Duodenal-jejunal bypass (DJB) chirurgie kan het glucosemetabolisme verbeteren en de insulineresistentie verminderen. Hier presenteren we een protocol om een stabiel en betrouwbaar muismodel van DJB op te zetten.
Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.
Methodenartikel
Duodenale-jejunale bypass-operatie bij door voeding geïnduceerde zwaarlijvige diabetische muizen
* These authors contributed equally
In dit artikel
Samenvatting
Samenvatting
De prevalentie van obesitas en diabetes type 2 is een ernstig wereldwijd gezondheidsprobleem. Obesitas is een belangrijke pathogene factor bij diabetes type 2, hart- en vaatziekten en sommige vormen van kanker. Bariatrische chirurgie biedt een langdurige en effectieve behandelingsoptie voor zowel obesitas als diabetes. Sleeve gastrectomie (SG) en Roux-en-Y gastric bypass (RYGB) worden algemeen erkend als de meest populaire bariatrische operaties. Bovendien hebben verschillende verkennende bariatrische operaties veelbelovende therapeutische effecten aangetoond. Duodenal-jejunal bypass (DJB), specifiek op maat gemaakt voor diabetici met een lage body mass index, heeft gunstige metabole resultaten laten zien. De gewichtsonafhankelijke metabolische voordelen ervan worden echter niet volledig begrepen vanwege beperkte diermodellen. In dit artikel beschrijven we de geoptimaliseerde zorgprotocollen en chirurgische technieken voor het uitvoeren van DJB-chirurgie bij door voeding geïnduceerde zwaarlijvige (DIO) diabetische muizen. Het gebruik van een muismodel draagt bij aan een beter begrip van de aard van de veranderingen die worden veroorzaakt door DJB-chirurgie, terwijl de gerelateerde klinische praktijk wordt vergemakkelijkt.
Inleiding
Obesitas en diabetes type 2 zijn de meest voorkomende chronische ziekten ter wereld en hun prevalentie neemt toe onder jonge mensen1. Bariatrische chirurgie is de meest effectieve behandeling voor obesitas en diabetes, waardoor de bloedglucosestabiliteit op de lange termijn wordt bevorderd en tegelijkertijd de complicaties die gepaard gaan met obesitas worden verbeterd 2,3. Er zijn verschillende soorten bariatrische chirurgie, geclassificeerd op basis van of ze het maagvolume of de darmabsorptie verminderen; Deze omvatten restrictief, malabsorptief en combinatie 4,5.
Duodenal-jejunal bypass (DJB) werd voor het eerst ontwikkeld door Rubino en Marescaux, die aantoonden dat diabetes type 2 kan worden verlicht door de twaalfvingerige darm en het jejunum met elkaar te verbinden in plaats van door het maagvolume 6,7 te verminderen. DJB bewaart de hele maag en omzeilt de hele twaalfvingerige darm en proximale jejunum. De darm is verdeeld in biliopancreatische, spijsverterings- en gemeenschappelijke ledematen 6,8. DJB deelt enkele overeenkomsten met bariatrische operaties, waaronder Roux-en-Y gastric bypass (RYGB), mini-gastric bypass, biliopancreatic bypass, duodenal diversion en DJB plus sleeve gastrectomie9. In vergelijking met RYGB vereist DJB geen gastro-intestinale anastomose, wat de operatietijd verkort en het slagingspercentage van de procedure verbetert. DJB is vergelijkbaar met RYGB bij het verbeteren van het glucosemetabolisme, maar heeft geen invloed op het lichaamsgewicht10. Na een DJB-operatie stimuleert de snelle voedselafgifte aan de distale dunne darm de afscheiding van glucagon-achtig peptide-1 (GLP-1), wat resulteert in een verbeterd glucosemetabolisme11,12.
Het gebruik van diermodellen is essentieel voor het begrijpen van de metabole, cellulaire en moleculaire routes. Diermodellen van bariatrische chirurgie hebben bijgedragen aan ons begrip van mogelijke mechanismen die ten grondslag liggen aan obesitas en diabetes13,14. Vanwege de fysiologische verschillen tussen soorten is het echter onmogelijk om menselijke ziekten perfect na te bootsen in diermodellen15. Van de verschillende diermodellen die beschikbaar zijn voor onderzoeksdoeleinden, lijkt het dieet-geïnduceerde obesitas (DIO) muismodel het meest op menselijke obesitas en metabool syndroom16. Muizen werden geselecteerd voor DJB-chirurgie om de haalbaarheid van de operatie te bepalen en om technieken te bieden voor verder onderzoek. Dit manuscript geeft een uitgebreide samenvatting van zowel technische aspecten als experimentele details van DJB-chirurgie.
