Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Een eenvoudig en goedkoop loopwielmodel voor progressieve weerstandstraining bij muizen

4.9K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/63933

⸱

28 april 2022

 , 
1Integrative Muscle Physiology Laboratory, Appalachian State University, 2Department of Health and Exercise Science, Appalachian State University, 3Department of Biology, Appalachian State University

In dit artikel

Samenvatting

Deze procedure beschrijft een vertaalbaar progressief belast loopwielweerstandstrainingsmodel bij muizen. Het belangrijkste voordeel van dit weerstandstrainingsmodel is dat het volledig vrijwillig is, waardoor stress voor de dieren en de belasting voor de onderzoeker wordt verminderd.

Samenvatting

Eerder ontwikkelde op knaagdierresistentie gebaseerde trainingsmodellen, waaronder synergetische ablatie, elektrische stimulatie, klimmen op een gewogen ladder en meest recent, gewogen sleetrekken, zijn zeer effectief in het bieden van een hypertrofische stimulus om skeletspieraanpassingen te induceren. Hoewel deze modellen van onschatbare waarde zijn gebleken voor skeletspieronderzoek, zijn ze invasief of onvrijwillig en arbeidsintensief. Gelukkig lopen veel knaagdierstammen vrijwillig lange afstanden wanneer ze toegang krijgen tot een loopwiel. Loaded wheel running (LWR) -modellen bij knaagdieren zijn in staat om aanpassingen te induceren die vaak worden waargenomen met weerstandstraining bij mensen, zoals verhoogde spiermassa en vezelhypertrofie, evenals stimulatie van spiereiwitsynthese. De toevoeging van matige wielbelasting kan muizen echter niet afschrikken om grote afstanden te lopen, wat meer een weerspiegeling is van een uithoudingsvermogen / weerstandstrainingsmodel, of de muizen stoppen bijna volledig met rennen vanwege de methode van belastingstoepassing. Daarom is een nieuw high-load wielloopmodel (HLWR) ontwikkeld voor muizen waarbij externe weerstand wordt toegepast en geleidelijk wordt verhoogd, waardoor muizen kunnen blijven rennen met veel hogere belastingen dan eerder werd gebruikt. Voorlopige resultaten van dit nieuwe HLWR-model suggereren dat het voldoende stimulans biedt om hypertrofische aanpassingen te induceren gedurende het trainingsprotocol van 9 weken. Hierin worden de specifieke procedures beschreven om dit eenvoudige maar goedkope progressieve weerstandsgebaseerde trainingsmodel bij muizen uit te voeren.

Inleiding

Skeletspiermassa omvat ongeveer 40% van de lichaamsmassa bij volwassen mensen; daarom is het behoud van skeletspiermassa gedurende het hele leven van cruciaal belang. Skeletspiermassa speelt een integrale rol bij het energiemetabolisme, het handhaven van de kerntemperatuur van het lichaam en glucosehomeostase1. Het onderhoud van de skeletspieren is een balans tussen eiwitsynthese en eiwitafbraak, maar er zijn nog steeds veel hiaten in het begrip van de ingewikkelde moleculaire mechanismen die deze processen aandrijven. Om de moleculaire mechanismen te bestuderen die het onderhoud en de groei van spiermassa reguleren, maken de onderzoeksmodellen van menselijke proefpersonen vaak gebruik van op weerstandsoefeningen gebaseerde interventies, omdat mechanische stimuli een integrale rol spelen bij de regulatie van skeletspiermassa. Hoewel het onderzoek van menselijke proefpersonen succesvol is geweest, beperkt de tijd die nodig is om aanpassingen en ethische zorgen met betrekking tot invasieve procedures (d.w.z. spierbiopten) te vertonen, de hoeveelheid gegevens die kan worden verkregen. Hoewel de aanpassingen aan weerstandsoefeningen vrij alomtegenwoordig zijn bij zoogdiersoorten, bieden diermodellen het voordeel dat ze het dieet en het trainingsregime nauwkeurig kunnen beheersen, terwijl ze ook de verzameling van hele weefsels door het hele lichaam mogelijk maken, zoals de hersenen, lever, hart en skeletspieren.

