Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Verbeterde fotoluminescentie van Curcuma longa-extracten via chitosan-gemedieerde energieoverdracht voor textielauthenticatietoepassingen

2.5K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/66035

⸱

22 december 2023

 ,  ,  , 
1Department of Science and Technology, Smart Colorants R&D Program, Philippine Textile Research Institute

In dit artikel

Samenvatting

Fotoluminescentie is een van de meest effectieve authenticatiemechanismen die tegenwoordig worden gebruikt. Het gebruik en de verbetering van natuurlijke materialen met inherente fotoluminescente eigenschappen en het opnemen ervan in textielsubstraten kan leiden tot de ontwikkeling van groen, duurzaam en functioneel textiel voor slimme toepassingen.

Samenvatting

Kleurstoffen voor veiligheidsmarkeringen spelen een cruciale rol bij het waarborgen van de integriteit van producten op verschillende gebieden, zoals textiel, farmaceutica, voedsel en productie. De meeste commerciële kleurstoffen die als veiligheidsmarkering worden gebruikt, zijn echter kostbaar en kunnen giftige en schadelijke stoffen bevatten die een risico vormen voor de menselijke gezondheid. Curcumine, een natuurlijke fenolische verbinding die voorkomt in kurkuma, heeft naast zijn levendige gele kleur verschillende fotoluminescente eigenschappen, waardoor het een potentieel kandidaat-materiaal is voor authenticatietoepassingen. Deze studie demonstreert een kosteneffectieve en milieuvriendelijke aanpak om verbeterde fotoluminescente emissies van curcuminekleurstoffen voor textielauthenticatie te ontwikkelen. Curcumine werd geëxtraheerd uit C. longa met behulp van de extractiemethode met sonicatie-ondersteund oplosmiddel. Het extract werd ondergedompeld en geverfd in de textielsubstraten. Chitosan werd geïntroduceerd als een post-beitsmiddel om de curcumine te stabiliseren en als een co-sensibilisator. Co-sensibilisatie van curcumine met chitosan activeert de energieoverdracht om de luminescente intensiteit te verbeteren. De UV-zichtbare absorptiepiek bij 424 nm wordt geassocieerd met de karakteristieke absorptie van curcumine. De fotoluminescentiemetingen toonden een brede emissie met een piek bij 545 nm met een significante verbetering die werd toegeschreven aan de energieoverdracht die door chitosan werd geïnduceerd, waardoor een groot potentieel werd getoond als een natuurlijk afgeleide fotoluminescente kleurstof voor authenticatietoepassingen.

Inleiding

Namaak wordt beschouwd als een plaag in wijdverbreide industrieën over de hele wereld. De snelle toename van namaakproducten op de markt veroorzaakt een economische ravage, die het levensonderhoud van de primaire uitvinder belemmert 1,2,3,4,5,6. Dit werd in 2020 7 naar vorengebracht naar aanleiding van de aanhoudende bezorgdheid over opkomende namaakproducten, zoals blijkt uit de toenemende trend van publicaties die het trefwoord antinamaak of namaak in hun titels bevatten. Sinds de laatste melding in 2019 is er een aanzienlijke toename van het aantal publicaties in verband met namaak, wat erop wijst dat er aanzienlijke inspanningen worden geleverd om de productie en distributie van frauduleuze goederen te bestrijden. Aan de andere kant kan het ook behoorlijk verontrustend zijn, aangezien het de vooruitgang van de namaakindustrie betekent, die naar verwachting zal aanhouden als deze niet effectief wordt aangepakt. De textielindustrie is niet geïsoleerd van dit probleem, aangezien de aanwezigheid van namaaktextielproducten ernstige gevolgen heeft gehad voor het levensonderhoud van onder meer echte verkopers, fabrikanten en wevers 3,8. Zo werd de textielindustrie in West-Afrika lange tijd beschouwd als een van de belangrijkste exportmarkten ter wereld. Er werd echter gemeld9 dat ongeveer 85 % van het marktaandeel in handen is van gesmokkeld textiel dat inbreuk maakt op West-Afrikaanse textielmerken. De effecten van namaak zijn ook gemeld in andere continenten zoals Azië, Amerika en Europa, wat aangeeft dat deze crisis een oncontroleerbaar niveau heeft bereikt en een aanzienlijke bedreiging vormt voor de toch al worstelende textielindustrie 2,3,4,10,11,12.

Met de snelle vooruitgang van wetenschap, technologie en innovatie namen onderzoekers de rol op zich om functionele materialen te ontwikkelen met het oog op anti-namaaktoepassingen. Het gebruik van geheime technologie is een van de meest voorkomende en effectieve benaderingen om de productie van frauduleuze goederen tegen te gaan. Het gaat om het gebruik van fotoluminescente materialen als veiligheidskleurstoffen die een specifieke lichtemissie vertonen wanneer ze worden bestraald door verschillende golflengten13,14. Sommige fotoluminescente kleurstoffen die op de markt verkrijgbaar zijn, kunnen echter toxiciteit veroorzaken bij hoge concentraties, waardoor ze een bedreiging vormen voor de menselijke gezondheid en het milieu15,16.