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Protocol
Alle hieronder beschreven protocolstappen volgen de richtlijnen van de Animal Care and Use Committee van het General Hospital of the Southern Theatre Command onder het goedkeuringsnummer 2020112501.
1. Algemene preoperatieve voorbereiding
OPMERKING: Er zijn dertig mannelijke C57BL/6-muizen van 6 weken oud gekocht. Muizen werden gehuisvest in een specifiek pathogeenvrij (SPF) laboratorium onder een licht/donker-cyclus van 12 uur; temperatuur, 22 ± 2 °C; en vochtigheid, 55-65%. Muizen kregen vrije toegang tot water en kregen 6 weken lang een vetdieet van 60% kcal om obesitas te veroorzaken. Een intraperitoneale injectie van 40 mg/kg streptozotocine werd gedurende 5 dagen toegediend om diabetes te induceren17. Van de dertig muizen werden tweeëntwintig muizen gescreend op willekeurige bloedglucose > 300 mg/dL en willekeurig toegewezen aan de DJB- (n=15) en schijnchirurgie (n=7) groepen. Acht muizen werden uitgesloten van het experiment vanwege een ondermaatse bloedglucose.
- Vast de muizen gedurende 8 uur voorafgaand aan de operatie. 2 uur voor de operatie water opzuigen.
- Dien 1% natriumpentobarbitaloplossing (6 ml/kg) en buprenorfine (1 mg/kg) intraperitoneaal toe. Raak de tenen of staarten van de muizen aan met een tang en zorg ervoor dat de muizen geen duidelijke spiertrekkingen of trillingen vertonen. Onder adequate verdoving kunnen de muizen vrij ademen zonder extra zuurstof.
- Leg de muizen in rugligging op een steriel bord en onder een stereomicroscoop. Breng oogzalf aan op de ogen. Gebruik een elektrische deken om de muizen tijdens de procedure warm te houden. Gebruik steriele procedures, waaronder operatiejassen, steriele handschoenen en geautoclaveerde instrumenten.
- Maak bij schijncontrolemuizen de twee incisies respectievelijk in de twaalfvingerige darm 1 cm onder de pylorus en in het jejunum 5 cm onder de Treitz en hecht vervolgens de incisies.
2. Duodenale jejunale bypass: chirurgische ingreep
- Breng de ontharingspasta van de xiphoid aan op de buik om haar uit dit gebied te verwijderen. Veeg de crème af en zorg ervoor dat de huid schoon is. Schrob het gebied drie keer met afwisselend jodium- en alcoholoplossingen.
- Bedek de muis met een steriel gordijn, laat het operatiegebied bloot en maak een incisie van 2 cm van de xiphoid naar de buik.
- Gebruik een abdominale retractor om de buikholte bloot te leggen. Duw het buikvet weg met een nat wattenstaafje en beweeg de lever naar de kopzijde om de maag en darmen volledig bloot te leggen.
- De maag en pylorus bevinden zich onder de lever en het ligament van Treitz bevindt zich bij de distale twaalfvingerige darm. Dubbele ligate het jejunum, 5 cm distaal van het ligament van Treitz met een 6-0 zijden hechting (Figuur 1A). Snijd het jejunum in het midden van de twee ligaties door en hecht de jejunale stomp met een 10-0 zijden hechtdraad (Figuur 1B).
OPMERKING: Vermijd het verdraaien van de mesenteriale bloedvaten. - Trek de proximale jejunale incisie 5 cm langs de darm naar het jejunum om een jejunal-jejunale anastomose te creëren. Lijn de twee darmen horizontaal uit en gebruik vervolgens een 10-0 zijden hechting om de laterale anastomose te creëren (Figuur 1C).
OPMERKING: Houd tijdens de operatie de darm vochtig met zoutoplossing om waterverlies te verminderen. Dit voorkomt dat de darm opkrult en maakt het hechten gemakkelijker. - Zet beide uiteinden van de darm vast en knip de incisie op gelijke lengte (Figuur 1D). Hecht de tweede laag van de achterste darmwand met een doorlopende hechtdraad over de volledige dikte.
