Methodenartikel

Kwantificering van cerebrale perfusie met behulp van laserspikkelbeeldvorming en infarctvolume met behulp van MRI in een preklinisch model van posterieure circulatieberoerte

DOI:

10.3791/61673

⸱

17 november 2020

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Neurological Surgery, The Ohio State University Medical Center, 2Department of Anatomy, The Ohio State University Medical Center, 3Department of Internal Medicine, The Ohio State University Medical Center, 4Department of Radiology, The Ohio State University Medical Center

In dit artikel

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Een hondenmodel van LVO-beroerte werd gebruikt om laserspikkelbeeldvorming te ontwikkelen om cerebrale perfusie in realtime te volgen.  Diffusiegewogen MRI werd geoptimaliseerd om het infarctvolume in beeld te brengen met behulp van een hoge b-waarde, waardoor ADC en MRA mogelijk waren, gecorreleerd met DSA op het moment van een beroerte.  Ten slotte correleerden ADC-reconstructies met histologische bevindingen.

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Achtergrond: Occlusie van de basilaire slagader (BAO) is een subset van posterieure circulatieberoerte met een mortaliteit van wel 90%.  De huidige klinische standaard voor het diagnosticeren van ischemische beroerte omvat computertomografie (CT), CT-angiografie en perfusie en magnetische resonantiebeeldvorming (MRI). Preklinische modellen voor grote dieren om de klinische ziekte nauwkeurig weer te geven, evenals methoden om de beroertelast te beoordelen en behandelingen te evalueren, ontbreken.

Methoden: We beschrijven een hondenmodel van occlusie van grote bloedvaten (LVO) in de posterieure circulatie en ontwikkelden een laserspikkelbeeldvorming (LSI) protocol om perfusieveranderingen in realtime te volgen.  Vervolgens gebruikten we DWI met een hoge b-waarde (b = 1800 s/mm2) MRI om de detectiegevoeligheid te verhogen. We evalueerden ook het vermogen van magnetische resonantie-angiografie (MRA) om arteriële occlusie te beoordelen en te correleren met DSA. Ten slotte hebben we de grootte van het infarct geverifieerd aan de hand van het in kaart brengen van de schijnbare diffusiecoëfficiënt (ADC) met histologie.

Resultaten: Toediening van trombo-embolie sloot de basilaire slagader af zoals gevolgd door DSA (n=7).   LSI correleerde met DSA, wat een vermindering van de perfusie na het begin van een beroerte aantoonde die gedurende het hele experiment aanhield, waardoor we de perfusie in realtime konden volgen.  DWI met een geoptimaliseerde b-waarde voor honden illustreerde het slagvolume en stelde ons in staat om ADC- en magnetische resonantie-angiografie (MRA)-beelden af te leiden. De MRA die aan het einde van het experiment werd uitgevoerd, correleerde met DSA die na occlusie werd uitgevoerd. Ten slotte correleerde de beroertebelasting op MRI met histologie.

Conclusies: Onze studies tonen real-time perfusiebeeldvorming aan met behulp van LSI van een trombo-embolisch LVO-model bij honden van posterieure circulatieberoerte, waarbij gebruik wordt gemaakt van multimodale beeldvorming die belangrijk is bij de diagnose en behandeling van ischemische beroerte.

Inleiding

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De prevalentie van beroertes wereldwijd is bijna 25,7 miljoen, waarvan de meerderheid ischemisch is1.  Beroerte in de posterieure circulatie is verantwoordelijk voor 20% van alle beroertes, waarvan de occlusie van de arteria basilaris de ernstigste is, met een mortaliteit van bijna 90% 1,2.  In 1995 was recombinant weefsel plasminogen activator (rtPA) de eerste acute therapie die werd ontwikkeld voor ischemische beroerte bij patiënten die zich binnen 3 uur na het begin van de beroerte presenteerden3. Meer recentelijk heeft mechanische trombectomie voordeel aangetoond bij de behandeling van acute ischemische beroerte bij patiënten die zich presenteren met occlusie van grote bloedvaten (LVO), waaronder het intracraniële deel van de interne halsslagader of het eerste segment van de voorste en middelste hersenslagaders4.  Geen van de recente klinische onderzoeken omvatte een beroerte in de posterieure circulatie en de resultaten blijven somber ondanks het gebruik van mechanische trombectomie voor occlusie van de arteria basilaris 5,6.

