Methodenartikel

Meten van dynamische glycosomale pH-veranderingen bij levende Trypanosoma brucei

1.4K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/66279

⸱

19 januari 2024

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department Chemistry and Biochemistry, Brigham Young University, 2Eukaryotic Pathogens Innovation Center, Clemson University, 3Department of Genetics and Biochemistry, Clemson University, 4Department of Physics and Astronomy, Clemson University

* These authors contributed equally

In dit artikel

Samenvatting

We beschrijven een methode om te bestuderen hoe pH reageert op omgevingssignalen in de glycosomen van de bloedbaanvorm van Afrikaanse trypanosomen. Deze aanpak omvat een pH-gevoelige erfelijke eiwitsensor in combinatie met flowcytometrie om de pH-dynamiek te meten, zowel als een tijdverlooptest als in een high-throughput screen-formaat.

Samenvatting

Het glucosemetabolisme is van cruciaal belang voor de Afrikaanse trypanosoom, Trypanosoma brucei, als een essentieel metabolisch proces en regulator van de ontwikkeling van parasieten. Er is weinig bekend over de cellulaire reacties die worden gegenereerd wanneer de glucosespiegels in de omgeving veranderen. Bij zowel bloedbaan- als procyclische parasieten (insectenstadium) herbergen glycosomen het grootste deel van de glycolyse. Deze organellen worden snel verzuurd als reactie op glucosedeprivatie, wat waarschijnlijk resulteert in de allosterische regulatie van glycolytische enzymen zoals hexokinase. In eerder werk was het lokaliseren van de chemische sonde die werd gebruikt om pH-metingen uit te voeren een uitdaging, waardoor het nut ervan in andere toepassingen werd beperkt.

Dit artikel beschrijft de ontwikkeling en het gebruik van parasieten die glycosomaal gelokaliseerd pHluorin2 tot expressie brengen, een erfelijke proteïne pH-biosensor. pHluorin2 is een ratiometrische pHluorin-variant die een pH-(zuur)-afhankelijke afname van de excitatie vertoont bij 395 nm en tegelijkertijd een toename van de excitatie oplevert bij 475 nm. Transgene parasieten werden gegenereerd door het open leesframe pHluorin2 te klonen in de trypanosoomexpressievector pLEW100v5, waardoor induceerbare eiwitexpressie in beide levenscyclusfasen mogelijk werd. Immunofluorescentie werd gebruikt om de glycosomale lokalisatie van de pHluorin2-biosensor te bevestigen, waarbij de lokalisatie van de biosensor werd vergeleken met het glycosomale residente eiwit aldolase. De reactiesnelheid van de sensor werd gekalibreerd bij verschillende pH-waarden door cellen te incuberen in een reeks buffers die in pH varieerden van 4 tot 8, een benadering die we eerder hebben gebruikt om een op fluoresceïne gebaseerde pH-sensor te kalibreren. Vervolgens hebben we pHluorin2-fluorescentie gemeten bij 405 nm en 488 nm met behulp van flowcytometrie om de glycosomale pH te bepalen. We valideerden de prestaties van de levende transgene parasieten die pHluorin2 tot expressie brachten, waarbij we de pH in de loop van de tijd volgden als reactie op glucosedeprivatie, een bekende trigger van glycosomale verzuring bij PF-parasieten. Deze tool heeft een reeks potentiële toepassingen, waaronder mogelijk worden gebruikt bij het screenen van geneesmiddelen met een hoge doorvoer. Naast de glycosomale pH kan de sensor worden aangepast aan andere organellen of worden gebruikt in andere trypanosomatiden om de pH-dynamiek in de levende celomgeving te begrijpen.

