Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Toepassing van acupotomie in een knieartrosemodel bij konijnen

2.3K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/65584

⸱

20 oktober 2023

In dit artikel

Samenvatting

In dit protocol werd een knieartrosemodel opgesteld met behulp van de aangepaste Videman-methode en worden de operatieprocedures en voorzorgsmaatregelen van acupodomie beschreven. De effectiviteit van acupotomie is aangetoond door de mechanische eigenschappen van quadriceps femoris en pees en de mechanische en morfologische eigenschappen van kraakbeen te testen.

Samenvatting

Artrose van de knie (KOA) is een van de meest voorkomende ziekten op de orthopedische afdeling, waardoor de kwaliteit van leven van mensen met KOA ernstig afneemt. Van de verschillende pathogene factoren is de biomechanische onbalans van het kniegewricht een van de belangrijkste oorzaken van KOA. Acupotomologie is van mening dat het herstellen van de mechanische balans van het kniegewricht de sleutel is tot de behandeling van KOA. Klinische studies hebben aangetoond dat acupotomie de pijn effectief kan verminderen en de mobiliteit van de knie kan verbeteren door adhesie, contractuur van zachte weefsels en stressconcentratiepunten in spieren en pezen rond het kniegewricht te verminderen.

In dit protocol gebruikten we de aangepaste Videman-methode om een KOA-model op te stellen door de linker achterpoot in een rechte positie te immobiliseren. We hebben de werkwijze en de voorzorgsmaatregelen met betrekking tot acupotomie in detail geschetst en de werkzaamheid van acupotomie geëvalueerd in combinatie met de theorie van "Modulerende spieren en pezen om botaandoeningen te behandelen" door de detectie van de mechanische eigenschappen van quadriceps femoris en pees, evenals kraakbeenmechanica en morfologie. De resultaten tonen aan dat acupotomie een beschermend effect heeft op het kraakbeen door de mechanische eigenschappen van de zachte weefsels rond het kniegewricht aan te passen, de kraakbeenstressomgeving te verbeteren en de kraakbeendegeneratie te vertragen.

Inleiding

Artrose van de knie (KOA) is de meest voorkomende vorm van artrose, vaak erkend als een aandoening van het hele gewricht die wordt gekenmerkt door gewrichtskraakbeendegeneratie, die zich klinisch manifesteert als pijn, zwelling en beperkte beweging van de aangetaste gewrichten1. Volgens recente epidemiologische statistieken zou KOA in 2020 wereldwijd 654,1 miljoen personen hebben getroffen die 40 jaar of ouder waren. De prevalentie en incidentie van KOA stijgen met de leeftijd, zijn het hoogst bij volwassenen van middelbare leeftijd en oudere volwassenen en treffen meer vrouwen dan mannen. De prevalentie van KOA zal waarschijnlijk toenemen als gevolg van de vergrijzing van de bevolking en de obesitas-epidemie wereldwijd, wat een groeiende bedreiging vormt voor de wereldwijde volksgezondheid. Leeftijd, geslacht, obesitas, trauma en andere gecompliceerde risicofactoren die verband houden met KOA hebben allemaal een directe invloed op knie-instabiliteit, waardoor een biomechanische onbalans in kniegewrichten een van de belangrijkste oorzaken van KOA3 is.

Onder normale fysiologische omstandigheden bevindt het kniegewricht zich in een staat van mechanisch evenwicht, waardoor de mechanische belastingen in het gewricht gelijkmatig over het kraakbeen worden verdeeld. Elke mechanische onbalans in het kniegewricht kan leiden tot abnormale belasting van het kraakbeen, wat resulteert in kraakbeendegeneratie en het ontstaan van KOA4. Het spier-peessysteem is het belangrijkste dynamische systeem dat het mechanische evenwicht van het kniegewricht in stand houdt. De gecoördineerde beweging van het strek- en buigspier-peessysteem kan de belasting die wordt gegenereerd door de beweging op het kraakbeenoppervlak gelijkmatig verdelen, waardoor de metabole onbalans van lokale kraakbeenspanningen wordt vermeden die verder gaan dan de fysiologische belasting die resulteert in kraakbeenverlies5. Verminderde spierkracht is de belangrijkste oorzaak van intramusculaire bewegingsstoornis en kraakbeenschade, die kan optreden vóór symptomatische KOA.