Vooruitgang in beoordelingstechnieken bij patiënten met een beroerte heeft invloed op het voorspellen van de kans op functioneel herstel en overleving7. Preklinische modellen van een beroerte met posterieure circulatie zijn eerder beschreven 8,9,10, maar het beoordelen van de beroertelast en revascularisatie blijven suboptimaal.  Kleinere soorten zoals knaagdieren bieden verschillende voordelen, waaronder gemakkelijke genetische manipulatie, goedkope aankoop van dieren en lage huisvestingskostenper dag 11,12. Experimenten met kleine dieren vertegenwoordigen echter soms niet volledig het vaatstelsel van grote dieren en mensen, fysiologische omstandigheden of gerelateerde ontstekingsreacties7. Grote dieren bootsen de menselijke slag beter na 2,7,13,14.  Bovendien kan seriële bloedafname worden uitgevoerd voor bloedanalyse van trombotische en ontstekingsmarkers.

In deze studie beschrijven we een hondenmodel van occlusie van de basilaire slagader, geverifieerd door digitale subtractie-angiografie (DSA) vanaf het begin van een beroerte.  We maken gebruik van laser speckle perfusion imaging (LSI) om de perfusie in realtime te monitoren.  Vervolgens gebruiken we een nieuw microvasculair verbeteringsalgoritme op basis van laserspikkelperfusiebeeldvorming (LSI) en een magnetische resonantiebeeldvorming (MRI) met hoge b-waarde om infarctbeeldvorming te optimaliseren15. Deze technieken stellen ons in staat om lokale en wereldwijde ischemie te monitoren en te kwantificeren. Ten slotte correleren we deze beeldvormingsbevindingen met histologie. Het begrijpen van de prognose en de noodzaak om een beroerte in de posterieure circulatie in preklinische modellen te bestuderen, is van cruciaal belang om therapieën te verbeteren.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Alle procedures werden uitgevoerd in overeenstemming met de Animal Welfare Act en de Guide for Care and Use of Laboratory Animals (NRC 2011), zoals goedgekeurd door het Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) van de Ohio State University.

1. Stap 1 Voorbereiding van dieren en chirurgisch protocol Er werd een hondenmodel van occlusie van de basilaire slagader (BAO) gebruikt, zoals eerder beschreven 9,10.

  1. Snelle volwassen beagles (8-13 kg, 14-21 maanden oud) 's nachts met gratis toegang tot water.
  2. Injecteer, pre-anesthesie, een intramusculaire toediening van acepromazine (0,2 mg/kg)
  3. Breng een katheter van 20 gauge in een cephalische ader.
  4. Induceer anesthesie met intraveneuze toediening van ketamine (10 mg/kg) en midazolam (0,025 mg/kg).
  5. Na inductie onder narcose worden honden geïntubeerd en mechanisch beademd met behulp van constante inhalatie-anesthesie (2-3% isofluraan).
  6. Maak een craniotomievenster van 1 cm2 voor laserspikkelbeeldvorming.
  7. Breng een 7F arteriële omhulsel in de rechter dijbeenslagader voor toegang en bloeddrukmeting.
  8. Breng een 16-gauge angiokatheter in de rechter dijbeenader voor bloedafnames.
  9. Bereid trombo-embolie (bloedstolsel) voor zoals eerder beschreven16. Zuig kort 5 ml volbloed bij honden op en meng deze met 0,5 g bariumsulfaat (Ba2SO4) in een plastic serumbloedafnamebuisje terwijl u gedurende 30 seconden rolt. Laat het mengsel 60 minuten ongestoord rusten bij kamertemperatuur voordat u de katheter toedient.
  10. Begin met het registreren van baseline digitale subtractie-angiografie (DSA) voordat u toegang krijgt tot de middelste basilaire slagader. Beweeg een 4F-geleidingskatheter onder fluoroscopische geleiding, met behulp van een retrograde trans-aortabenadering, in de 7F arteriële schede die eerder via een wervelslagader in de rechter dijbeenslagader naar de basis van de basilaire slagader is geplaatst. Injecteer twee milliliter contrastmiddel met normale zoutoplossing om de basilaire slagader te identificeren.
  11. Snijd het stolsel met behulp van een chirurgisch scalpel in kleine stukjes met zowel fibrinerijke als erytrocytrijke lagen16 om in een spuit van 3 ml te laden en injecteer via de microkatheter in het midden van de basilaire slagader. Laat het stolsel 10 minuten stabiliseren. Voer een vervolgangiogram uit om de gewenste locatie van het stolsel te verifiëren. Arteriële occlusie kan worden geverifieerd door DSA en afnemende cerebrale perfusie door middel van laserspikkelbeeldvorming (LSI).