Veel weerstandstrainingsmodellen zijn ontwikkeld voor gebruik bij knaagdieren: synergetische ablatie2, elektrische stimulatie 3,4, gewogen ladderklimmen5,verzwaarde slee trekken 6 en canvassed squatting7. Het is duidelijk dat al deze modellen, indien correct uitgevoerd, effectieve modellen kunnen zijn om skeletspieraanpassingen, zoals hypertrofie, te induceren. De nadelen van deze modellen zijn echter dat ze meestal onvrijwillig zijn, geen deel uitmaken van normaal knaagdiergedrag, tijd- / arbeidsintensief en invasief.

Gelukkig lopen veel muizen- en rattensoorten vrijwillig lange afstanden wanneer ze toegang krijgen tot een loopwiel. Bovendien vertrouwen free-running wheel (FWR) trainingsmodellen niet op uitgebreide conditionering, positieve / negatieve versterking of anesthesie om beweging of spieractiviteit te forceren 8,9. Hardloopactiviteit is sterk afhankelijk van de stam van de muis, het geslacht, de leeftijd en een individuele basis. Lightfoot et al. vergeleken de loopactiviteit van 15 verschillende muizenstammen en ontdekten dat de dagelijkse hardloopafstand varieert van 2,93 km tot 7,93 km, waarbij C57BL / 6-muizen het verst rennen, ongeacht geslacht10. FWR wordt algemeen aanvaard als een uitstekend model voor het induceren van uithoudingsvermogen aanpassingen in skelet- en hartspieren 11,12,13,14,15,16; het gebruik van wiellopen in weerstandstrainingsmodellen wordt echter minder vaak onderzocht.

Zoals men zou kunnen vermoeden, kan het hypertrofische effect van wiellopen worden versterkt door weerstand toe te voegen aan het loopwiel, genaamd loaded wheel running (LWR), waardoor grotere inspanningen nodig zijn om op het wiel te lopen om weerstandstraining beter na te bootsen. Met behulp van verschillende methoden voor het aanbrengen van belasting hebben eerdere studies aangetoond dat het LWR-model met ratten en muizen routinematig een toename van de spiermassa van ledematen van 5% -30% vertoonde in een kwestie van 6-8 weken 17,18,19,20,21. Bovendien toonden D'hulst et al. aan dat een enkele aanval van LWR leidde tot een 50% grotere toename van de activering van de signaalroute van eiwitsynthese in vergelijking met FWR22. Wielweerstand is meestal toegepast door een op wrijving gebaseerde, constante belastingsmethode, waarbij een magnetische rem of spanbout wordt gebruikt om wielweerstand 12,19,23,24 toe te passen. Een kanttekening bij de op wrijving gebaseerde, constante belastingsmethode is dat wanneer matige tot hoge weerstand wordt toegepast, het dier de hoge weerstand niet kan overwinnen om beweging van het wiel te initiëren, waardoor de training effectief wordt stopgezet. Het belangrijkste is dat veel van de kooi- en wielsystemen die worden gebruikt voor knaagdierloopwielmodellen vrij duur zijn en gespecialiseerde apparatuur vereisen.

Onlangs ontwikkelden Dungan et al. een progressief gewogen wiellopend (PoWeR) model, dat asymmetrisch een belasting op het wiel uitoefent via externe massa's die aan een enkele kant van het wiel zijn gehecht. De onevenwichtige wielbelasting en variabele weerstand van het PoWeR-model worden verondersteld om voortdurende loopactiviteit aan te moedigen en kortere uitbarstingen van geladen wiellopen bij muizen te bevorderen, waarbij de sets en herhalingen die worden uitgevoerd met weerstandstrainingnauwer worden nagebootst 17. Ondanks dat de gemiddelde hardloopafstand 10-12 km per dag was, leverde het PoWeR-model een toename van respectievelijk 16% en 17% op in plantaris spier natte massa en vezeldoorsnedegebied (CSA). Ondanks veel praktische voordelen heeft het PoWeR-model van LWR enkele beperkingen. Zoals erkend door de auteurs, is het PoWeR-model een "hybride" stimulus met een hoog volume die een weerspiegeling is van een gemengd duur/ weerstandsoefeningsmodel (d.w.z. gelijktijdige training bij mensen), in tegenstelling tot een strikter op weerstandsoefeningen gebaseerd model, dat mogelijk een interferentie-effect introduceert en bijdraagt aan de minder uitgesproken hypertrofie of verschillende mechanismen waardoor hypertrofie wordt geïnduceerd25 . Ervoor zorgen dat een gelijktijdig trainingsfenomeen niet optreedt in wat bedoeld is als een weerstandstrainingsmodel, is absoluut noodzakelijk. Daarom werd het PoWeR-model aangepast om een LWR-model te ontwikkelen dat hogere belastingen gebruikt dan eerder werd gebruikt om meer op een weerstandstrainingsmodel te lijken. Hierin worden details gegeven voor een eenvoudig en goedkoop 9 weken durende progressieve weerstandstraining LWR-model in C57BL / 6-muizen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

