Methodenartikel

Detectie van neutralisatiegevoelige epitopen in antigenen die worden weergegeven op op virusachtige deeltjes (VLP) gebaseerde vaccins met behulp van een capture-assay

DOI:

10.3791/63137

⸱

10 februari 2022

 ,  , 
1Research Group Pharmaceutical Biotechnology, TH Köln - University of Applied Sciences, 2Institute of Technical Chemistry, Leibniz University Hannover

* These authors contributed equally

In dit artikel

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hier presenteren we een protocol om neutralisatie-epitopen te detecteren op antigeen-displaying virusachtige deeltjes (VLP's). Immunoprecipitatie van het van het humaan immunodeficiëntievirus (HIV) afgeleide VLP's wordt uitgevoerd met behulp van envelop glycoproteïnen-specifieke monoklonale antilichamen gekoppeld aan eiwit G-geconjugeerde magnetische kralen. Gevangen VLP's worden vervolgens onderworpen aan SDS-PAGE en Western blot-analyse met behulp van virale kerneiwit Gag-specifieke antilichamen.

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De virusachtige deeltje (VLP) capture assay is een immunoprecipitatiemethode, algemeen bekend als een 'pull-down assay' die wordt gebruikt om antigeen-vertonende VLP's te zuiveren en te isoleren. Oppervlakte-antigeenspecifieke antilichamen worden gekoppeld aan en dus geïmmobiliseerd op een vaste en onoplosbare matrix zoals kralen. Vanwege hun hoge affiniteit met het doelantigeen kunnen deze antilichamen VLP's opvangen die zijn versierd met het verwante antigeen dat is verankerd in de membraanenvelop van de VLP's. Dit protocol beschrijft de binding van antigeenspecifieke antilichamen aan eiwit A- of G-geconjugeerde magnetische kralen. In onze studie worden van het humaan immunodeficiëntievirus (HIV) afgeleide VLP's gevormd door het groepsspecifieke antigeen (Gag) virale kernprecursoreiwit p55 Gag en met de envelop glycoproteïnen (Env) van HIV onderzocht. De VLP's worden gevangen met behulp van breed neutraliserende antilichamen (bNAbs) gericht tegen neutralisatiegevoelige epitopen in Env. De hier beschreven VLP-afvangtest vertegenwoordigt een gevoelige en gemakkelijk uit te voeren methode om aan te tonen dat (i) de VLP's zijn versierd met het respectieve doelantigeen, (ii) het oppervlakteantigeen zijn structurele integriteit behield zoals aangetoond door de epitoopspecifieke binding van bNAbs die in de test werd gebruikt en (iii) de structurele integriteit van de VLP's onthuld door de detectie van Gag-eiwitten in een daaropvolgende Western blot-analyse. Bijgevolg vergemakkelijkt het gebruik van bNAbs voor immunoprecipitatie een voorspelling of VLP-vaccins in staat zullen zijn om een neutraliserende B-celrespons op te wekken bij gevaccineerde mensen. We verwachten dat dit protocol andere onderzoekers een waardevolle en eenvoudige experimentele benadering zal bieden om potentiële op VLP gebaseerde vaccins te onderzoeken.

Inleiding

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Virusachtige deeltjes (VLP's) lijken op de inheemse virusdeeltjesstructuur terwijl ze het virale genoom missen, waardoor een hoog veiligheidsprofiel wordt geboden1,2. VLP's vertegenwoordigen een individuele klasse van vaccins die in toenemende mate worden ontwikkeld vanwege hun hoge immunogeniciteit3,4,5,6,7. Dit is met name het geval voor membraanomhulde VLP's, waardoor niet alleen homologe virale oppervlakte-antigenen kunnen worden weergegeven, maar ook heterologe antigenen zoals tumorantigenen8,9,10. Figuur 1 geeft een voorbeeldig overzicht van de structuur van een omhulde met antigeen versierde VLP. Tijdens het ontwikkelingsproces van op VLP gebaseerde vaccins zijn assays onmisbaar om de analyse van het respectieve doelantigeen op het VLP-oppervlak mogelijk te maken. Dergelijke testen moeten instrumenteel zijn om de samenstelling van een deeltjesvaccin op te helderen: (i) Zijn de VLP's versierd met het respectieve oppervlakteantigeen? (ii) Heeft het oppervlakteantigeen zijn oorspronkelijke structuur behouden, zoals aangetoond door epitoopherkenning van neutraliserende antilichamen (bNAbs) en (iii) kan de structurele integriteit van de VLP's worden bevestigd door de detectie van het virale eiwit dat VLP-vorming bemiddelt?