OPMERKING: De incisielengte is ongeveer 0,5-0,6 cm en de naaldafstand is ~0,5 mm. - Zet beide uiteinden van de darm vast en hecht de voorwand van de darm. Hecht de eerste laag van de voorwand met een eenvoudige doorlopende hechting en de tweede laag met een horizontale varushechting (Figuur 1E-F).
OPMERKING: Veeg de darminhoud af met wattenstaafjes om infectie van de buikholte te voorkomen. - Trek de distale jejunale incisie in de twaalfvingerige darm 1 cm onder de pylorus om een duodenale-jejunale anastomose te creëren (Figuur 1G). Hecht het op dezelfde manier als in de stappen 2.6-2.7 (Figuur 1H-K).
OPMERKING: Controleer de hechting in de anastomosehoek om anastomoselekkage te verminderen. - Maak de darm los met de microtang en knip de darm af met de microschaar. Dubbele ligate de twaalfvingerige darm met een 6-0 zijden hechtdraad, 2 mm van het distale uiteinde van de duodenale-jejunale anastomose. Knip in het midden af met een microschaar en hecht de stronk met een 10-0 zijden hechtdraad (Figuur 1L).
OPMERKING: De gastroduodenale vaten vertakken zich loodrecht op de kop van de alvleesklier en grenzen aan de pylorus, waardoor een zorgvuldige verkenning van de vaten in het dwarsgedeelte vereist is. De samenvloeiing van het gemeenschappelijke galkanaal en de twaalfvingerige darm werd gelokaliseerd, waarbij ervoor werd gezorgd dat de alvleesklier of het gemeenschappelijke galkanaal niet werd beschadigd. - Spoel de buikholte af met een zoutoplossing van 30 °C. Breng de darm terug naar de buikholte. Hecht de spier en de huid apart met een 6-0 zijde. Desinfecteer vervolgens de huid met jodofor.
- Injecteer na de operatie 30 °C zoutoplossing (30 ml/kg) subcutaan in de rug om uitdroging te voorkomen. Injecteer penicilline (10 mg/kg) intramusculair om infectie te voorkomen.
Figuur 1: Duodenale-jejunale bypassprocedure. (A) Locatie van het jejunum 5 cm distaal van het ligament van Treitz. (B) Bind het jejunum dubbel vast met 6-0 zijde, snijd door het midden van de ligatuur. (C) Jejunal-jejunale anastomose. (D) Maak een incisie van 0,5-0,6 cm en hecht de achterwand. (E-F) Volledige Jejunal-jejunale anastomose. (G) Trek de distale jejunum naar de twaalfvingerige darm 1 cm onder de pylorus. (H) Duodenale-jejunale anastomose. (I) Snijd de duodenale-jejunale anastomose door met een incisie van 0,5-0,6 cm en hecht de achterwand met een eenvoudige doorlopende hechtdraad. (J-K) Volledige duodenale-jejunale anastomose. (L) Op 2 mm van de distale tot de duodenale-jejunale anastomose, de twaalfvingerige darm dubbel ligate met 6-0 zijde en door het midden van de ligatuur gesneden. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
3. Algemene postoperatieve zorg
- Leg de muizen na de operatie op een elektrische deken om onderkoeling te voorkomen. Laat de muizen vrij kruipen tot ze volledig wakker zijn voordat ze terugkeren naar hun kooien.
- Beperk op de postoperatieve dag het voedsel en water en injecteer 2 ml zoutoplossing subcutaan in de rug van de muizen. Geef op de eerste postoperatieve dag 10 ml 10% glucose en een functionele drank (verhouding 1:1) zonder voedsel en injecteer 1 ml zoutoplossing subcutaan.
- Op de tweede en derde postoperatieve dag voedt u de muizen met een mengsel van 20 ml 10% glucose en een functionele drank. Geef de muizen na de vierde dag zuiver water en een vetrijk dieet. Overgangsvoeding moet worden uitgevoerd volgens de postoperatieve herstelstatus in de volgende volgorde: oplossing, halfvloeibaar of vast voedsel.
- Postoperatieve analgesie: injecteer buprenorfine (0,1 mg/kg) elke 12 uur van dag 1 tot 3 en vervolgens eenmaal daags tot dag 5.