Deze studie werd goedgekeurd door de Institutional Animal Care and Use Committee van de Appalachian State University (# 22-05).

1. Dieren

  1. Koop C57BL/6-muizen uit de eigen muizenkolonie.
    OPMERKING: Mannelijke muizen van 5-8 maanden oud aan het begin van het onderzoek werden gebruikt. Dagelijkse hardloopactiviteit piekt en plateaus rond 9-10 weken oud26. Eerdere studies hebben aangetoond dat oude muizen (22-24 maanden) ook belaste wielloop27 zullen uitvoeren.
  2. Huisvest de muizen individueel in een standaard knaagdierkooi met een draaddeksel en houd de kooi in een gecontroleerde omgeving (20-24 °C met een licht-/donkercyclus van 12:12 uur).
  3. Zorg voor standaard knaagdier chow en water ad libitum.

2. Loopwielapparatuur

  1. Hardloopwiel setup:
    OPMERKING: Loopwielen worden op dezelfde manier geassembleerd/ingesteld voor alle loopprotocollen, met uitzondering van het toevoegen van 1 g of 2,5 g belastingsmagneten.
    1. Lijm een enkele sensormagneet van 1 g op de buitenste middelste omtrek van het loopwiel (figuur 1).
    2. Gebruik dit wiel met een enkele sensormagneet van 1 g voor alleen de eerste week van de acclimatisatie van het wiel.
    3. Loaded wheel running (LWR; identiek laadprotocol als PoWeR17): Volg de stappen 2.1.4-2.1.6.
    4. Week 2 voor LWR vereist 2 g belasting (zie tabel 1).
    5. Lijm twee magneten van 1 g naast elkaar op de buitenomtrek van het wiel (figuur 2A).
      OPMERKING: Hier is het handig om tape te gebruiken om de magneten op hun plaats te houden totdat de lijm stevig droogt; anders kunnen ze worden aangetrokken door de sensormagneet en losraken.
    6. Breng extra belasting aan in week 3, 4 en 6 door nog een magneet van 1 g op een van de reeds aanwezige magneten te plaatsen.
      OPMERKING: Er is geen lijm nodig omdat de magneten stevig aan elkaar hechten. Bij 6 g belasting in week 6 worden de magneten bijvoorbeeld elk driehoog gestapeld (figuur 2B).
    7. Hoogbelaste wielloop (HLWR): Volg de stappen 2.1.8-2.1.11.
      OPMERKING: Het HLWR-protocol vereist drie sets wielen. Door verschillende sets wielen samen te stellen, kan de onderzoeker wielopstellingen voor andere muizen hergebruiken zodra het wiel grondig is gereinigd en ontsmet (aantallen van elke set moeten door de onderzoeker worden bepaald op basis van cohort / groepsgrootte).
    8. De eerste set wielen (alleen vereist voor week 2) heeft een enkele magneet van 2,5 g; lijm (zie de OPMERKING hieronder stap 2.1.5) één magneet van 2,5 g op de buitenomtrek van het wiel (figuur 3A).
    9. De tweede set wielen (alleen vereist voor week 3) heeft twee magneten van 2,5 g; lijm (zie de OPMERKING hieronder stap 2.1.5) twee magneten van 2,5 g naast elkaar op de buitenomtrek van het wiel (figuur 3B).
    10. De derde set wielen (vereist voor week 4 en daarna) heeft drie magneten van 2,5 g naast elkaar; lijm (zie de OPMERKING hieronder stap 2.1.5) drie magneten van 2,5 g naast elkaar op de buitenomtrek van het wiel (figuur 3C).
    11. Breng extra belasting aan gedurende week 6 en 8 door nog een magneet van 2,5 g op een van de reeds aanwezige magneten te plaatsen (figuren 3D, E).