KOA kan ook arthrogene spierremming (AMI) induceren, wat zich manifesteert als spierzwakte en verminderde spierkracht rond de knie6. Van deze spieren functioneert de quadriceps femoris-groep als de enige knie-extensor, een belangrijke structuur bij het handhaven van de stabiliteit van het kniegewricht. Studies hebben aangetoond dat een afname van de dwarsdoorsnede van de quadriceps en spierkracht significant en positief gecorreleerd is met KOA-progressie7. De afname van de kracht van de quadriceps beïnvloedt het looppatroon, de kniestabiliteit, bewegingspatronen en vele andere functies. Bovendien schaadt de afname van de spierkracht de peesfunctie, wat zich manifesteert als een afname van de peesstijfheid, elastische modulus en andere biomechanische eigenschappen8. Bij langdurig herstel van overbelasting kunnen veranderingen zoals verkleving en contractuur optreden in de spieren en pezen van het kniegewricht, waardoor hun mechanische eigenschappen worden beschadigd, gewrichtsinstabiliteit ontstaat en uiteindelijk een vicieuze cirkel van pathologische veranderingen van KOA ontstaat. Het is daarom van cruciaal belang voor een KOA-behandeling om de mechanische eigenschappen van het spier-peessysteem te verbeteren en de mechanische balans van de gewrichten te herstellen.

Een van de oorzaken van KOA is biomechanische onbalans de belangrijkste inducerende factor voor kniepijn, disfunctie, inflammatoire laesies en kraakbeendegeneratie9. Daarom is de sleutel tot de behandeling van KOA het herstellen van de biomechanische balans van het kniegewricht. Acupotomologie is van mening dat de etiologie en pathogenese van KOA "mechanische onbalans" zijn. Wanneer de mechanische eigenschappen van de zachte weefsels rond de knie abnormaal veranderen, verliest het kniegewricht zijn mechanische evenwicht en versnelt de abnormale mechanische stressomgeving van het gewricht de degeneratie, waardoor ontstekingsstimulatie de verklevingen, contracturen en verdere achteruitgang van de gewrichtsstabiliteit verder verergert. Deze vicieuze cirkel ontwikkelt zich uiteindelijk tot KOA. Door verklevingen en contracturen van zacht weefsel los te maken en de stressconcentratie in de spieren en pezen te verminderen, verbetert acupotomie in combinatie met de theorie van "Modulerende spieren en pezen om botaandoeningen te behandelen" de mechanica van zacht weefsel en "moduleert spieren en pezen", wat de mechanische belasting van het gewricht in evenwicht brengt, waardoor kraakbeendegeneratie effectief wordt verlicht en "botaandoeningen worden behandeld"10. In termen van selectie van diermodellen, op basis van het doel van deze studie, hebben we het KOA-model voorbereid door de aangepaste Videman-methode van immobilisatie van de linker achterpootextensie.

Dit artikel beschrijft de totstandkoming van het KOA-model met behulp van de gemodificeerde Videman-methode van immobilisatie van de extensie van de linker achterpoot en de operatiemethode en voorzorgsmaatregelen van acupotomie. We tonen de effectiviteit van acupotomie aan door de mechanische eigenschappen van quadriceps femoris en pees te testen en veranderingen in gewrichtskraakbeenspanning en morfologie te detecteren.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

