Methodenartikel

Dissectie en classificatie van de ontwikkeling van de eierstokken bij vrouwelijke insecten van het wildtype

DOI:

10.3791/65644

⸱

14 juli 2023

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Institute of Plant Protection, Shandong Academy of Agricultural Sciences

In dit artikel

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Het protocol demonstreert een eenvoudige en gemakkelijke dissectiemethode, geschikt voor wildtype migrerende vrouwelijke insecten die zijn gevangen met zoeklichtvallen. Deze techniek kan dezelfde soort aanzienlijk ophelderen door beide voortplantingsweefsels te vergelijken, namelijk de paringszak en de ovariële ontwikkeling van vrouwelijke insecten van het wildtype.

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Trekkende insectenplagen vormen een ernstige uitdaging voor de voedselproductie en -zekerheid over de hele wereld. De trekkende plagen kunnen worden gemonitord en gevangen met behulp van zoeklichtvallen. Een van de belangrijkste technieken voor het voorspellen van migrerende plagen is het identificeren van de migrerende soorten. In de meeste gevallen is het echter moeilijk om de informatie alleen op het uiterlijk te krijgen. Daarom kan het gebruik van kennis die is verkregen door systematische analyse van het vrouwelijke voortplantingssysteem helpen om de gecombineerde anatomische morfologie van de paringszak van de eierstokken en de ontwikkelingsgradatie van de eierstokken van wildtype migrerende insecten die zijn gevangen met zoeklichtvallen te begrijpen. Om de toepasbaarheid van deze methode aan te tonen, werden de ontwikkelingsstatus van de eierstokken en de ontwikkelingsstadia van eikorrels rechtstreeks beoordeeld in Helicoverpa armigera, Mythimna separata, Spodoptera litura en Spodoptera exigua voor de anatomie van de eierstokken, en werden de paringszakjes van de eierstokken bestudeerd in Agrotis ipsilon, Spaelotis valida, Helicoverpa armigera, Athetis lepigone, Mythimna separata, Spodoptera litura, Mamestra brassicae en Spodoptera exigua, om hun relaties te onderzoeken. Dit werk toont de specifieke dissectiemethode om migrerende insecten van het wildtype te voorspellen, waarbij het unieke voortplantingssysteem van verschillende trekkende insecten wordt vergeleken. Vervolgens werden beide weefsels, namelijk de eierstok en de paringszakjes, verder onderzocht. Deze methode helpt bij het voorspellen van de dynamiek en de structurele ontwikkeling van voortplantingssystemen in wilde vrouwelijke trekinsecten.

Inleiding

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Migratie van insecten speelt een cruciale rol in de populatiedynamiek van de wereldwijde verspreiding van insecten voor insecten zoals Helicoverpa armigera - de katoenbolworm, Mythimna apart - de oosterse legerworm, Spodoptera litura - de tarorups, Spodoptera exigua - de bietenlegerworm, die zijn gemeld als ernstige plagen in China 1,2,3,4 . De lange reisafstanden, seizoensgebonden bewegingen, hoge vruchtbaarheid van migrerende plagen en ecologische factoren hebben grote moeilijkheden veroorzaakt bij het voorspellen, voorspellen en bestrijden van deze plagen5. Monitoring van de migratie van plagen is nodig om het aanpassingsvermogen en de gedragsveranderingen aan het licht te brengen die migrerende plagen vergemakkelijken volgens klimaatveranderingen of cycli6. Om hun groei, voortplanting en overleving te ondersteunen, hebben insecten tijdens de evolutie sequentieel aanpassingsvermogen verworven; Deze reeks adaptieve levens heeft geleid tot veel veranderingen in het voortplantingssysteem, zoals een migratiestrategie die leidt tot controle van de ontwikkeling van de eierstokken in het lange migratieproces.