Kurkuma (Curcuma longa) is een essentiële plant die wordt gebruikt in talloze toepassingen, zoals verven, smaakstoffen, medicijnen, cosmetica en textielkleurstoffen17. In de wortelstokken zijn van nature voorkomende fenolische chemische verbindingen aanwezig die curcuminoïden worden genoemd. Deze curcuminoïden omvatten curcumine, demethoxycurcumine en bisdemethoxycurcumine, waarvan curcumine het hoofdbestanddeel is dat verantwoordelijk is voor de levendige gele tot oranje kleur en de eigenschappen van kurkuma18. Curcumine, ook wel bekend als 1,7-bis(4-hydroxy-3-methoxyfenyl)-1,6-heptadieen-3,5-dion19,20 met een empirische formule van C21H20O 6, heeft veel aandacht getrokken op biomedisch en farmaceutisch gebied vanwege zijn antiseptische, ontstekingsremmende, antibacteriële en antioxiderende eigenschappen 17,18,21,22,23. Interessant is dat curcumine ook spectrale en fotochemische eigenschappen bezit. Bijzonder opmerkelijk zijn de intense fotoluminescente eigenschappen wanneer ze worden blootgesteld aan ultraviolette (UV) excitaties die slechts door enkele onderzoeken zijn onderzocht 19,24,25. Gezien deze kenmerken, in combinatie met zijn hydrofobe aard en niet-toxische eigenschappen, komt curcumine naar voren als een ideale kleurstof voor authenticatiemarkeringen.

De extractie van curcumine uit kurkuma werd voor het eerst gemeld in de vroege jaren 1800. In de afgelopen eeuwen zijn tal van extractiemethoden en -technieken bedacht en verbeterd om een hogere opbrengst te bereiken 26,27,28,29,30,31,32,33. Conventionele oplosmiddelextractie is een veelgebruikte benadering, omdat er organische oplosmiddelen zoals ethanol, methanol, aceton en hexaan worden gebruikt om curcumine te isoleren uit kurkuma34,35. Deze methode is geëvolueerd door aanpassingen, in combinatie met meer geavanceerde technieken zoals microgolf-geassisteerde extractie (MAE)18,36,37, Soxhlet-extractie 38,39, enzym-geassisteerde extractie (EAE)39,40 en ultrasone extractie36, onder andere om de opbrengst te verhogen. Over het algemeen is de oplosmiddelextractiemethode toegepast voor natuurlijke kleurstofextractie vanwege de veelzijdigheid, het lage energieverbruik en de kosteneffectiviteit, waardoor het ideaal is voor schaalbare industrieën zoals textiel.

Curcumine is geïntegreerd als natuurlijke kleurstoffen voor textiel vanwege de opvallende gele tint. De slechte adsorptie van natuurlijke kleurstoffen aan textielvezels vormt echter een uitdaging die de commerciële levensvatbaarheid ervan belemmert41. Beitsmiddelen, zoals metalen, polysachariden en andere organische verbindingen, dienen als gemeenschappelijke bindmiddelen om de affiniteit van natuurlijke kleurstoffen met de stof te versterken. Chitosan, een polysacharide afgeleid van schaaldieren, wordt op grote schaal gebruikt als alternatief beitsmiddel vanwege de overvloed in de natuur, biocompatibiliteit en wasbestendigheid42. Deze studie rapporteert een gemakkelijke en ongecompliceerde aanpak bij het voorbereiden van authenticatiemarkering op basis van curcumine. Ruwe curcumine-extracten werden verkregen via de sonicatie-ondersteunde oplosmiddelextractiemethode. De fotoluminescente eigenschappen van de geëxtraheerde curcumine werden uitgebreid onderzocht op textielsubstraten en verder verbeterd met de introductie van chitosan als beitsmiddel. Dit toont het aanzienlijke potentieel aan als een natuurlijk afgeleide fotoluminescente kleurstof voor authenticatietoepassingen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

1. Extractie van curcumine

  1. Weeg 3 g C. longa-poeder af in een centrifugebuisje van 50 ml.
    OPMERKING: Een centrifugebuis van 50 ml werd gebruikt om het centrifugatieproces te vergemakkelijken en de extractie op een enkele container te verwerken.
  2. Voeg 38 ml ethanol (AR, 99%) toe aan de centrifugebuis. Schud de tube voorzichtig om ervoor te zorgen dat de ethanol grondig wordt gemengd met het C. longa-poeder .
  3. Sonificeer de buis gedurende 30 minuten in de normale sonische modus en hoge intensiteitsinstelling voor extractie.
  4. Om de vaste materialen te scheiden, centrifugeert u de buis gedurende 10 minuten op 4430 x g . Voordat u de centrifuge gebruikt, opent u de buis en sluit u deze weer om de druk te verlagen en lekkage te voorkomen.
  5. Decanteer om het supernatans op te vangen en bewaar het in droge, omgevingsomstandigheden. Het supernatans bevat curcumine-extract in ethanoloplosmiddel. Het is belangrijk om de container gesloten te houden om lekkage van oplosmiddelen te voorkomen.