Inleiding

Parasitaire kinetoplastiden zijn, net als de meeste levende organismen, afhankelijk van glucose als een fundamenteel onderdeel van het centrale koolstofmetabolisme. Deze groep omvat medisch belangrijke organismen, zoals de Afrikaanse trypanosoom, Trypanosoma brucei; de Amerikaanse trypanosoom, T. cruzi; en parasieten van het geslacht Leishmania. Het glucosemetabolisme is van cruciaal belang voor de groei van parasieten in de pathogene levenscyclusstadia. Bij gebrek aan glucose sterft bijvoorbeeld de bloedbaanvorm (BSF) van het Afrikaanse trypanosoom snel af. Met name glycolyse dient als de enige bron van ATP tijdens dit stadium van infectie1. Leishmania-parasieten zijn eveneens afhankelijk van glucose in de menselijke gastheer, waarbij de levenscyclusfase van amastigote die zich in de macrofagen van de gastheer bevindt, afhankelijk is van deze koolstofbron voor groei2.

Hoewel deze parasieten verschillende levensstijlen hebben waarbij verschillende insectenvectoren betrokken zijn, hebben ze veel overeenkomsten in de manier waarop ze reageren op en glucose consumeren. Deze parasieten lokaliseren bijvoorbeeld de meeste glycolytische enzymen in gemodificeerde peroxisomen die glycosomen worden genoemd. Dit kinetoplastid-specifieke organel is verwant aan peroxisomen van zoogdieren op basis van geconserveerde biosynthetische mechanismen en morfologie 3,4,5,6.

De compartimentering van de meeste enzymen van de glycolytische route in het glycosoom biedt parasietspecifieke manieren om de route te reguleren. Met behulp van een chemische pH-sonde hebben we vastgesteld dat nutriëntendeprivatie een snelle verzuring van procyclische vorm (PF) parasietglycosomen veroorzaakt, wat resulteert in veranderde glycolytische enzymactiviteit door blootstelling van een allosterische regulatorbindingsplaats op het belangrijkste glycolytische enzym hexokinase 7,8. In ons vorige werk had de chemische sonde een constante toevoer nodig voor gebruik, waardoor het nut ervan in andere toepassingen werd beperkt. Bovendien beperkten uitdagingen om de sondeverdeling in het glycosoom in de BSF te handhaven het nut van de benadering voor het onderzoeken van de glycosomale pH in die levensfase.

In deze studie hebben we de fluorescerende eiwitbiosensor pHluorin2 gebruikt om de glycosomale pH-verandering in BSF T. brucei te volgen als reactie op omgevingssignalen, waaronder glucose-uithongering9 (Figuur 1). De resultaten van dit werk suggereren dat BSF T. brucei glycosomen snel verzuurt als reactie op uithongering op een omkeerbare manier, vergelijkbaar met reacties die we hebben waargenomen bij PF-parasieten. We verwachten dat deze biosensor ons begrip van glycolytische regulatie in T. brucei en verwante parasieten zal verbeteren.

Protocol

Het gebruik van T. brucei brucei 90-13 BSF-trypanosomen, een monomorfe parasietlijn, vereist dat rekening wordt gehouden met de veiligheid, aangezien ze worden beschouwd als organismen van risicogroep 2 die moeten worden behandeld in faciliteiten van bioveiligheidsniveau 2.