figure-introduction-1
Figuur 1: Schematische illustratie van een VLP met membraanomhulde. VLP's worden gevormd door onrijpe voorloper Gag-kerneiwitten en omgeven door een lipidemembraan afgeleid van de gastheercel. De antigenen, bijvoorbeeld envelop glycoproteïnen, worden opgenomen in het lipidemembraan en weergegeven op het oppervlak van de VLP (aan de rechterkant). Antigeenspecifieke antilichamen herkennen het antigeen. Links is een kale VLP zonder antigeenversiering te zien. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Vooral VLP's gevormd door het virale groepspecifieke antigeen (Gag) kernprecursoreiwit p55 van humaan immunodeficiëntievirus type 1 (HIV-1) zijn voorkeursteigers voor antigeenweergave bij vaccinontwikkeling, aangezien er tal van antilichamen en ELISA-kits beschikbaar zijn, waardoor de kwantificering van deze VLP's11,12 mogelijk is. De HIV-1 envelop glycoproteïnen (Env), namelijk het transmembraaneiwit gp41 (gp41-TM) en de oplosbare oppervlakte-eenheid gp120 (gp120-SU) die heterodimeren vormen, zijn opgenomen in de membraanomhulling van deeltjes en zijn cruciale doelantigenen voor de ontwikkeling van vaccins tegen HIV-infectie13,14,15 . De weergave van neutralisatiegevoelige epitopen in deze doelantigenen is een voorwaarde voor het opwekken van een breed neutraliserende antilichaamrespons bij gevaccineerden. Naast een T-celrespons gericht tegen de Gag-eiwitten, wordt dit beschouwd als een belangrijke correlatie van bescherming tegen HIV-infectie16. Bijgevolg, en bij het ontwerp en de productie van VLP's versierd met doelantigeenkandidaten, vormt de daaropvolgende analyse van de kwaliteit van de weergegeven antigenen een cruciale stap in het proces van vaccinontwikkeling.

Immunoprecipitatie (IP) is een veelgebruikte techniek voor de detectie van eiwit-eiwit interacties en de zuivering van eiwitcomplexen op kleine schaal17. Barret et al. voor het eerst gerapporteerd over de ontwikkeling van IP in 1960, maar deze methode is voortdurend verder verbeterd. IP maakt het mogelijk om een doelantigeen (prooi) uit een oplossing te vangen en te isoleren door gebruik te maken van een antigeenspecifiek antilichaam (lokaas) dat wordt geïmmobiliseerd door koppeling aan kralen18,19. In dit protocol demonstreren we een variatie op de klassieke IP-toepassing met behulp van membraan-omhulde p55 Gag-gevormde VLP's als prooi en bNAbs die neutralisatiegevoelige epitopen herkennen in de envelopeiwitten die op het oppervlak van de VLP's worden weergegeven als lokaaseiwitten. De succesvolle toepassing van deze VLP-capture-test vergemakkelijkt de voorspelling of de geteste antigeenpositieve VLP's in staat zullen zijn om een neutraliserende B-celrespons bij gevaccineerde mensen uit te lokken. Dergelijke immunogene eigenschappen van op VLP gebaseerde vaccinkandidaten worden vaak aangetoond in kleine diermodellen20,21,22.

Om de kwaliteit van het nieuw ontwikkelde kandidaat-VLP-vaccin te beoordelen, zijn VLP-afvangtests met succes gebruikt5,23,24. Het aantal gepubliceerde methoden is echter beperkt. De hier gepresenteerde VLP-vangsttest begint met de immobilisatie van Env-specifieke bNAbs op eiwit G-geconjugeerde kralen, die binden aan het Fc-gebied van van zoogdier afgeleide antilichamen. Typische matrices voor de immobilisatie van het antilichaam naar keuze zijn agarose of magnetische kralen. Magnetische kralen zijn echter gunstig voor toepassingen met een hoge doorvoer25. In de volgende stap worden VLP's die het doelantigeen weergeven, gevangen door bNAb-gecoate kralen. De gevormde immuuncomplexen bestaande uit Env-positieve VLP's en geïmmobiliseerde bNAbs zijn eenvoudig te verrijken met behulp van een magneet. De geïsoleerde immuuncomplexen worden in de laatste stap geëlueerd. Vervolgens kunnen de VLP's biochemisch worden gekarakteriseerd. Hier voerden we Western blot-analyse uit met behulp van p55 Gag virale kerneiwitspecifieke antilichamen om aan te tonen dat de neergeslagen doel-Env-antigenen niet alleen de neutralisatiegevoelige epitopen herbergden, maar ook werden weergegeven op Gag-gevormde VLP's. Bovendien verhoogt de detectie van de virale kern Gag-eiwitten de gevoeligheid van de vangsttest, omdat Gag-eiwitten overvloediger zijn dan Env in een VLP. In HIV-1 zijn Env-eiwitten alleen aanwezig met een enkel- of dubbelcijferig getal26, terwijl meer dan 3.500 Gag-moleculen de kern van een deeltje vormen27.

Vergeleken met andere technieken voor het onderzoek van eiwit-eiwitinteracties28,29, biedt de VLP-afvangtest een alternatieve methode voor onderzoekslaboratoria die geen toegang hebben tot dure analytische instrumenten. Transmissie-elektronenmicroscopische analyse (TEM), oppervlakteplasmonresonantiespectroscopie (SPR) en nanodeeltjesvolgingsanalyse (NTA) kunnen bijvoorbeeld kostenintensief zijn. De hier gepresenteerde vangsttest maakt het ook mogelijk om later gevangen antigeenpositieve VLP-monsters te onderwerpen aan verdere eiwitkarakterisering, bijvoorbeeld met behulp van respectievelijk gel-elektroforese, immunoblotting, elektronenmicroscopie en massaspectrometrie (MS). Aangezien de native structuur van het doelantigeen behouden blijft tijdens de VLP-capture-test, kunnen ook de prestaties van een native PAGE en daaropvolgende immunoblotting-technieken worden gebruikt.

