shanghai, China) in overeenstemming met de Gids voor de Zorg en Het Gebruik van Proefdieren (Us National Research Council, 1996).

1. Dieren

  1. Gebruik Sprague-Dawley (SD) ratten van twee maanden (200-250 g). Gebruik voor elke gedragstest een aparte groep ratten. Gebruik altijd aparte controle- en experimentele groepen.
    OPMERKING: Er waren twee autonome tests: EVM en FWR. EvM had drie voorwaarden naast een controlegroep (= 4) met drie gedragstesten (saldostraal, defecation het tellen en open gebied = 3) met 8 ratten in elk voor een totaal van 96 ratten (4 x 3 x 8). De FWR had één voorwaarde naast een controlegroep (= 2) met drie gedragstesten (balansbalk, ontlasting tellen en open veld = 3) met 8 ratten in elk voor een totaal van 48 ratten (2 x 3 x 8). In totaal melden we 144 ratten.
  2. Kooiknaagdieren onder een constante temperatuur van 25 °C en een luchtvochtigheid van 60%-70%.
  3. Huis knaagdieren in 12 h/12 h licht / donker cycli met toegang tot voedsel en drinkwater ad libitum.
    OPMERKING: Aangezien de volgende protocollen gedragsexperimenten zijn, moeten ratten voorzichtig worden behandeld. Omgaan met dieren moet met beide handen met lichaam en achter steun, om geen angst te induceren.
  4. Voer experimenten (EVM en FWR) en evaluatietesten (balansbundel en open veldevaluatie) uit in de duisternis om visuele signalen te minimaliseren.

2. Verticale bewegingsinrichting van de lift

  1. Voer de verticale bewegingsprocedures van de lift uit in volledige duisternis om visuele signalen te minimaliseren.
  2. Plaats de knaagdieren in de plexiglasdoos (22,5 cm x 26 cm x 20 cm). Hier is de Plexiglas box geschikt voor vier knaagdieren (op maat gemaakt apparaat).
  3. Zorg ervoor dat de doos dicht en veilig gesloten is om te voorkomen dat knaagdieren uitvallen. Plaats de plexiglasdoos op het liftkussen van het verticale bewegingsapparaat van de lift (op maat gemaakt apparaat).
  4. Schakel het verticale bewegingsapparaat van de lift in op de laagste instelling voor acclimatisatie.
  5. Stel de amplitude in als 22 cm omhoog en 22 cm lager van neutraal. Stapsgewijs veranderen lift verticale beweging als volgt:
    1. Stel de initiële perioden in als 2.500 ms voor 5 min, 2.000 ms voor 5 min en 1.500 ms voor 5 min.
    2. Gebruik een testperiode van 1000 ms gedurende 2 uur.
    3. Vertraag het apparaat in omgekeerde richting met perioden van 1500 ms voor 5 min, 2000 ms voor 5 min en 2500 ms gedurende 5 min.

3. Ferris-wheel rotatie-apparaat

  1. Opstelling van het draaisysteem voor reuzenrad
    1. Plaats de plexiglascontainer (22,5 cm x 26 cm x 20 cm) op een houten bank (op maat gemaakt apparaat).
    2. Plaats de knaagdieren in de plexiglascontainer met de lange as van het lichaam loodrecht op de horizontale rotatiesstaaf van het reuzenrad (op maat gemaakt apparaat).
      OPMERKING: De plaatsing met het lichaam loodrecht op horizontale staaf zorgt voor stimulatie van otolietorganen (voorste-achterste en verticale richting) tijdens de rotatie.
    3. Sluit de plexiglasdoos goed.
    4. Plaats de tweede set knaagdieren in de plexiglascontainer met de lange as van het lichaam loodrecht op de horizontale rotatiesstaaf op de tweede arm van het reuzenradrotatieapparaat. Gebruik een tweede set knaagdieren met een vergelijkbare massa om het reuzenrad in evenwicht te brengen.
    5. Sluit de plexiglasdoos stevig en plaats op het reuzenradrotatieapparaat.
  2. Draaiprocedure voor reuzenrad
    1. Voer de rotatieprocedures van het reuzenrad uit in volledige duisternis om visuele signalen te minimaliseren.
    2. Start het reuzenrad met de klok mee draaien op 16°/s2 om een hoeksnelheid van 120°/s te bereiken, en begin vervolgens te vertragen bij 48°/s2 om 0°/s te bereiken. Laat de container na een pauze van 1 uur in een tegendeklok richting draaien op dezelfde manier als hierboven (versnelling bij 16°/s2 om een hoeksnelheid van 120°/s te bereiken en vervolgens vertraging bij 48°/s2 om 0°/s te bereiken). De cyclus met de klok mee-pauze-tegen de klok in vereist ongeveer 10 s om zijn oorspronkelijke positie te bereiken.
    3. Zet de rotatie met de klok mee voort gedurende 2 uur per sessie gedurende ongeveer 720 rotaties.

