Method Article

Microplot Ontwerp en Plant en Bodem Monster Voorbereiding voor 15Stikstof Analyse

DOI:

10.3791/61191

May 10th, 2020

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Een microplot ontwerp voor 15N tracer onderzoek wordt beschreven om meerdere in-season plant en bodem bemonstering gebeurtenissen tegemoet te komen. Voor de analyse van 15 N worden bodem- en verwerkingsprocedures voor monsters, met inbegrip van slijp- en weegprotocollen, voor 15N-analyse naar voren gebracht.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Veel stikstof meststof studies evalueren het totale effect van een behandeling op end-of-season metingen, zoals graan opbrengst of cumulatieve N verliezen. Een stabiele isotopenbenadering is noodzakelijk om het lot van kunstmest afkomstig N (FDN) via het bodemgewassysteem te volgen en te kwantificeren. Het doel van dit document is om een klein onderzoek ontwerp gebruik te maken van niet-beperkte 15N verrijkte microplots voor meerdere bodem en planten bemonstering gebeurtenissen over twee groeiseizoenen te beschrijven en monster verzameling, behandeling en verwerking protocollen voor totaal 15N analyse. De methoden werden aangetoond met behulp van een gerepliceerde studie van zuid-centraal Minnesota geplant om maïs(Zea mays L.). Elke behandeling bestond uit zes maïsrijen (76 cm rijafstand) van 15,2 m lang met een microplot (2,4 bij 3,8 m) aan één uiteinde. Ureum van kunstmestkwaliteit werd bij het planten toegepast op 135 kgN·ha -1, terwijl de microplot ureum kreeg verrijkt tot 5 atoom % 15N. Tijdens het groeiseizoen werden meerdere malen bodem- en plantenmonsters genomen, waarbij ervoor werd gezorgd dat kruisbesmetting wordt geminimaliseerd door gebruik te maken van afzonderlijke gereedschappen en tijdens alle procedures niet-verrijkte en verrijkte monsters fysiek worden gescheiden. Bodem- en plantenmonsters werden gedroogd, gemalen om door een 2 mm scherm te gaan en vervolgens met behulp van een rolpotmolen tot een bloemachtige consistentie te vermalen. Tracer studies vereisen extra planning, monster verwerkingstijd en handenarbeid, en maken hogere kosten voor 15N verrijkte materialen en monsteranalyse dan traditionele N-studies. Echter, met behulp van de massa balans aanpak, tracer studies met meerdere in-season sampling gebeurtenissen kunnen de onderzoeker om FDN verdeling te schatten via de bodem-gewas systeem en schatten onverklaarbare FDN uit het systeem.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kunstmest stikstof (N) gebruik is essentieel in de landbouw om te voldoen aan de voedsel-, vezel-, diervoeders en brandstof eisen van een groeiende wereldbevolking, maar N verliezen van agrarische velden kan een negatieve invloed hebben op de kwaliteit van het milieu. Omdat N ondergaat vele transformaties in de bodem-gewas systeem, een beter begrip van N fietsen, gewas gebruik, en het algemene lot van kunstmest N zijn noodzakelijk om het beheer praktijken die N gebruik efficiëntie te bevorderen en te minimaliseren milieuverliezen te verbeteren. Traditionele N kunstmeststudies richten zich voornamelijk op het effect van een behandeling op eindseizoenmetingen zoals gewasopbrengst, gewas N opname ten opzichte van de toegepaste N-snelheid (schijnbare efficiëntie van het gebruik van meststoffen) en restgrond N. Hoewel deze studies het totale systeem N-inputs, -outputs en efficiëntieverbeteringen kwantificeren, kunnen zij N niet identificeren of kwantificeren in het bodemgewassysteem dat is afgeleid van kunstmestbronnen of de bodem. Een andere aanpak met behulp van stabiele isotopen moet worden gebruikt om het lot van kunstmest afgeleide N (FDN) in het bodemgewassysteem op te sporen en te kwantificeren.

Stikstof heeft twee stabiele isotopen, 14N en 15N, die in de natuur voorkomen met een relatief constante verhouding van 272:1 voor 14N/15N1 (concentratie van 0,366 atoom % 15N of 3600 ppm 15N2,3). De toevoeging van 15N verrijkte meststof verhoogt het totale 15N-gehalte van het bodemsysteem. Aangezien 15N verrijkte meststof mengt met niet-verrijkte bodem N, de gemeten verandering van 14N /15N verhouding kunnen onderzoekers FDN traceren in het bodemprofiel en in het gewas3,4. Een massabalans kan worden berekend door het totale bedrag van 15N-tracer in het systeem en elk van zijn onderdelen2te meten. Omdat 15N verrijkte meststoffen aanzienlijk duurder zijn dan conventionele meststoffen, worden 15N verrijkte microplots vaak ingebed in de zuiveringspercelen. Het doel van deze methoden papier is om een kleine plot onderzoeksontwerp met behulp van microplots voor meerdere in-season bodem en plant bemonstering gebeurtenissen voor maïs (Zea mays L.) te beschrijven en protocollen voor de voorbereiding van plant en bodemmonsters voor totaal 15N-analyse te beschrijven. Deze resultaten kunnen vervolgens worden gebruikt om de efficiëntie van het gebruik van N-meststoffen te schatten en een gedeeltelijke N-begroting te creëren die fdn in de bulkgrond en het gewas verantwoordt.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Beschrijving van de veldsite