De VLP-vangsttest vertegenwoordigt een eenvoudig te gebruiken en gevoelige methode om de decoratie van VLP's te onderzoeken met doelantigenen die neutralisatiegevoelige epitopen blootleggen, en dus hun nut als toekomstige vaccinkandidaten.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Monstervoorbereiding

  1. Zaad de VLP-producent suspensiecellijnen afgeleid van 293-F cellen die HIV structurele genen uitdrukken, alleen of in combinatie met env 30 bij een lage celdichtheid van 0,5 x 106 cellen per ml in 293-F Expressie medium.
  2. Laat ze 3-4 dagen uitzetten bij 37 °C en 8% CO2 in een shaker incubator rotatie met een baan van 5 cm en 135 ronden per minuut (rpm).
  3. Pellet de productiecellen door centrifugeren bij 100 x g gedurende 5 minuten. Filter het geklaarde supernatant om resterende cellen en celresten te verwijderen met behulp van 0,45 μm polyvinylideenfluoride (PVDF) membraanspuitfilters om celvrije celkweeksupernatant (CFSN) te verkrijgen.
    OPMERKING: Het protocol kan hier worden gepauzeerd. CFSN kan 's nachts bewaard worden bij 4 °C.
  4. Gebruik de CFSN rechtstreeks voor het experiment of pellet-VLP's van 35 ml CFSN met ultracentrifugatie (112.700 x g, 4 °C, 1,5 uur).
  5. Na ultracentrifugatie gooit u het supernatant weg en suspenseert u de VLP-pellets in 200 μL van 15% (w/v) trehalose-oplossing per centrifugebuis.
    OPMERKING: De VLP pellet is vaak niet zichtbaar voor het blote oog. Het protocol kan hier worden gepauzeerd. VLP's kunnen worden opgeslagen bij -80 °C.
  6. Bepaal voorafgaand aan de VLP-vangsttest de virale kerneiwitconcentraties in de VLP-bevattende monsters met behulp van een ELISA. Deze stap is belangrijk om de input van de capture assay te standaardiseren.

2. VLP-vangsttest

OPMERKING: Een overzicht van de workflow is weergegeven in figuur 2.

  1. Hang de magnetische kralen op door op en neer te pipetteren of gedurende ten minste 5 minuten op een rotator bij 50 tpm te mengen.
  2. Bereid ondertussen de antilichaamoplossing voor die de bNAbs bevat. Gebruik 10 μg van elke bNAb in 200 μL antilichaambinding en wasbuffer (zie Materiaaltabel) per reactie.
    OPMERKING: Antilichaamhoeveelheden kunnen variëren afhankelijk van de affiniteit van de bNAb en antigeenversieringsdichtheid op de gebruikte VLP's.
  3. Gebruik 50 μL van de magnetische kraaloplossing (zie Materiaaltabel) per reactie en breng de kralen over in een reactiebuis van 1,5 ml. Plaats de buizen op het magnetisch scheidingsrek.
    OPMERKING: Als alternatief kan voor elke buis een sterke enkele magneet worden gebruikt om de kralen van het supernatant te scheiden.
  4. Wacht een paar minuten totdat de kralen zich verzamelen bij de buiswand om ervoor te zorgen dat alle kralen worden verzameld. Verwijder het supernatant.
  5. Verwijder de magneet en hang de kralen op in 200 μL van de in stap 2.2 bereide bNAb-oplossing. Incubeer gedurende 30 minuten tot 3 uur mengen op een rotator bij 50 rpm bij kamertemperatuur.
  6. Plaats de reactiebuizen opnieuw in het magnetisch scheidingsrek, wacht en verwijder het supernatant.
  7. Verwijder de buisjes van de magneet en was de kralen door 200 μL antilichaambinding en wasbuffer opnieuw op te suspenderen.
  8. Herhaal stap 2.4. Verwijder zoveel mogelijk wasbuffer.
  9. Voeg de monsters toe aan de kralengebonden bNAbs.
    OPMERKING: De VLP-input voor de vangsttest met behulp van hiv-afgeleide deeltjes moet ten minste 15 ng viraal kerneiwit per reactie zijn. VLP-hoeveelheden kunnen variëren afhankelijk van de affiniteit van de bNAb en de antigeenversieringsdichtheid op de gebruikte VLP's.
  10. Als het in stap 2.9 toegevoegde monstervolume lager is dan 1 ml, voegt u PBS toe om het monstervolume aan te passen op 1 ml. Hang de kralen voorzichtig op door te pipetteren.
  11. Incubeer de monsters en kralen gedurende 2,5 uur op een rotator bij kamertemperatuur. Zorg ervoor dat de kralen in suspensie blijven en dat de oplossing grondig wordt gemengd tijdens de incubatie.
  12. Plaats de buisjes op de magneet en verwijder het supernatant.
  13. Was de magnetische kralen door ze op te hangen in 200 μL wasbuffer (zie Tabel met materialen). Herhaal de wasstap drie keer.
  14. Hang de kralen in 100 μL wasbuffer en breng de suspensie over naar een schone (hittebestendige) reactiebuis.
  15. Plaats de buis op het magnetisch scheidingsrek (zie Materialentabel) en verwijder het supernatant volledig.
  16. Bereid gedenatureerde SDS-PAGE-monsters volgens stap 2.16.1-2.16.2 of niet-gedenatureerde monsters door de VLP's van de magnetische kralen te eluteren volgens stap 2.16.3-2.16.5.
    1. Om gedenatureerde SDS-PAGE-monsters te bereiden, suspenseert u de kralen in 20-80 μL Laemmli-buffer (0,8 μL Laemmli-buffer per 1 ng p55 Gag-assay-ingang) en incubeert u bij 95 °C gedurende 5 minuten.
    2. Ga direct verder met SDS-PAGE of bewaar de monsters bij -20 °C.
      LET OP: Laemmli buffer bevat 2-mercaptoethanol en natrium dodecylsulfaat. Draag beschermende handschoenen en oogbescherming. Vermijd contact met huid, ogen en kleding. Inhaleer geen dampen. Werk in een goed geventileerde ruimte, bijvoorbeeld een zuurkast.
      OPMERKING: Het protocol kan hier worden gepauzeerd.
    3. U kunt ook een niet-denaturerende elutiestap uitvoeren om VLP's te verkrijgen met een bewaarde inheemse eiwitstructuur.
    4. Voeg 25 μL elutiebuffer (vaak voorzien van de kralen) toe aan de magnetische kralen en incubeer gedurende 2-5 minuten bij kamertemperatuur.
    5. Verwijder de kralen en breng het eluaat over in een schone buis. Gebruik het eluaat voor volgende tests of bewaar het bij 4 °C.
      OPMERKING: Het protocol kan hier worden gepauzeerd.