De ontwikkeling van de eierstokken komt veel voor bij trekkende plagen, wat de groei van hun populatie beïnvloedt7. Daarom is de ontwikkeling van de eierstokken al lange tijd een hot topic van onderzoek naar migrerende plagen. Een reeks studies heeft geleid tot verschillende indicatoren voor de ontwikkeling van de eierstokken en classificatiestrategieën. Tot nu toe zijn verschillende methoden gebruikt om de ontwikkeling van de eierstokken te analyseren, bijvoorbeeld Loxostege sticticalis - de ontwikkeling van de weidemot en de eierstok die de eerste bevederingsfase, de vroege paaiperiode, de paaiperiode en het einde van ovipositie8 omvat. Sommige onderzoekers verdelen de eierstokniveaus op basis van de ontwikkeling van de dooierkleur in migrerende Lepidoptera-plagen, zoals S. exigua - de bietenlegerworm, Pseudaletia unipuncta - de echte legerworm, en Cnaphalocrocis medinalis - de rijstbladmap, enz.9,10,11,12. In eerdere studies werden de ovariële ontwikkelingsniveaus voor ongedierte, zoals katoenbolworm en rijstbladroller, verdeeld in vijf stadia: dooierafzettingsfase, rijpheidsstadium van eikorrels, rijpheidsfase van rijp wachten op geboorte, piek-ovogeneseperiode en eindpaaifase13,14. De ovariële ontwikkeling van de Europese maïsboorder was verdeeld in zes ontwikkelingsstadia: dooierafzettingsfase, eirijping, pre-eieren dispositionering, piekpaaifase en eindpaaifase15.

Bovendien hebben insecten van hetzelfde geslacht verschillende ontwikkelingsstadia, zoals ovariële ontwikkelingsniveaus van Spodoptera frugiperda - de herfstlegerworm - valt uiteen in vier niveaus: dooierafzettingsfase, volwassen wachten op levering, piek ovi-positiviteit en eindpaaifase16. Aan de andere kant heeft de ontwikkeling van de eierstokken in Spodoptera exigua - de bietenmot - vijf niveaus: transparant, vitellogenese, rijping van eieren, afgifte van eieren en late legniveaus17.

Eerdere studies kunnen de ontwikkeling van enkele tot meerdere ovariële ontwikkelingsniveaus alleen classificeren met behulp van kleurrijpheid van dooier, ovipositie en ei-ontwikkelingen, maar classificatie kan niet worden gedaan op basis van anatomie van het voortplantingssysteem. De ontwikkeling van een eierstok op basis van de morfogenese-anatomie is een minder bestudeerd gebied. Hier werd de dissectiemethode ontworpen om migrerende vrouwtjes in de populatie te voorspellen met behulp van twee soorten eierstokweefsel, om hun voortplantingsdynamiek uit te werken op basis van de anatomische morfogenese van het ovariële ontwikkelingsstadium en de paringszak, wat direct bewijs leverde om migrerende wildtype vrouwtjes te onderscheiden.

Sommige studies hebben aangetoond dat migrerende insectensoorten van de Noctuidae vaak werden vastgelegd door zoeklichten18. De eierstok van de meeste trekkende insectensoorten van de Noctuidae bevindt zich in de vroege stadia van ontwikkeling tijdens de beginfase van de migratie en het eierstokniveau neemt toe met de voortgang van de trek. In deze studie wordt de dissectiemethode voor ovariële ontwikkelingsgraden beschreven, om de twee voortplantingsweefsels van verschillende vrouwelijke populatieplagen te bestuderen, gevangen door zoeklicht. Deze methode bevordert niet alleen het onderzoek om de migratiedynamiek te begrijpen, maar ook faciliteiten op het gebied van insectenclassificatie, insectenfysiologie, plaagvoorspelling en voorspelling van vrouwelijke plaagsoorten.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

OPMERKING: Let op veiligheidsmaatregelen voordat u migrerende insecten van het wilde type vangt, wordt aangeraden om veiligheidsuitrusting te dragen (handschoenen, shirts met lange mouwen en een veiligheidsbril). Schakel de val ook uit wanneer deze niet in gebruik is om andere veiligheidsrisico's en oververhitting van het licht te voorkomen. Het is belangrijk om vóór de dissectie de veiligheidsprotocollen te volgen, zoals het dragen van handschoenen, een veiligheidsbril en een laboratoriumjas om blootstelling aan lichaamsvloeistoffen en chemicaliën te voorkomen.