2. Fourier transformeert infrarood (FTIR) karakterisering van C. longa-extract

NOTITIE: Verzwakte totale reflectie - De Fourier-transformatie-infraroodspectrofotometer (ATR-FTIR) werd gebruikt volgens de standaardprocedures in de gebruikershandleiding.

  1. Voordat de IR-spectra worden gemeten, moeten de meetparameters worden ingesteld. Gebruik de optie Meten, klik op het tabblad Geavanceerd en stel de parameters voor de monster- en achtergrondscantijd in op 40 scans, de scanresolutie op 4 cm1 en het bereik van 4000 - 400 cm-1.
  2. Reinig het ATR-kristal met Propan-2-ol (99,8%). Schakel na het reinigen over naar Basic.
    OPMERKING: Achtergrondscans zijn nodig om omgevingsinterferentie te elimineren en ervoor te zorgen dat de IR-spectra uitsluitend het geanalyseerde monster vertegenwoordigen. Achtergrondmetingen worden alleen uitgevoerd voordat het instrument in gebruik wordt genomen. Het reinigen van het ATR-kristal moet altijd plaatsvinden vóór elke nieuwe meting.
  3. Gebruik een pasteurpipet om 0,3 ml ruw C. longa-extract in het ATR-kristal aan te brengen en laat het 3 tot 5 minuten drogen om de interferentie van ethanol te verwijderen. Naarmate de ethanol droogt, hoopt het extract zich vervolgens op in het kristal, wat de transmissiewaarde vermindert.
  4. Klik in de software op Meten > Geavanceerd om de bestandsnaam in te stellen. Nadat u het monster een naam hebt gegeven, klikt u op het tabblad Basis en meet u de IR-transmissie van gedroogd extract.
  5. Herhaal stap 2.3 en 2.4 tot 3x of totdat de resolutie van de spectra verbetert.
    OPMERKING: Een verbeterde resolutie wordt bepaald door een afname van de transmissie in het spectrum.
  6. Reinig na het voltooien van de meting het ATR-kristal met 99% ethanol en pluisvrije doekjes. Reinig vervolgens de ATR-monstertafel met Propan-2-ol.

3. UV-zichtbare meting van C. longa-extract

NOTITIE: De UV-zichtbare spectrofotometer werd bediend volgens de standaardprocedures in de gebruikershandleiding.

  1. Voordat u de monsters meet, moet u het instrument 15 tot 30 minuten laten opwarmen. Dit stabiliseert de lichtbron en detector, waardoor reproduceerbare metingen worden gegarandeerd. Vul de referentiecel met ethanol.
  2. Voordat u de absorptiespectra meet, stelt u de meetparameters in. Gebruik de optie Setup, klik op het tabblad Cary en stel de scantijd in op 0.1 s, het gegevensinterval op 1 nm en de scansnelheid op 600 nm/min. Stel ten slotte het bereik in van 200 nm tot 700 nm.
  3. Bereid 25 ml verdunningen van C. longa-extract van 1:1000 tot 1:100 in stappen van 1:100 met ethanol als oplosmiddel.
  4. Breng ongeveer 3,5 ml verdunde C. longa over in een kwartscuvet met behulp van een pasteurpipet. Om de reiniging na elke monstermeting te vergemakkelijken, begint u met een verdunning van 1:1000 en werkt u tot 1:100.
  5. Meet de absorptie van het extract zoals hieronder beschreven.
    1. Reinig de cuvet met ethanol en herhaal de metingen voor de andere verdunningen.
    2. Om de nauwkeurigheid van de absorptie te garanderen, spoelt u de cuvetten grondig af met het verdunde extract voordat u de testoplossing overbrengt.
  6. Herhaal stap 3.4-3.5.2 voor andere concentraties.

4. Fotoluminescentiemeting van C. longa-extract

NOTITIE: De werking van de fluorescentiespectrometer volgde de standaardprocedures in de gebruikershandleiding.

