Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Du-moxibustie in een muismodel van spondylitis ankylopoetica

2.7K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/65586

⸱

27 oktober 2023

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1School of Acupuncture-Moxibustion and Tuina, Shandong University of Traditional Chinese Medicine, 2School of First Clinical Medicine, Shandong University of Traditional Chinese Medicine, 3External Treatment Center, Affiliated Hospital of Shandong University of Traditional Chinese Medicine

In dit artikel

Samenvatting

Dit artikel beschrijft in detail de operatieprocedures en voorzorgsmaatregelen die moeten worden genomen tijdens Du-moxibustie bij de behandeling van spondylitis ankylopoetica bij experimentele muizen.

Samenvatting

Spondylitis ankylopoetica (AS) is een progressief verergerende en invaliderende vorm van artritis die voornamelijk het axiale skelet aantast. Deze ziekte treft voornamelijk de wervelkolom en het sacro-iliacale gewricht. Fusie van de wervelkolom en het sacro-iliacale gewricht kan optreden in het latere stadium van de ziekte, wat resulteert in stijfheid van de wervelkolom en kyfose, evenals moeite met lopen, wat de kwaliteit van het werk en de dagelijkse activiteiten ernstig aantast en een zware belasting vormt voor de patiënt, het gezin en de samenleving. Er is steeds meer aandacht voor niet-medicamenteuze therapie als alternatieve therapie voor AS. Moxibustie is een oude therapeutische techniek die wordt gebruikt in de Traditionele Chinese Geneeskunde (TCM). Du-moxibustietherapie, een unieke en innovatieve uitwendige behandeling ontwikkeld op basis van gewone moxibustie, heeft een duidelijk therapeutisch effect op AS. Du-moxibustie combineert vakkundig de compatibele technieken van TCM om meridianen, acupunten, Chinese kruidengeneeskunde en moxibustie te integreren. Dit artikel beschrijft de operatieprocedures en voorzorgsmaatregelen die moeten worden genomen tijdens Du-moxibustie in experimentele muizen in detail om een experimentele basis te bieden voor de studie van het mechanisme van Du-moxibustie bij de behandeling van AS.

Inleiding

Spondylitis ankylopoetica (AS) is een progressief verergerende en invaliderende vorm van artritis die voornamelijk het axiale skelet aantast. Volgens het laatste epidemiologische onderzoek lijdt ~0,01%-1,8% van de mensen in de wereld aan deze aandoening1, van wie de meesten jonge mannen zijn (man-vrouwverhouding is ~2-3:1)2. De incidentie van AS in de Chinese bevolking is 0,2%-0,4%. Deze ziekte treft voornamelijk de wervelkolom en het sacro-iliacale gewricht. Fusie van de wervelkolom en het sacro-iliacale gewricht kan optreden in de latere stadia van de ziekte, wat resulteert in stijfheid van de wervelkolom en kyfose, evenals moeite met lopen, wat de kwaliteit van het werk en de dagelijkse activiteiten ernstig aantast en een zware belasting vormt voor de patiënt, het gezin en de samenleving1. Momenteel is er geen definitieve oplossing voor AS en de aangeboden behandelingen, zowel farmacologisch als niet-farmacologisch, zijn voornamelijk gericht op het verlichten van pijn, het vertragen van ziekteprogressie en het verbeteren van de kwaliteit van leven. Omdat de farmacotherapeutische mogelijkheden de laatste jarenzeer beperkt zijn 3, is er de laatste jaren steeds meer aandacht besteed aan niet-farmacotherapie, die een alternatieve therapie voor AS is geworden. In China geven patiënten vaak de voorkeur aan een uitwendige behandeling bestaande uit Traditionele Chinese Geneeskunde (TCM), die kleine bijwerkingen en veel gemak heeft tijdens de behandeling.

