Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Bescherming van H9c2 myocardiale cellen tegen oxidatieve stress door crocetine via PINK1 / Parkin Pathway-gemedieerde mitofagie

2.2K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/65105

⸱

26 mei 2023

 ,  ,  ,  ,  ,  , 

In dit artikel

Samenvatting

Op basis van in vitro experimenten onthulde deze studie het mechanisme van crocetine bij het repareren van oxidatieve stressschade van cardiomyocyten door mitofagie te beïnvloeden, waarbij de PINK1 / Parkin-signaleringsroute een belangrijke rol speelt.

Samenvatting

Deze studie was gericht op het onderzoeken van het oxidatieve stressbeschermende effect van crocetine op H 2 O2-gemedieerdeH9c2 myocardiale cellen door middel van in vitro experimenten, en verder onderzoeken of het mechanisme ervan gerelateerd is aan de impact van mitofagie. Deze studie was ook bedoeld om het therapeutische effect van saffloerzuur op oxidatieve stress in cardiomyocyten aan te tonen en te onderzoeken of het mechanisme ervan verband houdt met het effect van mitofagie. Hier werd een opH 2 O2 gebaseerd oxidatief stressmodel geconstrueerd en de mate van oxidatieve stressschade van cardiomyocyten beoordeeld door de niveaus van lactaatdehydrogenase (LDH), creatinekinase (CK), malondialdehyde (MDA), superoxide dismutase (SOD), catalase (CAT) en glutathionperoxidase (GSH Px) te detecteren. Reactieve zuurstofsoorten (ROS) - detecterende fluorescerende kleurstof DCFH-DA, JC-1-kleurstof en TUNEL-kleurstof werden gebruikt om mitochondriale schade en apoptose te beoordelen. Autofagische flux werd gemeten door transfectie Ad-mCherry-GFP-LC3B adenovirus. Mitofagie-gerelateerde eiwitten werden vervolgens gedetecteerd via western blotting en immunofluorescentie. Crocetine (0,1-10 μM) kan echter de levensvatbaarheid van cellen aanzienlijk verbeteren en apoptose en oxidatieve stressschade veroorzaakt door H 2 O2verminderen. In cellen met overmatige autofagische activering kan crocetine ook de autofagiestroom en de expressie van mitofagie-gerelateerde eiwitten PINK1 en Parkin verminderen en de overdracht van Parkin naar mitochondriën omkeren. Crocetine kon H 2 O2-gemedieerde oxidatieve stressschade en de apoptose van H9c2-cellen verminderen, en het mechanisme was nauw verwant aan mitofagie.

Inleiding

Acuut myocardinfarct (AMI) is een levensbedreigende myocardiale necrose veroorzaakt door ernstige en aanhoudende ischemie en hypoxie van kransslagaders 1,2. Percutane coronaire interventie (PCI) is een van de eerstelijns therapeutische strategieën voor AMI en beschermt cardiomyocyten meestal tegen ischemische schade 3,4. Het distale myocard zal geen bloed- en zuurstoftoevoer hebben als het niet snel en effectief wordt behandeld na AMI, wat leidt tot ischemische necrose en verdere cardiovasculaire complicaties 5,6. Het bevorderen van cardiomyocytenherstel en het minimaliseren van onomkeerbare myocardiale schade na het missen van de PCI-chirurgische kans is een onderzoekshotspot geweest. Na AMI bevinden cardiomyocyten zich in een toestand van ischemie en hypoxie, wat resulteert in de remming van mitochondriale oxidatieve fosforylering, reductie van NAD + tot NADPH en verhoogde reductie van één elektron7. Als gevolg hiervan genereert de onvolledige reductiereactie van zuurstof een overmaat aan reactieve zuurstofsoorten (ROS) en leidt uiteindelijk tot oxidatieve stressschade aan cardiomyocyten8. Een overmatige accumulatie van ROS veroorzaakt lipideperoxidatie, waardoor de structuur en functie van mitochondriale membranen verder wordt verstoord. Het resultaat is een continue opening van mitochondriale permeabiliteitsovergangsporiën en een afname van het mitochondriale membraanpotentiaal, waardoor apoptose en necrose worden geïnduceerd.

