Methodenartikel

Modellering van foetale alcoholspectrumstoornissen bij zebravissen om de impact van een ongunstige embryonale omgeving op het sociale gedrag van volwassenen te karakteriseren

957 weergaven

DOI:

10.3791/65834

9 februari 2024

In dit artikel

Samenvatting

Het doel van het huidige protocol is om de stappen te schetsen die nodig zijn om een sociale voorkeurstest voor volwassen zebravissen op te zetten en te gebruiken en aan te tonen dat deze kan worden gebruikt om door ethanol geïnduceerde sociale defecten te karakteriseren.

Samenvatting

Foetale alcoholspectrumstoornissen (FASD) beschrijven alle door alcohol veroorzaakte geboorteafwijkingen. Geboorteafwijkingen zoals groeistoornissen, craniofaciale, gedrags- en cognitieve afwijkingen zijn geassocieerd met FASD. Sociale problemen zijn veel voorkomende gedragsafwijkingen die verband houden met FASD en leiden vaak tot ernstige gezondheidsproblemen. Diermodellen zijn van cruciaal belang voor het begrijpen van de mechanismen die verantwoordelijk zijn voor door ethanol geïnduceerde sociale defecten. Zebravissen zijn sociale gewervelde dieren die uitwendig bevruchte transparante eieren produceren; deze kenmerken bieden onderzoekers een nauwkeurige maar eenvoudige procedure voor het creëren van het FASD-fenotype en een aangeboren gedrag dat kan worden gebruikt om de sociale tekorten die verband houden met FASD te modelleren. Zebravissen zijn dus ideaal om de sociale tekorten van FASD te karakteriseren. Het doel van het huidige protocol is om de gebruiker een eenvoudige gedragstest te bieden die kan worden gebruikt om de gevolgen van een negatieve omgeving vroeg in de ontwikkeling te karakteriseren en de effecten die dit kan hebben op sociaal gedrag op volwassen leeftijd. Het protocol kan worden gebruikt om het effect van mutaties of teratogenen op het sociale gedrag van volwassenen te karakteriseren. Het hier beschreven protocol laat zien hoe het sociale gedrag van individuele vissen kan worden gekarakteriseerd tijdens een sociale test van 20 minuten. Bovendien leveren de gegevens die met behulp van het huidige protocol zijn verkregen, bewijs dat het protocol kan worden gebruikt om de effecten van embryonaal ethanol-geïnduceerde sociale defecten bij volwassen zebravissen te karakteriseren.

Inleiding

Prenatale blootstelling aan alcohol kan leiden tot een verscheidenheid aan geboorteafwijkingen die gezamenlijk bekend staan als foetale alcoholspectrumstoornissen (FASD)1. Verminderd gedrag, zoals sociale problemen, zijn veel voorkomende geboorteafwijkingen die verband houden met FASD 2,3. Helaas leiden sociale problemen vaak tot ernstige psychische problemen4, die de kwaliteit van leven van mensen met FASD nadelig kunnen beïnvloeden. Het is dus van het grootste belang om de mechanismen te begrijpen die verantwoordelijk zijn voor door ethanol veroorzaakte sociale defecten.

Zebravissen hebben biologische en gedragskenmerken waardoor ze zeer geschikt zijn om ons begrip van de mechanismen die verantwoordelijk zijn voor door ethanol veroorzaakte sociale defecten te vergroten. Zebravissen produceren bijvoorbeeld grote hoeveelheden doorzichtige, uitwendig bevruchte eieren; deze biologische kenmerken stellen onderzoekers in staat om gemakkelijk nauwkeurige en reproduceerbare FASD-fenotypes te creëren5. Om embryo's 24 uur na de bevruchting (hpf) aan ethanol bloot te stellen, hoeft men alleen maar een ontleedmicroscoop te gebruiken om het transparante ei te onderzoeken en het embryo te faseren op basis van eerder gepubliceerd werk zoals Kimmel et al.6, en vervolgens het ei gedurende de gewenste duur in de gewenste ethanolconcentratie te plaatsen. Omdat het chorion een zwakke barrière is voor alcohol7, baadt de ethanol het embryo gemakkelijk. Om de blootstelling te stoppen, hoeft men alleen maar de eieren uit de ethanoloplossing te verwijderen. Naast het bieden van een eenvoudige maar nauwkeurige methode aan onderzoekers voor het creëren van FASD-fenotypes, stellen zebravissen onderzoekers ook in staat om genetische vergelijkingen met mensen te maken, omdat 70% van de menselijke genen een zebravisortholoog hebben, dus ze zijn een waardevol hulpmiddel voor het begrijpen van aan ziekten gerelateerde genen bij de mens8. Bovendien vormen zebravissen, in tegenstelling tot andere diermodellen, sociale groepen9 genaamd scholen10. Ondiep gedrag kan worden gebruikt om de effecten van blootstelling aan embryonale ethanol op sociaal gedrag te karakteriseren11. Verder kan bij zebravissen een sociale respons worden opgewekt door gebruik te maken van computergestuurde sociale stimuli12 of een live sociale stimulus13.