1. Trypanosoomcultuur en transfectie

  1. Kweek T. brucei brucei 90-13 BSF trypanosomen in HMI-9 medium aangevuld met 10% warmte-geïnactiveerde FBS en 10% Nu-Serum bij 37 °C in 5% CO210.
    OPMERKING: Om de kweek gezond te houden, moet u de celdichtheid tussen 2 × 104 en 5 × 106 cellen/ml houden.
  2. Klonen van pHluorin2-PTS1 in pLEW100v5
    1. Synthetiseer het pHluorin2 open leesframe commercieel om het gen te verkrijgen met een 3'-extensie die codeert voor een twee glycinelinker gevolgd door het tripeptide AKL, een PTS1-lokalisatietag.
    2. Kloon dit construct in de induceerbare trypanosoomexpressievector pLEW100v5 door restrictie-digest. Dubbelverteer zowel de kloonvector die pHluorin2-PTS1 als pLEW100v5 bevat met behulp van HindIII en BamHI11. Voer een opruimstap uit, bij voorkeur door middel van agarosegelzuivering, om restrictie-enzymen, de ongewenste kloonvectorruggengraat en het weggesneden luciferase-genbevattende fragment te verwijderen.
    3. Maak het pHluorin2-dragende inzetstuk los in verteerd pLEW100v5 met T4 DNA-ligase12. (zie aanvullende figuur S1 voor een schema voor klonen).
  3. Sequentie van het plasmide door middel van sequentiebepaling van het hele plasmide van de volgende generatie om te controleren of het inzetstuk en de vector correct zijn geligeerd en of er tijdens het kloonproces geen mutaties worden geïntroduceerd in het pHluorin2-PTS1-gen.
    OPMERKING: De volledige plasmidesequentie is ingediend bij Addgene.org en heeft #83680 toegewezen gekregen.
  4. Lineariseer 20 μg van het plasmide door vertering met 40 eenheden NotI; transfecteer vervolgens in BSF 90-13-parasieten via nucleofectie met behulp van de menselijke T-celkit waarnaar wordt verwezen (zie Tabel met materialen). Selecteer voor stabiele integratie zoals beschreven door Burkard et al.13.

2. Immunofluorescentie-colokalisatie van pHlourin2-PTS1

  1. Bereid microscopieglaasjes voor door ze gedurende 10 minuten te behandelen met poly-L-lysine 0,1% (m/v) in H2O. Na verwijdering van de poly-L-lysine-oplossing, was het objectglaasje eenmaal met PBS.
  2. Om pHluorin2-PTS1-expressie te induceren, behandelt u cellen 24 uur voor de oogst 2 × 105 cellen/ml met tetracycline of doxycycline (1 μg/ml). Pellet 2 × 106 ouderlijke en geïnduceerde pLEWpHluorin2-PTS1 (pHL) parasieten door centrifugeren (kamertemperatuur [RT], 10 min, 1.000 × g) en eenmaal wassen met PBS.
  3. Resuspendeer de cellen in 200 μl vers bereide 2% paraformaldehyde in PBS gemaakt van in de handel geleverde 16% EM-oplossing. Breng de cellen in het fixeermiddel aan op het objectglaasje en laat de cellen 30 minuten bezinken. Was de aangehechte cellen 2x met wasoplossing (0,1% normaal geitenserum in PBS).
  4. Breng de permeabilisatieoplossing (0,5% Triton X-100 in PBS) aan op de cellen en incubeer gedurende precies 30 minuten. Verwijder de permeabilisatieoplossing en was eenmaal met ruime hoeveelheden wasoplossing.
  5. Breng de blokoplossing aan (10% normaal geitenserum en 0,1% Triton X-100 in PBS) en incubeer gedurende 30 minuten.
  6. Verdun de tegen T. brucei aldolase 1:500 opgewekte antisera in blokoplossing en breng deze aan op de cellen14. Incubeer gedurende 1 uur bij RT. Was de glaasjes 5x gedurende 3-5 min met wasoplossing.
  7. Verdun geit anti-konijn Alexa fluor 568 1:1.000 in blokoplossing en breng aan op de cellen. Incubeer gedurende 1 uur bij RT. Was de glaasjes 5x gedurende 3-5 min met wasoplossing.
  8. Breng montagemedium aan en plak een dekglaasje op de slede.
  9. Beeld de cellen af met een 100x objectief (NA 1.4-0.7) en analyseer de beelden met behulp van ImageJ. Voer de colokalisatieanalyse van Pearson uit met behulp van de 'Coloc 2' plug-in voor ImageJ. Zie aanvullende figuur S2 voor een veld met representatieve cellen. )
    1. Om dit te voltooien, voegt u het afbeeldingsbestand toe aan Fiji en selecteert u Afbeeldingen.
    2. Pas de helderheid en het contrast voor elk kanaal aan tot een punt waarop geen achtergrond zichtbaar is.
    3. Wijzig afbeeldingen van 16-bits naar 8-bits, voeg de afbeeldingen samen en snijd ze vervolgens bij tot een enkele cel met gesplitste kanalen.
    4. Selecteer onder Analyseren en colokalisatie de Coloc2 plug-in. Selecteer aldolase (het rode kanaal) als kanaal 1 en pHL (het groene kanaal) als kanaal 2 en klik op OK om de berekening van de correlatie van Pearson te starten.