OPMERKING: Bij het uitvoeren van 15N tracerveldproeven moeten geselecteerde sites variatie minimaliseren als gevolg van bodem, topografie en fysieke kenmerken5. Kruisbesmetting kan optreden na zijdelingse bodembeweging als gevolg van hellings-, wind- of watertranslocatie of grondbewerking, terwijl de verticale verdeling van bodem N kan worden beïnvloed door ondergrondse waterstroom en tegeldrainage6.

  1. Beschrijf de proefterrein met inbegrip van beheer uit het verleden (bijvoorbeeld eerdere gewassen en grondbewerking), breedte- en lengtegraad, fysische en chemische eigenschappen van de bodem (bijvoorbeeld bodemtekstanalyse, initiële vruchtbaarheidsomstandigheden, pH en bulkdichtheid).
  2. Neem GPS-coördinaten op voor de onderzoekssite en de veldhoeken.
  3. Beschrijf het beheer van het groeiseizoen, inclusief ongedierte- en ziektebeheer (herbicide, insecticide of fungicidegebruik), bodemvruchtbaarheidsbeheer (inclusief tarief, bron, plaatsing en toepassingstiming), grondbewerking, irrigatiegebeurtenissen en hoeveelheden en residubeheer.
  4. Als gewasgroei en microbe bemiddelde N transformaties worden beïnvloed door bodemvocht, bodemtemperatuur en luchttemperatuur, record klimaat informatie met inbegrip van dagelijkse hoge en lage temperaturen, dagelijkse neerslag, en bodemvocht en temperaturen op verschillende diepten die de bodem bemonstering diepten weerspiegelen.

2. Plotontwerp

  1. Plant zes maïsrijen (~ 86.000 planten ha-1)op 76 cm afstand met een uiteindelijke perceelafmeting van 15,2 m bij 4,6 m.
    1. Bebouw grensgebieden op 1,5 m van elk uiteinde van de lengtedimensie (0-1,5 m, 13,7-15,2 m) en een extra grensoppervlakte van 1,5 m lang (9,8-11,3 m) grenzend aan de bemonsterings- en oogstgebieden (figuur 1).
    2. Wijs rijen 2 en 3 aan als het gebied van de in-season plant en de bodembemonsteringsgebied (1.5-9.8 m) en rijen 4 en 5 als oogstgebied (1.5-9.8 m) voor graanopbrengst.
    3. Stel een microplotgebied (11,3-13,7 m) met afmetingen van 2,4 m bij 3,8 m gecentreerd op de breedteafmeting. Verzamel alle 15met N verrijkte planten- en bodemmonsters uit dit gebied, waardoor 0,38 m ongesamende rand overblijft op de lengte en breedteafmetingen om randeffecten te minimaliseren (figuur 2).
  2. Bepaal de behandeling plot en microplot hoeken met verschillende gekleurde vlaggen.

3. Voorzorgsmaatregelen voor bodem- en plantenmonsters

  1. Gebruik speciale apparatuur en verwerkingsruimten voor niet-verrijkte en verrijkte materialen. Verontreiniging van niet-verrijkte materialen (kunstmest, bodem of plant) door verrijkte materialen en vice versa kan de resultaten drastisch beïnvloeden.
  2. Verzamel en verwerk 15N verrijkte bodem- en plantenmonsters in volgorde van laagste tot hoogste 15N verwachte verrijking om kruisbesmetting te minimaliseren. Zorg ervoor dat werkoppervlakken, handschoenen, gebruiksvoorwerpen en machines tussen elk monster grondig worden gereinigd om kruisbesmetting door monsteroverdracht tot een minimum te beperken.
  3. Minimaliseer het voetverkeer in microplots om verontreiniging van niet-verrijkte bemonsteringsgebieden te voorkomen. Draag beschermende schoenbekledingen bij het openen van microplots en verwijder ze bij het verlaten van het microplotgebied.