1. Vangen van migrerende insecten

  1. Begin dit protocol met het vangen van insecten met behulp van de zoeklichtlamp. In dit protocol is de bron van het testinsect het Jiyang-district, de stad Jinan, de provincie Shandong, China (36.977088 ° N, 116.982747 ° E).
  2. Gebruik het hoofdgedeelte van de zoeklichtlamp, dat is gemaakt van niet-geroest staal, de doos, die een rechthoekige behuizing is, en de halogeenkoplamp van het type GT75, met een vermogen van 1000 W. Plaats de koplamp in het midden als lichtbron.
  3. Plaats een trechtervormig insectenverzamelkanaal in en plaats aan de onderkant van de lamp een doos voor het verzamelen van insecten met een diameter van 5 cm, gevolgd door een netzak voor het verzamelen van insecten van 60 bestellingen (0,5 m x 0,5 m), die wordt gebruikt om insecten te verzamelen die door licht worden gevangen. De bekende projectie van het licht is ongeveer 500 m boven de grond.
  4. Dit protocol legt de nadruk op de immigratiedynamiek van wildtype vrouwtjes en de ontwikkeling van de eierstokken; verzamel daarom verschillende soorten insecten (hier werd verzameld van april tot augustus, van 2021 tot 2022). Vermijd het verzamelen van kleine en gewonde insecten, selecteer groot ongedierte van vergelijkbare grootte voor dit experiment.

2. Bereiding van insecten

  1. Breng alle verzamelde insecten over van de netzak (0,5 m) naar de netkooi (30 cm x 30 cm) en zorg vervolgens voor een petrischaal met een gesteriliseerde oplossing van 10% honingwater (voeren is optioneel). Plaats de kooi bij 27 ± 2 °C, 65% ± 12 % relatieve vochtigheid en houd hem 8-12 uur in het donker.
  2. Selecteer wildtype vrouwtjes die op dezelfde dag in de kooi zijn gevlogen, breng ze voorzichtig over in de afzonderlijke flaconbuisjes en sluit elk buisje af met een katoenen deksel. Vermijd directe hantering, die het ongedierte kan beschadigen of verwonden als gevolg van overmatige druk.
    OPMERKING: Alle wildtype vrouwtjes werden 's nachts gevangen en de dissectie werd overdag uitgevoerd. Zo werd elk experiment binnen een dag uitgevoerd.

3. Voorbereiding voor de insectenverlammingsmethode (figuur 1)

  1. Plaats het geselecteerde vrouwelijke ongedierte afzonderlijk in een vliegenflesje in het midden en verdoven het vrouwtje met CO2 -gas door de naald van het blaaspistool vast te houden om milde verlamming te veroorzaken. Om te bevestigen of het ongedierte verlamd is of niet, duwt of raakt u het ongedierte voorzichtig aan met een zachte borstel. Geen reactie op zachte prikkels en immobiliteit duidt op een succesvolle verlamming.
    OPMERKING: Lage temperatuur (-20 °C) kan ook worden gebruikt als een alternatieve techniek om insecten te verlammen.

