Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Een gevoelige visuele methode voor de detectie van waterstofsulfide producerende bacteriën

4.5K weergaven

DOI:

10.3791/64201

27 juni 2022

In dit artikel

Samenvatting

Hier presenteren we een protocol om waterstofsulfide producerende bacteriën te detecteren met een aangepast protocol dat wordt gebruikt voor bismutsulfide (BS) precipitatie. De belangrijkste voordelen van deze methode zijn dat deze gemakkelijk te evalueren is en geen gespecialiseerde apparatuur vereist.

Samenvatting

Waterstofsulfide (H2S) is een giftig gas geproduceerd door bacteriën in de proteolyse van zwavelhoudende aminozuren en eiwitten dat een belangrijke rol speelt in de menselijke gezondheid. De H2S-productietest is een van de belangrijke bacteriële biochemische identificatietests. De traditionele methoden zijn niet alleen vervelend en tijdrovend, maar ook vatbaar voor remming van bacteriegroei als gevolg van het toxische effect van zware metaalzouten in zwavelhoudend medium, wat vaak tot negatieve resultaten leidt. Hier hebben we een eenvoudige en gevoelige methode ontwikkeld om H2S in bacteriën te detecteren. Deze methode is een aangepaste versie van bismutsulfide (BS) precipitatie die 96-well transparante microtiterplaten gebruikt. Bacteriecultuur werd gecombineerd met bismutoplossing die L-cysteïne bevatte en gedurende 20 minuten gekweekt, aan het einde waarvan een zwart neerslag werd waargenomen. De visuele detectiegrens voor H 2 S was0,2mM. Op basis van de visuele kleurverandering kan de eenvoudige, hoge doorvoer en snelle detectie van H2S-producerende bacteriën worden bereikt. Samenvattend kan deze methode worden gebruikt om H2S-productie in bacteriën te identificeren.

Inleiding

Waterstofsulfide producerende bacteriën kunnen zwavelhoudende aminozuren en eiwitten gebruiken om waterstofsulfide (H2S) te produceren. De productie van H2S komt meestal voor in gramnegatieve Enterobacteriaceae-familiebacteriën en ook in leden van Citrobacter spp., Proteus spp., Edwardsiella spp. en Shewanella spp.1. Deze bacteriën hebben het vermogen om sulfaat te reduceren tot waterstofsulfide (H2S) om energie te verkrijgen. Waterstofsulfide is betrokken bij de ontwikkeling van bacteriële resistentie tegen geneesmiddelen. H2 S beschermt bacteriën tegen de toxiciteit van reactieve zuurstofsoorten (ROS), waardoor het antibacteriële effect van antibiotica wordt tegengewerkt 2,3. H2S heeft ook een belangrijk fysiologisch effect bij het handhaven van homeostase. Op suprafysiologische niveaus is aangetoond dat H2S zeer giftig is voor het lichaam. In het menselijk lichaam heeft H2S een andere rol als een gassignaleringsmolecuul dat betrokken is bij een verscheidenheid aan fysiologische en pathologische processen. H2S kan de systolische functie van het hart reguleren en speelt een belangrijke fysiologische rol bij het ontspannen van bloedvaten, het remmen van vasculaire remodellering en het beschermen van het myocardium 4,5. H2S speelt ook een belangrijke rol bij het reguleren van het zenuwstelsel en het spijsverteringskanaal 6,7. Het is gebleken dat bacteriën bij blootstelling aan bacteriedodende antibiotica dodelijke reactieve zuurstofsoorten (ROS) produceren die leiden tot celdood 8,9,10,11.

Als een veel voorkomende biochemische test in microbiologische laboratoriumcursussen, is de waterstofsulfidetest een belangrijk experiment in de identificatie van bacteriën, met name bacteriën van de familie Enterobacteriaceae. Op dit moment wordt de waterstofsulfidetest meestal uitgevoerd op een groot aantal zwavelhoudende aminozuren en loodacetaatmedium dat is ingeënt met de te testen bacteriën. Na een incubatieperiode (2-3 dagen) worden de resultaten beoordeeld door te observeren of het kweekmedium of de papierstrook voor loodacetaat zwart is geworden vanwege de productie van loodacetaat11. Deze traditionele methoden zijn echter niet alleen vervelend en tijdrovend, maar ook vatbaar voor remming van bacteriegroei als gevolg van het toxische effect van zware metaalzouten in zwavelhoudend medium, wat vaak tot negatieve resultaten leidt. Er is een op bismut gebaseerde methode vastgesteld voor de detectie van H2S12,13. H2S kan reageren met bismut en vormt zwarte bismutsulfideprecipitatie. Om een hervorming voor deze biochemische test uit te voeren, moet een eenvoudige en snelle methode zonder bijwerkingen op de bacteriegroei worden vastgesteld. Hier hebben we een eenvoudige methode opgezet voor de detectie van waterstofsulfideproducerende bacteriën gekweekt in een in vitro omgeving met bismutsulfide als substraat in een 96-well microtiterplaatformaat.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