Moxibustie is een oude therapeutische techniek die wordt gebruikt in de TCM. Du-moxibustie is een uitwendige behandelingstechniek die bestaat uit "medicinale moxibustie met schuim" op het wervelkolomsegment van de Du-meridiaan. Het wordt voornamelijk gebruikt bij de behandeling van AS en heeft veiligheid en effectiviteit aangetoond. Vergeleken met gewone moxibustie heeft Du-moxibustie de kenmerken van een breed moxibustiegebied, een grote moxakegel, sterke vuurkracht en hoge temperatuur4. Een systematische review en meta-analyse suggereren dat moxibustie een effectieve aanvullende behandeling is voor AS5. Een recente studie bevestigde dat de klinische symptomen en sommige ontstekingsfactoren van AS-patiënten werden verbeterd door moxibustie6. Studies hebben aangetoond dat Du-moxibustie het hersengehalte van β-endorfine kan verhogen en een centraal pijnstillend effect kan uitoefenen7, de expressie van het HLA-B27-gen 8 kan verlagen en het recidiefpercentage van AS kan vertragen. Du-moxibustie heeft ook een verbeterend effect op de progressie van AS door de ontstekingsindex ESR (ESR) en niveaus van C-reactief proteïne (CRP), C-terminaal peptide van type I collageen (CTX-I) en Dickkopf1-eiwit (DKK1) te verlagen9,10.

Een andere klinische studie toonde aan dat Du-moxibustie de ongeordende T-celsubsets, Ig, en complement C3 verder kan aanpassen om het immuunmechanisme in evenwicht te brengen11. In termen van botmetabolisme kan moxibustie de stijging van serumalkalische fosfatase (ALP) en serumfosfor (SP) remmen, serumcalcium (S-Ca), botmineraaldichtheid (BMD) en botsterkteverhogen12. Bovendien kan Du-moxibustie de spinale functie op meerdere punten herstellen om vermoeidheidssymptomen bij AS-patiënten te verlichten13. Sommige dierstudies hebben het mogelijke mechanisme van moxibustie bij de behandeling van AS aan het licht gebracht. Een studie wees uit dat moxibustie de algehele gezondheidstoestand aanzienlijk verbeterde, de niveaus van pootdikte verminderde en de niveaus van IL-1β, PGE2, IL-6 en TNF-α in de ligamentweefselmonsters van de wervelkolom verlaagde. Metabole routeanalyse koppelde de geïdentificeerde metabolieten aan de TCA-cyclus, evenals lipiden, aminozuren, darmflora en purinemetabolisme14. Een andere studie toonde aan dat moxibustie de expressie van pro-inflammatoire cytokines, IL-1β, TNF-α, IL-17 en IL-6, onderdrukte; verlaagde de mRNA-niveaus van RANKL, RANK, ALP en OCN; en verbeterde de histopathologische kenmerken in AS-muizen15.

Hoewel deze studies suggereren dat moxibustie effectief kan zijn bij de behandeling van AS, is er meer onderzoek nodig om deze bevindingen te bevestigen en het optimale behandelingsprotocol voor moxibustie bij patiënten met AS te bepalen. Ons team creëerde en wijzigde de moxibustietherapie op basis van de basistheorie en praktische werking van traditionele Chinese moxibustie, die al meer dan 35 jaar op grote schaal wordt uitgevoerd en toegepast in de Chinese klinische praktijk. Hoewel er weinig studies van hoge kwaliteit zijn over de behandeling van AS door Du-moxibustie, is de indicatie ervan bij de behandeling van AS ondersteund door bewijs. Het mechanisme van de behandeling van AS met Du-moxibustie is echter verdere studie waard. Dierstudie is een belangrijke methode om het mechanisme van Du-moxibustie bij de behandeling van AS te onderzoeken. De klinische werking van Du-moxibustie is relatief volwassen, maar wordt zelden gebruikt in de studie van het mechanisme in dierproeven. Dit artikel beschrijft in detail de werking en voorzorgsmaatregelen die moeten worden genomen tijdens Du-moxibustie bij de behandeling van AS-experimentele muizen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

Alle dierproeven zijn goedgekeurd door de Experimental Animal Welfare Ethics Review Committee van de Shandong University of Traditional Chinese Medicine (nr. SDUTCM20230831301).

1. Voorbereiding van dieren

  1. Bepaal vooraf de proefgroepen en het aantal dieren per groep.
  2. Kies mannelijke BALb/c-muizen, huisvest ze bij een constante temperatuur van 22 ± 1 °C, een constante luchtvochtigheid van 60 ± 5% en een lichtomgeving van 12 uur per dag.