3. Monstervoorbereiding voor flowcytometrie

  1. Induceer pHL-cellen met tetracycline of doxycycline (1 μg/ml) gedurende een nacht.
  2. Pelleteer de cellen (~4 × 107 pHL en ~1 × 106 parentaal) door centrifugeren (RT, 10 min, 1.000 × g). Verwijder het supernatans en resuspendeer de cellen in 1 ml PBS, met of zonder 10 mM glucose, afhankelijk van of het monster uitgehongerd of niet-uitgehongerd is. Voor tijdverlooptests, resuspenderen in PBS aangevuld met 10 mM glucose om te voorkomen dat de cellen verhongeren totdat de wasbeurten zijn voltooid. Voor de high-throughput screen (HTS)-test, resuspenderen in PBS zonder glucose om overdracht van glucose te minimaliseren; Herhaal de wasbeurten nog twee keer.
  3. Centrifugeer de cellen voor een vierde keer, verwijder het supernatant en resuspendeer de celpellet in PBS, PBS plus 5 mM glucose of PBS plus 10 mM glucose, afhankelijk van de behandeling. Vul de monsters aan met 1 μg/ml propidiumjodide (PI) of 100 nM thiazoolrood (TR) voor de bepaling van levend/dood. Breng elk monster over in buisjes van 5 ml die compatibel zijn met de flowcytometer.

4. Flowcytometrie

OPMERKING: Bereid het experiment voor op een flowcytometer met de volgende lasers: 405 nm (violet), 488 nm (blauw) en 561 nm (geel) of 638 nm (rood). Zie aanvullende tabel S1 voor algemene namen voor kanalen die hieronder worden besproken.

  1. Gebruik voor het meten van pHL-fluorescentie de kanalen KO525 (VL2-H, excitatie 405 nm, emissie 542/27 nm) en FITC (BL1-H, excitatie 488 nm, emissie 530/30 nm). Om levende cellen van dode cellen te onderscheiden, gebruikt u PI of TR; meet PI op het YL2-H-kanaal (excitatie 561 nm, emissie 620/25 nm). Meet TR op het RL1-H-kanaal (638 nm excitatie, 660/10 BP).
    1. Om het experiment in te stellen op de flowcytometersoftware, maakt u de volgende plots: 1) YL2-H-kanaalhistogram (bij gebruik van PI) of een RL1-H-kanaalhistogram (bij gebruik van TR), 2) FSC-A versus SSC-A-puntplot, 3) FSC-A versus FSC-H-puntdiagram en 4) BL1-H versus VL2-H-kanaaldiagram.
    2. Plaats eerst de ongekleurde WT-regelaar (ouderlijke cellijn) op de monsterinjectiepoort (SIP) en breng de tafel op zijn plaats. Begin met het verzamelen van gegevens over de cytometer met het laagste debiet om tijd te geven om de nodige aanpassingen te maken. Om te voorkomen dat u vals puin en dode cellen scoort, begint u 5 s nadat de monsterverwerving is begonnen, met het opnemen van gebeurtenissen.
    3. Pas de YL2- of RL1-spanning aan zodat de hoofdpiek binnen 103-10 4 relatieve fluorescentie-intensiteitseenheden (RFI) ligt. Pas FSC- en SSC-spanningen aan zodat >90% van de gebeurtenissen op de dot plot past. Pas de FSC-drempel aan om de puinpopulatie uit te sluiten, maar niet de waarschijnlijke cellen.
    4. Pas de VL2- en BL1-kanalen zo aan dat de primaire piek binnen 103-10 4 RFI-eenheden ligt voor de ongekleurde WT-regeling.
    5. Plaats het eerste monster met geïnduceerde pHL gekleurd met PI of TR op de SIP en breng de tafel op zijn plaats. Begin met het verzamelen van gegevens met het laagste debiet en observeer zorgvuldig de gebeurtenissen in elk perceel. Zorg ervoor >90% van de gebeurtenissen zich in elke plot bevinden en dat er geen gebeurtenissen zijn die de VL2-H- en BL1-H-kanalen verzadigen.
  2. Ga verder met het uitvoeren van de monsters. Zorg ervoor dat u ten minste 10.000 gebeurtenissen per monster registreert.
  3. Sla de gegevens van de monsters op in .fcs-bestandsindeling en exporteer ze voor analyse.