4. 15N bereiding en toepassing van verrijkte meststoffen

  1. Volgens de door ref. 2 voor meststof 15N-onderzoek naar het gebruik (F15NUE) naar voren gebrachte richtsnoeren, verdunt 10 atoom % 15N verrijkt ureum tot 5 atoom % 15N verrijkt ureum en lost in 2 L gedeïmiseerd water op om een uniforme verrijking van ureummeststof te garanderen.
    OPMERKING: De vereiste concentratie van 15N verrijkte meststof is afhankelijk van de doelstellingen van de agronomische studie. Indien de concentratie van met voorraad 15N verrijkte meststof de eisen van de onderzoeker overschrijdt, kan de concentratie van de voorraadmeststof met vergelijkbare conventionele meststof worden verdund met behulp van de volgende formule3.
    X2 = [(C1/C2) - 1] × X1
    X2 is de massa van de conventionele niet-verrijkte meststof, X1 is de massa van de verklikmeststof, C1 is de isotopenconcentratie [uitgedrukt in atom % overmaat (gemeten atoom % verrijking minus de natuurlijke achtergrondconcentratie verondersteld te zijn 0,3663 atoom %)] van de oorspronkelijke tracermeststof, en C2 is de isotopenconcentratie van het uiteindelijke mengsel. Gezien 100 g verrijkt ureum van 10 10 % zou bijvoorbeeld 92,7 g conventionele niet-verrijkte meststof nodig zijn voor een definitieve isotopenconcentratie van 5 atoom %;
    X2 = {[(10-0,3663)/5] - 1} × 100.
  2. Analyseer de oplossing voor de 15N-concentratie om verrijking te verifiëren. De auteurs maakten gebruik van de analytische diensten van UC Davis Stable Isotope Facility.
    OPMERKING: Reacties van het bodem-plant-microbe regime op toevoegingen van meststoffen kunnen worden beïnvloed door de fysieke vorm van kunstmest. Afhankelijk van de doelstellingen van de studie, kan de ureumoplossing worden toegepast als een vloeistof of uitgedroogd om kristallen te hervormen. De kristallen kunnen worden verdicht tot een taart met behulp van een Carver pers op 10.000 psi, gevolgd door het verpletteren van de taart en screening van de deeltjes op de gewenste grootte3.
  3. Breng de 15N verrijkte ureumoplossingen gelijkmatig aan op de microplots met behulp van een gekalibreerde rugzak CO2 sproeier(figuur 3A). Als er meerdere N-percentages of verrijkingsniveaus worden gebruikt, u overwegen om aangewezen CO2-sproeiers voor elk verrijkingsniveau te gebruiken of gebruik een enkele sproeier en pas oplossingen toe van de laagste tot de hoogste verrijking om kruisbesmetting van de behandeling te minimaliseren.
  4. Neem ureumhoudende meststoffen op met lichte grondbewerking, handharken of ten minste 0,6 cm irrigatie binnen 24 uur van toepassing om het potentieel van vervluchtigingsverlies te minimaliseren.
  5. Tijdens het tweede groeiseizoen wordt geen extra 15N verrijkte ureummeststof op de microplot aangebracht. Breng conventionele niet-verrijkte ureum aan op de gehele behandeling om een differentiële respons in maïsgroei als gevolg van stikstof te voorkomen.