2. Vaststelling van het AS-muismodel

OPMERKING: Het AS-model werd geïnduceerd met kraakbeenproteoglycaan (PG), wat een klassieke modelleringsmethode is 16,17,18,19,20,21. Muizen van de BALB/c-stam werden herhaaldelijk geïmmuniseerd met PG om tendinitis en spondylitis te induceren. Zie de Materiaaltabel voor details met betrekking tot de materialen, reagentia en instrumenten die in dit protocol worden gebruikt.

  1. Gebruik een pipet van 200 μl om 200 μl PG en CFA (of IFA) in een centrifugebuisje van 1,5 ml op te zuigen. Schud zachtjes om de vloeistof in de centrifugebuis te mengen.
  2. Plaats de centrifugebuis in de weefselmolen voor homogenisatie en incubeer vervolgens 4 minuten op ijs. Herhaal 5x. Stel de volgende parameters in de weefselmolen in: 60 Hz, malen 30 s, interval 10 s voor een totaal van 6 cycli.
  3. Extraheer 0,2 ml geëmulgeerd PG-eiwit uit de centrifugebuis met een spuit van 1 ml.
  4. Pak de muis vast en bevestig deze met de linkerhand. Leg de muis in rugligging en houd de kop lager dan de staart om schade aan de buikorganen te voorkomen wanneer de spuit wordt ingebracht.
  5. Steriliseer de buik met alcoholdoekjes met de rechterhand.
  6. Steek met de spuit in de rechterhand de naald onderhuids iets links of rechts van de linea alba ventralis in de onderste helft van de buik.
  7. Duw de naald 3-5 mm onderhuids evenwijdig aan de middenbuiklijn en duw de naald vervolgens in de buikholte in een hoek van 45° ten opzichte van de huid.
  8. Penetreer het buikvlies, trek de naaldplug terug en injecteer langzaam het geëmulgeerde PG-eiwit.

3. Du-moxibustie

OPMERKING: Bereid van tevoren de drie belangrijkste grondstoffen voor Du-moxibustie voor (Figuur 1).

  1. Bereid moxa-kegels voor. Neem het fluweel in de hand, met twee handpalmen in tegengestelde richtingen en oefen een draaiende kracht uit om het fluweel in een spoelvorm te wrijven (Figuur 2)
  2. Snijd de gember in kleine stukjes en pureer deze in een sapcentrifuge (Figuur 3). Filtreer de gemberpuree door katoenen gaasjes. Scheid het gembersap en de gembermodder van de gemberpuree om je voor te bereiden op de volgende stap.
  3. Bereid 10 g gembermodder en 20 ml gembersap en doe ze in papieren bekers voor later gebruik.
  4. Weeg 0,1 g TCM-poeder af (een mengsel van kaneelpoeder, kruidnagelpoeder, notopterygiumpoeder, antharidinepoeder en kunstmatige muskus)22 en maal het in een vijzel.
  5. Plaats de muizen in de anesthesie-inductiebox van het anesthesieapparaat voor dieren en verdoven ze met een mengsel van 2-3% isofluraan en zuurstof met een stroomsnelheid van 2 L/min.
  6. Beoordeel de diepte van de anesthesie door in eerste instantie de afwezigheid van een schrikreflex te observeren en controleer het niveau van chirurgische anesthesie door te controleren op de afwezigheid van een pedaalreflex als reactie op een zachte teenknijp.
  7. Nadat de muis de anesthesie van het chirurgische vlak heeft bereikt, haalt u hem uit de doos en bevestigt u hem in buikligging op de operatietafel. Lijn de mond en neus van de muis uit met de uitlaat van het verdovingsmiddel.
  8. Dien anesthesie toe via een masker dat aan het anesthesieapparaat is bevestigd, waardoor isofluraan en zuurstof worden toegediend via een niet-rebreathing-circuit. Handhaaf de anesthesie en houd de muis op een verwarmingskussen van 37 °C gedurende de gehele operatieprocedure. Breng glijmiddel aan op de ogen om uitdroging te voorkomen.
  9. Lokaliseer de acupunten en identificeer het stimulatiegebied (Figuur 4).
  10. Scheer het haar op de rug van de muis totdat de vleeskleurige huid op de rug van de muis zichtbaar is. Zorg ervoor dat de breedte van de ontharing ~1.5 cm is en dat de lengte van de zevende halswervel tot de staartwervel is (Figuur 5A).
  11. Breng het bereide gembersap met een wattenstaafje aan op het geschoren gebied (Figuur 3).
  12. Strooi het TCM-poeder gelijkmatig met een schrijfborstel op de middenlijn van de achterkant van de muis en bedek het met moerbeipapier (Figuur 5B-D).
  13. Maak een trapeziumvormige gemberkolom van 6 cm lang, 1,5 cm breed en 3 mm dik met gembermodder. Bevestig de gemberkolom op het moerbeipapier (Figuur 5E).
  14. Maak een groef boven de middellijn van de gemberkolom (Figuur 3) en plaats de moxakegel op de gemberkolom.
  15. Steek de moxakegel aan en plaats een nieuwe moxakegel nadat de vorige is opgebrand. Controleer de stevigheid van de gemberkolom om te voorkomen dat de muis verbrandt, waarbij in totaal drie kegels worden verbrand (Figuur 5F).
  16. Veeg na het verbranden van de moxa-kegels de gember en het TCM-poeder weg en maak de achterkant van de muis schoon. Stop de anesthesie op dit punt.
  17. Laat de muis weer bij bewustzijn komen in een nieuwe kooi met onbeperkte toegang tot voedsel en water. Plaats de kooi op een verwarmd kussen om het herstelproces te vergemakkelijken. Houd het dier in de gaten totdat het weer voldoende bij bewustzijn is.
  18. Zodra de muis volledig is hersteld, bevestigt u de aanwezigheid van de oprichtreflex voordat u deze terugplaatst in zijn normale behuizing.
    NOTITIE: Tijdens de operatie is het noodzakelijk om de mentale toestand van de muizen te controleren om een zwakke ademhaling te voorkomen. Voorkom verbranding, maar houd de muizen warm en vermijd kneuzingen van de klauwen en staart.