5. Gegevensanalyse van flowcytometrieresultaten

OPMERKING: Deze workflow voor gegevensanalyse maakt gebruik van FlowJo-software. Als andere flowcytometrie-analysesoftware wordt gebruikt, blijf dan de onderstaande belangrijke stappen volgen met behulp van software-geschikte tools. Om de plots en gating te visualiseren, zie Aanvullende figuur S3 en aanvullende figuur S4.

  1. Open een nieuwe lay-out en open de .fcs-bestanden die in stap 4.3 zijn verkregen. Sleep de .fcs-bestanden naar het lay-outvenster.
  2. Poort voor levende cellen.
    1. Dubbelklik op het ongekleurde WT-besturingselement om een venster voor dit voorbeeld te openen.
    2. Bekijk de gegevens als een histogram op het YL2-H-kanaal (bij gebruik van PI) of RL2-H (bij gebruik van TR). Schakel tussen dit en monsters die zijn gekleurd met de levensvatbaarheidskleurstof om de levende en dode populaties te identificeren.
      OPMERKING: Alle voorvallen moeten ongekleurd zijn, aangezien er geen levensvatbaarheidskleurstof aan dit monster is toegevoegd.
    3. Creëer een bisectorale poort die de levende en dode populaties scheidt; noem de linker poort Live en de rechter poort Dood. Pas deze poort toe op alle monsters en schakel vervolgens tussen monsters om ervoor te zorgen dat deze poort op de juiste manier wordt getekend voor alle monsters. Pas de poort indien nodig aan.
  3. Poort voor de cellen.
    1. Dubbelklik op de onbevlekte WT-besturing op de Live-poort om gebeurtenissen in die poort te bekijken. Verander de x-as van de puntplot in FSC-A en de y-as in SSC-A.
    2. Gebruik het gereedschap polygoonpoort om een poort rond de celpopulatie te tekenen en deze de naam Cellen te geven. Zorg ervoor dat u puin/stervende cellen (meestal helemaal links en onderaan de stiptekening) en aggregaten (uiterst rechts en bovenaan de stiptekening) uitsluit.
    3. Breng deze poort aan onder de Live-poort voor alle monsters. Schakel tussen monsters om ervoor te zorgen dat de poort de waarschijnlijke celpopulatie voor alle monsters omvat en breng de nodige aanpassingen aan. Zorg ervoor dat u de poort opnieuw op alle monsters aanbrengt nadat u deze hebt gewijzigd.
      OPMERKING: De verdeling van de celpopulatie verandert merkbaar tussen uitgehongerde en niet-uitgehongerde omstandigheden op FSC versus SSC; zorg ervoor dat de celpoort de celpopulatie onder alle omstandigheden omvat.
  4. Poort voor afzonderlijke cellen om de kwaliteit van pH-metingen te verhogen.
    1. Dubbelklik op de ongekleurde WT-besturing op de celpoort om de gebeurtenissen in die poort te bekijken. Verander de x-as van de puntplot in FSC-A en de y-as in FSC-H.
    2. Zoek naar een diagonale verdeling van enkele cellen op deze stippengrafiek met doubletten die een secundaire populatie vormen rechtsonder van de singletpopulatie (zie aanvullende figuur S1 derde plot). Teken met behulp van het gereedschap polygoonpoort een poort rond de singletgebeurtenissen met uitzondering van de doubletpopulatie. Noem deze poort Singlets.