Eerdere werken hebben de sociale respons van volwassen zebravissen in groepen14 gekarakteriseerd, maar een beperking van deze benadering is het onvermogen om het gedrag van een individuele vis te correleren met een specifieke maatstaf, zoals veranderingen in neurotransmitterniveaus11. Het volgende protocol geeft gebruikers de mogelijkheid om het sociale gedrag van een individuele volwassen zebravis te karakteriseren. Omdat sociaal gedrag wordt verworven voor individuele vissen, kunnen gebruikers van het protocol nu het verworven gedragsprofiel van elke vis correleren met een afhankelijke uitkomst. Eerder werk heeft bijvoorbeeld aangetoond dat blootstelling aan embryonale ethanol de dopaminerge respons op een sociale stimulus schaadt11. Hoewel de hier getoonde gegevens blootstelling aan embryonale ethanol als onafhankelijke variabele hebben gebruikt, kunnen protocolgebruikers de effecten karakteriseren die andere farmacologische behandelingen of genetische mutaties hebben op sociaal gedrag. Bovendien zijn protocolgebruikers niet beperkt tot het onderzoeken hoe embryonale behandelingen het gedrag veranderen, maar kunnen ze ook bepalen hoe acute farmacologische behandelingen bij volwassen zebravissen het sociale gedrag beïnvloeden15.

Protocol

Alle hier beschreven methoden zijn goedgekeurd door de Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) van de University of South Dakota.

1. Huisvesting, verzorging en blootstelling aan embryonale ethanol in zebravissen

  1. Kweek en kweek zebravissen zoals beschreven16.
  2. Blootstelling aan ethanol
    1. Kies het juiste ontwikkelingsstadium om de blootstelling aan ethanol uit te voeren. In dit protocol werden embryo's blootgesteld aan ethanol met 24 hpf.
    2. Plaats de eieren in 1,0% ethanol volume/volume gedurende 2 uur15. Een verhouding van 1 ei per ml EM is een goede gewoonte. Specifiek, plaats embryo's in 50 ml embryomedium (EM; zie Westerfield16 voor het EM-recept) verwijder vervolgens 500 μL EM en vervang ze door 500 μL ethanol.
    3. Kweek na blootstelling aan ethanol embryo's op zoals beschreven17. Test sociaal gedrag wanneer vissen 16 weken oud zijn.