Angiotensine-converting enzyme (ACE) -remmers, angiotensine-receptorblokkers (ARB's), de remmers van β-adrenoceptoren, aldosteronantagonisten en andere standaardgeneesmiddelen in AMI kunnen helpen de hartfunctie na een hartinfarct te verbeteren en het optreden van kwaadaardige gebeurtenissen, zoals aritmieën en linkerventrikelremodellering, te voorkomen9. De overleving en prognose na een infarct worden echter sterk beïnvloed door de grootte van het infarct en er zijn geen bevredigende resultaten bereikt voor het verminderen van cardiomyocytenapoptose10,11. Zo is de ontwikkeling van geneesmiddelen om het herstel van cardiomyocyten na een hartinfarct te bevorderen een urgent probleem geworden.

De traditionele geneeskunde is al vele jaren een inspiratiebron voor het moderne farmaceutische onderzoek12,13,14,15. Traditionele Chinese geneeskunde (TCM) heeft een lange geschiedenis in de behandeling van AMI, en een reeks gerandomiseerde controlestudies in de afgelopen jaren hebben bevestigd dat TCM inderdaad de prognose van patiënten16,17 kan verbeteren. Volgens de TCM-theorie wordt AMI veroorzaakt door bloedstasis18,19, dus geneesmiddelen voor het bevorderen van de bloedcirculatie worden meestal gebruikt voor de behandeling van AMI in de acute fase20. Onder hen wordt aangenomen dat saffraan een krachtig effect heeft op bloedactivering en stasis, en wordt vaak gebruikt bij de acute behandeling van AMI. Crocetine, een belangrijk bestanddeel van saffraan, kan een sleutelrol spelen bij de bescherming van cardiomyocyten21.

In deze studie werden H9c2 myocardiale cellen geïnduceerd door H2 O2 om myocardiale ischemie / reperfusie te simuleren, wat een cardiomyocytenbeschadiging van AMI veroorzaakt, en crocetine werd gebruikt als een interventie om het beschermende effect tegen oxidatieve stress-geïnduceerde myocardiale schade te onderzoeken. Het mechanisme van crocetine dat cardiomyocyten beschermt, werd verder onderzocht door middel van mitofagie. Wat nog belangrijker is, dit artikel biedt een referentie voor de technische benadering van de studie van mitofagie en beschrijft de hele experimentele procedure in detail.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

De experimenten werden uitgevoerd in het Laboratorium voor Fysiologie aan de Beijing University of Chinese Medicine, China. Alle studiemethoden werden uitgevoerd in overeenstemming met de relevante richtlijnen en voorschriften van de Universiteit van Beijing.

1. Celkweek

  1. Voeg 10% foetaal runderserum en 1% penicilline/streptomycine toe aan dulbecco's gemodificeerde Eagle medium (DMEM) basismedium (met 4,5 g/l D-glucose, 4,g.g/l L-glutamine en 110 mg/l natriumpyruvaat; zie materiaaltabel) om DMEM compleet medium te bereiden.
  2. Ontdooi de vloeibare stikstofbevroren H9c2 myocardcellen (zie Materiaaltabel) in warm water van 37 °C onder een snelle en gelijkmatige roerbeurt tot het ijs smelt.
  3. Breng de cellen over in een centrifugebuis en voeg vier keer het volume van het DMEM-medium toe. Centrifugeer gedurende 5 minuten bij kamertemperatuur op 358 x g en gooi het supernatant weg met een pipet.
  4. Verdun de verkregen celsuspensie met kweekmedium, blaas voorzichtig en ent de cellen in een kweekkolf. Kweek in een incubator bij 37 °C met 5% CO2.