    3. Pas de Singlets-poort toe onder de Celpoort voor alle monsters. Nogmaals, schakel tussen steekproeven om ervoor te zorgen dat de poort de doubletpopulatie correct uitsluit en tegelijkertijd de singletpopulatie opneemt. Pas indien nodig aan.
  5. Poort voor fluorescerende pHL-cellen.
    1. Dubbelklik op het ongekleurde WT-controlemonster op de Singlets-poort om een puntplot voor die populatie te openen. Verander de x-as in BL1-H en de y-as in VL2-H.
    2. De pH-sensor pHluorin2 is fluorescerend in zowel VL2 als BL1. Gebruik het gereedschap polygoonpoort om een diagonaal gevormde poort te tekenen die zich uitstrekt naar boven en rechts weg van de autofluorescerende populatie linksonder in de punttekening. Noem deze poort pHL+.
    3. Breng de pHL+ gate aan onder de Singlets gate voor alle samples. Schakel over naar een pHL-monster en pas de poort aan om gebeurtenissen op te nemen met een grotere fluorescentie-intensiteit in zowel VL2-H als BL1-H dan de WT-regeling. Zorg ervoor dat deze poort deze fluorescerende populatie voor alle monsters omvat, aangezien de positie van deze populatie zal verschuiven naarmate de glycosomale pH verandert.
      OPMERKING: Deze kleine maar zichtbare verschuiving in de pHL+-populatie is te wijten aan pH-afhankelijke veranderingen in het excitatiespectrum van de fluorofoor.
  6. Exporteer de statistieken.
    1. Klik op Tabel Editor | Balk bewerken | Kolom toevoegen om nieuwe statistieken toe te voegen om te exporteren.
      OPMERKING: Kies voor elke statistiek die u wilt exporteren de betreffende statistiek en uit welke populatie u deze wilt exporteren. Zorg ervoor dat u de juiste parameter kiest voor toepasselijke statistieken, zoals Mediaan. Laat het monster ongewijzigd.
    2. Voeg kolommen toe met de volgende statistieken: Totaal (niet-gedateerd) aantal, pHL+ aantal, Live frequentie van totaal (percentage op basis van het totale aantal gebeurtenissen), pHL+ frequentie van bovenliggende waarde (percentage op basis van bovenliggende poort), pHL+ mediaan VL2-H en pHL+ mediaan BL1-H.
    3. Klik op de Tabeleditor en wijzig de volgende exportinstellingen: Weergeven in Naar bestand en Tekst naar CSV en kies vervolgens de bestandsbestemming en -naam. Klik op Tabel maken.
  7. Bereken de fluorescentieverhouding.
    1. Sla het geëxporteerde .csv-bestand op als spreadsheetbestand.
    2. Voer een kwaliteitscontroleanalyse uit door het volgende te vergelijken voor alle steekproeven in het experiment: aantal gebeurtenissen per steekproef, percentage livegebeurtenissen en percentage pHL+-gebeurtenissen. Vergelijk deze visueel in staaf- of spreidingsdiagrammen, afhankelijk van het experiment.
    3. Label een nieuwe kolom als pHL+ Mediaan VL2/BL1. Deel voor elk monster de mediaan VL2-H-waarde door de mediaan BL1-H-waarde zoals weergegeven in vergelijking (1).
      figure-protocol-1(1)
  8. Gebruik statistische analysesoftware om statistische analyses uit te voeren met behulp van de fluorescentieverhouding.

