Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Sentinel Lymph Node Mapping en Biopsie voor endometriumkanker in een vroeg stadium met laparoscopie

14.4K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/63044

⸱

19 augustus 2021

 ,  ,  ,  ,  , 
1Obstetrics and Gynecology Hospital of Fudan University

In dit artikel

Samenvatting

Dit protocol beschrijft de identificatie en resectie van schildwachtklieren om de operatie zo eenvoudig en minimaal invasief mogelijk te maken.

Samenvatting

Sentinel lymph node (SLN) mapping en biopsie is een veelbelovende techniek voor het visualiseren en evalueren van de lymfeklierstatus bij kanker. Deze aanpak is aanbevolen voor patiënten met een laag risico op endometriumkanker (EC) door gezaghebbende internationale richtlijnen, maar het is niet breed uitgevoerd in China en wereldwijd. Dit werk heeft tot doel gedetailleerde SLN-karterings- en biopsieprocedures te beschrijven om de klinische toepassing te bevorderen. SLN-mapping en postoperatieve pathologische ultrastaging werden uitgevoerd bij een patiënt met een laag risico EC met behulp van indocyaninegroen (ICG) kleurstof om de SLNs onder laparoscopie te volgen en volledig te reseceren voor ultrastaging. Concluderend beschrijft dit protocol details van ICG-injectie en SLN-mapping en biopsie bij EC-patiënten op basis van de ervaringen die zijn opgedaan tijdens de klinische praktijk.

Inleiding

Endometriumkanker (EC) is een van de meest voorkomende ziekten in de gynaecologische oncologie en de incidentie ervan stijgt1,2. Chirurgie is de eerstelijnsbehandeling voor EC in een vroeg stadium3,4. De evaluatie van lymfekliermetastase is een essentieel onderdeel van chirurgische stadiëring in EC. De gynaecologische oncologiegroep (GOG) studie 33 toonde aan dat lymfekliermetastasen geassocieerd zijn met een slechte prognose5.

Als een nieuwe en essentiële techniek voor het evalueren van lymfekliermetastase, zijn sentinel lymph node (SLN) mapping en biopsie de afgelopen jaren ontstaan en zijn aanbevolen om te worden gebruikt voor patiënten met schijnbaar baarmoeder-opgesloten EC volgens de National Comprehensive Cancer Network (NCCN) richtlijnen voor baarmoederkanker6,7,8,9,10. SLN mapping is ook uitgebreid toegepast bij tumoren zoals borstkanker11,longkanker12,schildklierkanker13en melanoom14. Pathologische ultrastaging heeft goede prestaties behaald bij colorectale en gynaecologische kanker15,16,17 en wordt aanbevolen door de gezaghebbende Europese richtlijnen18. Hoewel principes van SLN-mapping voor EC-stadiëring zijn opgenomen in internationale richtlijnen10,19,zijn er geen gedetailleerde manipulaties van chirurgie in andere huidige werken.

Dit werk presenteert het protocol voor gedetailleerde SLN-mapping en biopsie met ICG bij een 28-jarige vrouw die klinisch was gediagnosticeerd met EC in een vroeg stadium, waardoor de diagnose van patiënten werd verbeterd en bevorderd.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

Alle chirurgische procedures met betrekking tot de hier beschreven patiënt werden goedgekeurd door de ethische commissies van het Obstetrics & Gynecology Hospital van de Fudan University in Shanghai, China. Geïnformeerde toestemming werd verkregen van de patiënt.

1. Indicaties voor SLN-mapping met ICG bij EC-patiënten

  1. Zorg ervoor dat patiënten klinisch worden gediagnosticeerd met primaire EC beperkt tot de baarmoeder met lage risicofactoren (graad 1 of 2 endometrioïde carcinomen, pre-chirurgische endometriumlaesie ≤2 cm en myometriale invasie <50%).
  2. Zorg ervoor dat patiënten niet allergisch zijn voor de ontwikkelaar (ICG).
  3. Zorg ervoor dat patiënten vóór de ziekte geen retroperitoneale lymfeklierdissectie om welke reden dan ook hebben ervaren.
  4. Zorg ervoor dat de patiënten de SLN-chirurgische procedures begrijpen en de chirurgische toestemmingsformulieren hebben ondertekend.
  5. Zorg ervoor dat de patiënten geen systematische lymfadenectomie kunnen uitvoeren, maar SLN-mapping voor chirurgische stadiëring om welke reden dan ook.
  6. Zorg ervoor dat de patiënten worden opgenomen in de klinische studie in de SLN-mappinggroep als ze ec met een gemiddeld hoog risico hebben.