4. Evaluatie van EVM en FWR

OPMERKING: De evaluatie van ferris-wheel rotatie apparaat en lift verticale beweging wordt gedaan door drie procedures: balans balk testen, ontlasting tellen, en open-veld onderzoek. Identieke procedures worden gebruikt om verticale beweging van de lift te evalueren. Deze evaluatieprocedures moeten zo spoedig mogelijk na de wisseling van het reuzenrad of de verticale beweging van de lift worden uitgevoerd.

  1. Balansbalk
    1. Balansbalksetup
      1. Zet de balansbalk10,11,12 in door twee houten krukjes (ongeveer 0,75 m hoog) in het experimentele veld te plaatsen, ongeveer 110 cm uit elkaar.
      2. Plaats een zwarte plastic doos (15 cm x 15 cm x 8 cm) op de afwerkingskruk.
      3. Plaats een smalle houten balk (2,5 cm x 130 cm) tussen de twee ontlasting, waardoor een afstand van 100 cm tussen de ontlastingranden, van de startkruk tot de afwerkingkruk.
        LET OP: De ingang van de zwarte plastic doos moet aan de finish van de 100 cm.
      4. Plaats een lamp bij de startkruk. Doe de lamp aan.
      5. Zet de kamerverlichting uit en zorg ervoor dat de kamer zo donker mogelijk is. Dit zorgt ervoor dat het knaagdier de richting van de balansbundel volgt van het verlichte gebied naar het verduisterde gebied.
    2. Balansstraalprocedures
      OPMERKING: De motorcoördinatietest van de balansbalk wordt beoordeeld door de tijd te meten die nodig is om de verhoogde houten balk te doorkruisen.
      1. Train elk knaagdier dagelijks gedurende 3 opeenvolgende dagen, vóór de onderzoeksperiode, om stabiele prestaties op de balansbalk10te bereiken . Train door de invoering van de rat aan de balk in de verlichte hoek en gevraagd om de balk kruis. Uiteindelijk zal de rat uit eigen wil oversteken. Ratten in het huidige protocol duurden 3,6 ± 0,9 seconden.
        OPMERKING: Sommige knaagdieren slagen er niet in om stabiele prestaties te bereiken tijdens de training en moeten worden uitgesloten. Sommige knaagdieren voeren de taak niet uit, terwijl anderen geen motivatie hebben om de balk over te steken. Stabiele prestaties waren twee opeenvolgende proefperiodes van kruising tijden minder dan 4 seconden. Als een rat valt tijdens de training of beoordeling moet worden gecategoriseerd als een rat 'vallen' en niet verder beoordeeld.
      2. Voor de eigenlijke procedure, plaats het getrainde knaagdier op de startkruk in de buurt van het licht en tegelijkertijd druk op start op een stopwatch. Het knaagdier moet de balansbalk snel kruisen en de zwarte doos op de afwerkingskruk invoeren.
      3. Druk op start op de stopwatch zodra het knaagdier op zijn plaats is en druk op stop wanneer de neus de donkere doos op de finishkruk binnenkomt. De tijd om de balk te doorkruisen is van startkruk tot finishkruk.