figure-protocol-1
Figuur 1: Basis loopwiel met enkele 1 g sensormagneet gelijmd op de middelste buitenomtrek van het wiel. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

figure-protocol-2
Figuur 2: Belast loopwiel (LWR) met sensormagneet en 1 g laadmagneten. (A) Voorbeeld van 2 g belasting, twee magneten van 1 g die naast elkaar aan de buitenrand van het wiel zijn gelijmd; (B) voorbeeld van 6 g belasting, twee magneten van 1 g die naast elkaar op de buitenrand van het wiel zijn gelijmd met een extra belasting van 4 g. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

figure-protocol-3
Figuur 3: Hoogbelast loopwiel (HLWR) met sensormagneet en 2,5 g laadmagneten. (A) voorbeeld van 2,5 g belasting, één magneet van 2,5 g gelijmd aan de buitenrand van het wiel; B) voorbeeld van 5 g belasting, twee magneten van 2,5 g die naast elkaar aan de buitenrand van het wiel zijn gelijmd; C) voorbeeld van 7,5 g belasting, drie magneten van 2,5 g die naast elkaar op de buitenrand van het wiel zijn gelijmd; D) voorbeeld van 10 g belasting, drie magneten van 2,5 g die naast elkaar aan de buitenrand van het wiel zijn gelijmd, met een extra belasting van 2,5 g; (E) voorbeeld van 12,5 g belasting, drie magneten van 2,5 g die naast elkaar aan de buitenrand van het wiel zijn gelijmd, met nog eens 5 g belasting. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

3. Kooi montage

  1. Monteer loopwielen met behulp van een kooi uitgerust met een digitale fietscomputer om de tijdoefening (h) en de afgelegde afstand (km) te controleren. De gemiddelde snelheid (km/h) wordt rekenkundig afgeleid.
    1. Zorg ervoor dat er een nieuwe batterij in de fietscomputer wordt geplaatst voordat deze wordt gemonteerd.
    2. Stel de wielmaat in tijdens de eerste fietscomputerprogrammering (zie de instructies van de fabrikant); bereken de omwentelingsafstand door de buitenomtrek van het loopwiel te meten (bijv. 3.580 mm voor het hierin gebruikte wieltype).
  2. Plaats de fietscomputersensor op een vast oppervlak aan de buitenkant van het deksel van de kooi, direct boven waar de sensormagneet van het wiel zich bevindt. Zorg ervoor dat alle computer- en sensorcomponenten zich binnen een vaste barrière buiten de kooi bevinden om te voorkomen dat muizen op componenten kauwen.
    1. Gebruik het deksel van een lege pipetpuntendoos met een kleine rechthoek uitgesneden voor de magnetische fietssensor om te verblijven, en het grootste deel van de doos (met het tiprekrooster verwijderd) om de fietscomputer en de draad vast te houden (figuur 4A).
    2. Boor twee gaten door de hoeken van het vaste oppervlak om de magnetische fietssensor en de loopwielstandaard aan de buitenkant van de kooi op hun plaats te houden (figuur 4A).
  3. Steek de basis van het loopwiel ondersteboven door de openingen in het deksel van de kooi, maar bovenop het vaste oppervlak zoals beschreven in stap 3.2 (figuur 4B).
    1. Bevestig de wielbasis en de computersensor aan de bovenkant van de kooi met hardware (figuur 4C, D).
  4. Zorg ervoor dat de sensormagneet en de computersensor niet meer dan 1 cm uit elkaar staan om een goede registratie van wielbewegingen mogelijk te maken (de meeste standaard fietscomputersensoren zijn bidirectioneel en registreren positieve wielbewegingen in beide draairichtingen).
  5. Bevestig het juiste loopwiel (zoals hierboven beschreven) aan de wielbasis vanaf de binnenkant van het deksel van de kooi en plaats het deksel stevig op de kooi (figuur 4E, F).
  6. Met het wiel hangend aan het deksel van de kooi, zorg voor ten minste 2,5 cm speling van de kooivloer. Plaats een minimale hoeveelheid strooiselmateriaal in de kooi om ervoor te zorgen dat het wiel vrij ronddraait, maar niet wordt belemmerd door de opeenhoping van beddengoed.
  7. Leg tijdens het experimenteren gegevens van de fietscomputer vast met een consistent intervalschema om nauwkeurige activiteitsmonitoring te garanderen.
    1. Erken dat muizen een nachtactieve soort zijn; daarom zal het grootste deel van hun natuurlijke kooiactiviteit (inclusief wiellopen) worden uitgevoerd tijdens de donkere uren van de lichtcyclus.