1. Bacteriestammen

OPMERKING: Voor dit experiment werden negen standaardstammen gebruikt, waaronder Salmonella paratyphi A, Salmonella paratyphi B, Fusobacterium nucleatum, Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa PAO1, Aeromonas hydrophila YJ-1, Proteus vuigaris en Klebsiella pneumoniae (tabel 1). Salmonella paratyphi A, Fusobacterium nucleatum, Pseudomonas aeruginosa en Proteus vuigaris kunnen H2S produceren, zoals beschreven in eerdere literatuur1.

  1. Bereiding van bacteriecultuur
    1. Breng één bacteriekolonie Salmonella paratyphi A, Salmonella paratyphi B, Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa PAO1, Aeromonas hydrophila YJ-1 en Klebsiella pneumoniae over van een Luria-Bertani (LB) agarplaat naar 100 ml LB-medium en kweek bij 37 °C gedurende 12-16 uur totdat de bacteriële concentratie ongeveer 1 x 109 cellen / ml is (zoals aangegeven door OD600 = 1).
    2. Breng één bacteriekolonie Fusobacterium nucleatum en Proteus vuigaris over van trypticase sojabouillon (TSB) agarplaten naar 100 ml TSB-medium en kweek gedurende 24 uur anaeroob bij 37 °C totdat de bacteriële concentratie ongeveer 1 x 109 cellen/ml is (zoals aangegeven door OD600 = 1).

2. H2S detectietest

  1. Waterstofsulfideproductietest
    1. Meng 100 μL bacteriecultuur met 100 μL nieuw bereide bismutoplossing (pH 8,0; 10 mM bismut(III)chloride, 0,4 M triethanolamine-HCl, 20 mM pyridoxaal 5-fosfaatmonohydraat, 20 mM EDTA en 40 mM L-cysteïne) in de 96-well microtiterplaten en kweek gedurende 20 minuten bij 37 °C. Voer voor elke bacteriestam de analyse in drievoud uit.
    2. Controleer na 20 minuten op kleurverandering. Als de kleur van de oplossing verandert van lichtgeel naar zwart, geeft dit aan dat de bacterie in staat is om H2S te produceren.
  2. Gevoeligheid van de methode
    1. Bepaal de gevoeligheid van de methode met behulp van verschillende concentraties natriumhydrosulfide (NaHS): 2 mM, 1 mM, 0,8 mM, 0,6 mM, 0,4 mM, 0,2 mM, 0,1 mM en 0 mM, gemengd met BS-oplossing 14.
    2. Bepaal de aanwezigheid van HS−/S2− door de vorming van een zwart BS-neerslag waar te nemen. Scoor de kleur van de putten met behulp van een visuele schaal van geen kleurproductie (-) tot donkerste zwarte kleurproductie (++++++).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Detectie van waterstofsulfide producerende bacteriën
De prestaties van de H2S-test werden onderzocht met behulp van zuivere culturen van geselecteerde bacteriestammen, zoals vermeld in tabel 1. De resultaten gaven aan dat Salmonella paratyphi B, Fusobacterium nucleatum, Enterococcus faecalis, Pseudomonas aeruginosa en Proteus vuigaris H2S kunnen produceren met zwart BS-neerslag, terwijl Salmonella paratyphi A, Staphylococcu...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

De waterstofsulfideproductietest is een van de conventionele fenotypische tests voor de identificatie en differentiatie van bacteriestammen. Veel bacteriesoorten kunnen waterstofsulfide produceren in hun natuurlijke omgeving, zoals waterwater. Deze bacteriesoorten omvatten Salmonella sp., Citrobacter sp., Proteus sp., Pseudomonas sp., sommige stammen van Klebsiella sp., Escherichia coli en sommige soorten anaerobe Clostridia15,16

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs verklaren geen belangenverstrengeling te hebben.