        OPMERKING: Zodra het knaagdier is opgeleid, u een interventie of manipulatie uitvoeren, zoals het opwekken van reisziekte, voorafgaand aan de evaluatie. U ook een nulmeting verkrijgen, voorafgaand aan de interventie, met behulp van de tijd om de laatste training te doorlopen.
  2. Ontlasting tellen
    1. Plaats de plexiglascontainer met de vier knaagdieren na de testperiode van het reuzenrad op een bankje.
    2. Verwijder de knaagdieren en plaats in individuele open-veld dozen (hieronder).
    3. Tel het aantal uitwerpselen pellets in de plexiglas doos toegeschreven aan elk knaagdier.
      OPMERKING: Een nulmeting kan worden verkregen, ter vergelijking met de evaluatie na liftbeweging, door uitwerpselenpellets te tellen voordat de verticale beweging van de lift wordt ondergaan.
  3. Open-veld onderzoek
    1. Plaats de knaagdieren in de open velddoos (40 cm x 40 cm x 45 cm).
    2. Neem open veldgedrag op met behulp van een IR-videocamera voor 3 min28,29,30.
    3. Bepaal de totale afgelegde afstand.
      LET OP: Het is erg belangrijk om het knaagdier NIET in de open-veld doos te plaatsen voor lift verticale beweging. Het milieu moet nieuw zijn voor het knaagdier. Daarom mogen geen basismetingen worden uitgevoerd voor onderzoek in het open veld.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Figuur 2 toont representatieve balansbundelresultaten aan van de tijd die nodig is om over te gaan. Ratten werden getraind voor 3 opeenvolgende dagen om stabiele prestaties te bereiken op de balans balk10. De volgende dag werden ratten geëvalueerd op balansbundelprestaties. In de y-as van de figuur, hebben we het aantal seconden genomen voor knaagdieren om de balans balk voor reuzenrad, lift verticale beweging, en controle groepen voor demonstratieve doeleinden kruise...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De huidige studie beschrijft het beoordelen van autonome reacties op passieve beweging bij knaagdieren met behulp van lift verticale beweging en reuzenrad rotatie. Deze apparatuur en procedures kunnen gemakkelijk worden aangenomen om andere knaagdieren en verschillende wijzigingen van de testen bestaan om vestibulaire functioneren te bevestigen in verschillende omstandigheden, zoals tijdens in farmacologische uitdaging of chirurgische ingrepen. Onderzoek naar MS ontlokt door vestibulaire stimulatie heeft geleid tot de th...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs verklaren geen financiële of niet-financiële belangenconflicten. Het FWR-apparaat heeft een patent in China: ZL201120231912.1.

Dankbetuigingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dit werk werd gedeeltelijk ondersteund door de Hong Kong Research Grants Council, Early Career Scheme, Project #21201217 naar C.L. Het FWR-apparaat heeft een patent in China: ZL201120231912.1.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Elevator vertical motion deviceCustomOp maat gemaakte Elevator vertical motion device volgens gewenste specificaties
EthovisionNoldus Information TechnologyVideo tracking software
Ferris-wheel rotation deviceCustomOp maat gemaakte Ferris-wheel rotatie device volgens gewenste specificaties
Latex, polyvinyl of nitril handschoenenAMMEXGebruik ongestofte handschoenen 8-mil
Open veld boxCustomVerduisterde plexiglas box met IR camera
Raad of muisJAX labsElke kleine knaagdieren
Kleine knaagdierkooiTecniplast1284L
Hout balk en krukjesCustomOp maat gemaakte houten balk en krukjes volgens aangegeven specificaties

Referenties

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Balaban, C. D. Vestibular autonomic regulation (including motion sickness and the mechanism of vomiting). Current Opinion in Neurology. 12, 29-33 (1999).
  2. Reason, J. T. Motion sickness adaptation: a neural mismatch model. Journal of the Royal Society of Medicine. 71, 819-829 (1978).
  3. Keshavarz, B., Hettinger, L. J., Kennedy, R. S., Campos, J. L. Demonstrating the potential for dynamic auditory stimulation to contribute to motion sickness. PLOS One. 9, 101016(2014).
  4. Stoffregen, T. A., Chen, F. C., Varlet, M., Alcantara, C., Bardy, B. G. Getting your sea legs. PLoS One. 8, 66949(2013).
  5. Smart, L. J. Jr, Pagulayan, R. J., Stoffregen, T. A. Self-induced motion sickness in unperturbed stance. Brain Research Bulletin. 47, 449-457 (1998).
  6. Wang, J. Q., et al. Temporal change in NMDA receptor signaling and GABAA receptor expression in rat caudal vestibular nucleus during motion sickness habituation. Brain Research. 1461, 30-40 (2012).
  7. Cai, Y. L., et al. Glutamatergic vestibular neurons express FOS after vestibular stimulation and project to the NTS and the PBN in rats. Neuroscience Letters. 417, 132-137 (2007).
  8. Cai, Y. L., et al. Decreased Fos protein expression in rat caudal vestibular nucleus is associated with motion sickness habituation. Neuroscience Letters. 480, 87-91 (2010).
  9. Wang, J. Q., Qi, R. R., Zhou, W., Tang, Y. F., Pan, L. L., Cai, Y. Differential Gene Expression profile in the rat caudal vestibular nucleus is associated with individual differences in motion sickness susceptibility. PLoS One. 10, 0124203(2015).
  10. Zhou, W., et al. Sex and age differences in motion sickness in rats: The correlation with blood hormone responses and neuronal activation in the vestibular and autonomic nuclei. Frontiers in Aging Neuroscience. 9, 29(2017).
  11. Wang, J., Liu, J., Pan, L., Qi, R., Liu, P., Zhou, W., Cai, Y. Storage of passive motion pattern in hippocampal CA1 region depends on CaMKII/CREB signaling pathway in a motion sickness rodent model. Scientific Reports. 7, 43385(2017).
  12. Qi, R., et al. Anti-cholinergics mecamylamine and scopolamine alleviate motion sickness-induced gastrointestinal symptoms through both peripheral and central actions. Neuropharmacology. 146, 252-263 (2019).
  13. Luong, T. N., Carlisle, H. J., Southwell, A., Patterson, P. H. Assessment of motor balance and coordination in mice using the balance beam. Journal of Visualized Experiments. (49), e2376(2011).
  14. Kalueff, A. V., Minasyan, A., Tuohimaa, P. Behavioural characterization in rats using the elevated alley Suok test. Behavioural Brain Research. 30 (1), 52-57 (2005).
  15. Piot-Grosjean, O., Wahl, F., Gobbo, O., Stutzmann, J. M. Assessment of sensorimotor and cognitive deficits induced by a moderate traumatic injury in the right parietal cortex of the rat. Neurobiology of Disease. 8 (6), 1082-1093 (2001).
  16. Goldstein, L. B., Davis, J. N. Beam-walking in rats: Studies towards developing an animal model of functional recovery after brain injury. Journal of Neuroscience Methods. 31 (2), 101-107 (1990).
  17. Sweis, B. M., et al. modified beam-walking apparatus for assessment of anxiety in a rodent model of blast traumatic brain injury. Behavioural Brain Research. 296, 149-156 (2016).
  18. Hess, B. J., Dieringer, N. Spatial organization of the maculo-ocular reflex of the rat: Responses during off-vertical axis rotation. European Journal of Neuroscience. 2, 909-919 (1990).