- Observeer na de operatie de voedingsomstandigheden, activiteit, ontlasting en wondgenezing van de muizen.
Figuur 2: Het diagram van DJB-chirurgie. (A) Duodenale-jejunale anastomose. (B) Jejunale-jejunale anastomose. (C) Biliopancreatische ledemaat. (D) Spijsverteringsledemaat. (E) Gemeenschappelijk ledemaat. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Figuur 3: Anatomie van DJB-chirurgie. (A) Tatoeage-jejunale anastomose. (B) Jejunale-jejunale anastomose. (C) Biliopancreatische ledemaat. (D) Spijsverteringsledemaat. (E) Gemeenschappelijk ledemaat. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
4. Postoperatieve evaluatie van metabole parameters
- Meting van het lichaamsgewicht
- Vast de muizen gedurende 8 uur voorafgaand aan de meting. Weeg de muizen wekelijks op maandag voor en na de operatie gedurende 8 weken.
- Meting van voedselinname
- Huisvest een muis in elke kooi. Meet de hoeveelheid vast voedsel in elke kooi voor en na 24 uur. Het verschil tussen de twee waarden vertegenwoordigt de dagelijkse voedselinname.
- Willekeurige bloedglucosemeting
- Verzamel op de wekelijkse meetmaandag om 8.00 uur een druppel bloed uit het puntje van de muizenstaart en breng deze aan op een glucosestrip die in de glucometer wordt ingebracht.
- Orale glucosetolerantietest
- Acht weken na de DJB-operatie vasten de muizen 8 uur voor de orale glucosetolerantietest. Verzamel een druppel bloed van het puntje van de muizenstaart en plaats deze op een glucosestrip die in de glucometer wordt ingebracht. Dien een orale dosis van 20% D-glucose (2 g/kg) toe. Meet de bloedglucosewaarden op 0, 15, 30, 60, 90, 120, 150 en 180 minuten na de sonde.
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Resultaten
Algemene voorwaarden
De gemiddelde operatietijd voor de DJB-procedure was 84,5 ± 2,6 minuten. Vijftien muizen ondergingen een DJB-operatie, negen muizen overleefden. Zoals te zien is in tabel 1, vonden de meeste sterfgevallen plaats tijdens de operatie of in de daaropvolgende 7 dagen. De oorzaken van postoperatief overlijden waren bloedingen (n=2) op postoperatieve dag 1, anastomoselekkage (n=1) op postoperatieve dag 4, anastomoseobstructie (n=2) op p...
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Discussie
In 1953 voerden Varco et al.18 de eerste jejuno-ileale bypass uit als het begin van bariatrische chirurgie. Sindsdien zijn er talloze bariatrische operaties uitgevoerd door chirurgen. Deze operaties hebben geresulteerd in gewichtsverlies en verbeterde metabole complicaties 4,19,20. Bovendien voerden Mason en Ito21 in 1967 de eerste Roux-en-Y gastri...
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Openbaarmakingen
De auteurs verklaren geen belangenconflicten.
Dankbetuigingen
Deze studie werd ondersteund door een subsidie van het Science and Technology Planning Project van de provincie Guangdong in China (nr. 202002020069).