2. Bepaling van de levensvatbaarheid van cellen

  1. Los crocetine (zie tabel met materialen) op in dimethylsulfoxide (DMSO) tot concentraties van 0,05 mM, 0,1 mM, 0,5 mM, 1 mM, 5 mM, 10 mM, 50 mM, 100 mM en 200 mM.
  2. Dissocieer de H9c2 myocardiale cellen door trypsine en neutraliseer vervolgens het mengsel met DMEM compleet medium.
  3. Breng de cellen over in een centrifugebuis en centrifugeer gedurende 5 minuten bij kamertemperatuur op 179 x g . Gooi het supernatant weg en meng de cellen in DMEM compleet medium door zachtjes te blazen.
  4. Tel de cellen met behulp van een bloedceltelplaat22 (zie tabel met materialen) en verdun ze tot 5 × 104 cellen / ml met DMEM compleet medium.
  5. Verdeel de cellen in negen gelijke porties. Voeg DMSO (verdund in een verhouding van 1:1.000 met DMEM compleet medium) toe aan de controlegroep en voeg verschillende concentraties crocetine toe aan de resterende groepen in een verhouding van 1:1.000.
  6. Zaai de cellen in 96-well platen op 100 μL per put. Gooi het supernatant na incubatie gedurende 24 uur weg en was de cellen drie keer met PBS.
  7. Na toevoeging van 100 μL DMEM basaal medium, incubeer de cellen gedurende 4 uur en voeg 20 μL MTS toe (zie tabel met materialen).
  8. Incubeer de cellen gedurende nog eens 2 uur, meet de absorptie bij een golflengte van 490 nm en bereken de levensvatbaarheid van de cel.
    OPMERKING: Levensvatbaarheid van cellen = (OD behandeld - OD blanco) / (OD-controle - OD blanco) × 100.

3. Bepaling van lactaatdehydrogenase (LDH), creatinekinase (CK), malondialdehyde (MDA), superoxide dismutase (SOD), glutathionperoxidase (GSH Px) en catalase (CAT)

  1. Zaai de H9c2-cellen in een 6-well-plaat met een dichtheid van 1 × 105-cellen . Verzamel het supernatant na de interventie en detecteer LDH- en SOD-niveaus, volgens de instructies van de fabrikant (zie materiaaltabel).
  2. Verzamel het supernatant en was het eenmaal met fosfaat-gebufferde zoutoplossing (PBS). Voeg het cellysaat toe aan de kweekschaal en laat het 20 minuten op ijs staan. Verzamel de vloeistof uit de kweekschaal in een centrifugebuis.
  3. Detecteer CK-, MDA-, GSH-Px- en CAT-niveaus volgens de instructies van de fabrikant23 (zie Materiaaltabel en Aanvullend bestand 1).
  4. Detecteer de totale eiwitconcentratie van de lysis met behulp van de bicinchininezuur (BCA) methode om de concentratie van CK, MDA, GSH-Px en CAT24 te corrigeren (zie tabel met materialen).

4. Bepaling van de ROS

  1. Zaai de H9c2-cellen in een 48-putplaat met een dichtheid van 5 × 103-cellen . Verdun DCFH-DA (zie Materiaaltabel) in een verhouding van 1:1.000 met het serumvrije medium. Gooi het celsupernatant weg en was de cel tweemaal met een serumvrij medium.
  2. Voeg 150 μL verdund DCFH-DA toe aan elke put en incubeer gedurende 20 minuten bij 37 °C. Was de cellen drie keer met een serumvrij medium en leg beelden vast onder een fluorescentiemicroscoop (zie Materiaaltabel).

5. Detectie van mitochondriaal membraanpotentiaal

  1. Detecteer de mitochondriale membraanpotentiaal met behulp van een JC-1 mitochondriale membraanpotentiaaltestkit25 (zie materiaaltabel). Gooi het kweekmedium weg en was ze eenmaal met serumvrij medium.
  2. Voeg JC-1 werkoplossing toe aan elke buis en meng ze goed. Incubeer gedurende 20 minuten bij 37 °C en was de cellen tweemaal met JC-1 kleuringsbuffer. Voeg een compleet medium toe aan elke put en maak foto's onder een fluorescentiemicroscoop.

6. TUNEL kleuringstest

  1. Gebruik een TUNEL apoptose assay kit (zie Tabel van Materialen) om apoptose snelheden te bepalen26. Gooi het supernatant weg en was de pellet eenmaal met serumvrij medium.
  2. Voeg celfixatieoplossing toe en was ze eenmaal met PBS na het incuberen op kamertemperatuur gedurende 30 minuten.
  3. Voeg 0,3% triton-100 toe aan elke put en incubeer gedurende 5 minuten bij kamertemperatuur. Was de cellen twee keer met PBS. Voeg TUNEL detectie werkoplossing toe en incubeer bij 37 °C in het donker gedurende 60 min.
  4. Voeg een antifluorescentie-dovende afdichtingstablet toe met 4′,6-diamidino-2-fenylindool (DAPI; zie materiaaltabel) en maak foto's onder een fluorescentiemicroscoop.