4. Evaluatie van de artritis-index (AI)

  1. Evalueer de AI-score drie keer: vóór het modelleren, na het modelleren en na de behandeling. De beoordelingsnormen zijn als volgt: 0, geen roodheid of zwelling; 1, lichte roodheid of zwelling in een paar tenen; 2, roodheid en zwelling in de meeste teengewrichten en tenen; 3, ernstige roodheid en zwelling in de voeten en onder het enkelgewricht; en 4, roodheid en zwelling in voeten en enkelgewricht23.
  2. Bereken de AI-scores van alle vier de poten, met een maximale waarde van 16.

5. Rotarod-test

NOTITIE: De rotarod-test wordt gebruikt om de motorische coördinatie en het evenwicht te beoordelen door de tijd te registreren die de muizen op de roterende trommel doorbrengen. Dit experiment bestond uit drie proeven, gescheiden door intervallen van 20 minuten. De officiële testgegevens werden geregistreerd van de derde proef, waarbij de eerste twee dienden als trainingsoefeningen.

  1. Plaats de muizen op roterende trommels die draaien onder continue acceleratie van 4 tot 40 tpm gedurende 300 s24.
  2. Meet de latentietijd (de tijd totdat de muis van de staaf valt). Zorg voor vulling om letsel te voorkomen wanneer het eraf valt.

6. Open veldtest (OFT)

OPMERKING: De OFT wordt gebruikt om de staat van autonome beweging te evalueren, met als doel pathologisch gedrag te identificeren. Vier vierkante open veldarena's (50 cm x 50 cm x 40 cm) werden bij elkaar geplaatst om het apparaat te vormen. De bodem van de doos was verdeeld in negen gelijke vierkanten.

  1. Beheers het achtergrondgeluid van het laboratorium tot onder de 65 dB.
  2. Veeg het hele apparaat voor elke proef af met 75% ethanol.
  3. Plaats alle muizen 1 uur voor de test in de testruimte, zodat ze zich kunnen aanpassen aan hun omgeving.
  4. Zet de muizen in de vierkante arena's in het open veld en laat ze 10 minuten op verkenning gaan.
  5. Noteer de totale afstand en bewegingssnelheid gedurende 10 minuten.