4. Dissectie van insecten

  1. Plaats het vers verlamde vrouwtje in de ontleedpetrischaal met absolute ethanol (10 ml). Om de invloed van schubbenharen en vleugelpoeder tijdens dissectie te voorkomen, infiltreert u het levende of verlamde insect met absolute alcohol en spoelt u het af met schoon water.
  2. Scheid de dorsale vleugels van de kruising van de borst en het buiklichaam, met behulp van twee pincetten.
  3. Breng de buik over in een nieuwe wegwerppetrischaal, met een geschikte hoeveelheid water (2-5 mm diep), en pel voorzichtig het abdominale exoskelet langs de dorsale ventrale lijn van de puntige mond naar de staart, met behulp van een ontleedtang. Herhaal dezelfde stappen aan de andere kant en leg het vervolgens in schoon water om de intacte weefsels te verspreiden.
  4. Trek voorzichtig de vetweefsels van de opperhuid af met een pincet en trek voorzichtig aan de eierstokken en laat ze los.
  5. Gebruik een ontleedtang om vetdeeltjes en andere organen rond de eierstokken voorzichtig te verwijderen. Over het algemeen zijn de eierstokken van het ongedierte meestal aan beide zijden van de buik naar binnen gevouwen, proberen ze in een vloeibare omgeving te werken terwijl ze de eierstokken ontvouwen, en trekken ze langzaam de paringszak uit het midden en halen ze de vetdeeltjes eruit die aan de eierstokbuizen zijn bevestigd.
  6. Houd de eierstok en de paringszak voorzichtig vast vanaf het verticale achterste uiteinde en vouw deze voorzichtig naar beneden. Om schade tijdens het uitvouwen te voorkomen, plaatst u de eierstok in een nieuwe of schone petrischaal met water. Houd de punt van de eierstok vast en vouw de eierstok naar binnen; Voer deze stap zorgvuldig uit om beschadiging van de eierstokken te voorkomen.

5. Analyse van gegevens voor de anatomie van eierstokweefsels

  1. Beoordeel in deze stap de ontwikkeling van de eieren voor elk insect, volgens de kleur en grootte van de eieren, om de volwassenheid ervan te beoordelen. Beoordeel vervolgens de graad van de eierstokken op basis van de ontwikkeling van de eieren.
    OPMERKING: De verdeling van verschillende ovariële ontwikkelingsniveaus wordt voornamelijk verdeeld, hetzij vóór het leggen van eieren, hetzij vóór de ei-ontwikkeling met dooierneerslagniveau. De ontwikkeling van insecten in eikorrels is verder onderverdeeld in stadia voor meer duidelijkheid, zoals het stadium van het voorkomen van dooier, het stadium van dooierrijpheid en het stadium van het sterven van de dooier. De rijpheid van eierkorrels hangt af van de volheid, kleur en grootte van het ei om de rijpheid te beoordelen.
  2. Zorg er na dissectie voor dat de weefsels van de vrouwelijke paringszakken worden gescheiden van de intacte eierstokken en observeer de morfologie om de soort te onderscheiden, omdat de anatomie van de meeste paringszakken van soort tot soort verschilt. Gebruik daarom paringszakjes om onderscheid te maken tussen soorten.
  3. Evalueer bij deze stap de anatomie van de eierstokken en analyseer de beoordeling van de ontwikkeling van de eierstokken. Verdeel de eierstokweefsels in vijf graden (graad 1 tot graad 5).
    1. Zoek naar de volgende veranderingen en structuur om het weefsel te organiseren: eerste klas (1) is een vroeg stadium van ontwikkeling (melkachtig transparant), volle buik, zacht, vet lichaam pluizig, lichte kleur, moeilijk te pellen. Tweede graad (2) is het dooierafzettingsstadium en beoordeelt de eierstokken indien nodig afzonderlijk na observatie van het langere en dikkere eierstokkanaal. Derde klas (3) heeft minder vetlichamen en slechts een paar korrels die aan de eierstok vastzitten. Vierde klas (4) lijkt minder elastisch en gemakkelijk te breken, en sommige eieren kunnen aanwezig zijn in het midden van de baarmoederbuis. Vijfde leerjaar (5) is gemakkelijk te identificeren met minder of geen vetlichamen, atrofische en fragiele eierstokken.
  4. Leg foto's vast met een digitale camera volgens de experimentele behoefte.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ontwikkeling van de eieren
Het bovenstaande protocol werd toegepast om de ontwikkeling van eicellen in de eierstok te analyseren. Voor dit doel werden eieren in het algemeen in vier stadia ingedeeld om een onderscheid te maken tussen de vroege en volwassen stadia van ei-ontwikkeling tussen alle soorten, bijvoorbeeld bolworm, legerworm, tarorups en bietenmot. Hier werd het vroege stadium van bevedering (melkwit transparant stadium) waargenomen. Figuur 2A laat zien dat de e...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Eierstokanalysemethoden worden routinematig gebruikt in de gewasbescherming, om de beweging van insectenvlucht en populatie op te helderen voor voorspelling 19,20,21 en om de fysiologische variaties in insecten uit te werken. Het is opgevallen dat de unieke migratie en het snelle verspreidingsvermogen van veel voorkomende landbouwplagen, zoals bolworm, legerworm, tarorups en bietenmot, het moeilijk maken om voorspellingen uit an...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs hebben geen belangenconflicten te melden.

Dankbetuigingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Deze studie werd ondersteund door het grote wetenschappelijke en technologische innovatieproject (2020CXGC010802).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Digitale cameraCanon ( China ) co., LTDEOS 800D
DruppelaarQingdao jindian biochemisch apparatuur co., LTD
Absoluut ethanol (99,7%)Shanghai Hushi Laboratoriumapparatuurco., LTD
Pincet Vetus Tools co., LTDST-14
GT75 type halogeen koplamp (1000 W)Shanghai Yadeng Industry co., LTD
Helicoverpa armigera, Mythimna separate, Spodoptera litura, Spodoptera exiguaJiyang district, Jinan stad, Shandong provincie, China
Meetcilinder, beker, kolfQingdao jindian biochemisch apparatuur co., LTD
Net zak Qingdao jindian biochemisch apparatuur co., LTD0,5 m 
Net kooien Qingdao jindian biochemisch apparatuur co., LTD30 cm x 30 cm
PetrischalenQingdao jindian biochemisch apparatuur co., LTD 60 mm diameter

Referenties

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Wu, K. Monitoring and management strategy for Helicoverpa armigera resistance to Bt cotton in China. Journal of Invertebrate Pathology. 95 (3), 220-223 (2007).
  2. Jiang, X., Luo, L., Zhang, L., Sappington, T. W., Hu, Y. Regulation of Migration in Mythimna separata (Walker) in China: A Review Integrating Environmental, Physiological, Hormonal, Genetic, and Molecular Factors. Environmental Entomology. 40 (3), 516-533 (2011).
  3. Su, J., Lai, T., Li, J. Susceptibility of field populations of Spodoptera litura (Fabricius) (Lepidoptera: Noctuidae) in China to chlorantraniliprole and the activities of detoxification enzymes. Crop Protection. 42, 217-222 (2012).
  4. Che, W., Shi, T. Insecticide Resistance Status of Field Populations of Spodoptera exigua (Lepidoptera: Noctuidae) From China. Journal of Economic Entomology. 106 (4), 1855-1862 (2013).
  5. Jiang, X., Luo, L. Regulation of Migration in Mythimna separata (Walker) in China: A Review Integrating Environmental, Physiological, Hormonal, Genetic, and Molecular Factors. Environmental Entomology. 40 (3), 516-533 (2011).
  6. Kiss, M., Nowinszky, L., Puskás, J. Examination of female proportion of light trapped turnip moth (Scotia segetum Schiff.). Acta Phytopathologica Et Entomologica Hungarica. 37, 251-256 (2002).
  7. Jiang, X. F., Luo, L. Z., Sappington, T. W. Relationship of flight and reproduction in beet armyworm, Spodoptera exigua (Lepidoptera: Noctuidae), a migrant lacking the oogenesis-flight syndrome. Journal of insect physiology. 56 (11), 1631-1637 (2010).
  8. Sun, Y., Chen, R., Wang, S., Bao, X. Morphological observation on the development of female reproductive system in meadow moth Loxostege sticticalis L. Acta Entomologica Sinica. 34, 248-249 (1991).
  9. Fu, X., Feng, H., Liu, Z., Wu, K. Trans-regional migration of the beet armyworm, Spodoptera exigua (Lepidoptera: Noctuidae), in North-East Asia. PLoS One. 12 (8), e0183582(2017).
  10. Cusson, M., McNeil, J. N., Tobe, S. S. In vitro biosynthesis of juvenile hormone by corpora allata of Pseudaletia unipuncta virgin females as a function of age, environmental conditions, calling behaviour and ovarian development. Journal of Insect Physiology. 36 (2), 139-146 (1990).