3. Analyse van gevangen VLP-monsters

OPMERKING: Voer voor de analyse van de gevangen VLP's een SDS-PAGE uit en vervolgens Western blot-analyse31,32.

  1. Plaats de monsterbuizen op het magnetische rek om de kralen van de oplossing te scheiden.
  2. Laad 10 μL van elk monster in afzonderlijke putjes van de gel.
    OPMERKING: In dit protocol werden virale p55 Gag-kerneiwitten gedetecteerd door gebruik te maken van polyklonale konijnenantistoffen gericht tegen HIV Gag en secundaire polyklonale kip-anti-konijn IgG gekoppeld aan mierikswortelperoxidase (HRP) antilichamen. Virale kerneiwitten werden gevisualiseerd met behulp van chemiluminescentiedetectie.

figure-protocol-1
Figuur 2: Schematische illustratie van de belangrijkste stappen van de VLP-capture-test met behulp van celvrije supernatanten. (1) De VLP-vangsttest begint met de binding van de HIV-1 bNAbs aan het eiwit G-gekoppelde magnetische kralen. Ondertussen wordt de VLP-oplossing met een gedefinieerde p55-concentratie bereid. Het celvrije kweeksupernatant bestaat uit een mengsel van p55 Gag VLP's, gastheerceleiwitten en nucleïnezuren. (2) De magnetische kralen gekoppeld aan bNAbs en de VLP-oplossing worden overgebracht in een reactiebuis van 1,5 ml, gevolgd door incubatie onder rotatie. (3) Antigeen-display VLP's worden gevangen door de bNAbs-gecoate kralen. Scheiding van deze immuuncomplexen van van gastheercellen afgeleide verontreinigingen wordt uitgevoerd in een magnetisch veld. (4) Het supernatant wordt verwijderd door pipetteren en de kralen worden drie keer gewassen om ongebonden VLP's te verwijderen. (5) In de volgende stap wordt een reducerende eiwitbelastingsbuffer toegevoegd aan de immuuncomplexen bestaande uit magnetische kralen bedekt met bNAbs en gevangen VLP's. (6) Het koken van het monster dissocieert bNAbs en doelantigeen van de magnetische kralen en liegt de VLP's. (7) Magnetische kralen worden in een magnetisch veld van de oplossing gescheiden. (8) De eiwitmonsters worden onderworpen aan SDS-PAGE. (9) Western blot-analyse wordt uitgevoerd om virale p55 Gag-kerneiwitten te detecteren. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Resultaten

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Figuur 3 toont een representatieve uitkomst van VLP's die voor het eerst werden gevangen uit respectievelijk CFSN- en VLP-pellets, met behulp van bNAbs en vervolgens werden onderworpen aan Western blot-analyse om virale kerneiwitten te detecteren. De kralen die werden gebruikt voor de vangsttest werden gecoat met drie verschillende bNAbs gericht tegen neutralisatiegevoelige epitopen van de Env-glycoproteïnen en isotype-antilichamen die respectievelijk als negatieve controles dienden. Met behulp van isotype antilichamen-gecoate kralen, waren geen Gag-eiwitten detecteerbaar in monsters met Env-negatieve (kale VLP's) of Env-weergevende VLP's met behulp van Western blot-analyse. Dit toonde aan dat de niet-specifieke binding van VLP's aan kralen bedekt met menselijke antilichamen VLP-vangst niet bemiddelde. Kale VLP's waren ook niet gebonden aan bNAbs-gecoate kralen, en bijgevolg waren er opnieuw geen Gag-eiwitten detecteerbaar. Daarentegen vingen alle drie de bNAbs VLP's met Env-eiwitten (Env VLP's) en daarom werden Gag-eiwitten vervolgens gemakkelijk gedetecteerd. Zoals zichtbaar in figuur 3, kan de vangsttest worden gebruikt om doelantigeen met VLP's in respectievelijk CFSN- en pelleted VLP-monsters te analyseren.