figure-protocol-4
Figuur 4: Hardloopwielkooi. (A) Fietscomputer en magnetische sensor geplaatst in een vast oppervlak/bakje; B) omgekeerde wielbasis bovenop een vast oppervlak/lade en sensor (bovenaanzicht; let op de twee gaten in het sensoroppervlak/de sensorlade voor het bevestigen van de basis aan het deksel van de kooi met hardware), (C) omgekeerde wielbasis met hardware gemonteerd (onderste weergave); D) omgekeerde wielbasis met hardware gemonteerd (bovenaanzicht); (E) volledige kooiassemblage (bovenaanzicht); en (F) volledige kooiassemblage (zijaanzicht). Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

4. Trainingstraining laadprotocollen

  1. Huisvest individueel sedentaire (SED) muizen gedurende 9 weken in een kooi met een vergrendeld loopwiel om rennen te voorkomen.
    OPMERKING: Tabel 1 geeft het laadschema voor de LWR (PoWeR) en HLWR-protocollen die in het experimentele ontwerp worden gebruikt.
  2. Verminder de belasting voor de LWR- en HLWR-groepen, indien nodig, om ervoor te zorgen dat muizen gedurende het hele protocol van 9 weken blijven oefenen.

Week
123456789
LWR (n = 4)Belasting (g)0.02.03.04.05.05.06.06.06.0
%BM--8%11%15%19%19%23%23%23%
HLWR (n = 7)Belasting (g)0.02.55.07.57.510.010.012.512.5
%BM--10%19%28%28%38%38%48%48%

Tabel 1. Protocollen voor belaste wielloop

5. In situ spierfunctietesten, weefseloogst en weefselanalyse

  1. Na de trainingsinterventie van 9 weken verdooft u muizen met behulp van geïnhaleerd isofluraan (4% inductie; 2% onderhoud) met aanvullende zuurstof en zorgt u voor een goede anesthetische vliegtuigbewaking gedurende de hele procedure.
  2. Voer een in situ spierfunctietest uit op het gastrocnemius,plantaris, soleus (GPS) complex om isometrische spierkracht te testen28. Stel een kracht-frequentiecurve vast door de heupzenuw direct te stimuleren met 27 G elektrodenaalden bij 11 oplopende frequenties tussen 1-300 Hz, waarbij tetanische contracties optreden rond 100-150 hz29.
  3. Onmiddellijk na de spierfunctietest, euthanaseer de muizen via cervicale dislocatie en bevestig euthanasie door het hart te verwijderen. Snijd de plantaris- en soleusspieren zorgvuldig weg en noteer de natte weefselmassa.
  4. Bekleed elk spiermonster in een insluitmedium (OCT) en monteer het op een kurk. Vries het in vloeibare stikstofgekoelde isopentaan en bewaar het bij -80 °C totdat verdere immunohistochemische (IHC) analyse wordt uitgevoerd op delen van spierweefsel (10 μm dik).
  5. Analyseer spiervezel CSA met behulp van immunofluorescentie voor laminine. Meet vezel CSA met behulp van een automatisch beeldkwantificeringsplatform30.