7. Monitoring van de autofagische stroom door transfectie van mCherry GFP-LC3B adenovirus

  1. Vervang de helft van het medium in elke put door vers medium. Voeg Ad-mCherry GFP-LC3B adenovirus (multipliciteit van infectie [MOI] van 2) toe aan het kweekmedium en voeg 5 μg/ml polybreen toe (zie tabel met materialen) om de infectie-efficiëntie te verbeteren.
  2. Vervang het verse medium na 24 uur en observeer de expressie van het fluorescerende eiwit onder een confocale microscoop.
  3. Kweek de cellen met dezelfde omstandigheden als sectie 1 na bevestiging van een succesvolle virusinfectie en leg beelden vast onder de confocale microscoop27.
    OPMERKING: Meer dan 20% van de cellen vertoonde fluorescerende fluorescentie van groen fluorescerend eiwit (GFP), wat wijst op een succesvolle infectie.

8. Western blot analyse

  1. Verzamel cellen voor hele eiwitextractie en lyseer ze (RIPA, proteaseremmer en fosfataseremmer = 100:1:1; zie Materiaaltabel) gedurende 30 minuten op ijs.
  2. Voeg 5x eiwitlaadbuffer toe aan het eiwitmonster na eiwitkwantificering en kook de monsters gedurende 10 minuten.
  3. Elektroforese de monsters die gelijke hoeveelheden eiwit bevatten met natriumdodecyl-sulfaat polyacrylamide gel elektroforese (SDS-PAGE) gels28. Breng vervolgens de monsters over op polyvinylideendifluoride (PVDF) membranen.
  4. Blokkeer de PVDF-membranen gedurende 1 uur met 5% magere melkpoeder en incubeer met het primaire antilichaam (PINK1, Parkin; zie Materiaaltabel) bij 4 °C gedurende de nacht en het secundaire antilichaam bij kamertemperatuur gedurende 1 uur.
  5. Detecteer de doelbanden met behulp van een verbeterde chemiluminescentieoplossing (ECL) en het chemiluminescentiedetectiesysteem. Gebruik Image J-software om de banden te kwantificeren via densitometrie28.

9. Detectie van parkine mitochondriale translocatie door immunofluorescentie

  1. Observeer de colocalisatie van Parkin met mitochondriën door dubbele immunofluorescentiekleuring. Gooi het celsupernatant van elke groep weg en was ze drie keer met PBS.
  2. Bevestig de cellen gedurende 10 minuten bij kamertemperatuur met 4% paraformaldehyde en voeg 0,1% triton-100 toe in PBS.
  3. Blok met diervrije blokoplossing (zie materiaaltabel) gedurende 1 uur om niet-specifieke binding tussen eiwitten en antilichamen te voorkomen en de fluorescentie-achtergrond te verminderen.
  4. Incubeer met een primair antilichaam (Parkin en Tom20; zie Tabel met materialen) bij 4 °C gedurende de nacht.
  5. Voeg een fluorescerend secundair antilichaam toe (zie materiaaltabel) en incubeer gedurende 1 uur in het donker.
  6. Voeg de DAPI-bevattende antifluorescentie-blustabletten toe en leg beelden vast onder de confocale microscoop.

10. Statistische analyse

  1. Voer statistische analyses uit met behulp van grafische en analysesoftware (zie Materiaaltabel).
  2. Vergelijk continue variabelen tussen groepen met behulp van eenrichtings-ANOVA. p < 0,05 werd als statistisch significant beschouwd.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Effecten van crocetine op de levensvatbaarheid van cellen
Crocetine bij 0,1 μM, 0,5 μM, 1 μM, 5 μM, 10 μM, 50 μM en 100 μM had een significant proliferatief effect op cellen, terwijl crocetine bij concentraties boven 200 μM de proliferatie van H9c2-cellen significant remde (figuur 1A). Na 4 uur behandeling met 400 μM H 2 O2was de levensvatbaarheid van de cel aanzienlijk verminderd en kon crocetine deze verandering tot op zekere hoogte omkeren (

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

De exploratie van effectieve ingrediënten uit complexe verbindingen van natuurlijke geneesmiddelen door middel van geavanceerde technologie is een hotspot geweest van TCM-onderzoek29 en kan laboratoriumbewijs leveren voor toekomstige medicijnontwikkeling na verificatie. Saffloer is een representatief medicijn bij de behandeling van "het bevorderen van de bloedcirculatie en het minimaliseren van bloedstasis" en wordt veel gebruikt bij de behandeling van een hartinfarct30,31<...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben geen belangenconflicten te melden.