figure-results-1
Figuur 3: Detectie van neutralisatiegevoelige epitopen in HIV-1-envelop glycoproteïnen weergegeven op p55 Gag-gevormde VLP's met behulp van breed neutraliserende antilichamen. Representatieve resultaten van Western blot-analyse met behulp van virale Gag core eiwit-specifieke antilichamen na het uitvoeren van een VLP capture assay met behulp van drie verschillende breed neutraliserende antilichamen (bNAb 1, bNAb 2 en bnAb 3) gericht op epitopen binnen de HIV-1 envelop glycoproteïnen (Env). Isotype menselijke antilichamen gepoold uit menselijke sera dienden als negatieve controles. Celkweeksupernatanten werden geoogst uit suspensiecelculturen die VLP's produceerden met respectievelijk Env-eiwitten (Env-VLP's) en kale VLP's (Env-negatief), evenals uit naïeve cellen die geen virale eiwitten tot expressie brachten (mock). Zowel de supernatanten uit de kale VLP-producentcelkweek als uit de nepcelkweek dienden als negatieve controles. Supernatanten werden bevrijd van verontreinigende cellen met behulp van lage snelheid centrifugatie en daaropvolgende filtratie om celvrije supernatanten (CFSN) te verkrijgen voor analyse. Na immunoprecipitatie werd Western blot-analyse uitgevoerd met behulp van polyklonale konijnenantistoffen gericht tegen Gag en secundaire anti-konijn IgG-HRP-conjugaten. Het schijnbare molecuulgewicht in kilodalton (kDa) zoals zichtbaar vanaf de moleculaire gewichtsmarker (MW) is links afgebeeld. De pijlen geven het gedetecteerde voorlopereiwit p55 Gag aan. (A) Voor elk monster werd CFSN met 100 ng Gag-eiwit toegepast op de vangsttest om de inputhoeveelheid van VLP's te standaardiseren. CFSN werd direct geïncubeerd met antilichaam-gecoate kralen. (B) VLP-pellets werden verkregen door ultracentrifugatie van CFSN. Pellets met 100 ng Gag-eiwit werden toegepast op de vangsttest met behulp van isotype-antilichamen en bNAb 3. Monsters voor bNAb 1 en bNAb 2 bevatten slechts 25 ng Gag. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Discussie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Evalueer voorafgaand aan de VLP-vangsttest de vorming van VLP's en de expressie van het doelantigeen in de VLP-producentcellijnen. Instrumentele methoden zijn flowcytometrische analyse van de celoppervlakexpressie van het antigeen en antigeen- en virale kerneiwitspecifieke ELISA van CFSN en gepelleteerde VLP's.

Kritische stappen van de VLP-vangsttest zijn het coaten van de kralen met vangantistoffen - hier bNAbs - en de daaropvolgende vangst van de antigeenpositieve VLP's door de met antilichamen gecoate kralen. Succesvolle coating van de kralen met antilichamen hangt af van de keuze van het geconjugeerde immunoglobuline (Ig)-bindende eiwit. Zowel de donorsoort als de Ig-klasse van de antilichamen bepalen of eiwit G- of eiwit A-geconjugeerde kralen de voorkeur hebben. Voor de meeste soorten en Ig-klassen is eiwit G het ligand bij uitstek33. Als alternatief voor eiwit A/G-geconjugeerde kralen zijn streptavidin kralen voor de coating met gebiotinyleerde antilichamen beschikbaar. Kralen kunnen ook covalent gekoppeld zijn aan antilichamen.

De vangst van de VLP's door met antilichamen gecoate kralen hangt af van grondige menging, voldoende incubatietijd, antigeenrijkdom en affiniteit van het vanvangantilichaam. In onze ervaring kan een grondige menging van de met antilichamen gecoate kralen met de VLP-monsters het beste worden bereikt door het gebruik van volumes >500 μL in buizen van 1,5 ml onder rotatie gedurende ten minste 2 uur bij kamertemperatuur of 4 °C. Een andere mogelijke hindernis is het te lage aantal VLP's in de steekproef. Voor antilichamen die het doelantigeen sterk binden, zorgen VLP-inputs zo laag als 15 ng Gag-eiwit meestal voor gemakkelijk detecteerbare hoeveelheden van de virale kerneiwitten met behulp van Western blot-analyse. Antilichamen met een lage affiniteit vereisen echter hogere inputhoeveelheden, bijvoorbeeld 100 ng Gag-eiwit, om overtuigende resultaten te verkrijgen (figuur 3, bNAb 3).

Sommige oppervlakte-antigenen zijn gevoelig voor proteasedegradatie. Hier raden we de toevoeging van proteaseremmers aan de VLP-monsters en incubatie bij 4 °C aan. Niet-specifieke hechting van gastheerceleiwitten en VLP's aan de kraalgebonden antilichamen wordt zelden waargenomen en moet worden uitgesloten door gebruik te maken van geschikte negatieve controles, zoals we hier hebben aangetoond met behulp van nep- en kale VLP-monsters en isotypecontrole-antilichamen. Strategieën om niet-specifieke binding te verminderen omvatten uitgebreide wasstappen en de toevoeging van caseïne in de wasbuffer34. Bovendien kan de afvangtest ook worden verbeterd door de optimale verhouding tussen antilichaam en antigeen-vertonende VLP-hoeveelheid te bepalen.

In de laatste stap van de VLP-vangsttest beschrijven we de elutie van de immuuncomplexen uit de kralen door te koken in het verminderen van de Laemmli-buffer. Tijdens deze stap worden de VLP's gedemonteerd en worden de vangantistoffen en doelantigenen gescheiden van de kralen. Met name de donorsoort van het primaire antilichaam dat in de daaropvolgende Western blot-analyse wordt gebruikt, moet verschillen van de donor van het vanvangantilichaam om de onbedoelde detectie van het vanvangantilichaam door de secundaire antidonor IgG HRP-geconjugeerde antilichamen te voorkomen.