6. Statistische analyse

  1. Druk alle gegevens uit als gemiddelde ± SD.
  2. Voer statistische analyses uit met behulp van statistische analysesoftware met een significantie ingesteld op p ≤ 0,05.
  3. Vergelijk wielloop- en trainingsvolumegegevens met herhaalde metingen in twee richtingen ANOVA.
  4. Vergelijk lichaamsmassa, weefselmassa, CSA en spierfunctie met een eenrichtings-ANOVA. Als significante F-ratio's worden gevonden, vergelijk dan verschillen binnen de groep met behulp van Fisher LSD post hoc analyses.
  5. Bereken effectgrootten en interpreteer ze vervolgens als 0,01, 0,06 en 0,14 voor respectievelijk kleine, middelgrote en grote effectgrootten.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

In deze studie werden 24 C57BL/6 muizen (6,3 ± 0,7 maanden aan het begin van deze studie) willekeurig toegewezen aan een van de drie behandelingsgroepen: sedentair (SED), geladen wiellopen (LWR; hetzelfde als PoWeR beschreven door Dungan et al.17), of hoge LWR (HLWR), en voltooiden vervolgens hun respectieve 9 weken protocol. Na de acclimatisatieweek (week 1) waren er geen groeps- of groep x tijdsverschillen in loopafstand of trainingsvolume (figuur 5).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Bestaande weerstandsoefeningsmodellen bij knaagdieren zijn van onschatbare waarde gebleken voor skeletspieronderzoek; veel van deze modellen zijn echter invasief, onvrijwillig en / of tijd- en arbeidsintensief. LWR is een uitstekend model dat niet alleen vergelijkbare spieraanpassingen induceert als die waargenomen in andere goed geaccepteerde weerstandstrainingsmodellen, maar ook een chronische, stressarme trainingsstimulans voor het dier biedt met minimale tijd / arbeidsinzet door de onderzoeker. Bovendien, omdat LWR-m...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben geen belangenconflicten te onthullen.

Dankbetuigingen

We willen de Graduate Student Government Association, Office of Student Research en het Department of Health and Exercise Science aan de Appalachian State University bedanken voor het verstrekken van financiering om dit project te ondersteunen. Daarnaast willen we Monique Eckerd en Therin Williams-Frey bedanken voor het toezicht op de dagelijkse activiteiten van de dieronderzoeksfaciliteit.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
1 g disc neodymium magnetenApplied MagnetsND018-6Gebaten voor alle sensor magneten en 1 g incrementen van wielbelasting
2.5 g disc neodymium magnetenApplied MagnetsND022Gebaten voor 2.5 g incrementen van wielbelasting
8-32 x 1" roestvrijstalen schroevenAmazonhttps://www.amazon.com/gp/product/B07939RS23/ref=ppx_yo_dt_b_search_asin_title?ie=UTF8&psc=1
8-32 Wing NutsAmazonhttps://www.amazon.com/gp/product/B07YYWW2SB/ref=ppx_yo_dt_b_search_asin_title?ie=UTF8&th=1
10 µL pipettentip doos (leeg)Thermo Scientific2140We gebruikten lege ART Pipettentipdozen, maar elke vergelijkbare gesorteerde dozen/bakken zouden voldoende zijn
Extreme Liquid LijmLoctite
Laminin primaire antistofNovus BiologicalsNB300-144AF647primaire antistof geconjugeerd met AF657; 1:200 in PBS met 10% normaal geitenserum
Lithium 3 V batterijn/aCR2032
M10 (3/16" x 1 1/4") roestvrijstalen fender ringenAmazonhttps://www.amazon.com/gp/product/B00OHUHEU8/ref=ppx_yo_dt_b_search_asin_title?ie=UTF8&th=1
MyoVision: Geautomatiseerd beeldkwantificeringsplatform Wen et al. (2017)v1.0https://www.uky.edu/chs/center-for-muscle-biology/myovision
Polycarbonaat knaagdierkooi (430 mm L x 290 mm B x 201 mm H), met smalle breedte roestvrijstalen bedraad barsluitingOrchid ScientificPolycarbonaat Rat Koei Type IIhttps://orchidscientific.com/product/rat-cage/ - 1519974600758-c29bc1c5-6dfa
Sigma Sport 509 FietsencomputerSigma SportHoeft niet specifiek dit model te zijn, maar moet afstands- en tijdbewakingsmogelijkheden hebben
Silent Spinner Loopwiel (mini 11.4 cm)KayteeSKU# 100079369https://www.kaytee.com/all-products/small-animal/silent-spinner-wheel