5. Verwerking van veldmonsters: bovengrondse maïsbiomassa

  1. Verzamel in elke bemonsteringsfase een samengesteld monster van zes bovengrondse maïsplanten vanuit het bemonsteringsgebied(15N niet verrijkt) en een samengesteld monster van zes bovengrondse maïsplanten uit de met 15N verrijkte microplot. Ten minste twee planten moeten elke bemonsterde plant scheiden om te voorkomen dat de groeidynamiek van planten aanzienlijk verandert. De auteurs verzamelden plantenmonsters in de fysiologische ontwikkelingsfasen V8 en R111 en in fysiologische rijpheid(figuur 2).
  2. Volgens de in de stappen 3.1 en 3.2 beschreven principes haken V8 en R1 bovengrondse biomassa (≤5 cm bij ≤5 cm); een tuinafvalversnipperaar is een bevredigende optie. Plaats gehakte biomassa in gelabelde stof of papieren zakken en droog in een geforceerde lucht oven op 60 °C tot constante massa. Nota van het droge biomassagewicht (figuur 3B).
  3. Partitie fysiologisch volwassen maïsplanten in stover (alle vegetatieve weefsels met inbegrip van bladeren, kaf, en stengels), graan, en kolf fracties. Hak en droog in een geforceerde luchtoven op 60 °C tot constante massa. Nota van de biomassa droog gewicht.
  4. Snijd binnen de microplot alle maïsstengels aan het bodemoppervlak, bind in een bundel, label volgens plot en verwijder uit het veld(figuur 3C). Pas de hoekvlaggen van microplot aan om bijna gelijk te zijn aan het bodemoppervlak om het risico van verwijdering door de combine tijdens de oogst of grondbewerking na de oogst te minimaliseren.
  5. Oogst graan uit het oogstgebied en rapporteer de opbrengst met een vochtgehalte van 15,5%12. Oogst resterende onderzoeksgebieden met een perceel te combineren.
  6. Hark niet-verrijkte biomassa uit het microplot gebied. Hak en opnieuw microplot bovengrondse biomassa toe te brengen op de juiste plot(figuur 3D).
  7. Neem residu in het bodemoppervlak met grondbewerking die ervoor zorgt dat het transport van bodem- en maïsresten in of uit het microplotgebied tot een minimum wordt beperkt. Vervang alle microplot hoek vlaggen verwijderd als gevolg van grondbewerking.
  8. Plant tweedejaars maïs op dezelfde rijen als de eerstejaars maïs.
  9. Verzamel tweedejaars bovengrondse maïsbiomassa alleen bij fysiologische rijpheid en proces zoals eerstejaars maïsmonsters zoals beschreven in stap 5.3. Verzamel microplotmonsters uit het midden van het microplotgebied (1,52 m bij 0,76 m) om mogelijke signaalverdunning na grondbewerking te voorkomen (figuur 2). Oogst graan uit het oogstgebied en rapporteer de opbrengst met een vochtgehalte van 15,5%.
  10. Volgens de principes van de stappen 3.1 en 3.2, meng en maal grondig 100 tot 200 g gedroogd plantaardig materiaal om door een zeef van 2 mm te gaan. Meng het grondmateriaal grondig en bewaar een ondersteekstuk in een gelabelde muntenvelop voor verdere verwerking.
    OPMERKING: Een Thomas Wiley molen is een bevredigende optie voor plantenweefsel slijpen, terwijl een Perten Laboratory Mill 3610 is een bevredigende optie voor het malen van graan.
    LET OP: Mensen slijpen plant monsters moeten dragen oorbescherming en worden beschermd tegen het inademen van stof door het dragen van een Nationaal Instituut voor Veiligheid en Gezondheid goedgekeurd N95 Partikel filteren Facepiece Respirator.

6. Verwerking van veldmonsters: bodem

  1. Verzamel eerstejaars bodemmonsters 8 dagen na 15N verrijkte meststof toepassing, V8, R1, en post-oogst voor de grondbewerking. Verzamel tweedejaars bodemmonsters bij de pre-plant en na de oogst. Vanwege logistieke bemonsteringsbeperkingen verzamelden de auteurs bodemmonsters in het seizoen bij 0- tot 15-, 15- tot 30-, en 30- tot 60-cm diepten, bodemmonsters na de oogst op 0- tot 15-, 15- tot 30-, 30- tot 60-, en 60- tot 90-cm diepte, en tweedejaars voorplant grondmonsters op 0- tot 30-, 30- tot 60-, 60- tot 120- cm diepte.
    OPMERKING: Als een bodemsonde niet in staat is om een bodemkern te verzamelen tot de diepste gewenste diepte als een enkele kern, verzamel diepere diepte kernen uit dezelfde boorgaten als de bovenste diepten ontdoen van de bovenste 1-cm van de bodem om te voorkomen dat verontreiniging van de bodem vallen uit de bovenste diepten.
    1. Verzamel een vier-core (1,8-cm diameter) samengestelde bodemmonster uit de niet-verrijkte bemonstering gebied op V8 en R1 met behulp van een hand sonde. Verzamel een kern in de maïsrij en drie kernen tussen de maïsrijen.
    2. Verzamel een composietmonster met een diameter van twee kernen (5 cm) uit het niet-verrijkte bemonsteringsgebied voor de installatie en na de oogst met behulp van een hydraulische sonde.
    3. Verzamel een 15-core (1,8-cm diameter) samengesteld bodemmonster uit het microplot gebied 8 dagen na 15N verrijkte meststof toepassing, V8, en R1 met behulp van een hand sonde. Verzamel drie tot vier kernen in de maïsrij en 11 tot 12 kernen tussen de maïsrijen.
      LET OP: Bodems zijn zeer heterogeen. Het grotere aantal kernen verzameld vanuit het verrijkte microplot biedt een betere schatting van de werkelijke 15N verrijking van bodem N13.
    4. Verzamel een drie-core (5-cm diameter) composiet bodemmonster van de microplot gebied op pre-plant en post-oogst met behulp van een hydraulische sonde.
    5. Homogeniseer elk samengesteld bodemmonster in een emmer en plaats het in een vooraf gelabelde papieren zak.
  2. Droge bodemmonsters bij 35 °C in een geforceerde luchtoven tot constante massa. Maal elk monster om door een zeef van 2 mm te gaan. Een mechanische bodemslijper is bevredigend als deze tussen elk monster grondig kan worden gereinigd.
    OPMERKING: Bodemmonsters kunnen worden gedroogd door monsters op trays in een dunne laag te verspreiden. Trays moeten zich in een gebied bevinden dat vrij is van verontreiniging door bronnen buiten N. Niet-verrijkte en verrijkte monsters moeten fysiek worden gescheiden om kruisbesmetting te voorkomen.
    LET OP: Mensen die bodemmonsters slijpen, moeten oorbescherming dragen en beschermd zijn tegen het inademen van stof door het dragen van een nationaal instituut voor veiligheid en gezondheid op het werk goedgekeurd n95 partikelfilter gezichtsbedekkende ademhaling.