2. Stap 2 Laserspikkelbeeldvorming

  1. Richt de lasercamera voor spikkelperfusiebeeldvorming (LSI) op het schedelvenster. Configureer het camerasysteem met laserspikkelbeeldvorming (LSI) met hoge resolutie zoals eerder beschreven15.
  2. Registreer perfusie met onderbrekingen tijdens de uitvoering van het angiogram op de gewenste tijdstippen. Verkrijg gegevens uit een gezichtsveld van 1,5 cm x 1,5 cm met behulp van een golflengte van 785 nm en lasers van 80 mW met een bemonsteringsfrequentie van 60 Hz op een werkafstand van 10 cm in dit hondenmodel.
  3. Kies uit de real-time perfusiegrafieken de time-of-interest (TOI) om lagere pieken op te nemen, alleen om de artefacten met betrekking tot de ademhalingsbeweging uit te sluiten. Gemiddelde relatieve perfusie-eenheden over een bemonsteringsperiode van 10 s met behulp van PimSoft v1.4-software. Voer laserspikkelcontrastanalyse (LASCA) uit zoals eerder beschreven15.
  4. Om de kwantificering van de microvasculatuur van de hersenen in dit hondenmodel te optimaliseren, neemt u beelden op met 15 frames per seconde en voert u intensiteits- en variantieberekeningen uit met spatiotemporele middeling over een gebied van 5 x 5 pixels met 5 frames. De totale framesnelheid voor de intensiteits- en variantiegegevens was 3 frames per seconde. Kies de mediaanwaarde van perfusie voor elke pixel om de effecten op het gemiddelde van grote plotselinge veranderingen in perfusiemetingen als gevolg van beweging van de ademhaling van honden te verminderen. Zet ruwe gegevens om in binaire bestanden en verwerk de gegevens tot zinvolle beeldvorming van het vaatstelsel. Gebruik het door het programma aangepaste LASCA-algoritme (rt-LASCA) om de variantie van de contrastgegevens in de loop van de tijd te gebruiken om de locaties van het vaatstelsel te bepalen, zoals eerder beschreven15.

3. Stap 3: Magnetische resonantiebeeldvorming (MRI) en magnetische resonantie-angiografie

  1. Voer de dag voor de operatie een MRI uit ter vergelijking indien gewenst, herhaal dit vervolgens om BAO te bevestigen en opnieuw voor het offeren als een therapeutisch middel moet worden geëvalueerd.
  2. Plaats continu verdoofde hoektanden met het hoofd naar voren in rugligging, zoals eerder beschreven in een Siemens Prisma 3 Tesla-veldsterkte en boring met een diameter van 60 cm, inclusief een 32-kanaals kopspoel als ontvanger met verbeterde parallelle beeldvormingsprestaties om hersenbeelden te verkrijgen17.
  3. Voer lokalisatiescans uit om pilootbeelden van elk hondenbrein te verkrijgen voordat de anatomische beeldvorming begint.  Het systeem dat wordt gebruikt om de gepresenteerde gegevens te verkrijgen, heeft een geïntegreerd beeldvormingssysteem dat sneller scannen mogelijk maakt in optimale ruimtelijke en temporele resoluties. De gradiënten van 80 mT/m genereren hoogwaardige T2-gewogen, diffusiegewogen beelden en MR-angiogrammen. Diffusiegewogen beeldvorming (DWI) is gevoelig genoeg en kan meer anatomische substructuur laten zien dan bij conventionele structurele MRI-methoden zoals T2-gewogen beelden. In deze studie werd 4 uur na BAO een MRI uitgevoerd.
  4. Voer na de juiste lokalisatie T2-gewogen gradiënt-echobeeldvorming uit (parameters: FOV = 130 mm, matrixgrootte = 320 x 320, pixelgrootte = 0,3 x 0,3 mm, plakdikte = 3 mm, TR= 4s, FA= 180 graden, BW =255 Hz/pixel, NEX= 2, TE=75ms, resolutie= 2,4615 pixels per mm) gevolgd door een FLAIR-beeldvorming (flow attenuated inversion recovery) om de structuur van de hersenanatomie te visualiseren.
  5. Voer magnetische resonantie-angiografie (MRA) uit om de vasculaire anatomie en bloedcirculatiemeting te visualiseren. Verkrijg MRA van de hersenen die het hoofd en de nek bedekken met een time-of-flight-3D (TOF)-sequentie in dwarsaanzicht (parameters: FOV = 129x129 mm, matrixgrootte = 768 x 768, pixelgrootte = 0,3 x 0,3 mm, plakdikte = 81,59 mm, TR= 25 ms, FA= 18 graden, BW = 185 Hz/pixel, NEX= 1, TE=4,22 ms, resolutie = 5,91 pixels per mm). Voer maximale intensiteitsprojectie (MIP) uit met 3D-kleurgecodeerde visualisatie om de signaalintensiteit in de bloedvaten te maximaliseren.  Na het proces verkregen DICOM-beelden om de bloedvaten te visualiseren en om te bevestigen dat de basilaire slagader was afgesloten.