2. Randomisatie en tankopstelling

  1. Gebruik een online generator voor willekeurige sequenties om alle onderzoeken a priori te randomiseren naar het uitvoeren van de gedragstesten. Zorg ervoor dat de stimuluszijde en de behandelingsgroepen willekeurig variëren.
  2. Om verstorende factoren zoals het tijdstip van de dag of de dag van testen te voorkomen, moet u de gedragstest elke dag op hetzelfde tijdstip starten en beëindigen en de gedragstest op opeenvolgende dagen uitvoeren totdat alle experimentele vissen zijn getest.
  3. Gebruik voor deze test (Figuur 1) een tank van 37 l (50 cm x 25 cm x 30 cm, L x B x H) met tanks van 1,4 l die buiten over de breedte van de tank zijn geplaatst, zoals eerder beschreven17.
  4. Bekleed de achterkant en de bodem van het aquarium van 37 liter met wit golfkarton om het contrast tussen de experimentele vissen en de achtergrond te vergroten en zo de videotracking te verbeteren.
  5. Plaats het golfplastic op de buitenwand van de 1,4 L tanks om het contrast van de sociale prikkel voor de experimentele vissen te vergroten. Plaats ten slotte wit golfplastic tussen de tanks van 1.4 L en 37 L; Deze ondoorzichtige barrière wordt gebruikt om te voorkomen dat de experimentele vissen de sociale prikkel tijdens de gewenning kunnen zien.
  6. Plaats de camera op een afstand die ver genoeg is om de hele lengte van het aquarium van 37 liter plus de helft van de tanks van 1,4 liter vast te leggen en de volwassen experimentele vissen nauwkeurig te volgen.
    OPMERKING: Zien welke kant de stimulus vasthoudt, zorgt ervoor dat onderzoekers de volgzones correct hebben gelabeld en biedt redundantie als back-up.
  7. Als er geen infraroodtracking wordt gebruikt, zorg er dan voor dat de tank van 37 liter wordt verlicht. Gebruik in de handel verkrijgbare aquariumkaplampen met een 15 W T8 full-spectrum lamp.
    OPMERKING: Als er meerdere arena's worden opgesteld, gebruik dan identieke aquariumkappen met identieke lampen.

3. Uitvoeren van de sociale test

  1. Begin met het vullen van de tank van 37 liter die wordt gebruikt voor de gedragstest met water dat identiek is aan het water dat in het behuizingsrek wordt gebruikt. Zorg ervoor dat de watertemperatuur binnen 2 °C van het behuizingsrek ligt.
  2. Aan het einde van de dag leeg je de tank van 37 L. Begin elke testdag met vers water. Zorg ervoor dat het waterpeil in de tank van 37 l en het waterpeil in de tanks van 1.4 l identiek zijn. Als de temperatuur van de kamer het water in de tank van 37 L niet op 28,5 °C 2 °C houdt, vervang dan het water door warm water van 28,5 °C.
  3. Stel vervolgens de interessezones in. Raadpleeg de handmatige trackingsoftware van de gebruiker naar keuze om zones te maken. In dit protocol werd over de lengte van de tank van 37 L aan de boven- en onderkant een meetlint gebruikt om stappen van 5 cm te markeren. Aangezien de testtank 50 cm is, leiden stappen van 5 cm tot 10 zones van elk 5 cm.
  4. Gebruik de markeringen op de tank van 37 L als referentie en gebruik de software om de zones te construeren door het punt van 5 cm aan de bovenkant te verbinden met het overeenkomstige punt van 5 cm aan de onderkant. Creëer bovendien een zone langs de bodem en langs de stimulus. Pas interessezones aan.
  5. Gebruik de trackingsoftware in dit protocol om de afstand tot een zone en de duur die in de zone wordt doorgebracht te meten. In dit protocol zijn 12 zones gebruikt.
  6. Kwantificeer de tijd doorgebracht in zones 1 tot 10 en de afstand tot de stimulus en de bodem als Zone 1, als de zone die zich het dichtst bij de stimulus bevindt, terwijl Zone 10 het verst van de stimulus verwijderd is.
  7. Selecteer vervolgens de twee mannetjes en twee vrouwtjes die gebruikt gaan worden voor de sociale prikkel. Het beste zou zijn om mannetjes en vrouwtjes uit hetzelfde cohort te gebruiken als de experimentele vissen. Als dat niet mogelijk is, probeer dan vissen te vinden die passen bij de soort, leeftijd en grootte van de experimentele vissen.
  8. Breng de experimentele vissen over van de behuizingstank naar de testarena (tank van 37 L). Gebruik een net om de vissen in het aquarium van de behuizing te vangen. Plaats het net met de vissen erin in een bak met viswater.
    OPMERKING: Het gebruik van deze aanpak vermindert de stress op experimentele vissen tijdens het verplaatsen tussen aquaria.
  9. Plaats de experimentele vissen in het midden van de testarena.
  10. Zodra de detectie-instellingen bevredigend zijn op basis van de software van de gebruiker naar keuze (zie gebruikershandleiding), begint u met de proefperiode van 20 minuten. Laat gedurende de eerste 10 minuten de ondoorzichtige barrière tussen de tanks van 37 l en 1,4 l op zijn plaats. Dit voorkomt dat de experimentele vissen de sociale stimulus, bestaande uit twee mannelijke en twee vrouwelijke zebravissen, zien en laat de vissen acclimatiseren aan de testarena13,17.
  11. Verwijder na 10 minuten voorzichtig de ondoorzichtige barrières door ze van achter de tank te trekken; Hierdoor kunnen de experimentele vissen de sociale prikkel zien.
  12. Gebruik volgsoftware om het gedrag van de experimentele vissen 11, 12, 17 te volgen en te kwantificeren op basis van de voorkeuren van de gebruiker en de softwarehandleiding. Kwantificeer in het huidige protocol de afstand tot de sociale stimulus en de bodem van de tank, evenals de tijd die in alle zones wordt doorgebracht.
  13. Analyseer gegevens met behulp van traditionele tools voor gegevensanalyse.