7. Laboratoriummonsterverwerking: gemalen bodem- en plantenmonsters

  1. Droge grondmonsters (2 mm) 's nachts in een oven bij 60 °C.
  2. Volgens de in stap 3 beschreven principes, maal je gedroogde plantenmonsters of bodemmateriaal tot een fijne, bloemachtige consistentie. Een rolpot molen is een bevredigende optie.
    OPMERKING: De pottenmolen van de auteurs is een op maat gemaakt transportbandsysteem dat 54 rolpotten tegelijk kan verwerken.
    1. Vul elke rolpot (250 mL borosilicaat glazen pot met een schroef-bovenste deksel) met 10 tot 20 g grondmonster en zeven roestvrijstalen staven (8,5 cm lang, 0,7 cm diameter).
    2. Rol rolpotten op 0,4 x g voor 6-24 uur of totdat monsters een fijne, bloemachtige consistentie hebben.
    3. Breng het fijn gemalen materiaal over in een schone, gelabelde 20 mL scintillatie flacon.
    4. Tussen elk monster, was rolpotten, roestvrijstalen staven, en deksels met zeep en water om eventuele residu te verwijderen.
      1. Dompel rolpotten en deksels onder in een 5% HCl zuurbad (bereid van 36-38% geconcentreerde voorraad) 's nachts14.
        LET OP: Zoutzuur is corrosief. Het kan leiden tot ernstige brandwonden, oogletsel, en is schadelijk bij inademing. Draag altijd beschermende kleding, handschoenen en oog- en gezichtsbescherming. Flush contacteerde weefsel grondig met water. Gebruik altijd een secundaire container bij het transport van zuren. Voeg altijd zuur toe aan water omdat deze reactie exotherm is. Neutraliseer onmiddellijk zure morsen met zuiveringszout.
        LET OP: Een groot zuurbad kan worden bereid als 100 L van 5% HCl in een 208 L plastic container. Bereid verschillende kleinere volumes in een rookkap en breng de oplossingen vervolgens over op de plastic container. Vervang de oplossing om de drie maanden.
      2. Triple rinse rolpotten en deksels met gedeïsized water en lucht droog.
      3. Dompel roestvrijstalen staven onder in een NaOH-bad van 0,05 M (bereid door 2 g NaOH op te lossen in 1 L gedeïsized water) 's nachts14. Bereid elke dag een nieuw NaOH-bad van 0,05 M voor.
        LET OP: Natriumhydroxide kan ernstige brandwonden en oogletsel veroorzaken. Draag altijd beschermende kleding en oogbescherming. Verwijder onmiddellijk verontreinigde kleding en spoel huid of ogen enkele minuten af met water.
      4. Spoel de staven onder stromend warm leidingwater gedurende 5 minuten. Decanteren en drievoudige spoel de staven met gedeïsized water. Laat de staven drogen op een met papieren handdoek omzoomde lade.