4. Stap 4: Diffusiegewogen beeldvorming en berekening van het slagvolume

  1. Voer een diffusiegewogen beeldvormingssequentie uit om acute ischemische beroertes te detecteren (parameters: FOV = 149 mm x 149 mm, matrixgrootte = 132 x0x0x 100, pixelgrootte = 0,30 mm x 0,30 mm, plakdikte = 4 mm, TR = 4,6 s, FA = 90 graden, BW = 255 Hz/pixel, NEX= 1, TE = 86 ms, resolutie = 0,93 pixels per mm). Breng DICOM-afbeeldingen over voor nabewerking.
  2. Genereer schijnbare diffusiekaarten (ADC) op basis van DWI-beelden en bereken infarctvolumes met behulp van OsiriX MD v.5.0-software.
  3. Traceer zowel de hersenhelften als de infarctgebieden per plak en vermenigvuldig met de plakdikte om infarctvolumes te verkrijgen.
  4. Converteer het absolute hele volume naar 100 eenheden om het percentage slagvolume van elke hond te berekenen.

5. Stap 5 Hematoxyline en eosine kleuring van de histologie van de hersenen

  1. Oogst op het moment van offeren bij verdoofde honden de hersenen en snijd twee mediale secties van 4 mm dik met een scherp scalpel, één sectie zal worden gebruikt voor TTC-kleuring eronder.
  2. Fixeer de sectie van 4 mm gedurende minimaal 7 dagen in 10% formaline om infiltratie door de hele sectie mogelijk te maken.
  3. Integreer het gefixeerde hersengedeelte in paraffine volgens ons protocol17.
  4. Snijd en egaliseer elk paraffineblok (meerdere blokken kunnen tegelijkertijd worden opgeslagen en verwerkt).
  5. Snijd elk paraffineblok op 4 μm en plaats het gesneden weefsel op een dia van 2 "x 3" inch.
  6. Verwerk elk glaasje in Hematoxylin 560 gedurende 8 minuten, differentieer met 1% zure alcohol gedurende 1s driemaal met spoelen in kraanwater.
  7. Blauw elke dia met 1% ammoniumhydroxide gedurende 1 s en spoel gedurende 2 s af met kraanwater.
  8. Dehydrateer twaalf keer in 70% ethanol gedurende 1s, gekleurd in eosine gedurende 1 min.
  9. Dehydrateer twaalf keer in 95% gedurende 1s, gevolgd door 100% ethanol.
  10. Spoel af in xyleen en breng een dekglaasje van 2 "x 3" inch aan met montagemedia, verwijder luchtbellen.

