Methodenartikel

Kleine Vissen, Grote Vragen: Een Verzameling van Moderne Technieken voor Mexicaanse Tetra Onderzoek

6.9K weergaven

DOI:

10.3791/60592

24 februari 2020

In dit artikel

Samenvatting

Besproken artikelen:

Stahl, B. A. et al. Manipulatie van genfunctie in Mexicaanse grotvis. Journal of Visualized Experiments. (146) (2019).

Peuß, R. et al. Gameetverzameling en in vitro bevruchting van Astyanax mexicanus. Journal of Visualized Experiments. (147) (2019).

Worsham, M. et al. Gedragstracking en neuromast-beeldvorming van Mexicaanse grotvis.Journal of Visualized Experiments. (147) (2019).

Jaggard, J.B., Lloyd, E., Lopatto, A., Duboue, E.R., Keene, A.C. Geautomatiseerde metingen van slaap en locomotorische activiteit bij Mexicaanse grotvis. Journal of Visualized Experiments. (145) (2019).

Luc, H., Sears, C., Raczka, A., Gross, J.B. Wholemount in situ hybridisatie voor Astyanax-embryo's. Journal of Visualized Experiments. (145) (2019).

Riddle, M., Martineau, B., Peavey, M., Tabin, C. Het opkweken van de Mexicaanse tetra Astyanax mexicanus voor analyse van post-larvale fenotipen en gehele-mount immunohistologie. Journal of Visualized Experiments. (142) (2018).

Redactioneel

Ondanks een langdurige interesse in de oorsprong van dierlijke diversiteit, hebben we een beperkt begrip van de genetische veranderingen die ten grondslag liggen aan de evolutie van morfologie, fysiologie en gedrag. De Mexicaanse tetra, Astyanax mexicanus, is een krachtig model geworden om ons begrip van hoe eigenschappen evolueren, verder te ontwikkelen. Deze vissoort bestaat uit twee morphotypes, een ogen-hebbende rivierbewonende morph (oppervlaktevis) die overvloedig is in rivieren in Mexico en Zuid-Texas, en oogloze grotwoonende morphs (grotvissen) die gedijen in de voortdurend donkere kalksteengrotten in de Sierra del Abra-regio in Noordoost-Mexico1. Er zijn 29 bekende groep populaties die zijn ontstaan uit ten minste twee onafhankelijke invasies van oppervlaktevissen2,3. De grot- en rivier-morphs zijn interfertile gebleven en zijn gemakkelijk te fokken in het laboratorium, waardoor onderzoekers de eigenschappen kunnen genetisch in kaart brengen die evolueren als reactie op de unieke selectiedruk in de grot. Bijvoorbeeld, afwezigheid van licht heeft geleid tot regressie van ogen4,5,6,7,8,9, pigment10,11,12,13,14, en slaap15,16,17,18,19; beperkte voedingsstoffen hebben geselecteerd voor overeten20, gewichtstoename21, en vetopslag22; en navigeren in het donker heeft een verhoogde vermogen om de omgeving te waarnemen bevorderd23,24,25,26,27,28. Een groeiend aantal onderzoekers benut deze vis om de genetische basis van evolutie te onderzoeken. Omdat sommige eigenschappen die adaptief zijn in grotvissen, schadelijk zijn voor mensen, is de grotvis ook aantrekkelijk geworden voor biomedisch onderzoek21,29,30,31. Met het doel om reproduceerbaarheid te bevorderen en een platform te bieden voor nieuwe onderzoekers, biedt deze JoVE-methodencollectie technieken voor huisvesting, eigenschapsmeting en onderzoek van genactiviteit.

Als uitgangspunt dient de in vitro-bevruchtingsprocedure die door Peuß et al.32 wordt gedemonstreerd, meerdere doelen aangezien het een methode biedt om 1) grot/oppervlakte-hybriden te verkrijgen die moeilijk te fokken kunnen zijn, 2) embryo's in één-celstadium voor micro-injecties, en 3) stadia-gematchte monsters voor analyse van embryonale fenotypes. A. mexicanus plant zich typisch 's nachts voort. Peuß et al. beschrijven een systeem om de licht-donkercyclus te veranderen en vissen te verkrijgen die geprimed zijn voor gametenverzameling tijdens normale werkuren. Hun visuele demonstratie van gametenverzameling is bijzonder nuttig aangezien deze stap zorgvuldige techniek vereist. Hun artikel is essentieel voor een aantal downstream-toepassingen, inclusief vergelijking van genexpressiepatronen tijdens embryogenese.

