Vasculaire ontwikkeling wordt bepaald door de sequentiële expressie van specifieke genen, die kan worden bestudeerd door het uitvoeren van in situ hybridisatietesten bij zebravissen tijdens verschillende ontwikkelingsstadia. Om de rol van endoglin(eng) in de vorming van bloedvaten tijdens de ontwikkeling van erfelijke hemorragische telangiectasia (HHT) te onderzoeken, worden morfoino-gemedieerde gerichte knockdown van eng in zebravissen gebruikt om de temporele expressie en bijbehorende functies te bestuderen. Hier wordt whole-mount in situ RNA hybridisatie (WISH) gebruikt voor de analyse van eng en zijn downstream genen in zebravis embryo's. Ook worden buisvormingstesten uitgevoerd in HHT-geïnduceerde pluripotente stamcelgedifferentieerde endotheelcellen eng (iPSC-ECs; met engmutaties). Een specifiek signaalversterkend systeem met behulp van de hele hoeveelheid In Situ Hybridization – WISH biedt een hogere resolutie en lagere achtergrondresultaten in vergelijking met traditionele methoden. Om een beter signaal te verkrijgen, wordt de post-fixatietijd aangepast tot 30 min na de hybridisatie van de sonde. Omdat fluorescentievlekken niet gevoelig zijn in zebravisembryo's, wordt deze hier vervangen door diaminobezidine (DAB) vlekken. In dit protocol worden HHT-door patiënten afgeleide iPSC-lijnen die een engmutatie bevatten, gedifferentieerd in endotheelcellen. Na het coaten van een plaat met keldermembraanmatrix voor 30 min bij 37 °C, worden iPSC-IC's als monolaag in putten gezaaid en 3 uur lang op 37 °C gehouden. Vervolgens worden de buislengte en het aantal takken berekend aan de hand van microscopische afbeeldingen. Met dit verbeterde WISH-protocol wordt dus aangetoond dat verminderde eng-expressie de enotheliale voorlopervorming in zebravisembryo's beïnvloedt. Dit wordt verder bevestigd door buisvormingstesten met behulp van iPSC-ECs afkomstig van een patiënt met HHT. Deze testen bevestigen de rol voor eng in de vroege vasculaire ontwikkeling.