Dankbetuigingen

Deze studie werd ondersteund door de Beijing Natural Science Foundation (nr. 7202119) en de National Natural Science Foundation of China (nr. 82274380).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
0.25% trypsinGibco2323363
1% Penicillin-streptomycinSigmaV900929
5x protein loading bufferBeijing Pulilai Gene TechnologyB1030-5
Ad-mCherry GFP-LC3B adenovirusBeyotimeC3011
Alexa Fluor 488-conjugated goat anti-rabbit IgG (H+L) Zhongshan Golden Bridge Biotechnology Co., Ltd.ZF-0514
Alexa Fluor 594-conjugated goat anti-mouse IgG (H+L)Zhongshan Golden Bridge Biotechnology Co., Ltd.ZF-0513
Animal-free blocking solutionCST15019s
Anti-Parkin antibodySanta Cruzsc-32282
Anti-PINK1 antibodyABclonalA11435
Anti-TOM20 antibodyABclonalA19403
Anti-β-actin  antibodyABclonalAC026
BCA protein assay kitKeyGEN BiotechKGP902
Blood cell counting plateServicebioWG607
CAT assay kitsNanjing Jiancheng Bioengineering InstituteA007-1-1
Chemiluminescence detection systemShanghai Qinxiang Scientific Instrument FactoryChemiScope 6100
CK assay kitsNanjing Jiancheng Bioengineering InstituteA032-1-1
Coenzyme Q10 (CoQ 10)MacklinC6129
CrocetinChengdu Ruifensi Biotechnology Co., Ltd.RFS-Z01802006012
DAPI-containing antifluorescence quenching tabletsZhongshan Golden Bridge Biotechnology Co., Ltd.ZLI-9557
DCFH-DABeyotimeS0033S
DMSOSolarbioD8371
Dulbecco's modified eagle medium (DMEM)Gibco8122091
Enhanced Chemiluminescence (ECL) solutionNCM BiotechP10100
Fetal bovine serum (FBS)Corning-Cellgro35-081-CV
GraphPad Prism 7.0 https://www.graphpad.com/
GSH-Px assay kitsNanjing Jiancheng Bioengineering InstituteA005-1-2
H9c2 myocardial cellsBeijing Dingguochangsheng Biotech Co., Ltd.CS0062
Horseradish peroxidase (HRP)-conjugated goat anti-goat IgG (H+L) Zhongshan Golden Bridge Biotechnology Co., Ltd.ZB-2305
Horseradish peroxidase (HRP)-conjugated goat anti-mouse IgG (H+L) Zhongshan Golden Bridge Biotechnology Co., Ltd.ZB-2301
JC-1 mitochondrial membrane potential assay kitLABLEADJ22202
LDH assay kitsNanjing Jiancheng Bioengineering InstituteA020-2-2
MDA assay kitsNanjing Jiancheng Bioengineering InstituteA003-2-2
MethanolAladdinA2114057
MTS assayPromegaG3581
PerhydrolG-cloneCS7730
Phosphatase inhibitorCWBIOCW2383
PolybreneBeyotimeC0351
Polyvinylidene difluoride (PVDF) membranesMilliporeISEQ00010
Radioimmunoprecipitation assay (RIPA) lysis bufferSolarbioR0010
SDS-PAGE gelsShanghai Epizyme Biomedical TechnologyPG112
SDS-PAGE running buffer powderServicebioG2018-1L
SDS-PAGE transfer buffer powderServicebioG2017-1L
SOD assay kitsNanjing Jiancheng Bioengineering InstituteA001-2-2
Tris-buffered saline powderServicebioG0001-2L
Triton X-100SigmaSLCC9172
TUNEL apoptosis assay kitBeyotimeC1086
Tween-20SolarbioT8220