  19. Armstrong, P. A., et al. Preserved otolith organ function in caspase-3-deficient mice with impaired horizontal semicircular canal function. Experimental Brain Research. 233 (6), 1825-1835 (2015).
  20. Riccio, D. C., Thach, J. S. Jr Response suppression produced by vestibular stimulation in the rat. Journal of the Experimental Analysis of Behavior. 11 (4), 479-488 (1968).
  21. Rabbath, G., et al. Abnormal vestibular control of gaze and posture in a strain of a waltzing rat. Experimental Brain Research. 136, 211-223 (2001).
  22. Brettler, S. C., et al. The effect of gravity on the horizontal and vertical vestibulo-ocular reflex in the rat. Experimental Brain Research. 132, 434-444 (2000).
  23. Hutchison, S. L. Taste aversion in albino rats using centrifugal spin as an unconditioned stimulus. Psychological Reports. 33 (2), 467-470 (1973).
  24. Green, K. F., Lee, D. W. Effects of centrifugal rotation on analgesia and conditioned flavor aversions. Physiology & Behavior. 40 (2), 201-205 (1987).
  25. Tse, Y. C., et al. Developmental expression of NMDA and AMPA receptor subunits in vestibular nuclear neurons that encode gravity-related horizontal orientations. Journal of Comparative Neurology. 508 (2), 343-364 (2008).
  26. Lai, C. H., Tse, Y. C., Shum, D. K., Yung, K. K., Chan, Y. S. Fos expression in otolith-related brainstem neurons of postnatal rats following off-vertical axis rotation. Journal of Comparative Neurology. 470 (3), 282-296 (2004).
  27. Lai, S. K., Lai, C. H., Yung, K. K., Shum, D. K., Chan, Y. S. Maturation of otolith-related brainstem neurons in the detection of vertical linear acceleration in rats. European Journal of Neuroscience. 23 (9), 2431-2446 (2006).
  28. Aitken, P., Zheng, Y., Smith, P. F. Ethovision analysis of open field behaviour in rats following bilateral vestibular loss. Journal of Vestibular Research. 27 (2-3), 89-101 (2017).
  29. Gao, V., Vitaterna, M. H., Turek, F. W. Validation of video motion-detection scoring of forced swim test in mice. Journal of Neuroscience Methods. 235, 59-64 (2014).
  30. Lopes, G., et al. Bonsai: an event-based framework for processing and controlling data streams. Frontiers in Neuroinformatics. 9, 7(2015).
  31. Conder, G. A., Sedlacek, H. S., Boucher, J. F., Clemence, R. G. Efficacy and safety of maropitant, a selective neurokinin 1 receptor antagonist, in two randomized clinical trials for prevention of vomiting due to motion sickness in dogs. Journal of Veterinary Pharmacology and Therapeutics. 31, 528-532 (2008).
  32. Percie du Sert, N., Chu, K. M., Wai, M. K., Rudd, J. A., Andrews, P. L. Telemetry in a motion-sickness model implicates the abdominal vagus in motion-induced gastric dysrhythmia. Experimental Physiology. 95, 768-773 (2010).
  33. Lackner, J. R. Motion sickness: more than nausea and vomiting. Experimental Brain Research. 232, 2493-2510 (2014).
  34. Lucot, J. B. Effects of naloxone on motion sickness in cats alone and with broad spectrum antiemetics. Autonomic Neuroscience. 202, 97-101 (2016).
  35. McCaffrey, R. J. Appropriateness of kaolin consumption as an index of motion sickness in the rat. Physiology & Behavior. 35, 151-156 (1985).
  36. Horn, C. C., et al. Why can't rodents vomit? A comparative behavioral, anatomical, and physiological study. PLoS One. 8 (4), 60537(2013).
  37. Ossenkopp, K. -P., Frisken, N. L. Defecation as an index of motion sickness in the rat. Physiological Psychology. 10, 355-360 (1982).
  38. Ossenkopp, K. P., Rabi, Y. J., Eckel, L. A., Hargreaves, E. L. Reductions in body temperature and spontaneous activity in rats exposed to horizontal rotation: abolition following chemical labyrinthectomy. Physiology & Behavior. 56, 319-324 (1994).
  39. Oman, C. M. Motion sickness: a synthesis and evaluation of the sensory conflict theory. Canadian Journal of Physiology and Pharmacology. 68, 294-303 (1990).
  40. Hu, D. L., et al. Emesis in the shrew mouse (Suncus murinus) induced by peroral and intraperitoneal administration of staphylococcal enterotoxin A. Journal of Food Protection. 62, 1350-1353 (1999).
  41. Ueno, S., Matsuki, N., Saito, H. Suncus murinus as a new experimental model for motion sickness. Life Sciences. 43, 413-420 (1988).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

Autonomic Nervous SystemPassive MotionElevator Vertical MotionFerris Wheel RotationBalance Beam TrainingDefecation CountingOpen Field TestVestibular SystemRodent BehaviorMotion Sickness

Gerelateerde artikelen