6. Stap 6 2% 2,3,5-trifenyltetrazoliumchloride hersenkleuring

  1. Plaats de tweede sectie van 4 mm die naast de H&E-sectie is geoogst, in een vooraf bereide oplossing die met 100 ml 2% 2,3,5-trifenyl-2H-tetrazoliumchloride (TTC) in pH 7,4 PBS bevat, opgewarmd tot 37 °C in het donker.
  2. Incubeer in het donker bij 37 °C gedurende minstens 20 minuten en draai het hersengedeelte elke 5 minuten voorzichtig om.
  3. Wanneer het gedeelte aan beide zijden kersenrood wordt, verwijder dan de TTC-oplossing en vervang deze door 4% paraformaldehyde in PBS, pH 7,4, om het contrast 's nachts te optimaliseren.
  4. Wanneer het contrast tussen witte en rode vlekken in de hersenen optimaal is (1-3 dagen), plaats het dan tussen doorzichtige plastic vellen, droog overtollig vocht en scan met hoge resolutie.
  5. Volg de ischemische gebieden en de hele hersendia om het percentage infarct in elke sectie te verkrijgen, zoals eerder beschreven17.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Laser spikkelperfusie opname en beeldvorming: De perfusieregistratie werd continu uitgevoerd totdat het dier naar een MRI werd vervoerd, en opnieuw bij het offeren (Figuur 1A). Gegevens toonden aan dat cerebrale perfusie met ~15% afnam tot 83 ± 10% op het tijdstip vóór occlusie van de arteria basilaris (pre-BAO). Deze nominale afname is waarschijnlijk het gevolg van het inbrengen van een microkatheter in de distale wervelslagader. Na injecti...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De meest voorkomende oorzaken van een beroerte in de posterieure circulatie zijn embolie, atherosclerose van de grote slagader en ziekte van de kleine slagader5. Basilaire arteriële occlusie (BAO) vertegenwoordigt een subset van posterieure circulatieberoertes, met significante morbiditeit en mortaliteit13. In deze context werd een hondenmodel van acute posterieure beroerte gebruikt en ontwikkelden we een LSI-protocol om de perfusie van het...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs hebben niets te onthullen

Dankbetuigingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dit werk werd gedeeltelijk ondersteund door de Mayfield Education and Research Foundation grant #GRT00049047 en de Ohio Department of Services Agency Accelerator Award #TECG20180269 aan SMN.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
2% 2,3,5-trifenyltetrazoliumchloride (TTC in PBS, pH 7.4)Sigma AldrichT8877
EDTA K3 vacutainersBecton DickinsonBD455036
EosineSurgipath3801602
Formaline, neutraal gebufferd, 10%Richard-Allan Scientific5701
Hematoxylinen 560Surgipath3801570
HUG-U-VAC positioneringssysteem  DRE Veterinary1320
LabChart SoftwareADInstruments Inc.
Laser Speckle Imaging cameraPerimed Inc., Jarfalla, ZwedenPeriCam PSI HR System
Lithiumheparine vacutainer, 4,5%Becton DickinsonBD 368056
MatlabThe MathWorks, Inc., Natick, MA
OsiriX MD v.5.0 softwarePixmeo Inc, Geneva
Paraformaldehyde 4% in PBSAlfa AesarAAJ61899AP
PimSoft v1.4 softwarePerimed Inc.software die bij LSI-apparatuur hoort
Prisma Fit 3 tesla (3T) magneetSiemens Diagnostics
Natriumheparine voor injectie (voor het coaten van bloedgasspuiten)NovaPlus402525D