Alle dierproeven werden beoordeeld en goedgekeurd door de Dierethische Commissie van de Beijing University of Chinese Medicine (nr. BUCM-4-2022010101-1097). In dit protocol werden 24 mannelijke Nieuw-Zeelandse konijnen van 6 weken oud gehuisvest onder een specifieke voorwaarde, namelijk 20-25 °C, 50-60% luchtvochtigheid en een circadiane cyclus van 12 uur licht/12 uur donker, met vrije toegang tot een regelmatig chow-dieet. De konijnen werden verdoofd en opgeofferd door een combinatie van diepe anesthesie en luchtembolisatie. Pijn is een van de typische pathologische kenmerken van KOA en is ook een van de belangrijkste indicatoren die worden gebruikt om diermodellen van KOA en interventiemethoden te evalueren, dus pijnstillers worden niet gebruikt tijdens de modelvoorbereiding.

1. Het KOA konijnenmodel

  1. Verdoof konijnen met 3% pentobarbitalnatrium (30 mg/kg) intraveneus aan de oorrand. Om het juiste niveau van anesthesie te bevestigen, moet u letten op een aanzienlijk verzwakte of afwezige hoornvliesreflex en de afwezigheid van pijn bij het vastklemmen van de huid met een hemostatische pincet. Voeg tijdens de anesthesie elke 15 minuten 2-3 druppels glijmiddel toe aan de ogen van de konijnen om te voorkomen dat de ogen van de konijnen uitdrogen.
  2. Na de anesthesie fixeert u elk konijn in rugligging en trekt u de linker achterpoot in een volledig gestrekte positie.
  3. Fixeer de linker achterpoot van elk konijn in de uitgeschoven positie.
    1. Gebruik als eerste laag medische tape om de huid van het konijn van de lies tot het enkelgewricht te bedekken.
    2. Wikkel als tweede laag 36 mm brede, dubbelzijdige schuimtape over de medische tape en wikkel vervolgens een polymeerverband van de lies naar het enkelgewricht. Zorg ervoor dat het kniegewricht 180° recht is en het enkelgewricht 60° dorsaalgebogen.
    3. Immobiliseer als derde laag de gewrichten met kleine spalken aan de voor- en achterkant van de knie- en enkelgewrichten en wikkel stalen gaas om de buitenste laag om te beschermen tegen beten. Stel de tenen van de konijnen bloot om te zien of de bloedcirculatie normaal is.
  4. Immobiliseer de dieren gedurende 6 weken om het KOA-model vast te stellen (Figuur 1).
    OPMERKING: 1) Inspecteer tijdens de voorbereiding van het model de mallen om de dag. Als er schimmels los of losgelaten zijn, verdoven de konijnen dan en immobiliseer de linker achterpoten opnieuw in een gestrekte positie. 2) Leg beschermende matten op de bodem van de kooien om te voorkomen dat de ledematen van de konijnen vast komen te zitten en letsel veroorzaken.

2. Acupotomie interventie

OPMERKING: Verdoof de konijnen vóór het begin van de acupotomie-interventie met 3% pentobarbital-natrium (30 mg/kg) door middel van intraveneuze injectie met de oorrand.

  1. Bepaal de behandelpunten.
    1. Scheer de vacht van het kniegewricht van de linker achterpoot van het konijn af.
    2. Palpeer de mediale femurspierpees van het konijnenkniegewricht, de insertie van de rectus femorale pees, de insertie van de biceps femorispees en de slijmbeurs van ganzenvoet. Markeer pathologische verharding van lokale spieren met een steriele huidmarker. Desinfecteer het kniegewricht drie keer met afwisselend medische jodofoor en 75% medische alcohol.
  2. Operatie van acupotomie
    1. Houd het acupotomiemes evenwijdig aan de rijrichting evenwijdig aan de pees en de lengteas van de ledemaat.
    2. Gebruik de duim van de linkerhand om op de huid te drukken die het markeringspunt binnenkomt en beweeg zijwaarts zodat bloedvaten en zenuwen aan de ventrale kant van de duim worden gescheiden.
    3. Met het acupotomiehandvat in de rechterhand drukt u snel met een kleine kracht naar beneden, zodat het acupotomiemesje onmiddellijk door de huid gaat. Beweeg het acupotomiemes langzaam naar de lokale spierverharding en maak longitudinale sneden en zwaaien zijwaarts.
    4. Nadat de acupotomie-operatie is voltooid, desinfecteert u het kniegewricht opnieuw en brengt u een pleister aan.
  3. Voer deze handeling eenmaal per week uit gedurende 4 weken (Figuur 2).
    OPMERKING: 1) Als er geen verharding of koordachtig weefsel wordt aangeraakt bij het inbrengen van de pees van de vastus medialis, vastus lateralis, rectus femoris, biceps femoris of de anserine bursa, moet de acupotomienaald worden gebruikt om hun peesaanhechtingen direct los te maken. 2) Immobiliseer tijdens de acupotomie-interventie niet de linker achterpoten van konijnen in de acupotomiegroep en de modelgroep in extensiepositie.