  11. Fu, X. W., et al. Seasonal migration of Cnaphalocrocis medinalis (Lepidoptera: Crambidae) over the Bohai Sea in northern China. Bulletin of entomological research. 104 (5), 601-609 (2014).
  12. Telfer, W. H. Egg formation in Lepidoptera. Journal of Insect Science. 9, 1-21 (2009).
  13. Wu, K., Guo, Y., Wu, Y. Ovarian development of adult females of cotton bollworm and its relation to migratory behavior around Bohai bay of China. Acta Ecologica Sinica. 22 (7), 1075-1078 (2002).
  14. Wada, T., Ogawa, Y., Nakasuga, T. Geographical difference in mated status and autumn migration in the rice leaf roller moth, Cnaphalocrocis medinalis. Entomologia Experimentalis et Applicata. 46 (2), 141-148 (1988).
  15. Xingquan, K., Calvin, D. D. Female European corn borer (Lepidoptera: Crambidae) ovarian developmental stages: Their association with oviposition and use in a classification system. Journal of economic entomology. 97 (3), 828-835 (2004).
  16. Ge, S., et al. Potential trade-offs between reproduction and migratory flight in Spodoptera frugiperda. Journal of insect physiology. 132, 104248(2021).
  17. Han, L. Z., Gu, H. N. Reproduction-Flight Relationship in the Beet Armyworm, Spodoptera exigua (Lepidoptera: Noctuidae). Environmental Entomology. 37 (2), 374-381 (2008).
  18. Zhou, Y., et al. Long-term insect censuses capture progressive loss of ecosystem functioning in East Asia. Science Advances. 9 (5), eade9341(2023).
  19. Hu, G., Lim, K. S., Horvitz, N. Mass seasonal bioflows of high-flying insect migrants. Science. 354 (6319), 1584-1587 (2016).
  20. Hu, G., et al. Environmental drivers of annual population fluctuations in a trans-Saharan insect migrant. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 118 (26), e2102762118(2021).
  21. Fu, X., Liu, Y., Li, C. Seasonal migration of Apolygus lucorum (Hemiptera: Miridae) over the Bohai Sea in northern China. Journal of Economic Entomology. 107 (4), 1399-1410 (2014).
  22. Fu, X., Liu, Y., Li, Y., Ali, A., Wu, K. Does Athetis lepigone Moth (Lepidoptera: Noctuidae) Take a Long-Distance Migration. Journal of Economic Entomology. 107 (3), 995-1002 (2014).
  23. Huang, J., et al. The Effect of Larval Diet on the Flight Capability of the Adult Moth (Athetis lepigone) (Möschler) (Lepidoptera: Noctuidae). Florida Entomologist. 105 (4), 287-294 (2023).
  24. Sun, X., Hu, C., Jia, H. Case study on the first immigration of fall armyworm, Spodoptera frugiperda invading into China. Journal of Integrative Agriculture. 20 (3), 664-672 (2021).
  25. Feng, H. Q., Wu, K. M., Cheng, D. F., Guo, Y. Y. Northward migration of Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae) and other moths in early summer observed with radar in northern China. Journal of Economic Entomology. 97 (6), 1874-1883 (2004).
  26. Ge, S. S., et al. Flight activity promotes reproductive processes in the fall armyworm, Spodoptera frugiperda. Journal of Integrative Agriculture. 20 (3), 727-735 (2021).
  27. Guerra, P. A., Pollack, G. S. Flight behaviour attenuates the trade-off between flight capability and reproduction in a wing polymorphic cricket. Biology Letters. 5 (2), 229-231 (2009).