7. Euthanasie en monstername

  1. Plaats de muis in de anesthesie-inductiebox en verdoven deze met een mengsel van 2-3% isofluraan en zuurstof met een stroomsnelheid van 2 l/min. Zodra de muis in een staat van diepe anesthesie komt, bevestigd door een gebrek aan pedaalreflex, brengt u hem over naar de operatietafel voor onderhoudsanesthesie.
  2. Pak de muis vast en bevestig hem met de niet-dominante hand.
  3. Druk lichtjes op het gebied rond de ogen om de oogbollen verstopt te maken en uit te steken.
  4. Gebruik een schaar om de snorharen van de muis te knippen om hemolyse veroorzaakt door haren te voorkomen.
  5. Bevestig de diepte van de anesthesie door te controleren op de afwezigheid van een pedaalreflex als reactie op een teenknijp. Gebruik een pincet om de oogbol vast te pakken en snel te verwijderen, zodat het bloed vanuit de oogkas in een microcentrifugebuis kan stromen.
    OPMERKING: Alternatieve methoden voor bloedafname, zoals hartpunctie, kunnen ook worden gebruikt.
  6. Wanneer de bloeddruppelsnelheid vertraagt, drukt u zachtjes op het hartgebied van de muis om het pompen van het bloed te versnellen en meer bloed te verkrijgen. Euthanaseer vervolgens de muis met behulp van cervicale dislocatie.
  7. Houd het been net boven het enkelgewricht met een pincet in de niet-dominante hand. Knip vervolgens het been net boven het enkelgewricht af met een schaar.

8. Histologische analyse

  1. Dompel de enkelmonsters gedurende meer dan 24 uur onder in 4% paraformaldehyde. Ontkalken in 10% EDTA (pH = 7,4) gedurende 1 maand.
  2. Week de monsters gedurende 2 uur in 4% paraformaldehyde.
  3. Week de monsters vervolgens in een gradiënt van toenemende ethanolconcentraties (70%, 80%, 90%, 100%, 100%, 100%). Laat elke ethanolconcentratie 1 uur weken.
  4. Week de monsters gedurende 3 uur in xyleen.
  5. Dompel de enkelmonsters gedurende 7 uur onder in paraffine. Bewaar paraffineblokjes in een koelkast van 4 °C.
  6. Snijd paraffineblokken tot een dikte van 6 μm met behulp van een semi-automatische paraffinesnijmachine.
  7. Week de plakjes 4 x 5 minuten in xyleen om het ontwaxen te voltooien.
  8. Week de plakjes in een gradiënt van afnemende ethanolconcentraties (100%, 100%, 95%, 75%) gedurende elk 2 minuten. Week 2 minuten in gedestilleerd water.
  9. Kleur de plakjes gedurende 10 minuten met hematoxyline en spoel ze af met gedestilleerd water gedurende 5 s.
  10. Week de plakjes 30 s in de differentiatievloeistof en spoel ze 5 s af met gedestilleerd water.
  11. Kleur de plakjes 1 minuut met eosine en spoel ze 3 minuten af met gedestilleerd water.
  12. Week de plakjes in een gradiënt van toenemende ethanolconcentraties (80%, 95%, 100%, 100%) gedurende elk 1 minuut. Week 3 x 3 minuten in xyleen en sluit de plakjes25.

9. Enzymgekoppelde immunosorbenttest (ELISA)

  1. Meet de IL-17- en TNF-α concentraties in plasma met behulp van de respectievelijke kits volgens de instructies van de fabrikant.

10. Statistische analyse

  1. Druk de gegevens uit als gemiddelde ± standaardfout van het gemiddelde (SEM).
  2. Bepaal de significantie door middel van eenrichtingsvariantieanalyse (ANOVA) of tweerichtingsherhaalde metingen ANOVA, gevolgd door de post-hoctests van Bonferroni of Tamhane T2.
  3. Beschouw P < 0,05 als statistisch significant.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

PG-geïnduceerde modelmuizen ontwikkelden symptomen van perifere artritis, gekenmerkt door roodheid en zwelling van de ledematen en tenen, en ontwikkelden geleidelijk axiale artritis al in week 14, wat sterk lijkt op de manifestatie van AS. Daarom werd het AS-muismodel als succesvol beschouwd als de artritis-index (AI) 14 weken na de laatste injectie meer dan 3 punten bedroeg22. Wanneer de poten van de muizen gezwollen leken, werd de Du-moxibustie behandeling eenmaal per week uitgevoerd voor een to...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