3. Elastische modulus van quadriceps femoris

OPMERKING: 1) Dit experiment maakte gebruik van het real-time shear wave elastography (SWE) echografie diagnostisch instrument om de elastische modulus van de quadriceps femoris in vivo in elke groep konijnen te meten. 2) De tester moet een ervaren echoscopist zijn op het gebied van ultrasone detectie. Bij het meten moet de ultrasone sonde voorzichtig op het huidoppervlak van de quadriceps worden geplaatst om lokale spierspanning te voorkomen. Metingen moeten worden uitgevoerd wanneer het dier in een rustige toestand verkeert, zonder worsteling of activiteit. Als het dier actief is, wacht dan tot het kalm is voordat u de test uitvoert.

  1. Scheer de vacht om de huid in het quadricepsgebied van de linker achterpoot bloot te leggen.
  2. Gebruik conventionele tweedimensionale echografie om de musculo-abdomen van de quadriceps te lokaliseren en het interessegebied (ROI) te bepalen, ingesteld op een diepte van 1-2 cm.
  3. Start de SWE-modus voor inspectie.
    1. Stel het interessegebied gelijkmatig in op een cirkelvormig gebied met een diameter van 2 mm en het interessegebied op ~0,5-1 cm diep vanaf het huidoppervlak.
    2. Gebruik het ultrasone diagnostische instrument om een akoestische stralingskrachtimpuls te genereren om het spierweefsel te stimuleren en weefselelastografie te verkrijgen.
    3. Wacht 2-3 seconden totdat het beeld is gestabiliseerd en bevries het beeld. Activeer de Q-BOX-functie van het instrument om de Young's modulus van de quadricepsspier te meten.
    4. Wacht tot het systeem automatisch de maximale, minimale en gemiddelde waarden (eenheid: KPa) van Young's modulus van de ROI berekent. Selecteer drie ROI's op dezelfde diepte voor drie metingen en neem de gemiddelde waarde voor statistische analyse.
      NOTITIE: De tester moet een ervaren echoscopist zijn op het gebied van ultrasone detectie. Bij het meten moet de ultrasone sonde voorzichtig op het huidoppervlak van de quadriceps worden geplaatst om lokale spierspanning te voorkomen. Metingen moeten worden uitgevoerd wanneer het dier in een rustige toestand verkeert, zonder worsteling of activiteit. Als het dier actief is, wacht dan tot het kalm is voordat u de test uitvoert.

4. Meten van de contractiekracht van quadriceps femoris

OPMERKING: Na de meting van de contractiekracht van de quadriceps femoris werden de konijnen geëuthanaseerd door middel van luchtembolie onder narcose.