Resultaten

Figuur 2 is aangepast ten opzichte van Fernandes et al.17 en laat zien dat blootstelling aan embryonale ethanol de ondiepterespons afzwakt door de afstand tot de stimulus te onderzoeken. De gegevens in figuur 2 geven de afstand tot de sociale stimulus weer tijdens de 20 minuten durende proef. De Y-as toont de afstand in centimeters, terwijl de X-as de proef van 20 minuten weergeeft, opgesplitst in intervallen van 1 minuut. De zwarte balk langs de X-as geeft het tijdstip weer waarop de ondoorzichtige barrières zijn verwijderd en de sociale prikkel zichtbaar is voor de proefvis. In eerste instantie is er in alle groepen een snelle afname in de richting van de sociale stimulus zodra deze zichtbaar wordt gemaakt, wat kan worden bepaald door de sterke afname van de afstand tussen minuut 9 en 10, maar terwijl controlevissen heel dicht bij de sociale stimulus blijven, is de behandelde alcohol dat niet; Dit suggereert dat blootstelling aan embryonale ethanol het sociale gedrag van volwassenen beïnvloedt12,18.

Figuur 3 is aangepast ten opzichte van Fernandes et al.17 en gebruikt gegevens die zijn verzameld door het meten van de afstand tot de stimulus om het effect van blootstelling aan embryonale ethanol op de shoaling-respons verder aan te tonen. De gegevens in figuur 3 geven de vermindering van de afstand tot de sociale stimulus weer zodra deze zichtbaar is. Om de gemiddelde vermindering van de afstand tot stimulus te berekenen; De gemiddelde afstand tot de stimulus tijdens de stimulusperiode (wanneer de stimulus zichtbaar is) werd afgetrokken van de gemiddelde afstand tot de stimulus tijdens de gewenning (wanneer de sociale stimulus niet zichtbaar is), dus een grotere negatieve waarde vertegenwoordigt een sterkere sociale respons.

Figuur 4 toont de tijd die in de zones wordt doorgebracht versus de afstand tot de stimulus. Figuur 4 is aangepast ten opzichte van Fernandes et al.17. Figuur 4A toont de hoeveelheid tijd (Y-as) die vissen in elke zone (X-as) doorbrengen terwijl de stimulus zichtbaar is. Hoewel vissen uit alle groepen een voorkeur lijken te vertonen voor de zone die het dichtst bij de sociale stimuluscontrole ligt, brengen vissen bijna twee keer zoveel tijd door in zone 1 in vergelijking met met alcohol behandelde vissen (Figuur 4B). Figuur 4C laat zien dat blootstelling aan embryonale ethanol de mobiliteit niet belemmerde, aangezien er geen verschil was tussen de groepen in de zones. Figuur 4D ten slotte laat zien dat vissen bij afwezigheid van een sociale stimulus geen tijd doorbrengen in de zone die het dichtst bij de sociale stimulus ligt. De resultaten laten dus zien dat controlevissen de sociale stimulus naderen en heel dicht bij hen blijven wanneer ze zichtbaar zijn, terwijl met ethanol behandelde vissen dat niet doen. Bovendien suggereren de gegevens in Figuur 2 en Figuur 4C dat blootstelling aan embryonale ethanol het vermogen van vissen om de sociale stimulus te zien (Figuur 2) of te bewegen (Figuur 4C) niet schaadt, wat sterk bewijs levert dat blootstelling aan embryonale ethanol het sociale gedrag bij volwassen zebravissen schaadt.