De hier gepresenteerde VLP-capture-test biedt een gebruiksvriendelijke en gevoelige methode om neutralisatiegevoelige epitopen te detecteren in structurele intacte doelantigenen die op VLP-oppervlakken worden weergegeven. De afvangtest maakt echter geen directe epitoopkwantificering mogelijk. ELISA's uitgevoerd met bNAbs zijn instrumenteel voor dit doel en moeten parallel worden uitgevoerd, vooral als onderzochte VLP's bedoeld zijn om te worden gebruikt in preklinische studies met diermodellen35. Dit is cruciaal, omdat de hoeveelheid antigeen direct kan correleren met de elicitatie van een neutraliserende antilichaamrespons bij geïmmuniseerde dieren, zoals aangetoond voor varkenscirccovirus type 2 (PCV2) vaccins36.

Een ideaal vaccin zou moeten resulteren in de elicitatie van bNAbs gericht op de neutralisatiegevoelige epitopen op het virionoppervlak. De analyse van deze epitopen, met name verwijzend naar hun volledige structurele integriteit op het oppervlak van het deeltjesvaccin, is cruciaal voor het identificeren van potentiële vaccinkandidaten. Dit is niet alleen het geval voor hiv-afgeleide VLP's, maar ook voor veel andere VLP-vaccins in ontwikkeling37. Prominente op VLP gebaseerde vaccins zijn bijvoorbeeld afgeleid van niet-omhulde of capside ouderlijke virussen zoals humaan papillomavirus (HPV). In tegenstelling tot HIV-1-deeltjes, die worden gevormd door slechts één structureel kerneiwit, namelijk p55 Gag, en omhuld door het membraan afkomstig van de VLP-productiecel, bestaan HPV-deeltjes uit slechts één of twee structurele kerneiwitten38,39. Evenzo en zoals hier gepresenteerd voor omhulde VLP's, kan de VLP-vangsttest ook van toepassing zijn op de detectie van neutralisatiegevoelige epitopen van niet-omhulde VLP's.

Als alternatief voor de capture assay kunnen VLP-monsters direct worden onderworpen aan native PAGE gevolgd door Western blot-analyse met behulp van bNAbs en geschikte secundaire antilichamen gekoppeld aan HRP40. Voor de analyse van hiv-env-versierde VLP's is deze test echter minder gevoelig omdat slechts een laag aantal antigeeneiwitten per VLP kan worden verwacht. Daarentegen vergemakkelijkt de vangsttest de detectie van de kerneiwitten die overvloedig aanwezig zijn in grote hoeveelheden per VLP, in het geval van HIV-afgeleide VLP's vormen meer dan 3.500 Gag-eiwitten een VLP27. Dit maakt de zeer gevoelige indirecte detectie van epitopen in Env mogelijk, zelfs bij lage dichtheden op VLP's.

Het aantal gevestigde methoden om neutralisatiegevoelige epitopen in oppervlakte-antigenen van VLP's te onderzoeken, is beperkt. Het labelen van de antigenen die op de VLP's worden weergegeven, is mogelijk met epitoopspecifieke antilichaam-fluorofoorconjugaten en daaropvolgende detectie door nanodeeltjestracking-analyse (NTA), waardoor detectie en kwantificering van VLP's mogelijk is. Deze methode is ook met succes ontwikkeld en geoptimaliseerd voor exosomen die celoppervlakmarkers presenteren41. Ook maakt oppervlakte plasmon resonantie (SPR) spectroscopie de analyse van interacties tussen niet-geconjugeerde neutraliserende antilichamen en cognate epitopen gepresenteerd op VLP's mogelijk. Hoewel niet geschikt voor analyse met een hogere doorvoer, kunnen VLP's ook worden geëtiketteerd met bNAbs gekoppeld aan gouddeeltjes en vervolgens transmissie-elektronmicroscopisch (TEM)-onderzoek42.

Concluderend biedt de VLP-afvangtest enkele aanzienlijke voordelen: (i) Beoordeling van de structurele integriteit van neutralisatiegevoelige epitopen op het oppervlak van VLP's, (ii) gevoelige en indirecte detectie van antigenen, zelfs wanneer weergegeven bij lage dichtheden op VLP's, en (iii) de methode vereist geen kostenintensieve analytische apparatuur.

Openbaarmakingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs verklaren geen belangenverstrengeling te hebben.

Dankbetuigingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dit werk werd ondersteund door een subsidie van het Duitse federale ministerie van Onderwijs en Onderzoek, financieringsprogramma Forschung an Fachhochschulen, contractnummers 13FH767IA6 en 13FH242PX6 aan JS. Figuren 1 en 2 zijn gemaakt met BioRender.com.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
1.5 mL reactiebuizenEppendorf
10x PBSgibco70011044
4%–15% Mini-PROTEAN TGX stain-free proteïnegelsBioRad4568085
Antilichamen (bnAbs)Polymun Scientic
Isotype control antilichaaminvitrogen (Thermo Fisher Scientific)02-7102
Chemidoc XRS+ beeldvormingssysteemBioRad1708265
Kippen anti-konijn IgG HRP-gekoppeldLife technologiesA159871:5000 in TBS-T + 2 % (w/v) poedermelk
Dynabeads Protein G Immunoprecipitatie Kitinvitrogen (Thermo Fisher Scientific)10007Dinclusief buffers en wasoplossingen
FreeStyle 293-F celleninvitrogen (Thermo Fisher Scientific)R790-07
FreeStyle 293 Expressie Mediuminvitrogen (Thermo Fisher Scientific)12338026
Gel blottingpapierWhatmanGB005
GlycineCarl Roth0079blotbuffer
MagneetscheidingsrekNew England BiolabsS1509Svoor 12 x 1.5 mL of 6 x 1.5 mL buizen
MethanolCarl Roth4627blotbuffer
Mini-PROTEAN Tetra Cell elektroforesesysteemBioRad
Optima XE-90 ultracentrifugeBeckman Coulter
PageRuler voorgekleurde proteïnladderThermo Scientific26616
Polyvinylideenfluoride (PVDF) spuitfilters, 0.45 µmCarl RothKC89.1
PoedermelkCarl RothT145blokkeringsbuffer
PVDF transfermembraan, 0.45 µmCarl RothT830.1
QuickTiter HIV p24 ELISACell BiolabsVPK-108-H
Konijn polyklonaal tegen HIV1 p55 + p24 + p17abcamab639171:2000 in TBS-T + 2 % (w/v) poedermelk
RotatorHeidolphREAX2
ROTI Load 1 (laemmli buffer)Carl RothK929.14x geconcentreerde reducerende proteïn gel laadbuffer
ROTIPHORESE 10x SDS-PAGECarl Roth3060
NatriumchlorideCarl Roth3957TBS-T buffer
SuperSignal West Pico PLUS chemiluminescent substraatThermo Scientific34579
SW28 rotorBeckman Coulter
ThermomixerCel Mediabasic
Trans-Blot TurboBioRad
Trehalose dihydraatCarl Roth8897.2
TRISCarl Roth5429blotbuffer
TRIS hydrochlorideCarl Roth9090TBS-T buffer
Tween-20Carl Roth9127TBS-T buffer
Ultra Clear centrifugebuizenBeckman Coulter344058