  1. Verdoof de konijnen met 3% pentobarbitalnatrium (30 mg/kg) intraveneus aan de oorrand. Om te bevestigen dat het juiste niveau van anesthesie is bereikt, moet u letten op een aanzienlijk verzwakte of afwezige hoornvliesreflex en de afwezigheid van pijn bij het vastklemmen van de huid met een hemostatische pincet. Voeg tijdens de anesthesie elke 15 minuten 2-3 druppels glijmiddel toe aan de ogen van de konijnen om te voorkomen dat de ogen van de konijnen uitdrogen.
  2. Leg de quadricepsspieren bloot en bevestig de spanningstransducer.
    1. Snijd de huid onder de knieschijf, langs de lengteas van de ledemaat omhoog tot aan de basis van de dij, en blijf de huid 3-4 cm naar boven snijden. Trek voorzichtig de huid en fascia eraf en leg de spier bloot. Snijd het patellaligament door en scheid voorzichtig de quadriceps van de iliacale overgang, waarbij de quadriceps in verbinding blijven met het iliacium.
    2. Ligate de chirurgische hechtingen op de peesovergang tussen de patella en de quadricepsspier. Rek de spier in zijn natuurlijke staat tot zijn volledige lengte en bevestig hem vervolgens aan de spanningstransducer. Houd de ligatielijn op de spier in een rechte lijn met de ligatielijn op de krachttransducer.
    3. Bevestig de spanningsopnemer aan de beugel. Sluit de signaalacquisitielijn op de spanningstransducer aan op de processor van het biosignaalacquisitiesysteem.
  3. Meet de contractiele prestaties van de quadricepsspier.
    1. Plaats de elektroden evenwijdig aan de buik van de quadriceps en vermijd elk contact tussen de elektroden.
    2. Druk op de oscilloscoopknop. Pas de positie van de krachttransducer op de beugel aan om de basislijn op nul te houden. Selecteer de stimulatieparameters van de stimulator met een golfbreedte van 5 ms en een vertraging van 10 ms.
    3. Gebruik eerst een enkele stimulus en pas de stimulusintensiteit geleidelijk aan vanaf nul met een increment van 0,1 V per keer. Observeer de veranderingen in de spiercontractiecurve en contractieamplitude totdat de maximale amplitude van de quadriceps is bepaald. Noteer het voor latere statistieken.
    4. Gebruik een clusterstimulus en gebruik de stimulusamplitude die de maximale amplitude van de enkele contractie induceert als basislijn om de spier continu te stimuleren en de stimulusfrequentie geleidelijk te verhogen. Observeer de veranderingen in de spiercontractiecurve totdat de maximale contractieamplitude (Pt) van de quadriceps is bepaald. Noteer het voor latere statistieken.
      OPMERKING: 1) Na elke spiercontractie moet de spier 30 seconden de tijd krijgen om te ontspannen, waarbij de spierbufferoplossing continu op de spier wordt gedruppeld. 2) Beoordeel tijdens de operatie de anesthesiestatus door de ooglidreflex, het ademhalingsritme, de spierontspanning en de huidknijpreactie van de konijnen te controleren.

5. De mechanische prestaties van de quadricepspees

  1. Voorbewerking: Meet op de dag van testen de lengte, breedte en dikte van de quadricepspees met een schuifmaat en installeer een speciale antislipklem in de vermoeiingstestmachine. Herhaal het laden en lossen 15x voor voorbewerking.
  2. Stressontspanningstest: Gebruik de sensor van 0 N tot 100 N, rek deze uit met een snelheid van 5 mm/min totdat deze de vereiste lengte heeft bereikt en begin dan met het verzamelen van gegevens. Stel de tijd voor het verzamelen van computergegevens in op t (0) en verzamel gegevens elke 0.1 s, gedurende 1,800 s. Noteer na het bereiken van de ingestelde tijd gegevens en curves.
  3. Trekproef: Gebruik de sensor van 0 N tot 100 N en rek deze uit met een snelheid van 5 mm/min tot de maximale belasting totdat het sample uit elkaar wordt getrokken. Bereken na de test de maximale verplaatsing, de uiteindelijke belasting en de stijfheid van het sample.