figure-results-1
Figuur 1: Schema van het gedragsapparaat. Een tank van 37 liter werd gebruikt om het sociale gedrag van volwassen zebravissen (ZT140 genaamd) met en zonder blootstelling aan embryonale ethanol te testen. Dit cijfer is gewijzigd ten opzichte van Fernandes et al.17. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

figure-results-2
Figuur 2: Blootstelling aan embryonale ethanol stompt het sociale gedrag van volwassen zebravissen af. Gemiddelde afstand tussen de volwassen experimentele vissen en de levende school, uitgezet voor intervallen van 1 minuut van de gedragssessie van 20 minuten. Het gemiddelde ± SEM worden weergegeven. Controle (n = 12); 1% ethanol (EtOH; n = 11). De horizontale balk boven de X-as, van 10 tot 20 minuten, geeft een tijdlijn weer waarin de live ondiepte zichtbaar is voor de proefpersonen. De alcoholconcentratie wordt boven de grafieken weergegeven. Dit cijfer is gewijzigd ten opzichte van Fernandes et al.17. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

figure-results-3
Figuur 3: Met alcohol behandelde vissen bevinden zich aanzienlijk verder van de levende school. Staven geven het verschil weer tussen de afstand van vissen tot de levende school voor en nadat de levende school zichtbaar is. Grotere negatieve waarden suggereren een sterkere reactie op de soortgenoten. Het gemiddelde ± SEM worden weergegeven. Het gemiddelde ± SEM worden weergegeven. Controle (n = 12); 1% ethanol (EtOH; n = 11). Dit cijfer is gewijzigd ten opzichte van Fernandes et al.17. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

figure-results-4
Figuur 4: Blootstelling aan embryonale ethanol verandert de duur van de tijd die in zone 1 wordt doorgebracht alleen wanneer de levende school zichtbaar is. (A) Balken geven de tijd weer die in alle 10 zones wordt doorgebracht tijdens de presentatie van de stimulus. (B) Balken vertegenwoordigen de tijd die in zone 1 wordt doorgebracht tijdens de stimuluspresentatie. Zone 1 is de zone die het dichtst bij de levende school ligt, terwijl zone 10 het verst verwijderd is van de levende school. Let op het aanzienlijke verschil in de hoeveelheid tijd die vissen in de zone doorbrengen. (C) Balken vertegenwoordigen het gemiddelde percentage van de tijd doorgebracht in alle zones tijdens de gewenning, de eerste 10 minuten. (D) Balken vertegenwoordigen de tijd doorgebracht in zone 1 tijdens de gewenning. Het gemiddelde ± SEM worden weergegeven. De steekproefomvang is als volgt: Controle (n = 12); ethanol (EtOH; n = 11). Dit cijfer is gewijzigd ten opzichte van Fernandes et al.17. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Discussie

Zebravissen hebben een aantal biologische en gedragskenmerken, waardoor ze een zeer aantrekkelijk organisme zijn voor onderzoek naar genen, de omgeving en gedrag 5,19. Dit protocol geeft de eindgebruiker een relatief eenvoudige gids voor het testen van sociaal gedrag, meerdere manieren om het sociale gedrag te kwantificeren, en heeft het potentieel om de gedragsreacties van individuele vissen te koppelen aan behandelingen zoals blootstelling aan embryonale ethanol, genetische mutaties of andere farmacologische stoffen.