Dankbetuigingen

Deze studie werd ondersteund door de Priority Academic Program Development of Jiangsu Higher Education Institutions (PAPD) en het Teaching Reform Research Project van de China Pharmaceutical University (2019XJYB18).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Bismuth (III)chlorideShanghai Macklin Biochemical Co., Ltd7787-60-2
EDTANanjing Chemical Reagent Co., Ltd60-00-4
Enterococcus faecalis ATCC 19433
Fusobacterium nucleatum ATCC 25586
Klebsiella pneumoniae ATCC 43816
L-cysteïneAmresco52-90-4
Proteus vulgaris CMCC 49027
Salmonella paratyphi ACMCC50001
Salmonella paratyphi BCMCC50094
Staphylococcus aureus ATCC 25923
Triethanolamine-HClShanghai Aladdin Biochemical Technology Co., Ltd.637-39-8

Referenties

  1. Thompson, L. S. The group of hydrogen sulphide producing bacteria. Journal of Medical Research. 42 (184), 383-389 (1921).
  2. Ono, K., et al. Cysteine hydropersulfide inactivates β-lactam antibiotics with formation of ring-opened carbothioic s-acids in bacteria. ACS Chemical Biology. 16 (4), 731-739 (2021).
  3. Mironov, A., et al. Mechanism of H2S-mediated protection against oxidative stress in Escherichia coli. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (23), 6022-6027 (2017).
  4. Shen, Y., Shen, Z., Luo, S., Guo, W., Zhu, Y. The cardioprotective effects of hydrogen sulfide in heart diseases: From molecular mechanisms to therapeutic potential. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2015, 925167(2015).
  5. Salloum, F. N. Hydrogen sulfide and cardioprotection-mechanistic insights and clinical translatability. Pharmacology & Therapeutics. 152, 11-17 (2015).
  6. Wallace, J. L., Wang, R. Hydrogen sulfide-based therapeutics: Exploiting a unique but ubiquitous gasotransmitter. Nature Reviews. Drug Discovery. 14 (5), 329-345 (2015).
  7. Wu, D., et al. Role of hydrogen sulfide in ischemia-reperfusion injury. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. , 186908(2015).
  8. Truong, D. H., Eghbal, M. A., Hindmarsh, W., Roth, S. H., O'Brien, P. J. Molecular mechanisms of hydrogen sulfide toxicity. Drug Metabolism Reviews. 38 (4), 733-744 (2006).
  9. Shatalin, K., et al. Inhibitors of bacterial H2S biogenesis targeting antibiotic resistance and tolerance. Science. 372 (6547), 1169-1175 (2021).
  10. Frávega, J., et al. Salmonella Typhimurium exhibits fluoroquinolone resistance mediated by the accumulation of the antioxidant molecule H2S in a CysK-dependent manner. The Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 71 (12), 3409-3415 (2016).
  11. Luhachack, L., Nudler, E. Bacterial gasotransmitters: An innate defense against antibiotics. Current Opinion in Microbiology. 21, 13-17 (2014).
  12. Yoshida, A., et al. Hydrogen sulfide production from cysteine and homocysteine by periodontal and oral bacteria. Journal of Periodontology. 80 (11), 1845-1851 (2009).
  13. Basic, A., Blomqvist, S., Carlén, A., Dahlén, G. Estimation of bacterial hydrogen sulfide production in vitro. Journal of Oral Microbiology. 7, 28166(2015).
  14. Rosolina, S. M., Carpenter, T. S., Xue, Z. L. Bismuth-based, disposable sensor for the detection of hydrogen sulfide gas. Analytical Chemistry. 88 (3), 1553-1558 (2016).
  15. Barton, L. L., Fauque, G. D. Biochemistry, physiology and biotechnology of sulfate-reducing bacteria. Advances in Applied Microbiology. 68, 41-98 (2009).
  16. Shatalin, K., Shatalina, E., Mironov, A., Nudler, E. H2S: A universal defense against antibiotics in bacteria. Science. 334 (6058), 986-990 (2011).
  17. Schnabel, B., Caplin, J. L., Cooper, I. R. Modification of the H2S test to screen for the detection of sulphur- and sulphate-reducing bacteria of faecal origin in water. Water Supply. 21 (1), 59-79 (2021).
  18. Netzer, R., Ribičić, D., Aas, M., Cavé, L., Dhawan, T. Absolute quantification of priority bacteria in aquaculture using digital PCR. Journal of Microbiological Methods. 183, 106171(2021).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Tags

Detectie van waterstofsulfidewaterstofsulfide-producerende bacteriënbismutsulfide-precipitatievisuele detectiemethodemicrotiterplaat-assaybiochemische identificatie van bacteriënmetabolisme van zwavelhoudende aminozurenvorming van zwart neerslaghigh-throughput screeningbacteriële kweekassay