2. Voorbereiding van de patiënt

  1. Preoperatieve darmvoorbereiding
    1. Zorg voor laxeermiddelen voor darmvoorbereiding en klysma aan patiënten die meerdere bekken- en buikoperaties hebben ondergaan.
      OPMERKING: Darmvoorbereiding is niet vereist voor patiënten zonder darmchirurgiegeschiedenis.
  2. Preoperatieve dieetvoorbereiding
    1. Vermijd vast voedsel gedurende 8 uur voor de operatie, voorkom een semi-vloeibaar dieet gedurende 6 uur vóór de procedure en stop met drinken gedurende 2 uur vóór de procedure.
  3. Anesthesie
    1. Gebruik intraveneuze middelen (bijv. Propofol) om bewusteloosheid te produceren en voeg enkele neuromusculaire blokkers toe door inhalatie of intraveneuze routes om de benodigde diepte van de anesthesie te bereiken. Gebruik een combinatie van toedieningen voor anesthetisch onderhoud om ervoor te zorgen dat de patiënt bewusteloos en volledig ontspannen is met stabiele vitale functies tijdens de operatie.
      OPMERKING: Het gebruik van anesthetica zal de regels van de afdeling anesthesiologie van elk centrum volgen.
  4. Positie
    1. Zodra de patiënt is verdoofd, laat u de patiënt in de lithotomiepositie zijn met trendelenburgpositie.
  5. Bereid de huid voor op de operatieplaats. Voer het huidpreparaat uit met een antiseptisch preparaat (bijv. povidon-jodium) op een georganiseerde manier vanaf de beoogde plaats van de incisie die uitstraalt naar de randen van het beoogde gebied van blootstelling aan de huid, met de bovengrens van het platte xiphoid-proces, zijranden van middelste oksellijnen en ondergrens van de bovenbeen(figuur 1).

3. Fluorescerende kleurstofbereiding

  1. Indocyanine groen (ICG) bereiding
    1. Los 25 mg ICG op in 20 ml steriel water voor een eindconcentratie van 1,25 mg/ml en schud voorzichtig.

4. ICG injectie

  1. Gebruik een spuit van 2 ml (met de naaldgrootte van 0,6 mm x 32 mm TW LB) om 0,5 ml van de bereide ICG te injecteren om 3 uur en 9 uur van de ectocervix bij respectievelijk de oppervlakkige (2-3 mm) en diepe (1-2 cm) baarmoederhals(figuur 2).
    OPMERKING: In sommige gevallen kunnen ook de ectocervix-posities van 6 en 12 uur worden geselecteerd. ICG moet worden vermeden wanneer het in de cyste van Nessler wordt geïnjecteerd.