AS manifesteert zich klinisch als pijn in de rug, lumbale en gewrichtszwelling, en misvorming van de wervelkolom en gewrichtsstijfheid kunnen in ernstige gevallen optreden26. Vroege diagnose en behandeling kunnen de kwaliteit van leven verbeteren, het aantal invaliditeiten verminderen en de prognoses van patiënten met AS verbeteren. Volgens de traditionele Chinese geneeskunde (TCM) wordt aangenomen dat AS wordt veroorzaakt door een tekort aan Yang in de nieren en de Du-meridiaan, evenals een opeen...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben geen belangenconflicten te melden.

Dankbetuigingen

Dit werk werd ondersteund door het algemene programma van de National Natural Science Foundation of China (nr. 82174491) en het Qilu School of Traditional Chinese Medicine Academic School Inheritance Project (nr. Lu Weihan [2020]132). Met dank aan het Laboratory Animal Center van de Shandong University of Traditional Chinese Medicine voor het bieden van experimentele omstandigheden.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

```html
Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
10% EDTAShanghai Macklin Biochemical Co., Ltd.,Shanghai, China
alcohol padsHYNAUT, Qingdao Hainuo Biological Engineering Co., LTD, Qingdao, China
anesthesia machineMedical Supplies & Services INT. LTD, Keighley, UK
centrifuge tubesAxygen, Corning, NewYork, UAS
complete Frech's adjuvant (CFA)aladdin,Shanghai, ChinaF393378
cotton ballHenan RUIKE MEDICAL Equipment Co., Ltd.,Xinxiang, China
cotton gauzeHenan RUIKE MEDICAL Equipment Co., Ltd.,Xinxiang, China
cutting boardself-preparation
decorin from bovine articular cartilageSigma-Aldrich, MO, USAD8428
depilatory creamVeet, Reckitt Benckiser (China) Investment Co. LTD, Shanghai, China
electronic scaleShanghai Yajin Electronic Technology Co., Ltd.,Shanghai, China
Eppendorf tubeAxygen, Corning, NewYork, UAS
eye lubricantBeijing Shuangji Pharmaceutical Co., LTD., Beijing, China
gingerself-preparation
GraphPad Prism 7 softwareGraphPad Software,Boston, USA
hair clipperSuper human Group CO LTD, Jinhua, China
heating padsShenzhen Leshuo Tech Co., Ltd.,Shenzhen, China
incomplete Freund’s adjuvant (IFA)aladdin,Shanghai, ChinaF393371
injection syringeShandong Xinhua Ande Medical Supplies Co., LTD, Zibo, China
isofluraneShenzhen Rayward Life Technology Co., LTD, Shenzhen, ChinaR510-22-10
joss stickShijiazhuang Lidu Fragrant Industry Co., LTD.,Shijiazhuang, China
juicerBraun (Shanghai) Co., Ltd.,Shanghai, China
knifeself-preparation
lighterZhejiang tiger-lighter Co. LTD
mortarLuoyang Yinai Ceramic Technology Co., LTD.,Luoyang, China
Mouse IL-17 ELISA Kitabsin, Shanghai, Chinaabs520009-96T
Mouse TNF-α ELISA KitWuhan Sanying, Wuhan, ChinaKE10002
mulberry paperYishui County Mulinsang paper Co., LTD, Linyi, China
OFTXinruan,Shanghai, ChinaXR-XZ301
paper cupself-preparation
pipettesOXFORD BIO INSTRUMENTS INC.,Oxford, UK
refined moxa velvetself-preparation
rotarodXinruan,Shanghai, ChinaXR-6C
scientz-48L cryogenic high throughput tissue grinderNingbo Xinzhi Biotechnology Co., LTD
scissorsShandong Jiaren Medical Supplies Co., Ltd., Zibo, China
semi-automatic paraffin sectioning machineLeica Camera AG, Watznach, Germany
SPSS 25.0 softwareInternational Business Machines Corporation, NewYork, UAS
TCM powderself-preparation
tipsBiosharp, Labgic, Beijing, China
writing brushYishui County Mulinsang paper Co., LTD, Linyi, China
```