Luc et al.33 bieden een robuust in situ-hybridisatieprotocol geoptimaliseerd voor het visualiseren van genexpressie in A. mexicanus embryo's. Ze vereenvoudigen deze meerdaagse procedure met behulp van een checklist (verstrekt als aanvullend bestand) en delen richtlijnen voor probleemoplossing. Aanvullend aan deze methode, tonen Riddle et al.34 hoe genexpressie en eiwitlokalisatie in uitgekomen vissen te onderzoeken met behulp van geheel-mount immunohistochemie. Om zinvolle vergelijkingen tussen morphotypes na uitkomst en het begin van voeding te maken, is het noodzakelijk om de groeicondities te controleren. Ze laten zien hoe volwassenen te fokken via natuurlijke uitspoeling en larven te kweken bij vaste dichtheden op een rotifer-dieet dat aanzienlijke voordelen heeft in voedingsstofgehalte en kosten in vergelijking met andere voedselbronnen. Hun immunokleuringsprotocol herkent met succes antigenen in de hersenen, darm en pancreas tot 12 dagen na uitkomst, waardoor late stadia van orgaanontwikkeling en -functie kunnen worden onderzocht. Belangrijk is dat ze een lijst met antilichamen verstrekken die met succes zijn gebruikt in A. mexicanus. De gecombineerde methoden van Luc et al. en Riddle et al. zijn nuttig om de effecten van genetische manipulatie te analyseren.

In deze methodencollectie beschrijven Stahl et al.35 meerdere manieren om genfunctie te manipuleren in A. mexicanus inclusief: morpholino-micro-injectie, CRISPR-Cas9-gemedieerde mutagenese, en Tol2-gemedieerde transgenese. Naast het demonstreren van pico-injectie en screening van geïnjecteerde embryo's, bieden ze nuttige richtlijnen voor het ontwerpen van morpholino's, geleide RNA's en transgenen. Ze delen resultaten die elk van deze technieken valideren. Bijvoorbeeld, het targeten van Hypocretine/orexine (HCRT) met behulp van een splicing-blokkerende morpholino vermindert de activiteit van locomotie en verhoo

Openbaarmakingen

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

De auteurs erkennen financiering van de National Institutes of Health (NH089934, DK108495). F. Leal en A. Powers worden erkend voor de redactie.