Om sociaal gedrag bij volwassen zebravissen te testen, volgt u dit protocol zorgvuldig in combinatie met de gebruikershandleiding van de trackingsoftware van uw keuze. Om de testarena te bouwen, heeft men alleen een tank van 37 liter nodig met een deksel en licht, golfkarton, twee kleinere tanks voor de sociale stimulans en een camera; De meeste van deze artikelen kunnen worden gekocht bij dierenwinkels en elke grootwinkel. Wanneer een enkele zebravis een groep zebravissen krijgt, is het natuurlijke gedrag van de enkele zebravis om de afstand tot de groep te verkleinen en tegelijkertijd de tijd die in de nabijheid van de groep wordt doorgebracht te vergroten19, dit gedrag wordt een ondieptereactie genoemd19. De schoolrespons is een sociaal gedrag dat op twee manieren kan worden gekarakteriseerd: ten eerste, wanneer de sociale stimulus zichtbaar is, meet de afstand tussen de sociale stimulus en de enkele vis12 en ten tweede meet de tijd die wordt doorgebracht in de zone die zich het dichtst bij de sociale stimulus bevindt wanneer deze zichtbaar is. Het vermogen om de tijd te kwantificeren die zebravissen doorbrengen in een zone van 5 cm wanneer de sociale stimulus zichtbaar is, levert een sterk bewijs van de sociale respons, aangezien deze vissen gemiddeld ongeveer 4 cm lang zijn.

Het verdelen van het aquarium van 50 cm in gebieden van 10 cm van 5 cm helpt bij statistische analyse, omdat de kans dat de testvis zich in een zone bevindt hetzelfde is. Op het eerste gezicht lijkt het hebben van twee maatregelen voor dezelfde uitkomst overbodig. Redundantie kan echter voor validatie zorgen. Bovendien kunnen de afstands- en duurmetingen tijdens gewenning worden gebruikt om te bepalen of een behandeling het gezichtsvermogen of de beweging beïnvloedt. Dit protocol maakte gebruik van in de handel verkrijgbare geautomatiseerde volgsoftware13,18, maar het is vatbaar voor andere volgsystemen of zelfs handmatige tracking door een getrainde waarnemer.

Ongeacht de gebruikte trackingsoftware zijn er cruciale stappen die moeten worden genomen om de tracking te optimaliseren. Selecteer eerst een achtergrond die een aanzienlijk contrast biedt in vergelijking met de vissen die worden opgenomen. Wildtype zebravissen hebben horizontale strepen die goudkleurig en blauw zijn20; Ze hebben ook mozaïeken van gele xanthoforen, zilverachtige of blauwe iridoforen en zwarte melanoforen20. Gebruik dus bij het karakteriseren van het gedrag van AB-wildtype vissen een witte achtergrond 12,13,17, aan de andere kant gebruik je bij het karakteriseren van het sociale gedrag van een casper zebravis die geen pigment heeft een zwarte achtergrond 17. Ten tweede, zorg ervoor dat er voldoende verlichting is om de experimentele vissen te volgen. Als er meerdere volgarena's zijn, zorg er dan voor dat de verlichting tussen de arena's identiek is. Een andere cruciale stap is om ervoor te zorgen dat het waterpeil in het aquarium van 37 liter overeenkomt met het waterpeil in de tanks van 1,4 liter, om ervoor te zorgen dat de testvissen niet kunnen zwemmen in gebieden die de sociale prikkel niet hebben. Zorg er bovendien voor dat de tank van 1.4 liter in beeld is bij het opnemen van de video's; Dit zal een back-up opleveren voor het geval handmatige codering van de gegevens nodig is of verificatie van de stimuluszijde nodig is.

Typische problemen binnen het protocol zijn dat de persoon niet correct wordt gevolgd, een onvoldoende gewenningsperiode en een korte vertraging bij het trekken van de ondoorzichtige barrières wanneer meerdere arena's worden opgezet. Om te voorkomen dat het onderwerp niet correct wordt gevolgd, moet u ervoor zorgen dat er voldoende contrast is tussen de vis en de achtergrond, zoals eerder vermeld, en dat de richtlijnen van de software worden gevolgd. Bovendien, als de software van de gebruiker infraroodtracking toestaat, kan dit problemen in verband met contrast verlichten. Hoewel 10 minuten misschien lang lijkt voor een gewenningsperiode, suggereert ons ongepubliceerde werk dat het verkorten van de gewenningstijd een negatieve invloed heeft op het protocol. Ten slotte, als de ondoorzichtige barrière tussen de tanks van 37 L en 1,4 L handmatig wordt getrokken en als er meerdere arena's zijn opgesteld, kunnen alle barrières niet op precies hetzelfde moment worden getrokken, tenzij meerdere mensen aan de barrières trekken. Als alternatief, als slechts één persoon de test uitvoert, moet er een tegenwicht worden geboden aan de arenabarrières die als eerste worden getrokken.