Referenties

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Donkor, E. S. Stroke in the 21(st) Century: A Snapshot of the Burden, Epidemiology, and Quality of Life. Stroke Research and Treatment. 2018, 3238165(2018).
  2. Kaiser, E. E., West, F. D. Large animal ischemic stroke models: replicating human stroke pathophysiology. Neural Regeneration Research. 15 (8), 1377-1387 (2020).
  3. National Institute of Neurological Disorders and Stroke rt-PA Stroke Study Group. Tissue plasminogen activator for acute ischemic stroke. New England Journal of Medicine. 333 (24), 1581-1587 (1995).
  4. Mokin, M., Rojas, H., Levy, E. I. Randomized trials of endovascular therapy for stroke--impact on stroke care. Nature Reviews Neurology. 12 (2), 86-94 (2016).
  5. Sparaco, M., Ciolli, L., Zini, A. Posterior circulation ischaemic stroke-a review part I: anatomy, aetiology and clinical presentations. Neurological Sciences. , (2019).
  6. Lekic, T., Ani, C. Posterior circulation stroke: animal models and mechanism of disease. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2012, 587590(2012).
  7. Vilahur, G., Padro, T., Badimon, L. Atherosclerosis and thrombosis: insights from large animal models. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 907575(2011).
  8. Atchaneeyasakul, K., et al. Large animal canine endovascular ischemic stroke models: A review. Brain Research Bulletin. 127, 134-140 (2016).
  9. Qureshi, A. I., et al. Randomized comparison of intra-arterial and intravenous thrombolysis in a canine model of acute basilar artery thrombosis. Neuroradiology. 46 (12), 988-995 (2004).
  10. Boulos, A. S., et al. Tamoxifen as an effective neuroprotectant in an endovascular canine model of stroke. Journal of Neurosurgery. 114 (4), 1117-1126 (2011).
  11. Doyle, K. P., Buckwalter, M. S. A mouse model of permanent focal ischemia: distal middle cerebral artery occlusion. Methods in Molecular Biology. 1135, 103-110 (2014).
  12. Wen, Z., et al. The effect of anterior communicating artery flow on neurovascular injury and neurobehavioral outcomes in mice with recurrent stroke. Brain Research. , (2019).
  13. Demel, S. L., Broderick, J. P. Basilar Occlusion Syndromes: An Update. Neurohospitalist. 5 (3), 142-150 (2015).
  14. Cai, B., Wang, N. Large Animal Stroke Models vs. Rodent Stroke Models, Pros and Cons, and Combination. Acta Neurochirurgica Supplement. 121, 77-81 (2016).
  15. Gnyawali, S. C., et al. Retooling Laser Speckle Contrast Analysis Algorithm to Enhance Non-Invasive High Resolution Laser Speckle Functional Imaging of Cutaneous Microcirculation. Scientific Reports. 7, 41048(2017).
  16. Kan, I., et al. A novel method of thrombus preparation for use in a swine model for evaluation of thrombectomy devices. American Journal of Neuroradiology. 31 (9), 1741-1743 (2010).
  17. Huttinger, A. L., et al. Ferric Chloride-induced Canine Carotid Artery Thrombosis: A Large Animal Model of Vascular Injury. Journal of Visualized Experiments. (139), (2018).
  18. Siemonsen, S., et al. Elevated T2-values in MRI of stroke patients shortly after symptom onset do not predict irreversible tissue infarction. Brain. 135, Pt 6 1981-1989 (2012).
  19. Leiva-Salinas, C., Wintermark, M. Imaging of acute ischemic stroke. Neuroimaging Clinics of North America. 20 (4), 455-468 (2010).
  20. Ishikawa, C., Ito, D., Tanaka, N., Kitagawa, M. Use of three-dimensional time-of-flight magnetic resonance angiography at 1.5 Tesla to evaluate the intracranial arteries of 39 dogs with idiopathic epilepsy. American Journal of Veterinary Research. 80 (5), 480-489 (2019).
  21. Mohr, J. P., et al. Magnetic resonance versus computed tomographic imaging in acute stroke. Stroke. 26 (5), 807-812 (1995).
  22. Rosso, C., et al. Diffusion-weighted MRI in acute stroke within the first 6 hours: 1.5 or 3.0 Tesla. Neurology. 74 (24), 1946-1953 (2010).
  23. Cheng, Q., et al. High b value DWI in evaluation of the hyperacute cerebral ischemia at 3T: A comparative study in an embolic canine stroke model. Experimental and Therapeutic. 12 (2), 951-956 (2016).
  24. Xu, X. Q., et al. Use of FLAIR imaging to identify onset time of cerebral ischemia in a canine model. American Journal of Neuroradiology. 35 (2), 311-316 (2014).
  25. Rodriguez, D., Rylander, H., Vigen, K. K., Adams, W. M. Influence of field strength on intracranial vessel conspicuity in canine magnetic resonance angiography. Veterinary Radiology & Ultrasound. 50 (5), 477-482 (2009).
  26. Bosmans, H., Wilms, G., Dymarkowski, S., Marchal, G. Basic principles of MRA. European Journal of Radiology. 38 (1), 2-9 (2001).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

Magnetic Resonance ImagingBasilar Artery OcclusionLarge Vessel OcclusionDiffusion Weighted ImagingMagnetic Resonance AngiographyCanine Stroke Model
Video binnenkort beschikbaar

Gerelateerde artikelen