Referenties

  1. Sieper, J., Poddubnyy, D. Axial spondyloarthritis. Lancet. 390 (10089), 73-84 (2017).
  2. Lee, W., Reveille, J. D., Weisman, M. H. Women with ankylosing spondylitis: a review. Arthritis Rheum. 59 (3), 449-454 (2008).
  3. Sari, İ, Öztürk, M. A., Akkoç, N. N. of ankylosing spondylitis. Turk J Med Sci. 45 (2), 416-430 (2015).
  4. Zhang, L., et al. Governor vessel moxibustion: Ancient Chinese medical technology with new vitality. Chin J Integr Med. 23 (5), 396-400 (2017).
  5. Hu, J., et al. Moxibustion for the treatment of ankylosing spondylitis: a systematic review and meta-analysis. Ann Palliat Med. 9 (3), 709-720 (2020).
  6. Liu, Y., Wang, P., Sun, Y. Y., Qu, J., Li, M. Efficacy of thunder-fire moxibustion in treating ankylosing spondylitis of kidney deficiency and governor meridian cold and its influence on TNF-α and RANKL: study protocol for a prospective, nonblinded, single-center, randomized controlled trial. Trials. 23 (1), 344(2022).
  7. Chong, G. Q., Ma, Y., Sun, H. S., Zhang, T., Peng, W. Study on clinical and analgesic mechanism of moxibustion in the treatment of ankylosing spondylitis. J Clin Acupunct Moxib. (06), 48-49 (1999).
  8. Liu, W. Q., Lu, X. H. Clinical observation of Melilotus extract tablets combined with Dujiu for treating ankylosing spondylitis. Pharm Res. 35 (03), 182-184 (2016).
  9. Zhang, Y. L., Lin, J. H., Zhou, Y. Y., Zhao, G. Q., He, Y. T. Clinical observation of Bushen Qiangdu Zhilou decoction combined Du-moxibustion in treating ankylosing spondylitis. Chin J Exp Tradit Med Formulae. 21 (10), 190-194 (2015).
  10. Guo, L. J., et al. Clinical effect of moxibustion at governor vessel combined with Bushen Quhan Huashi prescription for ankylosing spondylitis and its effect on levels of CTX-I and DKK1 in serum. New Chin Med. 53 (10), 117-121 (2021).
  11. Deng, Y. X. Governor moxibustion treatment of ankylosing spondylitis the adjustment of the T-cell subsets observed. J Practical Tradi Chin Inter Med. 26 (18), 77-78 (2012).
  12. Wang, Y. Q. Mechanism of exercise combined with moxibustion in the treatment of osteoporosis in castrated rats. Chin J Gerontol. 37 (04), 839-840 (2017).
  13. Ren, J. Y., Li, F., Yan, J., Wan, C., Cai, L. Clinical study of Du-moxibustion combined with needling Huatuo Jiaji acupoint in the treatment of AS of kidney-Yang deficiency. J Clin Acupunct Moxib. 35 (06), 41-44 (2019).
  14. Xu, X., et al. Metabolomic analysis of biochemical changes in the tissue and urine of proteoglycan-induced spondylitis in mice after treatment with moxibustion. Integr Med Res. 10 (1), 100428(2021).
  15. Xu, X., et al. Moxibustion attenuates inflammation and alleviates axial spondyloarthritis in mice: Possible role of APOE in the inhibition of the Wnt pathway. J Tradit Complement Med. 12 (5), 518-528 (2022).
  16. Li, X., et al. Inflammation intensity-dependent expression of osteoinductive wnt proteins is critical for ectopic new bone formation in ankylosing spondylitis. Arthritis Rheum. 70, 1056-1070 (2018).
  17. Cui, H., et al. CXCL12/CXCR4-Rac1-mediated migration of osteogenic precursor cells contributes to pathological new bone formation in ankylosing spondylitis. Sci Adv. 8 (14), eabl8054(2022).
  18. Braem, K., Lories, R. J. Insights into the pathophysiology of ankylosing spondylitis: contributions from animal models. Joint Bone Spine. 79 (3), 243-248 (2012).
  19. Mikecz, K., Glant, T. T., Poole, A. R. Immunity to cartilage proteoglycans in BALB/c mice with progressive polyarthritis and ankylosing spondylitis induced by injection of human cartilage proteoglycan. Arthritis Rheum. 30, 306-318 (1987).