5. Intraoperatieve SLN-identificatie

  1. Voorbereiding voor ontwikkeling
    1. Pak de huid rond de navelstreng vast met twee handdoektangen om de buikwand te verheffen. Maak een incisie van ongeveer 10 mm breed in de huid van de navel en door de fascia en het peritoneum.
    2. Breng een trocar van 10 mm door de navelstreng en produceer het pneumoperitoneum met een intraperitoneale druk van ongeveer 13-14 mmHg. Plaats een laparoscoop (met lichtbron en camera's) via de trocar.
    3. Maak drie andere kleine incisies van ~ 5 mm breed in de onderbuik en steek 5 mm trocars door de buikwand in de holte. Plaats instrumenten voor manipulatie via de andere drie trocars van 5 mm(figuur 1).
    4. Identificeer de eileiders onder laparoscopie. Pak de buizen dicht bij fimbriae en til ze op en bind een ligatuur rond de buis met een 2-0 /T zijden hechtdraad.
      OPMERKING: Deze stap wordt gebruikt om te voorkomen dat endometriumtumorcellen de buikholte langs de eileiders van de baarmoederholte binnendringen.
    5. Neem de peritoneale wassingen met 100 ml normale zoutoplossing vóór elke significante behandeling of manipulatie van de baarmoeder. Verzamel het wasvocht voor cytologie.
    6. Open de fluorescentiemodus van het endoscopische fluorescentiebeeldvormingssysteem (zie stap 5.2). Til eenzijdig bekkeninfundibulum ligament en baarmoeder op om het laterale peritoneum te onthullen en zoek naar de fluorescentie lymfevaten.
      OPMERKING: Als er geen fluorescentielymfevaten zijn geïdentificeerd, is het toegestaan om ICG herhaaldelijk te injecteren.
  2. SLN-toewijzing
    1. Endoscopische fluorescentie beeldvormingssysteemvoorbereiding (PINPOINT).
    2. Pas de fluorescentiemodus aan op nabij-infraroodlaser (excitatielicht, 805 nm) voor het beste gezichtsveld.
      OPMERKING: Het endoscopische fluorescentiebeeldvormingssysteem heeft verschillende modi, zoals HD (High Definition) wit licht, SPY-fluorescentie, PINPOINT-fluorescentie en SPY CSF-modus, en de chirurg kan indien nodig overschakelen naar een andere modus.
  3. Identificeer SLNs onder een fluorescentie laparoscopie.
    1. Houd een ultrasoon scalpel en tandeloze tang met elke hand (uitgevoerd door de chirurg).
      OPMERKING: De assistent grijpt tandeloze tang om samen te werken met de chirurg.
    2. Til het peritoneum op en open het, scheid het subperitoneale vet en bindweefsels om de nodige structuren te onthullen, waaronder de urineleider, interne iliacale vaten en obturatorzenuwen volgens de indicatie van groene fluorescentie lymfelijnen, en om ze te beschermen tegen letsel.
      OPMERKING: Een ultrasoon scalpel met activering wordt gebruikt om de weefsels te snijden, terwijl een geïnactiveerd scalpel kan worden gebruikt voor stompe dissectie.
    3. Observeer de SLNs bedekt door het peritoneum ongeveer 5-10 minuten na ICG-injectie.
      OPMERKING: Meestal presenteren SLNs samen met de fluorescentielymfevaten van beide zijden van de baarmoederhals tot ten minste de hoogte van het gemeenschappelijke iliacale bloedvat. Af en toe komen de SLNs naast de abdominale aorta tevoorschijn. PINPOINT-apparatuur heeft meerdere modi, waaronder wit licht, fluorescentie en zwart-witmodi. Schakelen tussen meerdere modi helpt bij het bepalen van de locatie van SLNs.

6. Intraoperatieve SLN-biopsie

  1. Lokaliseer de SLN, de eerste in kaart gebrachte lymfeklier langs de drainage van parametrium in elk hemi-bekken, en gebruik meerdere modi om dit te bevestigen. Stel de SLN's volledig bloot voor volledige resectie(figuur 3).
  2. Pak en verhef de SLN met een tandeloze tang en voer een volledige resectie van de lymfeklier uit langs de periferie van de lymfeklier in wit licht.
    OPMERKING: Vermijd lymfeklierschade, die besmetting met tumorcellen kan veroorzaken.
  3. Plaats de verwijderde SLNs in de obturator fossa of doe ze in een kleine, eenvoudige zak. Nadat de baarmoeder volledig is verwijderd en via de vagina is verwijderd, worden bilaterale SLNs volledig via de vagina verwijderd in plaats van via de trocar-opening van 5 mm om fragmentatie te voorkomen.
  4. Stuur de verwijderde lymfeklieren naar de afdeling pathologie voor pathologische ultrastaging.
  5. Reseceer tijdens de operatie de vergrote of verdachte lymfeklieren tegelijkertijd en stuur ze voor pathologisch onderzoek.
  6. Noteer de locaties van SLNs op gestandaardiseerde intraoperatieve gegevensverzamelingsformulieren.
  7. Als SLN-mapping aan één of beide zijden faalt, voer dan zijdelingse specifieke lymfadenectomie uit volgens de NCCN-richtlijnen.
    OPMERKING: Als er geen fluorescerend knooppunt in de hemipelvis is, blijf dan zoeken naar de in kaart gebrachte knoop langs de lymfevaten tot het para-aortagebied vanwege de mogelijkheid om op onverwachte locaties in kaart te worden gebracht. Een mislukte SLN-mapping aan weerszijden betekent dat een fluorescerend groen knooppunt niet zichtbaar is met of zonder fluorescerende groene lymfevaten onder het fluorescentie laparoscoopsysteem aan weerszijden van het bekken en het para-aortagebied.
  8. Voer een totale hysterectomie plus bilaterale salpingectomie uit.
    OPMERKING: Aangezien dit een 28-jarige patiënt was met endometrioïde kanker in een vroeg stadium die een sterk verlangen had naar vruchtbaarheidsbehoud en normaal lijkende eierstokkanker en geen duidelijke familiegeschiedenis van borst- / eierstokkanker of Lynch-syndroom had, kon eierstokbehoud worden overwogen.
  9. Indwell een drainagebuis voor mogelijk restvocht in het bekken.
  10. Verwijder de laparoscoop en laat het gas uit de buik los. Sluit de incisies in de navel en onderbuik met een enkele steek door 2-0/T zijden hechtdraad.