Hoewel het protocol eenvoudig is, zijn de kosten van trackingsoftware en de extra tijd die nodig is om vissen individueel te karakteriseren potentiële valkuilen. Dit protocol maakte gebruik van in de handel verkrijgbare software om het gedrag van experimentele vissen te volgen, waardoor vooringenomenheid van de waarnemer wordt vermeden en de doorvoer wordt verhoogd door meerdere arena's op te zetten en zo meerdere vissen te registreren. Hoewel in dit protocol commerciële software is gebruikt, is er ook andere trackingsoftware beschikbaar, waaronder gratis software. Door dit protocol te gebruiken met het volgen van de keuze van de eindgebruiker, wordt de sociale test gereproduceerd. In dit protocol werd het gedrag van een individuele vis gekarakteriseerd; Anderen hebben zich gericht op het onderzoeken van groepen zebravissen14 , wat een manier is om de mogelijke valkuil van het karakteriseren van één vis tegelijk aan te pakken. Als alternatief, zoals eerder vermeld, kan het gebruik van meerdere testarena's tegelijkertijd de doorvoer verhogen, terwijl de mogelijkheid behouden blijft om een gedragsprofiel toe te wijzen aan een individuele vis. Het behouden van het vermogen om een gedragsprofiel van een individuele vis te correleren is belangrijk omdat het de onderzoeker de mogelijkheid geeft om te zoeken naar variabiliteit binnen een behandelingsgroep. Hoewel blootstelling aan embryonale ethanol werd gebruikt als onafhankelijke variabele in de representatieve gegevens, zijn toekomstige toepassingen van de techniek die in het huidige protocol wordt beschreven niet beperkt tot het simpelweg karakteriseren van de effecten van blootstelling aan embryonale ethanol op sociaal gedrag. Men kan bijvoorbeeld het effect bepalen dat genetische mutaties21 of andere farmacologische behandelingen22 hebben op sociaal gedrag. Bovendien kunnen toekomstige werken, naast blootstelling aan embryonale ethanol, het effect karakteriseren dat andere teratogenen hebben op sociaal gedrag. Het huidige protocol is dus nuttig voor elke onderzoeker die geïnteresseerd is in het begrijpen hoe genen en/of de omgeving sociaal gedrag beïnvloeden.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

Financiering ter ondersteuning van dit onderzoek werd verstrekt door de National Institutes of Health (NIH)/National Institute on Alcohol Abuse (NIAAA) [R00AA027567] aan Y.F.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
1.4-l ZT140 Aquaneering tanksAquaneeringZT140 Tanks voor sociale stimulatie
Aqueon 20" Deluxe Fluorescent Full Hood aquarium lighthttps://www.petco.com/shop/en/petcostore/product/aqueon-aquarium-black-24-fluorescent-deluxe-full-hood-215740Licht voor de 37-I tank
Aqueon Standard Open-Glass Glass Aquarium Tank, 10 Gallonhttps://www.petco.com/shop/en/petcostore/product/aga-10g-20x10x12bk-tank-17091737-l tank voor de sociale test
Ethanol Fisher Scienticfic BP28184
Ethovision XT tracking systemhttps://www.noldus.com/ethovision-xt
R-Capable Color Basler GigE Camerahttps://www.noldus.com/ethovision-xt
White corrugated plastic https://www.homedepot.com/p/Coroplast-48-in-x-96-in-x-0-157-in-4mm-White-Corrugated-Twinwall-Plastic-Sheet-CP4896S/205351385Kunststof om de achterkant en de bodem van de 37-I tank en de achterkant van de tanks te bekleden die voor de sociale stimulatie worden gebruikt