  1. Voordat u de monsters meet, moet u het instrument 15 tot 30 minuten laten opwarmen. Dit stabiliseert de lichtbron en detector, waardoor de reproduceerbaarheid van elke meting wordt gegarandeerd.
  2. Voordat u de fluorescerende spectra meet, stelt u eerst de meetparameters in. Klik op de knop Meten en stel de integratietijd in op 0,1 s, stappen op 1 nm en spleetbreedte op 1 nm. Het meetbereik kan variëren afhankelijk van de excitatie- of emissiebron.
  3. Breng met behulp van een pasteurpipet voorzichtig ongeveer 3,5 ml verdunde C. longa over in de kwartscuvet. Om de reiniging na de monstermeting te vergemakkelijken, start u de meting van 1:1000 tot 1:100.
  4. Meet de emissie van het extract met behulp van een 365 nm excitatiebron. Stel het emissiebereik in van 380 nm tot 625 nm.
  5. Meet met behulp van de golflengte met de hoogste emissie uit stap 4.4 het excitatiespectrum van het monster. Stel de ondergrens voor het excitatiebereik in op 330 nm en bereken de bovengrens met behulp van de bewaakte emissiegolflengte minus 15 nm. De toelating van 15 nm zorgt ervoor dat er geen eerste-orde verstrooiing op de spectra wordt waargenomen.
  6. Meet met behulp van de golflengte met de hoogste excitatie uit stap 4.5 opnieuw het emissiespectrum van het monster. Bereken de ondergrens voor het emissiebereik met behulp van de excitatiegolflengte plus 15 nm. Stel de bovengrens in op 625 nm.
  7. Meet de emissie-excitatiematrix van C. longa-extract zoals hieronder beschreven.
    1. Stel voor consistentie het meetbereik voor excitatie in op 330-435 nm en de emissie op 450-650 nm. Handhaaf deze parameters voor alle concentraties.
    2. Reinig de cuvet met ethanol en herhaal de metingen voor andere verdunningen. Om de nauwkeurigheid van de fluorescentiemetingen te garanderen, spoelt u de cuvetten met het verdunde extract voordat u de testoplossing overbrengt.

5. Fotoluminescentiemeting van chitosan

  1. Bereid 300 ml 1% w/v-oplossing van Chitosan. Meng 3 g chitosan met 1% v/v azijnzuur (99,8%) oplossing tot 300 ml. Roer de oplossing gedurende 24 uur of totdat deze homogeniseert.
  2. Meet de emissie-excitatiematrix van Chitosan zoals hieronder beschreven.
    1. Gebruik de volgende meetparameters voor chitosan:
      Spleetbreedte: 1 nm (zowel emissie als excitatie)
      Integratietijd: 0,1 s
      Emissiebereik: 300-370 nm
      Excitatie bereik: 385-450 nm
  3. Meet de IR-spectra van stoffen zoals hieronder beschreven.
    1. Plaats de stof van de multitester (stof #1) boven het ATR-kristal. De stof met meerdere testers bevat zes soorten stof die worden weergegeven in figuur 1A. Zorg er bij het meten met ATR-FTIR voor dat het hele ATR-kristal bedekt is met het monster. De stof moet volledig contact maken met het ATR-kristal door aan de hendel van de monsterpers te trekken. Dit vermindert de transmissie die het verzamelt.
    2. Meet de IR-transmissie van de stoffen. Herhaal de meting op andere stoffen.

6. Verven van stoffen

  1. Weeg de stoffen om de hoeveelheid kleurstof en chitosan-afwerking te bepalen die moet worden gebruikt.
  2. Bereid C. longa-extractoplossingen in verdunningen van 1:1, 1:10, 1:50, 1:100, 1:500 en 1:1000 met 99% ethanol.
  3. Verf de stoffen gedurende 1 uur met verdund C. longa-extract in een materiaal-liquorverhouding van 1:25 door de stof in de oplossingen te weken.
  4. Hang de stoffen te drogen. Spoel de stoffen af met kraanwater en hang ze te drogen.
  5. Voer de afwerking van de stof uit zoals hieronder beschreven.
    1. Week de geverfde stoffen gedurende 1 uur met 1% w/v Chitosan-oplossing in een materiaal-liquorverhouding van 1:40 door de stof in de oplossing te laten weken.
    2. Hang de stoffen te drogen. Spoel de stoffen af met kraanwater en hang ze te drogen.