7. Postoperatieve SLN ultrastaging20

  1. Snijd de SLN langs de maximale diameter en micro-sectie 50 μm uit elkaar om drie hematoxyline-eosine (H & E) dia's en één immunohistochemie (IHC) dia met anti-cytokeratine antilichaam (AE1 / AE3) te krijgen.
    OPMERKING: Ultrastaging omvat dunne seriële sectie van de bruto SLN. Cytokeratine IHC is niet essentieel. Geen enkel standaardprotocol is voor ultrastaging.
  2. Lymfekliermetastasen werden beschreven als macrometastasen (>2 mm), micrometastasen (0,2-2,0 mm) of geïsoleerde tumorcellen (ITC's) volgens de classificatie van het American Joint Committee on Cancer (AJCC)21.
  3. Rapporteer de postoperatieve pathologie met details over de tumorgrootte, histologische type en graad, myometriale invasie, betrokkenheid van lymfovasculaire ruimte, cervicale stromale betrokkenheid, aantal en status van per lymfeklieren en de cytologie van peritoneale wassingen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Patiënte in het onderhavige geval was een 28-jarige vrouw met gedurende 2 jaar onregelmatige vaginale bloedingen en zij werd 4 maanden geleden gediagnosticeerd met een afwijking van het baarmoederslijmvlies. Transvaginaal echografisch onderzoek toonde een heterogene endometriumdikte met een adnexale massa. Abdominopelvische magnetische resonantie beeldvorming (MRI) toonde een massa van 51 mm x 56 mm x 88 mm met een duidelijke grens in de baarmoederholte onder een hoog T2WI-signaal in een lokaal ziekenhuis. Vervolgens wer...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

SLN mapping en biopsie is een meer selectieve en op maat gemaakte lymfeklierdissectie aanpak die al bijna 20 jaar in de kliniek wordt toegepast. Op het gebied van EC zijn SLN-mapping en biopsie in toenemende mate aanbevolen door verschillende richtlijnen vanwege hun hoge diagnostische efficiëntie in het vroege stadium van EC, waarbij algemene en bilaterale detectiepercentages van respectievelijk 89% -95% en 52% -82% worden bereikt, met een gevoeligheid van 84% -100% en een negatieve voorspellende waarde van 97% -100%

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

Dit werk werd gedeeltelijk ondersteund door subsidies van de National Natural Science Foundation of China (81772777), Shanghai Science and Technology Commission Medical Guidance Project (18411963700), Clinical Research Plan van SHDC (nr. SHDC2020CR4079); Shanghai Pujiang Talenten Project (17PJ1401400). We bedanken de tijdige hulp van Fenghua Ma van de afdeling radiologie voor MR-beelden en Chao Wang van de afdeling pathologie voor pathologische beelden van het Obstetrics and Gynecology Hospital van de Fudan University.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
2-mL spuitBecton, Dickinson and Company, USA301940
CoagulatiepincetShanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd. Chirurgisch InstrumentenfabriekD0A010
FluorescentiemicroscoopOlympusIX73
Harmonisch scalpelSoering GmbHSONOCA190
Hematoxyline-eosinekleuringBeyotime Biotechnologies Corporation, CNC0107
Immunohistochemische cytokeratinekleuringMXB Biotechnologies Corporation, CNKit-0020
Indocyaninegroen (ICG)Dandong Medical Innovation Pharmaceutical Corporation.3599-32-4
ParaffineSangon biotech Co., Ltd.A601889
Pinpoint Endoscopische Fluorescerende BeeldvormingssysteemNovadaq Technologies Bonita, Springs, FLNA
Propofol InjectieFresenius Kabi Deutschland GmbH D-61346 Bad Homburg v.d.H., DuitslandH20030124
Zijde Gevlochten niet-opneembare hechtingShanghai EthiconSA854G
Zijde draadBeijing AKIN AIEN International Medical Technology Co., Ltd.VCPP71D
Zuig-irrigatieslangShanghai SMAFYX980D
Tandloze pincetShanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd. Chirurgisch InstrumentenfabriekJ41010
TrocarETHICON Co., Ltd, USAB10LT, B5LT