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Materialen
```html
```
| Naam | Bedrijf | Catalogusnummer | Opmerkingen |
|---|---|---|---|
| Abdominal retractor | F.S.T | 17000-03 | Colibri Retractor -3cm, retractor range 1.5cm/3cm lang |
| 1% sodium pentobarbital solution | Guangzhou Chemical Reagent Factory | / | Opgelost 500mg pentobarbital natrium poeder in 50ml fysiologische zoutoplossing om 1% pentobarbital natrium oplossing te verkrijgen. |
| Benzylpenicillin natrium voor injectie | North China Pharmaceutical Company Ltd. | F2062121 | Penicilline |
| Buprenorfine | Guangzhou Chemical Reagent Factory | / | Pijnstilling |
| Buprenorfine | Guangzhou Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd | / | Analgeticum |
| Citroenzuur-natriumcitraat buffer | LEAGENE | R00522 | Buffer oplossing |
| Wattenstaafjes | HaoZheng Medical | 60220610 | Wattenstaafjes |
| Ontharingspasta | Veet | AAPR-S222 | Haarverwijderingscrème |
| Oorlabel | ZEYA | SUS304 | Oormarkering |
| Electrische deken | ZOSEN | ZS-CWDRT | Warmtepad |
| Elektronische weegschaal | WETTLER TOLEDO | 20060902-6 | Het gewicht meten |
| Enterale voedingspoeder | Abbott Laboratories | / | Voedingspoeder |
| Ogendeeg | Guangzhou Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd | / | Bescherming van de ogen |
| Glucometer | Roche | 6993788001 | Beoordeling van de bloedglucose |
| Graphpad Prism versie 9.4.1 | GraphPad Software | versie 9.4.1 | Software voor statistische analyse |
| Hoogvetdieet (High Fat [60FDC] Geraffineerde Knaagdier Dieet) | Dyets | 112252 | 60kcal% Vet Dieet |
| Micro Forceps | Jinzhong Medical | 18-1140 | Micro forceps |
| Micro naaldhouder | Jinzhong Medical | EMT-160-Z | Naaldhouder |
| Micro schaar | Jinzhong Medical | YBC010 | Micro schaar |
| Microscoop camera | LAPSUN | E 2000 | Video |
| Oftalmische schaar | Jinzhong Medical | Y00030 | Chirurgische schaar |
| Pentobarbital | Guangzhou Chemical Reagent Factory | / | Narcose |
| Natriumchloride Injectie | Guangzhou Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd | B21L0301 | NaCl 0,9% |
| Stereo microscoop | ZEISS | Stemi 305 | Binoculaire stereomicroscoop |
| Streptozoïcine | Sigma | S110910-1g | STZ |
| Hechtlijn | LINGQIAO SUTURE | ZS-LQPMRZ5/0 | Prolene 6/0, Prolene 10/0 |
| Weefseltang | Jinzhong Medical | H1701 | Chirurgische pincet |
Referenties
- Lascar, N., Brown, J., Pattison, H., Barnett, A. H., Bailey, C. J., Bellary, S. Type 2 diabetes in adolescents and young adults. Lancet Diabetes Endocrinol. 6 (1), 69-80 (2018).
- Song, Y., Zhao, F. Bibliometric analysis of metabolic surgery for type 2 diabetes: current status and future prospects. Updates Surg. 74 (2), 697-707 (2022).
- Cummings, D. E., Rubino, F. Metabolic surgery for the treatment of type 2 diabetes in obese individuals. Diabetologia. 61 (2), 257-264 (2018).
- Buchwald, H. The evolution of metabolic/bariatric surgery. Obes Surg. 24 (8), 1126-1135 (2014).
- Akalestou, E., Miras, A. D., Rutter, G. A., le Roux, C. W. Mechanisms of weight loss after obesity surgery. Endocr Rev. 43 (1), 19-34 (2022).
- Rubino, F., et al. The mechanism of diabetes control after gastrointestinal bypass surgery reveals a role of the proximal small intestine in the pathophysiology of type 2 diabetes. Ann Surg. 244 (5), 741-749 (2006).
- Rubino, F., Marescaux, J. Effect of duodenal-jejunal exclusion in a non-obese animal model of type 2 diabetes: a new perspective for an old disease. Ann Surg. 239 (1), 1-11 (2004).
- Akalestou, E., et al. Establishing a successful rat model of duodenal- jejunal bypass: A detailed guide. Lab Anim. 53 (4), 362-371 (2019).
- Yu, H. H., Hsieh, M. C., Wu, S. Y., Sy, E. D., Shan, Y. S. Effects of duodenal-jejunal bypass surgery in ameliorating nonalcoholic steatohepatitis in diet-induced obese rats. Diabetes Metab Syndr Obes. 12, 149-159 (2019).
- Garciacaballero, M., Navarrete, S., Favretti, F., Celik, A., Del Castillo, D. Diabetes surgery in type 2 BMI 24-29 vs IMC 30-34 diabetic patients: is there differences among restrictive, malabsorptive and gastric bypass procedures. Nutr Hosp. 28 (2), 23-30 (2013).
- Vidal, J., Jiménez, A. Diabetes remission following metabolic surgery: is GLP-1 the culprit. Curr Atheroscler Rep. 15 (10), 357(2013).
- Speck, M., Cho, Y. M., Asadi, A., Rubino, F., Kieffer, T. J. Duodenal-jejunal bypass protects GK rats from {beta}-cell loss and aggravation of hyperglycemia and increases enteroendocrine cells coexpressing GIP and GLP-1. Am J Physiol Endocrinol Metab. 300 (5), E923-E932 (2011).