Referenties

  1. Anderson, J. L., Morrow, D. A. Acute myocardial infarction. The New England Journal of Medicine. 376 (21), 2053-2064 (2017).
  2. Samsky, M. D., et al. Cardiogenic shock after acute myocardial infarction: a review. JAMA. 326 (18), 1840-1850 (2021).
  3. Abbate, A., et al. Survival and cardiac remodeling benefits in patients undergoing late percutaneous coronary intervention of the infarct-related artery: evidence from a meta-analysis of randomized controlled trials. Journal of the American College of Cardiology. 51 (9), 956-964 (2008).
  4. Santoro, G. M., Carrabba, N., Migliorini, A., Parodi, G., Valenti, R. Acute heart failure in patients with acute myocardial infarction treated with primary percutaneous coronary intervention. European Journal of Heart Failure. 10 (8), 780-785 (2008).
  5. Dhruva, S. S., et al. Association of use of an intravascular microaxial left ventricular assist device vs intra-aortic balloon pump with in-hospital mortality and major bleeding among patients with acute myocardial infarction complicated by cardiogenic shock. JAMA. 323 (8), 734-745 (2020).
  6. Wang, Y., et al. Risk factors associated with major cardiovascular events 1 year after acute myocardial infarction. JAMA Network Open. 1 (4), e181079(2018).
  7. Jou, M. J., et al. Melatonin protects against common deletion of mitochondrial DNA-augmented mitochondrial oxidative stress and apoptosis. Journal of Pineal Research. 43 (4), 389-403 (2007).
  8. La Piana, G., Fransvea, E., Marzulli, D., Lofrumento, N. E. Mitochondrial membrane potential supported by exogenous cytochrome c oxidation mimics the early stages of apoptosis. Biochemical and Biophysical Research Communications. 246 (2), 556-561 (1998).
  9. De Filippo, O., et al. Impact of secondary prevention medical therapies on outcomes of patients suffering from Myocardial Infarction with NonObstructive Coronary Artery disease (MINOCA): A meta-analysis. International Journal of Cardiology. 368, 1-9 (2022).
  10. Davidson, S. M., et al. Multitarget strategies to reduce myocardial ischemia/reperfusion injury: JACC review topic of the week. Journal of the American College of Cardiology. 73 (1), 89-99 (2019).
  11. Caricati-Neto, A., Errante, P. R., Menezes-Rodrigues, F. S. Recent advances in pharmacological and non-pharmacological strategies of cardioprotection. International Journal of Molecular Sciences. 20 (16), 4002(2019).
  12. Chen, G. Y., et al. Network pharmacology analysis and experimental validation to investigate the mechanism of total flavonoids of rhizoma drynariae in treating rheumatoid arthritis. Drug Design, Development, and Therapy. 16, 1743-1766 (2022).
  13. Wei, Z., et al. Traditional Chinese medicine has great potential as candidate drugs for lung cancer: A review. Journal of Ethnopharmacology. 300, 115748(2023).
  14. Zhi, W., Liu, Y., Wang, X., Zhang, H. Recent advances of traditional Chinese medicine for the prevention and treatment of atherosclerosis. Journal of Ethnopharmacology. 301, 115749(2023).
  15. Liu, M., et al. Hypertensive heart disease and myocardial fibrosis: How traditional Chinese medicine can help addressing unmet therapeutical needs. Pharmacological Research. 185, 106515(2022).
  16. Zhang, X. X., et al. Traditional Chinese medicine intervenes ventricular remodeling following acute myocardial infarction: evidence from 40 random controlled trials with 3,659 subjects. Frontiers in Pharmacology. 12, 707394(2021).
  17. Hao, P., et al. Traditional Chinese medicine for cardiovascular disease: evidence and potential mechanisms. Journal of the American College of Cardiology. 69 (24), 2952-2966 (2017).
  18. Delgado-Montero, A., et al. Blood stasis imaging predicts cerebral microembolism during acute myocardial infarction. Journal of the American Society of Echocardiography. 33 (3), 389-398 (2020).
  19. Lu, C. Y., Lu, P. C., Chen, P. C. Utilization trends in traditional Chinese medicine for acute myocardial infarction. Journal of Ethnopharmacology. 241, 112010(2019).