6. Druk van het gewrichtscontactoppervlak en druk per oppervlakte-eenheid van het kraakbeen

  1. Bevestig de dijbeen- en scheenbeenmonsters aan beide zijden in een rechte positie op het armatuur en voer een voorspanningstest uit. Meet het geschatte bereik van het kniegewricht, knip het drukgevoelige papier in dezelfde vorm en sluit het af met plasticfolie.
  2. Plaats het verzegelde drukgevoelige papier tussen het scheenbeen en het dijbeen en voer een druktest uit op het kniegewricht met een druk van 5 mm/min en een maximale druk van 50 N. Houd de druk gedurende 2 minuten vast totdat deze 50 N bereikt wanneer het drukgevoelige papier stabiel gekleurd is.
  3. Verwijder na 2 minuten het drukgevoelige papier, fixeer het gekleurde oppervlak op een vel papier van A4-formaat en maak afbeeldingen met de schaal opzij.
  4. Upload de afbeelding naar de computer. Gebruik de software waarnaar wordt verwezen voor oppervlaktemeting en meersegmentmeting voor onregelmatige cijfers. Meet de druk aan de binnen- en buitenkant van de gewrichten van het dijbeen en het scheenbeen en noteer de resultaten.

7. Safranin O/Fast Green kleuring van het kraakbeen van het kniegewricht

  1. Neem na het einde van de acupotomie-interventie de kraakbeen-subchondrale botcomplexweefsels en bedin ze in paraffine. Snijd de voorbereide weefselwasblokken in plakjes en bereid glaasjes voor. Deparaffiniseer de geprepareerde weefselglaasjes met omgevingswasoplossing (I) en omgevingswasoplossing (II) elk gedurende 15 minuten; dompel ze vervolgens achtereenvolgens in xyleen en watervrije ethanol (1:1), watervrije ethanol (I), 95% ethanol, 85% ethanol en 75% ethanol, 2-5 minuten per stap; En tot slot, laat ze 15 minuten weken in gedestilleerd water.
  2. Voer kleuring uit.
    1. Kleur de objectglaasjes gedurende 1 minuut met een Fast Green-oplossing. Haal tijdens dit proces de objectglaasjes uit de oplossing en observeer ze onder de microscoop totdat het weefsel donkergroen gekleurd is.
    2. Kleurscheiding: Spoel de overtollige Fast Green-oplossing af met ultrapuur water. Week de glaasjes snel in 1% azijnzuuroplossing gedurende 5 - 10 seconden.  Spoel het glaasje opnieuw af met ultrapuur water.
    3. Kleur de objectglaasjes gedurende 10-15 minuten in Safranine O-oplossing totdat het kraakbeen rood gekleurd is.
  3. Dehydrateer en verhelder het weefsel, sluit de glasplaatjes af en observeer ze onder de microscoop.
    1. Week de objectglaasjes achtereenvolgens 3 - 5 seconden in 75% ethanol, 85% ethanol, 95% ethanol en 100% ethanol.
    2. Dompel de objectglaasjes achtereenvolgens gedurende 10 minuten in omgevingswasoplossing (I) en omgevingswasoplossing (II). Haal de glaasjes eruit en laat het neutrale harsachtige medium op de voorkant van de glaasjes vallen, vermijd het weefsel. Plaats de rand van het dekglaasje op het glaasje en leg het dan langzaam neer om de neutrale balsem te bedekken. Verwijder de lucht en vermijd luchtbellen. Veeg het extra xyleen en de neutrale balsem eraf en laat het een nacht op kamertemperatuur staan.
    3. Bekijk de objectglaasjes onder de microscoop en maak beelden. Selecteer voor elke groep zes monsters van konijnenkniekraakbeen en selecteer willekeurig vier verschillende weergavevelden voor elk monster voor evaluatie. Scoor de kraakbeenhistologie van elke groep volgens de Mankin-methode (tabel 1).