7. Fotoluminescentiemetingen van geverfde stoffen

  1. Plaats de stof in de monsterhouder. Zorg er bij het gebruik van AATCC-stoffen voor multitesters voor dat de geteste stof in het midden van het raam wordt geplaatst en dat er zich geen andere stoffen binnen het meetgebied bevinden. Om de positie van stoffen te fixeren, gebruikt u glasplaatjes als ondersteuning. Een voorbeeld van de positionering van stof wordt weergegeven in figuur 1.
  2. Voor het meten van de fotoluminescentie van de stof stelt u de integratietijd in op 0,1 s, stappen op 1 nm en de spleetbreedte op 0,6 nm. Meet de fluorescentie van geverfde stoffen bij 365 nm excitatie. Net als bij meetoplossingen stelt u het emissiebereik in op 380-625 nm.
  3. Meet met behulp van de golflengte met de hoogste emissie uit stap 5.3 het excitatiespectrum van het monster. Stel de ondergrens voor het excitatiebereik in op 330 nm en bereken de bovengrens voor het excitatiebereik met behulp van de bewaakte emissiegolflengte minus 15 nm. De toelating van 15 nm zorgt ervoor dat er geen eerste-orde verstrooiing op de spectra wordt waargenomen.
  4. Meet met behulp van de golflengte met de hoogste excitatie uit stap 7.3 het emissiespectrum van het monster. Bereken de ondergrens voor het emissiebereik met behulp van de excitatiegolflengte plus 15 nm. Stel de bovengrens in op 625 nm.
  5. Herhaal meetstap 7.1 tot en met 7.4 voor andere soorten monsterweefsels en met verschillende concentraties.
  6. Meet de emissiespectra van 1:50 verdunde, met Chitosan afgewerkte C. longa-extractgeverfde stoffen met behulp van een excitatiegolflengte van 365 nm.
    OPMERKING: De stoffen die zijn geverfd met een verdunning van 1:50 worden gebruikt voor de analyse van de effecten van Chitosan-afwerking, omdat deze de hoogste fotoluminescentie vertoont. Stel net als bij stap 4.4 het emissiebereik in op 380-625 nm.
  7. Verzamel de spectrochemische gegevens voor interpretatie.

8. Morfologische analyse van weefsels

OPMERKING: Morfologische analyse van stoffen omvat twee soorten verlichting: wit licht en 365 nm UV-licht. De keuze van de lichtbron kan onthullen hoe de kleurstof en afwerking aan de stof hechten.

  1. Aangezien de microscoop geen UV-lichtbron heeft, gebruikt u een draagbare UV-lichtbron van 365 nm. Bevestig de lichtbron stevig om een consistente positie te behouden zonder het beeldvormingsproces te beïnvloeden. Gebruik een klem die aan een ijzeren standaard is bevestigd om het 365 nm UV-licht te monteren en richt het op de stereozoommicroscooptafel.
  2. Leg de stof op het podium en open de witte lichtbron. Gebruik de grove instelknop om de zoom in te stellen op de laagste vergroting en zoek het doelbeeldgebied. Verhoog de vergroting geleidelijk tot 4x en verfijn deze met behulp van de fijnafstellingsknop.
  3. Gebruik de ingebouwde beeldvormingssoftware om een schaalbalk in te voegen en de afbeelding vast te leggen.
  4. Om een consistente beeldvorming te garanderen, configureert u de belichtingsparameters met de volgende waarden: stel de belichtingscompensatie in op 100, de belichtingstijd op 100 ms en de versterking op 20. Stel bovendien de tintwaarden in op rood: 27, groen: 32 en blauw: 23. Andere gespecificeerde parameters die moeten worden aangepast, zijn scherpte: 75, ruisonderdrukking: 35, verzadiging: 50, gamma: 6 en contrast: 50.
  5. Zet de witte lichtbron UIT en schakel de 365 nm lichtbron in. Leg een afbeelding vast met dezelfde beeldparameters.
  6. Herhaal stap 8.3 tot en met 8.6 voor alle soorten stoffen en omstandigheden (blanco, geverfd, alleen afwerking, geverfd en afgewerkt) totdat afbeeldingen van alle stoffen zijn vastgelegd. In totaal zouden er 48 afbeeldingen van stoffen moeten zijn.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

FTIR-analyses van vezels bepalen de chemische structuur van elke vezel die wordt vertegenwoordigd in de multi-tester stoffen #1. FTIR-spectroscopie werd gebruikt om de functionele groepen te karakteriseren die aanwezig zijn in elk onderdeel van de multi-testweefsels. Zoals te zien is in aanvullende figuur 1, vindt het onderscheid plaats als gevolg van de aanwezigheid van N-H functionele groepen, wat ertoe leidt dat de stof wordt onderverdeeld in stikstofhoudend (aanvullende figuu...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Textielveredeling is een gangbare praktijk binnen de industrie om extra functionele eigenschappen op de stoffen aan te brengen, waardoor ze geschikter worden voor specifieke toepassingen 45,47,48. In deze studie werd de geëxtraheerde curcumine gebruikt als een natuurlijke kleurstof om te dienen als authenticatiemechanismen voor textieltoepassingen. De protocollen leggen niet alleen de nadruk op de extractie van curcumine uit kur...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