  28. He, W., Zhao, X., Ge, S., Wu, K. Food attractants for field population monitoring of Spodoptera exigua (Hübner). Crop Protection. 145, 105616(2021).
  29. He, L. M., et al. Adult nutrition affects reproduction and flight performance of the invasive fall armyworm, Spodoptera frugiperda in China. Journal of Integrative Agriculture. 20 (3), 715-726 (2021).
  30. Kongming, W., Yuyuan, G., Yan, W. Ovarian development of adult females of cotton bollworm and its relation to migratory behavior around Bohai Bay of China. Acta Ecologica Sinica. 22 (7), 1075-1078 (2002).
  31. Feng, H., Wu, X. Seasonal Migration of Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae) Over the Bohai Sea. Journal of Economic Entomology. 102 (1), 95-104 (2009).
  32. Miao, J., Guo, P., Li, H. Low Barometric Pressure Enhances Tethered-Flight Performance and Reproductive of the Oriental Armyworm, Mythimna separata (Lepidoptera: Noctuidae). Journal of Economic Entomology. 114 (2), 620-626 (2021).
  33. Fu, X., Zhao, X. Seasonal Pattern of Spodoptera litura (Lepidoptera: Noctuidae) Migration Across the Bohai Strait in Northern China. Journal of Economic Entomology. 108 (2), 525-538 (2015).
  34. Rhainds, M., Kettela, E. G. Oviposition threshold for flight in an inter-reproductive migrant moth. Journal of Insect Behavior. 26 (6), 850-859 (2013).
  35. Showers, W. B. Migratory ecology of the black cutworm. Annual review of entomology. 42, 393-425 (1997).
  36. Zhang, Z., et al. Morphological differences of the reproductive system could be used to predict the optimum Grapholita molesta (Busck) control period. Scientific Reports. 7 (1), 8198(2017).
  37. Zheng, D. B., Hu, G., Yang, Ovarian development status and population characteristics of Sogatella furcifera (Horváth) and Nilaparvata lugens (Stål): implications for pest forecasting. Journal of Applied Entomology. 138 (1-2), 67-77 (2014).
  38. Wan, G. J., Jiang, S. L. Geomagnetic field absence reduces adult body weight of a migratory insect by disrupting feeding behavior and appetite regulation. Insect Science. 28 (1), 251-260 (2021).
  39. Laštůvka, Z. Climate change and its possible influence on the occurrence and importance of insect pests. Plant protection science. 45, S53-S62 (2009).
  40. Xu, R. B., Ge, S. S. Physiological and Environmental Influences on Wingbeat Frequency of Oriental Armyworm, Mythimna separata (Lepidoptera: Noctuidae). Environmental Entomology. 52 (1), 1-8 (2022).
  41. Jiang, X., Cai, B. Influences of temperature and humidity synthesize on flight capacity in the moth s of Oriental armyworm, Mythimna separata(Walker). Acta Ecologica Sinica. 23 (4), 738-743 (2003).
  42. Zhang, L., Luo, L., Jiang, X. Starvation influences allatotropin gene expression and juvenile hormone titer in the female adult oriental armyworm, Mythimna separata. Archives of Insect Biochemistry and Physiology. 68 (2), 63-70 (2008).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

OvariumdissectieOvariumgraderingMigrerende InsectenVrouwelijke Reproductieve SysteemOvariumanatomieMorfologie van de ParingszakStadia van EionwikkelingWildtype InsectenInsectendissectiemethode

Gerelateerde artikelen