Referenties

  1. Mitchell, R. W., Russel, W. H., Elliot, W. R. Mexican eyeless characin fishes, Genus Astyanax: Environment, Distribution, and Evolution. Special Publications, the Museum Texas Tech University. 12, (1977).
  2. Elliott, W. R. Cave Exploration and Mapping in the Sierra de El Abra Region. Biology and Evolution of the Mexican Cavefish. , 9-40 (2015).
  3. Herman, A., et al. The role of gene flow in rapid and repeated evolution of cave-related traits in Mexican tetra, Astyanax mexicanus. Molecular Ecology. 27, 4397-4416 (2018).
  4. Rohner, N., et al. Cryptic variation in morphological evolution: HSP90 as a capacitor for loss of eyes in cavefish. Science (80). 342, 1372-1375 (2013).
  5. McGaugh, S. E., et al. The cavefish genome reveals candidate genes for eye loss. Nature Communications. 5, (2014).
  6. Lyon, A., Powers, A. K., Gross, J. B., O'Quin, K. E. Two - Three loci control scleral ossicle formation via epistasis in the cavefish astyanax mexicanus. PLoS One. 12, (2017).
  7. Atukorala, A. D. S., Franz-Odendaal, T. A. Genetic linkage between altered tooth and eye development in lens-ablated Astyanax mexicanus. Developmental Biology. , (2018).
  8. Gore, A. V., et al. An epigenetic mechanism for cavefish eye degeneration. Nature Ecology & Evolution. 2, 1155-1160 (2018).
  9. Sumner-Rooney, L. The kingdom of the blind: disentangling fundamental drivers in the evolution of eye loss. Integrative and Comparative Biology. , (2018).
  10. Protas, M. E., et al. Genetic analysis of cavefish reveals molecular convergence in the evolution of albinism. Nature Genetics. 38, 107-111 (2006).
  11. Protas, M., Conrad, M., Gross, J. B., Tabin, C., Borowsky, R. Regressive Evolution in the Mexican Cave Tetra, Astyanax mexicanus. Current Biology. 17, 452-454 (2007).
  12. Protas, M., et al. Multi-trait evolution in a cave fish, Astyanax mexicanus. Evolution & Development. 10, 196-209 (2008).
  13. Stahl, B. A., Gross, J. B. Alterations in Mc1r gene expression are associated with regressive pigmentation in Astyanax cavefish. Development Genes and Evolution. 225, 367-375 (2015).
  14. McCauley, D. W., Hixon, E., Jeffery, W. R. Evolution of pigment cell regression in the cavefish Astyanax: A late step in melanogenesis. Evolution & Development. 6, 209-218 (2004).
  15. Duboué, E. R., Keene, A. C., Borowsky, R. L. Evolutionary convergence on sleep loss in cavefish populations. Current Biology. 21, 671-676 (2011).
  16. Yoshizawa, M., et al. Distinct genetic architecture underlies the emergence of sleep loss and prey-seeking behavior in the Mexican cavefish. BMC Biology. 13, 15(2015).
  17. Jaggard, J., et al. The lateral line confers evolutionarily derived sleep loss in the Mexican cavefish. Journal of Experimental Biology. 220, 284-293 (2017).
  18. Jaggard, J. B., et al. Hypocretin underlies the evolution of sleep loss in the Mexican cavefish. Elife. 7, (2018).
  19. Duboué, E. R., Borowsky, R. L., Keene, A. C. β-adrenergic signaling regulates evolutionarily derived sleep loss in the mexican cavefish. Brain, Behavior and Evolution. 80, 233-243 (2012).
  20. Aspiras, A. C., Rohner, N., Martineau, B., Borowsky, R. L., Tabin, C. J. Melanocortin 4 receptor mutations contribute to the adaptation of cavefish to nutrient-poor conditions. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112, 9668-9673 (2015).
  21. Riddle, M. R., et al. Insulin resistance in cavefish as an adaptation to a nutrient-limited environment. Nature. 555, 647-651 (2018).
  22. Xiong, S., Krishnan, J., Peuß, R., Rohner, N. Early adipogenesis contributes to excess fat accumulation in cave populations of Astyanax mexicanus. Developmental Biology. , (2018).
  23. Yoshizawa, M., Gorički, Š, Soares, D., Jeffery, W. R. Evolution of a behavioral shift mediated by superficial neuromasts helps cavefish find food in darkness. Current Biology. 20, 1631-1636 (2010).
  24. Franz-Odendaal, T. A., Hall, B. K. Modularity and sense organs in the blind cavefish, Astyanax mexicanus. Evolution and Development. 8, 94-100 (2006).
  25. Hinaux, H., et al. Sensory evolution in blind cavefish is driven by early embryonic events during gastrulation and neurulation. Development. 143, 4521-4532 (2016).
  26. Blin, M., et al. Developmental evolution and developmental plasticity of the olfactory epithelium and olfactory skills in Mexican cavefish. Developmental Biology. , (2018).
  27. Lloyd, E., et al. Evolutionary shift towards lateral line dependent prey capture behavior in the blind Mexican cavefish. Developmental Biology. 441, 328-337 (2018).
  28. Powers, A. K., Boggs, T. E., Gross, J. B. Canal neuromast position prefigures developmental patterning of the suborbital bone series in Astyanax cave- and surface-dwelling fish. Developmental Biology. 441, 252-261 (2018).
  29. Rohner, N. "Out of the Dark" Cavefish Are Entering Biomedical Research. Zebrafish, Medaka, and Other Small Fishes. , 253-268 (2018).
  30. Yoshizawa, M., et al. The evolution of a series of behavioral traits is associated with autism-risk genes in cavefish. BMC Evolutionary Biology. 18, 89(2018).
  31. Stockdale, W. T., et al. Heart Regeneration in the Mexican Cavefish. Cell Reports. 25, 1997-2007 (2018).
  32. Peuß, R., et al. Gamete Collection and In Vitro Fertilization of Astyanax mexicanus. Journal of Visualized Experiments. , (2019).
  33. Luc, H., Sears, C., Raczka, A., Gross, J. B. Wholemount In Situ Hybridization for Astyanax Embryos. Journal of Visualized Experiments. , (2019).
  34. Riddle, M., Martineau, B., Peavey, M., Tabin, C. Raising the Mexican Tetra Astyanax mexicanus for Analysis of Post-larval Phenotypes and Whole-mount Immunohistochemistry. Journal of Visualized Experiments. , (2018).
  35. Stahl, B. A., et al. Manipulation of Gene Function in Mexican Cavefish. Journal of Visualized Experiments. , (2019).
  36. Duboué, E. R., Keene, A. C. Investigating the Evolution of Sleep in the Mexican Cavefish. Biology and Evolution of the Mexican Cavefish. , 291-308 (2015).
  37. Frøland Steindal, I. A., Beale, A. D., Yamamoto, Y., Whitmore, D. Development of the Astyanax mexicanus circadian clock and non-visual light responses. Developmental Biology. , (2018).
  38. Carlson, B. M., Gross, J. B. Characterization and comparison of activity profiles exhibited by the cave and surface morphotypes of the blind Mexican tetra, Astyanax mexicanus. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology. 208, 114-129 (2018).
  39. Jaggard, J. B., Lloyd, E., Lopatto, A., Duboue, E. R., Keene, A. C. Automated Measurements of Sleep and Locomotor Activity in Mexican Cavefish. Journal of Visualized Experiments. , (2019).
  40. Kowalko, J. E., et al. Convergence in feeding posture occurs through different genetic loci in independently evolved cave populations of Astyanax mexicanus. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110, 16933-16938 (2013).
  41. Worsham, M., et al. Behavioral Tracking and Neuromast Imaging of Mexican Cavefish. Journal of Visualized Experiments. , (2019).

Herprints en machtigingen

Tags

Astyanax MexicanusGene Function ManipulationGamete CollectionIn Vitro FertilizationBehavioral TrackingNeuromast ImagingSleep MeasurementsLocomotor ActivityWhole mount In Situ HybridizationPost larval PhenotypesImmunohistochemistryJournal Of Visualized Experiments