Dit werk wordt ondersteund door het Department of Science and Technology - Philippine Textile Research Institute in het kader van het DOST Grants-in-Aid (DOST-GIA) Project getiteld Covert Technology Towards Sustainability and Protection of the Philippine Textile Sectors under the Digitalization of the Philippine Handloom Weaving Industry Program.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
(Curcumin) C. longa, spray dried N/AN/ANaturally Sourced
100 mL Graduated Cylindern/a
10 mL Serological Pipetten/a
200 mL Beakern/a
365 nm UV LightAloneFireSV004 LG
50 mL Centeifuge Tuben/a
AATCC Multitester FabricTestfabrics, Inc.401002AATCC Multifiber test fabric # 1 precut pieces of 2 X 2 inches, Heat Sealed
Analytical BalanceSatoriusBSA 224S-CW
Aspiratorn/a
ATR- FTIRBrukerBruker Tensor II
CentrifugeHermle Labortechnik GmbHZ 206 A
ChitosanTokyo Chemical Industries9012-76-4
Digital  CameraToupTekXCAM1080PHB
Drying Rackn/a
EthanolChem-Supply64-17-5Undenatured, 99.9% purity
Glacial Acetic AcidRCI-Labscan64-19-7AR Grade, 99.8% purity
Glass Sliden/a
Iron Clampn/a
Iron Standn/a
Magnetic StirrerCorningPC-620D
Pasteur Pipetten/a
Propan-2-olRCI-Labscan67-63-0AR Grade, 99.8% purity
SonicatorJeio Tech Inc.UCS-20
Spectrofluorometer Horiba (Jovin Yvon)Horiba Fluoromax Plus
Stirring Barn/a
UV-Vis SpectrophotometerAgilentCary UV 100
Wash bottlen/a
Zoom Stereo MicroscopeOlympusSZ61