Referenties

  1. Siegel, R. L., Miller, K. D., Jemal, A. Cancer statistics, 2019. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 69 (1), 7-34 (2019).
  2. Bray, F., et al. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 68 (6), 394-424 (2018).
  3. Morice, P., Leary, A., Creutzberg, C., Abu-Rustum, N., Darai, E. Endometrial cancer. Lancet. 387 (10023), London, England. 1094-1108 (2016).
  4. de Boer, S. M., et al. Adjuvant chemoradiotherapy versus radiotherapy alone for women with high-risk endometrial cancer (PORTEC-3): final results of an international, open-label, multicentre, randomised, phase 3 trial. The Lancet. Oncology. 19 (3), 295-309 (2018).
  5. Creasman, W. T., et al. Surgical pathologic spread patterns of endometrial cancer. A Gynecologic Oncology Group Study. Cancer. 60 (8), 2035-2041 (1987).
  6. Bodurtha Smith, A., Fader, A., Tanner, E. Sentinel lymph node assessment in endometrial cancer: a systematic review and meta-analysis. American Journal of Obstetrics Gynecology. 216 (5), 459-476 (2017).
  7. Rossi, E. C., et al. A comparison of sentinel lymph node biopsy to lymphadenectomy for endometrial cancer staging (FIRES trial): a multicentre, prospective, cohort study. The Lancet. Oncology. 18 (3), 384-392 (2017).
  8. Holloway, R. W., et al. Sentinel lymph node mapping and staging in endometrial cancer: A Society of Gynecologic Oncology literature review with consensus recommendations. Gynecologic Oncology. 146 (2), 405-415 (2017).
  9. Gezer, S., et al. Cervical versus endometrial injection for sentinel lymph node detection in endometrial cancer: a randomized clinical trial. International Journal of Gynecological Cancer. 30 (3), 325-331 (2020).
  10. McMillian, N., Motter, A. NCCN Clinical Practice Guidelines in Oncology of Uterine Neoplasms 2021 v1. , Available from: www.nccn.org (2021).
  11. Manca, G., et al. Sentinel lymph node biopsy in breast cancer: Indications, contraindications, and controversies. Clinical Nuclear Medicine. 41 (2), 126-133 (2016).
  12. Digesu, C. S., Weiss, K. D., Colson, Y. L. Near-infrared sentinel lymph node identification in non-small cell lung cancer. JAMA Surgery. 153 (5), 487-488 (2018).
  13. Garau, L. M., et al. Sentinel lymph node biopsy in small papillary thyroid cancer. A review on novel surgical techniques. Endocrine. 62 (2), 340-350 (2018).
  14. Gonzalez, A. Sentinel lymph node biopsy: Past and present implications for the management of cutaneous melanoma with nodal metastasis. American Journal of Clinical Dermatology. 19, Suppl 1 24-30 (2018).
  15. Levenback, C. F., et al. Lymphatic mapping and sentinel lymph node biopsy in women with squamous cell carcinoma of the vulva: a gynecologic oncology group study. Journal of Clinical Oncology. 30 (31), 3786-3791 (2012).
  16. Protic, M., et al. Prognostic effect of ultra-staging node-negative colon cancer without adjuvant chemotherapy: A prospective national cancer institute-sponsored clinical trial. Journal of the American College of Surgeons. 221 (3), 643-651 (2015).
  17. Price, P. M., Badawi, R. D., Cherry, S. R., Jones, T. Ultra staging to unmask the prescribing of adjuvant therapy in cancer patients: the future opportunity to image micrometastases using total-body 18F-FDG PET scanning. The Journal of Nuclear Medicine. 55 (4), 696-697 (2014).
  18. Concin, N., et al. ESGO/ESTRO/ESP Guidelines for the management of patients with endometrial carcinoma. Virchows Archiv: An International Journal of Pathology. 478 (2), 153-190 (2021).
  19. FIGO Committee on Gynecologic Oncology. FIGO staging for carcinoma of the vulva, cervix, and corpus uteri. International journal of gynaecology and obstetrics: the official organ of the International Federation of Gynaecology and Obstetrics. 125 (2), 97-98 (2014).
  20. Barlin, J. N., et al. The importance of applying a sentinel lymph node mapping algorithm in endometrial cancer staging: beyond removal of blue nodes. Gynecologic Oncology. 125 (3), 531-535 (2012).
  21. Amin, M. B., et al. AJCC Cancer Staging Manual, 8th edition. , Springer. (2017).