  20. Gao, Z. Y., Xu, H., Shi, D. Z., Wen, C., Liu, B. Y. Analysis on outcome of 5284 patients with coronary artery disease: the role of integrative medicine. Journal of Ethnopharmacology. 141 (2), 578-583 (2012).
  21. Huang, Z., et al. Crocetin ester improves myocardial ischemia via Rho/ROCK/NF-kappaB pathway. International Immunopharmacology. 38, 186-193 (2016).
  22. Green, M. R., Sambrook, J. Estimation of cell number by hemocytometry counting. Cold Spring Harbor Protocols. 2019 (11), (2019).
  23. Zeng, Q., et al. Assessing the potential value and mechanism of Kaji-Ichigoside F1 on arsenite-induced skin cell senescence. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2022, 9574473(2022).
  24. Chazotte, B. Labeling mitochondria with JC-1. Cold Spring Harbor Protocols. 2011 (9), (2011).
  25. Kyrylkova, K., Kyryachenko, S., Leid, M., Kioussi, C. Detection of apoptosis by TUNEL assay. Methods in Molecular Biology. 887, 41-47 (2012).
  26. Yuan, Y., et al. Palmitate impairs the autophagic flux to induce p62-dependent apoptosis through the upregulation of CYLD in NRCMs. Toxicology. 465, 153032(2022).
  27. Kurien, B. T., Scofield, R. H. Western blotting. Methods. 38 (4), 283-293 (2006).
  28. Chen, G. Y., et al. Total flavonoids of rhizoma drynariae restore the MMP/TIMP balance in models of osteoarthritis by inhibiting the activation of the NF-κB and PI3K/AKT pathways. Evidence-Based Complementary and Alternative. 2021, 6634837(2021).
  29. Amin, A., Hamza, A. A., Bajbouj, K., Ashraf, S. S., Daoud, S. Saffron: a potential candidate for a novel anticancer drug against hepatocellular carcinoma. Hepatology. 54 (3), 857-867 (2011).
  30. Kamalipour, M., Akhondzadeh, S. Cardiovascular effects of saffron: an evidence-based review. The Journal of Tehran Heart Center. 6 (2), 59-61 (2011).
  31. Mani, V., Lee, S. K., Yeo, Y., Hahn, B. S. A metabolic perspective and opportunities in pharmacologically important safflower. Metabolites. 10 (6), 253(2020).
  32. Broadhead, G. K., Chang, A., Grigg, J., McCluskey, P. Efficacy and safety of saffron supplementation: current clinical findings. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 56 (16), 2767-2776 (2016).
  33. Gao, H., et al. Insight into the protective effect of salidroside against H2O2-induced injury in H9C2 cells. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2021, 1060271(2021).
  34. Chen, G. Y., et al. Prediction of rhizoma drynariae targets in the treatment of osteoarthritis based on network pharmacology and experimental verification. Evidence-Based Complementary and Alternative. 2021, 5233462(2021).
  35. Reers, M., et al. Mitochondrial membrane potential monitored by JC-1 dye. Methods in Enzymology. 260, 406-417 (1995).
  36. Radovits, T., et al. Poly(ADP-ribose) polymerase inhibition improves endothelial dysfunction induced by reactive oxidant hydrogen peroxide in vitro. European Journal of Pharmacology. 564 (1-3), 158-166 (2007).
  37. Song, M., et al. Interdependence of parkin-mediated mitophagy and mitochondrial fission in adult mouse hearts. Circulation Research. 117 (4), 346-351 (2015).
  38. Gan, Z. Y., et al. Activation mechanism of PINK1. Nature. 602 (7896), 328-335 (2022).
  39. Nguyen, T. N., Padman, B. S., Lazarou, M. Deciphering the molecular signals of PINK1/Parkin mitophagy. Trends in Cell Biology. 26 (10), 733-744 (2016).
  40. Yamada, T., Dawson, T. M., Yanagawa, T., Iijima, M., Sesaki, H. SQSTM1/p62 promotes mitochondrial ubiquitination independently of PINK1 and PRKN/parkin in mitophagy. Autophagy. 15 (11), 2012-2018 (2019).
  41. Klionsky, D. J., et al. Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring autophagy (4th edition). Autophagy. 17 (1), 1(2021).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Meer artikelen verkennen

Behandeling met crocetineregulatie van mitofagiemitochondriaal membraanpotentiaalreactieve zuurstofspeciesautofagische fluxWestern blottingconfocale microscopie