Referenties

  1. Eisend, M., Hartmann, P., Apaolaza, V. Who buys counterfeit luxury brands? A meta-analytic synthesis of consumers in developing and developed markets. J Int Market. 25 (4), 89-111 (2017).
  2. Agrawal, T. K., Koehl, L., Campagne, C. Uncertainty modelling in knowledge engineering and decision making. World Scientific Procedings Series. , Istanbul, Turkey. (2012).
  3. Cakin, M. B., Dincer, A. T. A. Turkish studies-comparative religious studies. , International Balkan Univeristy. (2023).
  4. Albarq, A. N. Counterfeit products and the role of the consumer in Saudi Arabia. Am J Indust Busi Manag. 5 (12), 819-827 (2015).
  5. Boamah, F., Ayesu, S. M., Crentsil, T., Pardie, S. P. The effect of academic textiles studies on the Ghana textile industry. Africa J Appl Res. 8 (2), 186-196 (2022).
  6. Bruce-Amarty, E. J., Amissah, E. R. K., Safo-Ankama, K. The decline of Ghana's textile industry: Its effects on textile education in Ghana. Art Design Studies. 22, 36-44 (2014).
  7. Abdollahi, A., Roghani-Mamaqani, H., Razavi, B., Salami-Kalajahi, M. Photoluminescent and chromic nanomaterials for anticounterfeiting technologies: Recent advances and future challenges. ACS Nano. 14 (11), 14417-14492 (2020).
  8. Norum, P. S., Cuno, A. Analysis of the demand for counterfeit goods. J Fashion Market Manage: An Int J. 15 (1), 27-40 (2011).
  9. Okonkwo, I. E., Abiala, W. Justification of counterfeits a microscopic view from a trademark perspective. Mayne Quart Law Rev. 6 (4), 1-7 (2021).
  10. Quoquab, F., Pahlevan, S., Mohammad, J., Thurasamy, R. Factors affecting consumers' intention to purchase counterfeit product. Asia Pac J Market Log. 29 (4), 837-853 (2017).
  11. Dalal, H. Challenges: A study of Textile Industry in India. Pramana Res J. 9 (5), 423-429 (2019).
  12. Mushi, H. M., Mohd Noor, N. A. Consumer behaviour and counterfeit purchase in the Tanzanian mainland. Global Bus Manage Rev (GBMR). 8 (1), 49-64 (2022).
  13. Ren, S., et al. Highly bright carbon quantum dots for flexible anti-counterfeiting. J Mat Chem C. 10 (31), 11338-11346 (2022).
  14. Liu, R. S. Phosphors, Up Conversion Nano Particles, Quantum Dots and Their Applications. , Springer, Berlin, Heidelberg. (2017).
  15. Chang, K., et al. Conjugated polymer dots for ultra-stable full-color fluorescence patterning. Small. 10 (21), 4270-4275 (2014).
  16. Fatahi, Z., Esfandiari, N., Ranjbar, Z. A New anti-counterfeiting feature relying on invisible non-toxic fluorescent carbon dots. J Anal Test. 4 (4), 307-315 (2020).
  17. Abd El-Hack, M. E., et al. Curcumin, the active substance of turmeric: its effects on health and ways to improve its bioavailability. J Sci Food Agri. 101 (14), 5747-5762 (2021).
  18. Bener, M., Özyürek, M., Güçlü, K., Apak, R. Optimization of microwave-assisted extraction of curcumin from Curcuma longa L. (Turmeric) and evaluation of antioxidant activity in multi-test systems. Rec. Nat. Prod. 10 (5), 542-554 (2016).
  19. Van Nong, H., et al. Fabrication and vibration characterization of curcumin extracted from turmeric (Curcuma longa) rhizomes of the northern Vietnam. Springerplus. 5 (1), 1147(2016).
  20. Kolev, T. M., Velcheva, E. A., Stamboliyska, B. A., Spiteller, M. DFT and experimental studies of the structure and vibrational spectra of curcumin. Int J Quantum Chem. 102 (6), 1069-1079 (2005).
  21. Mohajeri, M., Behnam, B., Tasbandi, A., Jamialahmadi, T., Sahebkar, A. Studies on biomarkers and new targets in aging research in Iran: Focus on turmeric and curcumin. , Springer international publishing. (2021).
  22. Hay, E., et al. Therapeutic effects of turmeric in several diseases: An overview. Chem Biol Interact. 310, 108729(2019).
  23. Ahmad, R. S., et al. Biochemistry, safety, pharmacological activities, and clinical applications of turmeric: A mechanistic review. Evid Based Complement Alternat Med. 2020, 7656919(2020).
  24. Tsaplev, Y. B., Lapina, V. A., Trofimov, A. V. Curcumin in dimethyl sulfoxide: Stability, spectral, luminescent and acid-base properties. Dyes Pigments. 177, 108327(2020).
  25. Chignell, C. F., et al. Spectral and photochemical properties of curcumin. Photochem Photobiol. 59 (3), 295-302 (1994).
  26. Sun, X., Gao, C., Cao, W., Yang, X., Wang, E. Capillary electrophoresis with amperometric detection of curcumin in Chinese herbal medicine pretreated by solid-phase extraction. J Chromatogr A. 962 (1-2), 117-125 (2002).
  27. Takenaka, M., et al. Effective extraction of curcuminoids by grinding turmeric (Curcuma longa) with medium-chain triacylglycerols. Food Sci Technol Res. 19 (4), 655-659 (2013).
  28. Heffernan, C., Ukrainczyk, M., Gamidi, R. K., Hodnett, B. K., Rasmuson, ÅC. Extraction and purification of curcuminoids from crude curcumin by a combination of crystallization and chromatography. Org Process Res Dev. 21 (6), 821-826 (2017).
  29. Paramasivam, M., Poi, R., Banerjee, H., Bandyopadhyay, A. High-performance thin layer chromatographic method for quantitative determination of curcuminoids in Curcuma longa germplasm. Food Chem. 113 (2), 640-644 (2009).
  30. Priyadarsini, K. I. The chemistry of curcumin: from extraction to therapeutic agent. Molecules. 19 (12), 20091-20112 (2014).
  31. Nhujak, T., Saisuwan, W., Srisa-art, M., Petsom, A. Microemulsion electrokinetic chromatography for separation and analysis of curcuminoids in turmeric samples. J Sep Sci. 29 (5), 666-676 (2006).