  22. Eriksson, A. G. Z., et al. Update on sentinel lymph node biopsy in surgical staging of endometrial carcinoma. Clinical Medicine. 10 (14), (2021).
  23. Kelley, M. C., Hansen, N., McMasters, K. M. Lymphatic mapping and sentinel lymphadenectomy for breast cancer. The American Journal of Surgery. 188 (1), 49-61 (2004).
  24. Sakorafas, G. H., Peros, G. Sentinel lymph node biopsy in breast cancer: what a physician should know, a decade after its introduction in clinical practice. European Journal of Cancer Care. 16 (4), 318-321 (2007).
  25. Niikura, H., et al. Tracer injection sites and combinations for sentinel lymph node detection in patients with endometrial cancer. Gynecologic Oncology. 131 (2), 299-303 (2013).
  26. Backes, F. J., et al. Prospective clinical trial of robotic sentinel lymph node assessment with isosulfane blue (ISB) and indocyanine green (ICG) in endometrial cancer and the impact of ultrastaging (NCT01818739). Gynecologic Oncology. 153 (3), 496-499 (2019).
  27. Holloway, R. W., et al. Sentinel lymph node mapping and staging in endometrial cancer: A Society of Gynecologic Oncology literature review with consensus recommendations. Gynecologic Oncology. 146 (2), 405-415 (2017).
  28. Ballester, M., et al. Detection rate and diagnostic accuracy of sentinel-node biopsy in early stage endometrial cancer: a prospective multicentre study (SENTI-ENDO). The Lancet. Oncology. 12 (5), 469-476 (2011).
  29. Rossi, E. C., et al. A comparison of sentinel lymph node biopsy to lymphadenectomy for endometrial cancer staging (FIRES trial): a multicentre, prospective, cohort study. The Lancet. Oncology. 18 (3), 384-392 (2017).
  30. Mayoral, M., et al. F-FDG PET/CT and sentinel lymph node biopsy in the staging of patients with cervical and endometrial cancer. Role of dual-time-point imaging. Revista Espanola de Medicina Nuclear e Imagen Molecular. 36 (1), 20-26 (2017).
  31. Lecointre, L., et al. Diagnostic accuracy and clinical impact of sentinel lymph node sampling in endometrial cancer at high risk of recurrence: A meta-analysis. Journal of Clinical Medicine. 9 (12), (2020).
  32. Bodurtha Smith, A. J., Fader, A. N., Tanner, E. J. Sentinel lymph node assessment in endometrial cancer: a systematic review and meta-analysis. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 216 (5), 459-476 (2017).
  33. Bonneau, C., Bricou, A., Barranger, E. Current position of the sentinel lymph node procedure in endometrial cancer. Bulletin du Cancer. 98 (2), 133-145 (2011).
  34. Tanner, E. J., et al. Factors associated with successful bilateral sentinel lymph node mapping in endometrial cancer. Gynecologic Oncology. 138 (3), 542-547 (2015).
  35. Ianieri, M. M., et al. Sentinel lymph node biopsy in the treatment of endometrial cancer: Why we fail? Results of a prospective multicenter study on the factors associated with failure of node mapping with indocyanine green. Gynecologic and Obstetric Investigation. 84 (4), 383-389 (2019).
  36. Naoura, I., Canlorbe, G., Bendifallah, S., Ballester, M., Daraï, E. Relevance of sentinel lymph node procedure for patients with high-risk endometrial cancer. Gynecologic Oncology. 136 (1), 60-64 (2015).
  37. Schiavone, M. B., et al. Survival of patients with uterine carcinosarcoma undergoing sentinel lymph node mapping. Annals of Surgical Oncology. 23 (1), 196-202 (2016).
  38. Soliman, P. T., et al. A prospective validation study of sentinel lymph node mapping for high-risk endometrial cancer. Gynecologic Oncology. 146 (2), 234-239 (2017).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Tags

Laparoscopisch bioptIndocyaninegroenfluorescentiebeeldvormingpathologische ultrastagingtotale hysterectomiebilaterale salpingectomieimmunohistochemische kleuring
Sentinel Lymph Node Mapping en Biopsie voor endometriumkanker in een vroeg stadium met laparoscopie
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan de bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleidsoverzicht

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.