8. Statistische analyse

  1. Gegevens uitdrukken als gemiddelde ± standaarddeviatie (figure-protocol-1 ± s).
  2. Voer eenrichtingsvariantieanalyse (ANOVA) en LSD-test uit voor het bepalen van de statistische significantie van vergelijkingen met meerdere groepen.
  3. Beschouw verschillen die statistisch significant zijn wanneer P < 0,05.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Experimentele resultaten van mechanische eigenschappen van quadriceps femoris en pees
Om het effect van acupotomologie op de mechanische eigenschappen van quadriceps femoris bij konijnen met KOA te evalueren, gebruikten we respectievelijk real-time shear wave elastische echografie en een spierspanningstransducer. Vergeleken met de controlegroep was Young's modulus van de quadriceps femoris in de KOA-groep afgenomen (P < 0,05). Vergeleken met de KOA-groep was Young's modulus van de acupotomieg...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Een geschikt diermodel is een van de belangrijkste factoren om experimentele doelstellingen te bereiken en een specifieke wetenschappelijke vraag op te helderen. Deze studie was gebaseerd op de theorieën van "Zongjin die botten controleert en gewrichten smeert" en "mechanische onbalans" in de acupotomologie, met als doel de wetenschappelijke connotatie achter de behandeling van KOA te verklaren door "spieren en pezen te moduleren om botaandoeningen te behandelen" in acupotomietherapie. Met andere woorden, acupotomie verb...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben geen belangenconflicten om bekend te maken.

Dankbetuigingen

Dit werk werd ondersteund door de National Natural Science Foundation of China (nr. 82074523,82104996).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
AcupotomieBeijing Zhuoyue Huayou Medical Devices Co., Ltd.0,4 x 40 mm
Connect Cast Orthopedisch GipsbandSuzhou Connect Medical Technology Co.,Ltd.KCP0615,0 cm x 360 cm
Dubbelzijdig schuimtapeDeli Group Co.,Ltd.NO.3041636 mm x 5 yard x 2,5 mm
OmgevingsontwasoplossingWuhan Servicebio Technology Co.,Ltd.G1128
Absoluut ethanolBeijing Hengkangda Medicine Co., Ltd.
Fast Green-oplossingWuhan Servicebio Technology Co.,Ltd.G1031
Fast green FCFSigma, Amerika2353-45-9
VermoeidheidstestmachineBOSE, AmerikaBose Electro Force 3300
Vierkanaals fysiologisch recorderChengdu Instrumeny FrctoryRM-6420
FPD-305EFuji, Japan
FPD-306EFuji, Japan
HematoxylinfaseWuhan Servicebio Technology Co.,Ltd.G1005
Medisch jodofoordesinfectiemiddelShan Dong Lircon Medical Technology Co., Ltd.
Medisch tapeShandong Rongjian Sanitary Products Co., Ltd.2004021,5 x 500 cm
SpierspanningstransducerChengdu Instrumeny FrctoryJH-2204005, 50 g
PrescaleFuji, Japan
Real-time SWE ultrasone diagnostisch instrumentSuperSonic Imagine SA, FrankrijkSuperSonic Imagine AixPlorer
Rhamsan-gomWuhan Servicebio Technology Co.,Ltd.WG10004160
Safranine OSigma, Amerika477-73-6
Safranine O-oplossingWuhan Servicebio Technology Co.,Ltd.G1015
Statistisch pakket voor de sociale wetenschappen (SPSS)IBM, Amerika