  32. Kim, Y. J., Lee, H. J., Shin, Y. Optimization and validation of high-performance liquid chromatography method for individual curcuminoids in turmeric by heat-refluxed extraction. J Agri Food Chem. 61 (46), 10911-10918 (2013).
  33. Patel, K., Krishna, G., Sokoloski, E., Ito, Y. Preparative separation of curcuminoids from crude curcumin and turemric powder by pH-zone refining countercurrent chromatography. J Liq Chrom Rel Tech. 23 (14), 2209-2218 (2007).
  34. Paulucci, V. P., Couto, R. O., Teixeira, C. C. C., Freitas, L. A. P. Optimization of the extraction of curcumin from Curcuma longa rhizomes. Rev Bras Farmacogn. 23 (1), 94-100 (2013).
  35. Ali, I., Haque, A., Saleem, K. Separation and identification of curcuminoids in turmeric powder by HPLC using phenyl column. Anal. Methods. 6 (8), 2526-2536 (2014).
  36. Li, M., Ngadi, M. O., Ma, Y. Optimisation of pulsed ultrasonic and microwave-assisted extraction for curcuminoids by response surface methodology and kinetic study. Food Chem. 165, 29-34 (2014).
  37. Mandal, V., Mohan, Y., Hemalatha, S. Microwave assisted extraction of curcumin by sample-solvent dual heating mechanism using Taguchi L9 orthogonal design. J Pharm Biomed Anal. 46 (2), 322-327 (2008).
  38. Shankar, M., Palani, S., Nivedha, D. Extraction of Curcumin from Raw Turmeric (Curcuma longa.)-A Comparative Study, Using Soxhlet, Chemical, Chromatographic, and Spectroscopic Methods and Determining its Bioavailability. Int J Mod Dev in Eng Sci. 1 (6), 67-72 (2022).
  39. Kurmudle, N., Kagliwal, L. D., Bankar, S. B., Singhal, R. S. Enzyme-assisted extraction for enhanced yields of turmeric oleoresin and its constituents. Food Biosci. 3, 36-41 (2013).
  40. Chassagnez-Méndez, A. L., Corrêa, N. C. F., França, L. F. d, Machado, N. T. d, Araújo, M. E. A mass transfer model applied to the supercritical extraction with CO2 of curcumins from turmeric rhizomes (Curcuma longa L). Brazil J Chem Eng. 17, 315-322 (2000).
  41. Ghoreishian, S. M., Maleknia, L., Mirzapour, H., Norouzi, M. Antibacterial properties and color fastness of silk fabric dyed with turmeric extract. Fibers Poly. 14 (2), 201-207 (2013).
  42. Safapour, S., Sadeghi-Kiakhani, M., Doustmohammadi, S. Chitosan-cyanuric chloride hybrid as an efficient novel bio-mordant for improvement of cochineal natural dye absorption on wool yarns. J Textile Inst. 110 (1), 81-88 (2018).
  43. Vahur, S., Teearu, A., Peets, P., Joosu, L., Leito, I. ATR-FT-IR spectral collection of conservation materials in the extended region of 4000-80 cm(-)(1). Anal Bioanal Chem. 408 (13), 3373-3379 (2016).
  44. Gunasekaran, S., Natarajan, R., Natarajan, S., Rathikha, R. Structural investigation on curcumin. Asian J Chem. 20 (4), 2903(2008).
  45. Kim, H. J., et al. Curcumin dye extracted from Curcuma longa L. used as sensitizers for efficient dye-sensitized solar cells. Int J Electrochem Sci. 8 (6), 8320-8328 (2013).
  46. Singh, P. K., Wani, K., Kaul-Ghanekar, R., Prabhune, A., Ogale, S. From micron to nano-curcumin by sophorolipid co-processing: highly enhanced bioavailability, fluorescence, and anti-cancer efficacy. RSC Adv. 4 (104), 60334-60341 (2014).
  47. Holmquist, H., et al. Properties, performance and associated hazards of state-of-the-art durable water repellent (DWR) chemistry for textile finishing. Environ Int. 91, 251-264 (2016).
  48. Berradi, M., et al. Textile finishing dyes and their impact on aquatic environs. Heliyon. 5 (11), e02711(2019).
  49. Behera, M., Nayak, J., Banerjee, S., Chakrabortty, S., Tripathy, S. K. A review on the treatment of textile industry waste effluents towards the development of efficient mitigation strategy: An integrated system design approach. J Environ Chem Eng. 9 (4), 105277(2021).
  50. Massella, D., Giraud, S., Guan, J., Ferri, A., Salaün, F. Textiles for health: a review of textile fabrics treated with chitosan microcapsules. Environ Chem Lett. 17 (4), 1787-1800 (2019).
  51. Wang, F., Huang, W., Jiang, L., Tang, B. Quantitative determination of proteins based on strong fluorescence enhancement in curcumin-chitosan-proteins system. J Fluoresc. 22 (2), 615-622 (2012).
  52. Yang, M., Wu, Y., Li, J., Zhou, H., Wang, X. Binding of curcumin with bovine serum albumin in the presence of iota-carrageenan and implications on the stability and antioxidant activity of curcumin. J Agric Food Chem. 61 (29), 7150-7155 (2013).
  53. Sneharani, A. H., Karakkat, J. V., Singh, S. A., Rao, A. G. Interaction of curcumin with beta-lactoglobulin-stability, spectroscopic analysis, and molecular modeling of the complex. J Agric Food Chem. 58 (20), 11130-11139 (2010).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Tags

Curcuma Longa-extractfotoluminescente kleurstoffenchitosan-energietransfercurcumine-extractiesonicatie-ondersteunde extractieUV-vis spectroscopieFTIR-karakteriseringfluorescentiespectrofotometrievervalsingsbeveiliging van textiel
Verbeterde fotoluminescentie van Curcuma longa-extracten via chitosan-gemedieerde energieoverdracht voor textielauthenticatietoepassingen
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan de bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleidsoverzicht

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.