Referenties

  1. Institue Med. Fetal alcohol syndrome: diagnosis, epidemiology, prevention, and treatment. , National Academies Press. Washington, D.C. (1996).
  2. Abel, E. L. Fetal alcohol syndrome and fetal alcohol effects. , Springer. (1984).
  3. Stevens, S. A., Clairman, H., Nash, K., Rovet, J. Social perception in children with fetal alcohol spectrum disorder. Child Neuropsychol. 23 (8), 980-993 (2017).
  4. Streissguth, A. P., et al. Risk factors for adverse life outcomes in fetal alcohol syndrome and fetal alcohol effects. J Dev Behav Pediatr. 25 (4), 228-238 (2004).
  5. Lovely, C. B., Fernandes, Y., Eberhart, J. K. Fishing for fetal alcohol spectrum disorders: zebrafish as a model for ethanol teratogenesis. Zebrafish. 13 (5), 391-398 (2016).
  6. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Dev Dyn. 203 (3), 253-310 (1995).
  7. Lovely, C. B., Nobles, R. D., Eberhart, J. K. Developmental age strengthens barriers to ethanol accumulation in zebrafish. Alcohol. 48 (6), 595-602 (2014).
  8. Howe, K., et al. The zebrafish reference genome sequence and its relationship to the human genome. Nature. 496 (7446), 498-503 (2013).
  9. Norton, W., Bally-Cuif, L. Adult zebrafish as a model organism for behavioural genetics. BMC Neurosci. 11 (1), 90(2010).
  10. Pitcher, T. J. Heuristic definitions of fish shoaling behaviour. Animal Behav. 31 (2), 611-613 (1983).
  11. Fernandes, Y., Rampersad, M., Gerlai, R. Embryonic alcohol exposure impairs the dopaminergic system and social behavioral responses in adult zebrafish. Int J Neuropsychopharmacol. 18 (6), pyu089(2015).
  12. Fernandes, Y., Gerlai, R. Long-term behavioral changes in response to early developmental exposure to ethanol in zebrafish. Alcohol Clin Exp Res. 33 (4), 601-609 (2009).
  13. Fernandes, Y., Rampersad, M., Jones, E. M., Eberhart, J. K. Social deficits following embryonic ethanol exposure arise in post-larval zebrafish. Addict Biol. 24 (5), 898-907 (2019).
  14. Buske, C., Gerlai, R. Early embryonic ethanol exposure impairs shoaling and the dopaminergic and serotoninergic systems in adult zebrafish. Neurotoxicol Teratol. 33 (6), 698-707 (2011).
  15. Pannia, E., Tran, S., Rampersad, M., Gerlai, R. Acute ethanol exposure induces behavioural differences in two zebrafish (Danio rerio) strains: A time course analysis. Behav Brain Res. 259, 174-185 (2014).
  16. Westerfield, M. The zebrafish book: a guide for the laboratory use of zebrafish (Danio rerio)/Monte Westerfield. , University of Oregon Press. Eugene, OR. (2007).
  17. Fernandes, Y., Rampersad, M., Eberhart, J. K. Social behavioral phenotyping of the zebrafish casper mutant following embryonic alcohol exposure. Behav Brain Res. 356, 46-50 (2019).
  18. Fernandes, Y., Rampersad, M., Gerlai, R. Impairment of social behaviour persists two years after embryonic alcohol exposure in zebrafish: A model of fetal alcohol spectrum disorders. Behav Brain Res. 292, 102-108 (2015).
  19. Fernandes, Y., Buckley, D. M., Eberhart, J. K. Diving into the world of alcohol teratogenesis: a review of zebrafish models of fetal alcohol spectrum disorder. Biochem Cell Biol. 96 (2), 88-97 (2018).
  20. Park, J. S., et al. Innate color preference of zebrafish and its use in behavioral analyses. Mol Cells. 39 (10), 750-755 (2016).
  21. Gerlai, R., et al. Forward genetic screening using behavioral tests in zebrafish: a proof of concept analysis of mutants. Behav Genet. 47 (1), 125-139 (2017).
  22. Scerbina, T., Chatterjee, D., Gerlai, R. Dopamine receptor antagonism disrupts social preference in zebrafish: a strain comparison study. Amino Acids. 43 (5), 2059-2072 (2012).

Herprints en machtigingen

Tags

Zebravismodelleringembryonale ethanolblootstellingassay voor sociaal gedraggen omgevingsinteractiegedragsdefici ntiesgeautomatiseerde trackingCRISPR technologiesociale stimulusscholingsrespons