Referenties

  1. Frontera, W. R., Ochala, J. Skeletal muscle: A brief review of structure and function. Calcified Tissue International. 96 (3), 183-195 (2015).
  2. Goldberg, A. L. Protein synthesis during work-induced growth of skeletal muscle. Journal of Cell Biology. 36 (3), 653-658 (1968).
  3. Baar, K., Esser, K. Phosphorylation of p70S6k correlates with increased skeletal muscle mass following resistance exercise. American Journal of Physiology-Cell Physiology. 276 (1), 120-127 (1999).
  4. Wong, T. S., Booth, F. W. Skeletal muscle enlargement with weight-lifting exercise by rats. Journal of Applied Physiology. 65 (2), 950-954 (1988).
  5. Hornberger Jr, T. A., Farrar, R. P. Physiological hypertrophy of the FHL muscle following 8 weeks of progressive resistance exercise in the rat. Canadian Journal of Applied Physiology. 29 (1), 16-31 (2004).
  6. Zhu, W. G., et al. Weight pulling: A novel mouse model of human progressive resistance exercise. Cells. 10 (9), 2459(2021).
  7. Tamaki, T., Uchiyama, S., Nakano, S. A weight-lifting exercise model for inducing hypertrophy in the hindlimb muscles of rats. Medicine and Science in Sports and Exercise. 24 (8), 881-886 (1992).
  8. De Bono, J. P., Adlam, D., Paterson, D. J., Channon, K. M. Novel quantitative phenotypes of exercise training in mouse models. American Journal of Physiology-Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 290 (4), 926-934 (2006).
  9. Goh, J., Ladiges, W. Voluntary wheel running in mice. Current Protocols in Mouse Biology. 5 (4), 283-290 (2015).
  10. Lightfoot, J. T., Turner, M. J., Daves, M., Vordermark, A., Kleeberger, S. R. Genetic influence on daily wheel running activity level. Physiological Genomics. 19 (3), 270-276 (2004).
  11. Allen, D. L., et al. Cardiac and skeletal muscle adaptations to voluntary wheel running in the mouse. Journal of Applied Physiology. 90 (5), 1900-1908 (2001).
  12. Ishihara, A., et al. Effects of running exercise with increasing loads on tibialis anterior muscle fibres in mice. Experimental Physiology. 87 (2), 113-116 (2002).
  13. Kurosaka, M., et al. Effects of voluntary wheel running on satellite cells in the rat plantaris muscle. Journal of Sports Science and Medicine. 8 (1), 51-57 (2009).
  14. Lambert, M. I., Noakes, T. D. Spontaneous running increases VO2max and running performance in rats. Journal of Applied Physiology. 68 (1), 400-403 (1990).
  15. Rodnick, K. J., Reaven, G. M., Haskell, W. L., Sims, C. R., Mondon, C. E. Variations in running activity and enzymatic adaptations in voluntary running rats. Journal of Applied Physiology. 66 (3), 1250-1257 (1989).
  16. Sexton, W. L. Vascular adaptations in rat hindlimb skeletal muscle after voluntary running-wheel exercise. Journal of Applied Physiology. 79 (1), 287-296 (1995).
  17. Dungan, C. M., et al. Elevated myonuclear density during skeletal muscle hypertrophy in response to training is reversed during detraining. American Journal of Physiology-Cell Physiology. 316 (5), 649-654 (2019).
  18. Ishihara, A., Roy, R. R., Ohira, Y., Ibata, Y., Edgerton, V. R. Hypertrophy of rat plantaris muscle fibers after voluntary running with increasing loads. Journal of Applied Physiology. 84 (6), 2183-2189 (1998).
  19. Konhilas, J. P., et al. Loaded wheel running and muscle adaptation in the mouse. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 289 (1), 455-465 (2005).
  20. Legerlotz, K., Elliott, B., Guillemin, B., Smith, H. K. Voluntary resistance running wheel activity pattern and skeletal muscle growth in rats: Wheel running activity pattern and muscle growth. Experimental Physiology. 93 (6), 754-762 (2008).