Referenties

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Roldão, A., Mellado, M. C. M., Castilho, L. R., Carrondo, M. J. T., Alves, P. M. Virus-like particles in vaccine development. Expert Review of Vaccines. 9 (10), 1149-1176 (2010).
  2. Noad, R., Roy, P. Virus-like particles as immunogens. Trends in Microbiology. 11 (9), 438-444 (2003).
  3. Qian, C., et al. Recent progress on the versatility of virus-like particles. Vaccines. 8 (1), 139(2020).
  4. Zabel, F., Kündig, T. M., Bachmann, M. F. Virus-induced humoral immunity: On how B cell responses are initiated. Current Opinion in Virology. 3 (3), 357-362 (2013).
  5. Garg, H., Mehmetoglu-Gurbuz, T., Joshi, A. Virus Like Particles (VLP) as multivalent vaccine candidate against Chikungunya, Japanese Encephalitis, Yellow Fever and Zika Virus. Scientific Reports. 10 (1), 4017(2020).
  6. Hodgins, B., Pillet, S., Landry, N., Ward, B. J. A plant-derived VLP influenza vaccine elicits a balanced immune response even in very old mice with co-morbidities. PLoS ONE. 14 (1), 0210009(2019).
  7. Lai, C. C., et al. Process development for pandemic influenza VLP vaccine production using a baculovirus expression system. Journal of Biological Engineering. 13, 78(2019).
  8. Caldeira, J. C., Perrine, M., Pericle, F., Cavallo, F. Virus-like particles as an immunogenic platform for cancer vaccines. Viruses. 12 (5), 488(2020).
  9. Nika, L., et al. An HER2-displaying virus-like particle vaccine protects from challenge with mammary carcinoma cells in a mouse model. Vaccines. 7 (2), 41(2019).
  10. Mohsen, M. O., Zha, L., Cabral-Miranda, G., Bachmann, M. F. Major findings and recent advances in virus-like particle (VLP)-based vaccines. Seminars in Immunology. 34, 123-132 (2017).
  11. Fontana, D., Garay, E., Cevera, L., Kratje, R., Prieto, C., Gòdia, F. Chimeric VLPs based on hiv-1 gag and a fusion rabies glycoprotein induce specific antibodies against rabies and foot-and-mouth disease virus. Vaccines. 9 (3), 251(2021).
  12. Cervera, L., et al. Production of HIV-1-based virus-like particles for vaccination: achievements and limits. Applied Microbiology and Biotechnology. 103 (18), 7367-7384 (2019).
  13. Gonelli, C. A., King, H. A. D., Mackenzie, C., Sonza, S., Center, R. J., Purcell, D. F. J. Immunogenicity of HIV-1-based virus-like particles with increased incorporation and stability of membrane-bound env. Vaccines. 9 (3), 1-36 (2021).
  14. Trkola, A. HIV not as simple as one, two, three. Nature. 568, 321-322 (2019).
  15. Berman, P. W., et al. Protection of chimpanzees from infection by HIV-1 after vaccination with recombinant glycoprotein gp120 but not gp160. Nature. 345 (6276), 622-625 (1990).
  16. Barouch, D. H. Challenges in the development of an HIV-1 vaccine. Nature. 455 (7213), 613-619 (2008).
  17. DeCaprio, J., Kohl, T. O. Immunoprecipitation. Cold Spring Harbor Protocols. 2020 (11), 449-461 (2020).
  18. Barret, B., Wood, P. A., Volwiler, W. Quantitation of gamma globulins in human serum by immunoprecipitation. Journal of Laboratory and Clinical Medicine. 55, 605-615 (1960).
  19. Kaboord, B., Perr, M. Isolation of proteins and protein complexes by immunoprecipitation. Methods in Molecular Biology. 424, Clifton, N.J. 349-364 (2008).
  20. Lee, S. H., Chu, K. B., Kang, H. J., Quan, F. S. Virus-like particles containing multiple antigenic proteins of Toxoplasma gondii induce memory T cell and B cell responses. PLoS ONE. 14 (8), 0220865(2019).
  21. Lee, Y. T., et al. Intranasal vaccination with M2e5x virus-like particles induces humoral and cellular immune responses conferring cross-protection against heterosubtypic influenza viruses. PLoS ONE. 13 (1), 0190868(2018).
  22. Wang, J., et al. Large-scale manufacture of VP2 VLP vaccine against porcine parvovirus in Escherichia coli with high-density fermentation. Applied Microbiology and Biotechnology. 104 (9), 3847-3857 (2020).
  23. Swenson, D. L., et al. Generation of Marburg virus-like particles by co-expression of glycoprotein and matrix protein. FEMS Immunology and Medical Microbiology. 40 (1), 27-31 (2004).
  24. Latham, T., Galarza, J. M. Formation of wild-type and chimeric influenza virus-like particles following simultaneous expression of only four structural proteins. Journal of Virology. 75 (13), 6154-6165 (2001).
  25. Doyle, J., Ray, M., Ouyang, A., Benton, B., Bell, P. A. Abstract 4877: High throughput proteomic applications using protein A/G magnetic beads. Association for Cancer Research (AACR) 102nd Annual Meeting. 20, 4877(2011).
  26. Zhu, P., et al. Electron tomography analysis of envelope glycoprotein trimers on HIV and simian immunodeficiency virus virions. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (26), 15812-15817 (2003).
  27. Lavado-García, J., Jorge, I., Boix-Besora, A., Vázquez, J., Gòdia, F., Cervera, L. Characterization of HIV-1 virus-like particles and determination of Gag stoichiometry for different production platforms. Biotechnology and Bioengineering. 118 (7), 2660-2675 (2021).
  28. Miura, K. An overview of current methods to confirm protein-protein interactions. Protein & Peptide Letters. 25 (8), 728-733 (2018).
  29. Rao, V. S., Srinivas, K., Sujini, G. N., Kumar, G. N. Advances in molecular techniques to study diversity. Plant Biotechnology, Volume 1: Principles, Techniques, and Applications. , 341-365 (2017).
  30. Rosengarten, J. F., Schatz, S., Wolf, T., Barbe, S., Stitz, J. Components of a HIV-1 vaccine mediate virus-like particle (VLP)-formation and display of envelope proteins exposing broadly neutralizing epitopes. Virology. , 41-48 (2022).
  31. JoVE, JoVE. Grundlegende Methoden in der Zell- und Molekularbiologie. Separating Protein with SDS-PAGE. JoVE Science Education Database. , Cambridge, MA. (2021).
  32. Eslami, A., Lujan, J. Western blotting: sample preparation to detection. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (44), e2359(2010).
  33. Sheng, S., Kong, F. Separation of antigens and antibodies by immunoaffinity chromatography. Pharmaceutical Biology. 50 (8), 1038-1044 (2012).
  34. Guzzo, C., et al. Virion incorporation of integrin 47 facilitates HIV-1 infection and intestinal homing. Science Immunology. 2 (11), (2017).
  35. Wei, M., et al. Bacteria expressed hepatitis E virus capsid proteins maintain virion-like epitopes. Vaccine. 32 (24), 2859-2865 (2014).
  36. Jin, J., Park, C., Cho, S. H., Chung, J. The level of decoy epitope in PCV2 vaccine affects the neutralizing activity of sera in the immunized animals. Biochemical and Biophysical Research Communications. 496 (3), 846-851 (2018).
  37. Zhang, X., et al. Lessons learned from successful human vaccines: Delineating key epitopes by dissecting the capsid proteins. Human Vaccines and Immunotherapeutics. 11 (5), 1277-1292 (2015).
  38. DiGiuseppe, S., Bienkowska-Haba, M., Guion, L. G. M., Keiffer, T. R., Sapp, M. Human papillomavirus major capsid protein L1 remains associated with the incoming viral genome throughout the entry process. Journal of Virology. 91 (16), 00537(2017).
  39. Wang, J. W., Roden, R. B. S. L2, the minor capsid protein of papillomavirus. Virology. 445 (1-2), 175-186 (2013).
  40. Binley, J. M., et al. Profiling the specificity of neutralizing antibodies in a large panel of plasmas from patients chronically infected with human immunodeficiency virus type 1 subtypes B and C. Journal of Virology. 82 (23), 11651-11668 (2008).
  41. Thane, K. E., Davis, A. M., Hoffman, A. M. Improved methods for fluorescent labeling and detection of single extracellular vesicles using nanoparticle tracking analysis. Scientific Reports. 9 (1), 12295(2019).
  42. Mulder, A. M., et al. Toolbox for non-intrusive structural and functional analysis of recombinant VLP based vaccines: A case study with hepatitis B vaccine. PLoS ONE. 7 (4), 0033235(2012).

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

VLP Capture AssayVirus Like ParticlesNeutralization EpitopesBroadly Neutralizing AntibodiesAntigen DisplayMagnetic BeadsEnvelope GlycoproteinsSDS PAGEWestern BlotImmunoprecipitation

Gerelateerde artikelen