8. Weeg bodemmonsters en bodemmonsters af voor totale N- en 15N-analyse

  1. Analyseer enkele representatieve planten- en bodemmonsters op het totale N-gehalte (bijv. verbrandingsanalyse15). Bereken de monstermassa die voldoende N-inhoud biedt voor 15N-analyse volgens de specificaties van de analysator.
    OPMERKING: De auteurs maakten gebruik van de analytische diensten van UC Davis Stable Isotope Facility. Verrijkte monstergewichten werden geoptimaliseerd voor 20 μg N met een maximum van 100 μg N.
  2. Organiseer like-samples van laagste tot hoogste verwachte 15N verrijking. Dupliceer elke achtste tot twaalfde monster in elke run om de precisie van het monster te controleren. Neem ten minste één controlemonster per run16op.
  3. Label een schone 96-well plaat en voorzien deksel met individuele goed verdamping ringen. Snijd een schone indexkaart om net in het deksel te passen om monsterbeweging tussen putten tijdens het transport te voorkomen.
  4. Het dragen van nitril handschoenen, reinig de microschaal, werkoppervlakken, spatel, en tangen met laboratoriumdoekjes en ethanol. Plaats schoongemaakte gebruiksvoorwerpen op een Kimwipe op de labbank.
    OPMERKING: Niet-verrijkte en verrijkte monsters moeten worden verwerkt met behulp van afzonderlijke weegschalen en gebruiksvoorwerpen om kruisbesmetting te voorkomen.
  5. Gebruik tangen om een voorgevormde 5 mm x 9 mm blikcapsule op een schoon werkoppervlak te plaatsen, zoals een roestvrij stalen blok met een put van 5 mm x 8 mm. Tik de capsule voorzichtig in de put om de cilindrische vorm te hervormen en de onderkant van de capsule indien nodig plat te maken.
    OPMERKING: Omdat monstermassa's zeer klein zullen zijn, is het risico op monsterbesmetting groot. Raak de capsules nooit aan met handschoenen. Gooi de capsule als het raakt een ander oppervlak dan de tangen, schoon werkoppervlak, schaal wegen pan, of 96-well plaat.
  6. Gebruik tangen om de bovenste 1 mm van de capsule voorzichtig uit te flareen om manipulatie te vergemakkelijken. Om schade aan de weegschaal te voorkomen bij het teeren van het gewicht van de capsule, zweeft en laat u de capsule 1 tot 2 mm boven de microschaal weegpan los. Tare de capsule. Gebruik tangen om de capsule terug te brengen naar het schone werkoppervlak.
  7. Gebruik een spatel om zorgvuldig de vereiste massa van fijn gemalen monstermateriaal aan de capsule toe te voegen. Vermijd morsen van monstermateriaal op het buitenoppervlak van de capsule of het werkoppervlak.
  8. Met behulp van tangen, langzaam krimpen de bovenste derde van de capsule en vouw over te verzegelen. Met behulp van tangen, blijven vouwen en comprimeren van de capsule in een bolvormige vorm waarbij ervoor wordt gezorgd niet te punctie of scheur het tin.
    OPMERKING: Voor monsters met een laag N-gehalte kunnen monstervolumes nodig zijn die de capaciteit van de 5x9 mm-capsule overschrijden. Grotere capsules (bijvoorbeeld 9 mm x 10 mm) mogen in deze gevallen worden gebruikt.
  9. Gebruik tangen om de ingepakte capsule meerdere keren van een hoogte van 1 cm op een schoon, donker oppervlak of spiegel te laten vallen om te controleren op lekken. Als er geen stof verschijnt, weegt u het monster met dezelfde techniek als beschreven in stap 8.6. Neem het monstergewicht op. Plaats de capsule in een 96-put plaat en neem de put plaatsing.
    1. Als er stof op het donkere oppervlak verschijnt, registreert u het gewicht van het monster. Wikkel het monster in een tweede tinnen capsule, controleer opnieuw op lekken en plaats het in een schone plaat met 96 armen.
      LET OP: Als de ingepakte capsule te groot is om in een 96-putplaat te passen, gebruik dan een plaat van 24 of 48 goed.
  10. Tussen de monsters, reinig elk van de gebruiksvoorwerpen en oppervlakken met ethanol en laboratorium doekjes met speciale aandacht voor de spatel en tang randen.
  11. Zet het deksel vast aan de 96-put plaat met tape en bewaar in een desiccator.

9. Berekeningen

  1. Bereken de massa van N (kg∙ha-1)in de planten- of bodemmonsters met behulp van de volgende vergelijkingen.
    figure-protocol-1
    figure-protocol-2
  2. Bereken de meststof N-fractie (Nf), meststof afgeleid N (FDN) en bodem afgeleide N (SDN) voor planten- en bodemmonsters17.
    figure-protocol-3
    wanneer A het atoom % 15N verrijking is.
  3. figure-protocol-4
    figure-protocol-5
  4. Bereken meststof 15N gebruiksefficiëntie17.
    figure-protocol-6