  20. Li, Z., et al. Tenascin-C-mediated suppression of extracellular matrix adhesion force promotes entheseal new bone formation through activation of Hippo signalling in ankylosing spondylitis. Ann Rheum Dis. 80 (7), 891-902 (2021).
  21. Glant, T. T., Cs-Szabo´, G., Nagase, H., Jacobs, J. J., Mikecz, K. Progressive polyarthritis induced in BALB/c mice by aggrecan from human osteoarthritis cartilage. Arthritis Rheum. 41, 1007-1018 (1998).
  22. Hu, B., Li, Y., Tan, J. Research progress of moxibustion in the treatment of ankylosing spondylitis. Rheum & Arthritis. 11 (05), 77-80 (2022).
  23. Yang, Y., Dong, Q., Li, R. Matrine induces the apoptosis of fibroblast-like synoviocytes derived from rats with collagen-induced arthritis by suppressing the activation of the JAK/STAT signaling pathway. Int J Mol Med. 39 (2), 307-316 (2017).
  24. Shiotsuki, H., et al. A rotarod test for evaluation of motor skill learning. J Neurosci Methods. 189 (2), 180-185 (2010).
  25. Liu, P., et al. A mouse model of ankle-subtalar joint complex instability induced post-traumatic osteoarthritis. J Orthop Surg Res. 16 (1), 541(2021).
  26. Taurog, J. D., Chhabra, A., Colbert, R. A. Ankylosing spondylitis and axial spondyloarthritis. N. Engl. J. Med. 374, 2563-2574 (2016).
  27. Schett, G., et al. Enthesitis: From pathophysiology to treatment. Nat. Rev. Rheumatol. 13, 731-741 (2017).
  28. Duan, W. X., et al. Effect of different concentrations of Moxa-smoke on lung function and TNF-α and IL-1 β levels in serum and lung tissues in normal rats. Zhen Ci Yan Jiu [Acupuncture Research]. 43 (2), 98-103 (2018).
  29. Callhoff, J., Sieper, J., Weiß, A., Zink, A., Listing, J. Efficacy of TNFα blockers in patients with ankylosing spondylitis and non-radiographic axial spondyloarthritis: a meta-analysis. Ann Rheum Dis. 74 (6), 1241-1248 (2015).
  30. Schinocca, C., et al. Role of the IL-23/IL-17 pathway in rheumatic diseases: an overview. Front Immunol. 12, 637829(2021).
  31. Gravallese, E. M., Schett, G. Effects of the IL-23-IL-17 pathway on bone in spondyloarthritis. Nat Rev Rheumatol. 14 (11), 631-640 (2018).
  32. Kenna, T. J., et al. Enrichment of circulating interleukin-17-secreting interleukin-23 receptor-positive γ/δ T cells in patients with active ankylosing spondylitis. Arthritis Rheum. 64 (5), 1420-1429 (2012).
  33. Poddubnyy, D., Sieper, J. Treatment of axial spondyloarthritis: what does the future hold. Curr Rheumatol Rep. 22 (9), 47(2020).
  34. van der, H. D., et al. COAST-V study group. Ixekizumab, an interleukin-17A antagonist in the treatment of ankylosing spondylitis or radiographic axial spondyloarthritis in patients previously untreated with biological disease-modifying anti-rheumatic drugs (COAST-V): 16 week results of a phase 3 randomised, double-blind, active-controlled and placebo-controlled. Lancet. 392 (10163), 2441-2451 (2018).
  35. Fu, Y. S., et al. Pharmacological properties and underlying mechanisms of curcumin and prospects in medicinal potential. Biomed Pharmacother. 141, 111888(2021).
  36. Hassan, A. S., Hofni, A., Abourehab, M. A. S., Abdel-Rahman, I. A. M. Ginger extract-loaded transethosomes for effective transdermal permeation and anti-inflammation in rat model. Int J Nanomedicine. 18, 1259-1280 (2023).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Meer artikelen verkennen

Traditionele Chinese GeneeskundeExterne TherapieAcupunctuurpuntstimulatieMoxa-kegelGemberapplicatieBehandeling van de WervelkolomNiet-farmacologische Therapie
Du-moxibustie in een muismodel van spondylitis ankylopoetica
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan de bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleidsoverzicht

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.