  21. Mobley, C. B., et al. Progressive resistance-loaded voluntary wheel running increases hypertrophy and differentially affects muscle protein synthesis, ribosome biogenesis, and proteolytic markers in rat muscle. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition. 102 (1), 317-329 (2018).
  22. D'Hulst, G., Palmer, A. S., Masschelein, E., Bar-Nur, O., De Bock, K. Voluntary resistance running as a model to induce mTOR activation in mouse skeletal muscle. Frontiers in Physiology. 10, 1271(2019).
  23. Soffe, Z., Radley-Crabb, H. G., McMahon, C., Grounds, M. D., Shavlakadze, T. Effects of loaded voluntary wheel exercise on performance and muscle hypertrophy in young and old male C57Bl/6J mice: Exercise and muscle hypertrophy in old mice. Scandinavian Journal of Medicine and Science in Sports. 26 (2), 172-188 (2016).
  24. White, Z., et al. Voluntary resistance wheel exercise from mid-life prevents sarcopenia and increases markers of mitochondrial function and autophagy in muscles of old male and female C57BL/6J mice. Skeletal Muscle. 6 (1), 45(2016).
  25. Murach, K. A., McCarthy, J. J., Peterson, C. A., Dungan, C. M. Making mice mighty: Recent advances in translational models of load-induced muscle hypertrophy. Journal of Applied Physiology. 129 (3), 516-521 (2020).
  26. Swallow, J. G., Garland, T., Carter, P. A., Zhan, W. -Z., Sieck, G. C. Effects of voluntary activity and genetic selection on aerobic capacity in house mice (Mus domesticus). Journal of Applied Physiology. 84 (1), 69-76 (1998).
  27. Murach, K. A., et al. Late-life exercise mitigates skeletal muscle epigenetic aging. Aging Cell. 21 (1), 13527(2022).
  28. Mackay, A. D., Marchant, E. D., Louw, M., Thomson, D. M., Hancock, C. R. Exercise, but not metformin prevents loss of muscle function due to doxorubicin in mice using an in situ method. International Journal of Molecular Sciences. 22 (17), 9163(2021).
  29. Godwin, J. S., Hodgman, C. F., Needle, A. R., Zwetsloot, K. A., Andrew, R. Whole-body heat shock accelerates recovery from impact- induced skeletal muscle damage in mice. Conditioning Medicine. 2 (4), 184-191 (2020).
  30. Wen, Y., et al. MyoVision: Software for automated high-content analysis of skeletal muscle immunohistochemistry. Journal of Applied Physiology. 124 (1), 40-51 (2018).
  31. Manzanares, G., Brito-da-Silva, G., Gandra, P. G. Voluntary wheel running: Patterns and physiological effects in mice. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. 52 (1), 7830(2019).
  32. Bartling, B., et al. Sex-related differences in the wheel-running activity of mice decline with increasing age. Experimental Gerontology. 87, 139-147 (2017).
  33. Zwetsloot, K. A., Westerkamp, L. M., Holmes, B. F., Gavin, T. P. AMPK regulates basal skeletal muscle capillarization and VEGF expression, but is not necessary for the angiogenic response to exercise: AMPK and the skeletal muscle angiogenic response to exercise. The Journal of Physiology. 586 (24), 6021-6035 (2008).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Trefwoorden

Krachttraining bij muizenbelaste wielrenloopwielrenloop met hoge belastingspierhypertrofievrijwillige lichaamsbeweging bij muizenadaptatie van skeletspierenmeting van spiermassaexercise protocol voor muizenspierfunctietest
Een eenvoudig en goedkoop loopwielmodel voor progressieve weerstandstraining bij muizen
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleid

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.