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De resultaten gepresenteerd in deze paper komen van een veld site opgericht in 2015 aan de Universiteit van Minnesota Southern Outreach and Research Center gelegen in de buurt van Waseca, MN. De site werd beheerd als een maïs-soja [Glycine max (L.) Merr] rotatie voorafgaand aan 2015, maar werd beheerd als een maïs-maïs rotatie tijdens de 2015 en 2016 groeiseizoenen. De grond was een Nicollet klei leem (fijn-leem, gemengd, superactief, mesic Aquic Hapludolls)-Webster klei leem (fi...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Stabiel isotopenonderzoek is een nuttig instrument voor het volgen en kwantificeren van FDN via het bodemgewassysteem. Er zijn echter drie belangrijke veronderstellingen in verband met N tracer studies die, indien geschonden conclusies uit het gebruik van deze methode ongeldig kan maken. Ze zijn 1) de tracer is uniform verdeeld over het systeem, 2) processen in het kader van de studie optreden op dezelfde tarieven, en 3) N het verlaten van de 15N verrijkte pool keert niet terug3. Omdat ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs hebben niets te onthullen.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs erkennen de steun van de Minnesota Corn Research & Promotion Council, de Hueg-Harrison Fellowship, en de Minnesota's Discovery, Research and InnoVation Economy (MnDRIVE) Fellowship.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
20 mL scintillatieflesjeALLE; Fisher Scientific is een voorbeeld0334172C
250 mL borosilicaatglasflesQORPAK264047
48-well plateEA ConsumablesE2063
96-well plateEA ConsumablesE2079
Doekenzakken (30x50 cm)ALLE; NAVoor maïskolvingen
CO2 rugzaksproeierALLE; Bellspray Inc is een voorbeeldModel T
Muntenveloppe (6,4x10,8 cm)ALLE; ULINE is een voorbeeldS-6285Voor 2 mm gemalen plantenmonsters
MaïssnipperaarALLE; DR Chipper Shredder is een voorbeeldSKU:CS23030BMN0Voor het snipperen van maïsbiomassa
MaïszaadALLENAHybride geschikt voor de regio
Weggebruikbare schoenovertrekALLE; Boardwalk is een voorbeeldBWK00031L
Ethanol 200 ProofALLE; Decon Laboratories Inc. is een voorbeeld2701TP
Stofzakken met trekkoord (90x60 cm)ALLENAVoor het verzamelen van plantenmonsters
Meststof Urea (46-0-0)ALLENA~0,366 atoom % 15N
HandharkALLE; Fastenal Company is een voorbeeld5098-63-107
HandsikkelALLE; Home Depot is een voorbeeldNJP150Voor het verzamelen van plantenmonsters
Handbediende grondsondeALLE; AMS is een voorbeeld401.01
Hydraulische grondsondeALLE; Giddings is een voorbeeldGSPS
Zoutzuur, 12NRicca ChemicalR37800001A
PotmolenALLE; Cole-Parmer is een voorbeeldSI-04172-50
LaboratoriummolenPerten3610Voor het malen van graan
Microbalans nauwkeurig tot op vier decimalenALLE; Mettler Toledo is een voorbeeldXPR2
N95 partikelfilterend ademhalingsmaskerALLE; ULINE is een voorbeeldS-9632
Neopreen of butylrubberen handschoenenALLENAVoor het werken in HCl-zuurbad
Papieren hardwarezakken (13,3x8,7x27,8 cm)ALLE; ULINE is een voorbeeldS-8530Voor bodemmonsters en maïskorrels
PlantenmolenALLE; Thomas Wiley Model 4 Mill is een voorbeeld1188Y47-TSVoor het malen van gesnipperde maïsbiomassa tot 2 mm deeltjes
Kunststof etikettenULINES-5544Y-PWVoor het labelen van stoffen zakken en microplot stengelbundels
Natriumhydroxide pellets, ACSSpectrum ChemicalSPCM-S1295-07
GrondmolenALLE; AGVISE roestvrijstalen molen met motor is een voorbeeldNAVoor het malen van grond om door een 2 mm zeef te gaan
Tin capsule 5x9 mmCostech Analytical Technologies Inc.041061
Tin capsule 9x10 mmCostech Analytical Technologies Inc.041073
Urea (46-0-0)MilliporeSigma49097010 atoom % 15N