- Ashrafian, H., et al. Metabolic surgery: an evolution through bariatric animal models. Obes Rev. 11 (12), 907-920 (2010).
- Rao, R. S., Rao, V., Kini, S. Animal models in bariatric surgery--a review of the surgical techniques and postsurgical physiology. Obes Surg. 20 (9), 1293-1305 (2010).
- Im, Y. R., et al. A systematic review of animal models of NAFLD finds high-fat, high-fructose diets most closely resemble human NAFLD. Hepatology. 74 (4), 1884-1901 (2021).
- Kleinert, M., et al. Animal models of obesity and diabetes mellitus. Nat Rev Endocrinol. 14 (3), 140-162 (2018).
- Furman, B. L. Streptozotocin-induced diabetic models in mice and rats. Curr Protoc. 1 (4), e78(2021).
- Buchwald, H., Varco, R. L., Moore, R. B., Schwartz, M. Z. Intestinal bypass procedures. Partial ileal bypass for hyperlipidemia and jejunoileal bypass for obesity. Curr Probl Surg. , 1-51 (1975).
- DeMaria, E. J. Bariatric surgery for morbid obesity. N Engl J Med. 356 (21), 2176-2183 (2007).
- Bolling, C. F., Armstrong, S. C., Reichard, K. W., Michalsky, M. P. Metabolic and bariatric surgery for pediatric patients with severe obesity. Pediatrics. 144 (6), e20193224(2019).
- Mason, E. E. Gastric bypass for morbid obesity. Surg Annu. 11, 99-126 (1979).
- Cheng, Y., et al. Sleeve gastrectomy with bypass of proximal small intestine provides better diabetes control than sleeve gastrectomy alone under postoperative high-fat diet. Obes Surg. 29 (1), 84-92 (2019).
- Rubino, F., et al. The role of the small bowel in the regulation of circulating ghrelin levels and food intake in the obese Zucker rat. Endocrinology. 146 (4), 1745-1751 (2005).
- Zachariah, P. J., et al. Compared to sleeve gastrectomy, duodenal-jejunal bypass with sleeve gastrectomy gives better glycemic control in T2DM patients, with a lower β-cell response and similar appetite sensations: mixed-meal study. Obes Surg. 26 (12), 2862-2872 (2016).
- Jiang, B., et al. Role of proximal intestinal glucose sensing and metabolism in the blood glucose control in type 2 diabetic rats after duodenal jejunal bypass surgery. Obes Surg. 32 (4), 1119-1129 (2022).
- Han, H. F., et al. Duodenal-jejunal bypass increases intraduodenal bile acids and upregulates duodenal SIRT1 expression in high-fat diet and streptozotocin-induced diabetic rats. World J Gastroenterol. 28 (31), 4338-4350 (2022).
- Yan, S., et al. Reduction of intestinal electrogenic glucose absorption after duodenojejunal bypass in a mouse model. Obes Surg. 23 (9), 1361-1369 (2013).
- Arble, D. M., et al. Metabolic comparison of one-anastomosis gastric bypass, single-anastomosis duodenal-switch, Roux-en-Y gastric bypass, and vertical sleeve gastrectomy in rat. Surg Obes Relat Dis. 14 (12), 1857-1867 (2018).
- Liang, Y., et al. Duodenal-jejunal bypass surgery reverses diabetic phenotype and reduces obesity in db/db Mice. Curr Chem Genom Transl Med. 11, 41-49 (2017).
- Barataud, A., et al. Absence of role of dietary protein sensing in the metabolic benefits of duodenal-jejunal bypass in the mouse. Sci Rep. 7, 44856(2017).
- Close-up on lab animal microsurgery. Lab Anim (NY). 35 (1), 43(2006).
- Couceiro, J., Castro, R., Tien, H., Ozyurekoglu, T. Step by step: microsurgical training method combining two nonliving animal models. J Vis Exp. (99), e52625(2015).
- Nasser, K. M., Wahba, H. A., Kamal, E., El-Makhzangy, A. M., Bahaa, N. Animal model for training and improvement of the surgical skills in endolaryngeal microsurgery. J Voice. 26 (3), 351-357 (2012).
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Herprints en machtigingen