Referenties

  1. Roseti, L., Desando, G., Cavallo, C., Petretta, M., Grigolo, B. Articular cartilage regeneration in osteoarthritis. Cells. 8 (11), 1305(2019).
  2. Cui, A. Y., et al. Global, regional prevalence, incidence and risk factors of knee osteoarthritis in population-based studies. EClinicalMedicine. 29-30, 100587(2020).
  3. Miyauchi, A., et al. Alleviation of murine osteoarthritis by deletion of the focal adhesion mechanosensitive adapter, Hic-5. Sci Rep. 9 (1), 15770(2019).
  4. Wright, T. Biomechanical factors in osteoarthritis: the effects of joint instability. HSS J. 8 (1), 15-17 (2012).
  5. Patsika, G., Kellis, E., Kofotolis, N., Salonikidis, K., Amiridis, I. G. Synergetic and antagonist muscle strength and activity in women with knee osteoarthritis. J Geriatr Phys Ther. 37 (1), 17-23 (2014).
  6. Blalock, D., Miller, A., Tilley, M., Wang, J. X. Joint instability and osteoarthritis. Clin Med Insights. Arthritis and Musculoskelet Disord. 8, 15-23 (2015).
  7. Henriksen, M., Christensen, R., Danneskiold-Samsøe, B., Bliddal, H. Changes in lower extremity muscle mass and muscle strength after weight loss in obese patients with knee osteoarthritis: a prospective cohort study. Arthritis Rheum. 64 (2), 438-442 (2012).
  8. Schwartz, A. G., Lipner, J. H., Pasteris, J. D., Genin, G. M., Thomopoulos, S. Muscle loading is necessary for the formation of a functional tendon enthesis. Bone. 55 (1), 44-51 (2013).
  9. Felson, D. T. Osteoarthritis as a disease of mechanics. Osteoarthr Cartil. 21 (1), 10-15 (2013).
  10. Ma, S. N., et al. Effect of acupotomy on FAK-PI3K signaling pathways in KOA rabbit articular cartilages. Evid Based Complement Alternat Med. 2017, 4535326(2017).
  11. Yu, P., et al. Research progress of experimental animal models of knee osteoarthritis. China Medical Herald. 16 (27), 41-44 (2019).
  12. Li, L. H., et al. Research progress of rabbit knee osteoarthritis model. Journal of Jiangxi University of Chinese Medicine. 31 (4), 108-113 (2019).
  13. Zhang, W., Gao, Y., Guo, C. Q., Khattab, I. Z. A., Mokhtari, F. Effect of acupotomy versus electroacupuncture on ethology and morphology in a rabbit model of knee osteoarthritis. J Tradit Chin Med. 39 (2), 229-236 (2019).
  14. An, X. Y., et al. Chondroprotective effects of combination therapy of acupotomy and human adipose mesenchymal stem cells in knee osteoarthritis rabbits via the GSK3 beta-cyclin D1-CDK4/CDK6 signaling pathway. Aging Dis. 11 (5), 1116-1132 (2020).
  15. Guo, C. Q., Liu, N. G. Analysis on the distribution features of Ashi points in Jingjin disorders. Journal of Basic Chinese Medicine. 17 (8), 899-900 (2011).
  16. Guo, C. Q., et al. Effects of acupotomy therapy on tenderness point around knee joint in patients with knee osteoarthritis: a randomized controlled clinical trial. Journal of Chengdu University of Traditional Chinese Medicine. 33 (3), 3-5 (2010).
  17. Zhao, Y., Dong, F. H., Zhang, K. Analysis of soft tissues mechanical changes and treatment of meridian tendon pain. Beijing Journal of Traditional Chinese Medicine. (9), 705-707 (2008).
  18. Zhang, L. P., Cheng, F., Liu, D. Y., Zhu, L. G. Application progress of biomechanics in knee osteoarthritis. Chinese Archives of Traditional Chinese Medicine. 34 (7), 1644-1647 (2016).
  19. Thomas, A. C., Sowers, M., Karvonen-Gutierrez, C., Palmieri-Smith, R. M. Lack of quadriceps dysfunction in women with early knee osteoarthritis. J Orthop Res. 28 (5), 595-599 (2010).
  20. Li, L., et al. Effects of unloaded muscle atrophy on contractile characteristics of hind-limb skeletal muscles in mice. Space Med Med Eng. 25 (5), 322-325 (2012).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Tags

Acupotomiebehandelingkonijnenmodel voor KOAbiomechanische eigenschappenkraakbeenbeschermingmusculus quadriceps femorispeesmechanicakraakbeenhistologiespiercontractieweefselkleuring