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Sharp, Z. Principles of Stable Isotope Geochemistry. , 2nd Edition, (2017).
  2. Van Cleemput, O., Zapata, F., Vanlauwe, B. Guidelines on Nitrogen Management in Agricultural Systems. Guidelines on Nitrogen Management in Agricultural Systems. 29 (29), 19(2008).
  3. Hauck, R. D., Meisinger, J. J., Mulvaney, R. L. Practical considerations in the use of nitrogen tracers in agricultural and environmental research. Methods of Soil Analysis: Part 2-Microbiological and Biochemical Properties. , 907-950 (1994).
  4. Bedard-Haughn, A., Van Groenigen, J. W., Van Kessel, C. Tracing 15N through landscapes: Potential uses and precautions. Journal of Hydrology. 272 (1-4), 175-190 (2003).
  5. Peterson, R. G. Agricultural Field Experiments: Design and Analysis. , Marcel Dekker, Inc. New York. (1994).
  6. Follett, R. F. Innovative 15N microplot research techniques to study nitrogen use efficiency under different ecosystems. Communications in Soil Science and Plant Analysis. 32 (7/8), 951-979 (2001).
  7. Russelle, M. P., Deibert, E. J., Hauck, R. D., Stevanovic, M., Olson, R. A. Effects of water and nitrogen management on yield and 15N-depleted fertilizer use efficiency of irrigated corn. Soil Science Society of America Journal. 45 (3), 553-558 (1981).
  8. Schindler, F. V., Knighton, R. E. Fate of Fertilizer Nitrogen Applied to Corn as Estimated by the Isotopic and Difference Methods. Soil Science Society of America Journal. 63, 1734(1999).
  9. Stevens, W. B., Hoeft, R. G., Mulvaney, R. L. Fate of Nitrogen-15 in a Long-Term Nitrogen Rate Study. Agronomy Journal. 97 (4), 1037(2005).
  10. Recous, S., Fresneau, C., Faurie, G., Mary, B. The fate of labelled 15N urea and ammonium nitrate applied to a winter wheat crop. Plant and Soil. 112 (2), 205-214 (1988).
  11. Abendroth, L. J., Elmore, R. W., Boyer, M. J., Marlay, S. K. Corn Growth and Development. , (2011).
  12. Lauer, J. G. Methods for calculating corn yield. , http://corn.agronomy.wisc.edu/AA/pdfs/A033.pdf (2002).
  13. Gomez, K. A., Gomez, A. A. Statistical Procedures for Agricultural Research. , 2nd Edition, John Wiley and Sons. (1984).
  14. Khan, S. A., Mulvaney, R. L., Brooks, P. D. Diffusion Methods for Automated Nitrogen-15 Analysis using Acidified Disks. Soil Science Society of America Journal. 62 (2), 406(1998).
  15. Horneck, D. A., Miller, R. O. Determination of Total Nitrogen in Plant Tissue. Handbook of Reference Methods for Plant Analysis. , 75-84 (1998).
  16. UC Davis Stable Isotope Facility. Carbon (13C) and Nitrogen (15N) Analysis of Solids by EA-IRMS. , https://stableisotopefacility.ucdavis.edu/13cand15n.html (2019).
  17. Stevens, W. B., Hoeft, R. G., Mulvaney, R. L. Fate of Nitrogen-15 in a Long-Term Nitrogen Rate Study: II. Nitrogen Uptake Efficiency. Agronomy Journal. 97 (4), 1046(2005).
  18. Kaiser, D. E., Fernandez, F. G., Coulter, J. A. Fertilizing Corn in Minnesota. , University of Minnesota Extension. https://extension.umn.edu/crop-specific-needs/fertilizing-corn-minnesota (2018).
  19. Blake, G. R., Hartge, K. H. Bulk Density. Methods of Soil Analysis: Part 1 Physical and Mineralogical Methods. , 363-375 (1986).
  20. Jokela, W. E., Randall, G. W. Fate of Fertilizer Nitrogen as Affected by Time and Rate of Application on Corn. Soil Science Society of America Journal. 61 (6), 1695(2010).
  21. Hart, S. C., Stark, J. M., Davidson, E. A., Firestone, M. K. Nitrogen Mineralization, Immobilization, and Nitrification. Methods of Soil Analysis, Part 2. Microbiological and Biochemical Properties. (5), 985-1018 (1994).
  22. Jokela, W., Randall, G. A nitrogen-15 microplot design for measuring plant and soil recovery of fertilizer nitrogen applied to corn. Agronomy journal (USA). 79 (APRIL), http://agris.fao.org/agris-search/search/display.do?f=1988/US/US88241.xml;US875113688 322-325 (1987).
  23. Olson, R. V. Fate of tagged nitrogen fertilizer applied to irrigated corn. Soil Science Society of America Journal. 44 (3), 514-517 (1980).
  24. Follett, R. F., Porter, L. K., Halvorson, A. D. Border Effects on Nitrogen-15 Fertilized Winter Wheat Microplots Grown in the Great Plains. Agronomy Journal. 83 (3), 608-612 (1991).
  25. Balabane, M., Balesdent, J. Input of fertilizer-derived labelled n to soil organic matter during a growing season of maize in the field. Soil Biology and Biochemistry. 24 (2), 89-96 (1992).
  26. Recous, S., Machet, J. M., Mary, B. The partitioning of fertilizer-N between soil and crop: Comparison of ammonium and nitrate applications. Plant and Soil. 144 (1), 101-111 (1992).
  27. Bigeriego, M., Hauck, R. D., Olson, R. A. Uptake, Translocation and Utilization of 15N-Depleted Fertilizer in Irrigated Corn. Soil Science Society of America Journal. 43 (3), 528(1979).
  28. Glendining, M. J., Poulton, P. R., Powlson, D. S., Jenkinson, D. S. Fate of15N-labelled fertilizer applied to spring barley grown on soils of contrasting nutrient status. Plant and Soil. 195 (1), 83-98 (1997).
  29. Khanif, Y. M., Cleemput, O., Baert, L. Field study of the fate of labelled fertilizer nitrate applied to barley and maize in sandy soils. Fertilizer Research. 5 (3), 289-294 (1984).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Nitrogen 15 AnalysisMicroplot DesignSoil SamplingPlant SamplingFertilizer ApplicationSample ProcessingIsotope TracerNitrogen Use EfficiencyCorn BiomassSoil Profile

Related Articles