6. Kalibratie van de pH-biosensor

OPMERKING: Om gemeten fluorescentieverhoudingen om te zetten in pH-eenheden, kalibreert u pHL-expressiecellen met nigericine en valinomycine. Nigericine is een K+/H+ antiporter, een ionofoor die de pH over membranen in evenwicht kan brengen wanneer er voldoende K+ in de buffer15 zit. Nigericine wordt vaak gebruikt om pHluorin en andere pH-sensoren te kalibreren16,17. Omdat peroxisomaal gelokaliseerd pHluorin eerder werd gekalibreerd met 10 μM nigericine18, kozen we ervoor om met die concentratie te behandelen. Valinomycine is een kaliumionofoor en is gebruikt (bij 4 μM) om de pH over mitochondriale membranen in evenwicht te brengen19. We gebruikten 10 μM valinomycine om de pH-evenwichtsactiviteit van nigericine te ondersteunen door ervoor te zorgen dat K+-ionen over de membranen in evenwicht waren. Hoewel we een nigericine-valinomycine-combinatie gebruikten, kan nigericine voldoende zijn om de pH van organellair in evenwicht te brengen.

  1. Bereid acht oplossingen van universele kalibratiebuffer (UCB; 15 mM MES, 15 mM HEPES en 130 mM KCl) elk met een verschillende pH variërend van 5 tot 8,5.
  2. Centrifugeer (RT, 10 min, 800-1.000 × g) acht afzonderlijke buisjes van 2 ml pHL-expressieve BSF-cultuur (~4 × elk 106 cellen).
  3. Verwijder het supernatans en resuspendeer vervolgens elke celpellet in UCB bij verschillende pH-waarden.
  4. Introduceer nigericine en valinomycine, elk tot 10 μM. Piek in PI tot 1 μg/ml.
  5. Incubeer de cellen in elke oplossing gedurende 15 minuten.
  6. Laat elk monster op een flowcytometer lopen om de fluorescentieverhouding te meten zoals beschreven in stap 4-5.
  7. Herhaal dit experiment nog twee keer om drie biologische replicaten voor elke pH-waarde te verkrijgen. Exporteer gegevens in .fcs-indeling.
  8. Analyseer de FCS-bestanden zoals beschreven in stap 5.1 tot en met 5.8. Gebruik de gemeten fluorescentieverhouding voor elke pH om de glycosomale pH te interpoleren in toekomstige experimenten met behulp van vergelijking (2).
    figure-protocol-2(2)
    OPMERKING: Aanvullende afbeelding S3 toont de puntplots en het poortschema. De resultaten zijn te vinden in aanvullende tabel S2. Hieronder wordt beschreven hoe u de pH kunt interpoleren op basis van de fluorescentieverhouding met behulp van GraphPad Prism. Als u andere statistische software gebruikt, volgt u dezelfde belangrijke stappen.
    1. Open GraphPad Prism en maak een XY-tabel met drie y-replicaten. Plak de pH-waarden in de x-kolom en de bijbehorende fluorescentieverhoudingswaarden in de y-replicate-kolommen.
    2. Klik op de grafiek die bij de tabel hoort. Wanneer u de grafiek bekijkt, klikt u op Analyseren onder het lint Analyse | Interpoleer een standaardcurve onder XY-analyses.
    3. Kies Sigmoïdaal, 4PL, X is log(concentratie) omdat pH-eenheden zich op een logaritmische schaal bevinden. De bovenste en onderste parameters zijn de geschatte bovenste en onderste plateaus. Kies Geen speciale afhandeling van uitschieters.
      OPMERKING: De software zal proberen de gegevens aan te passen aan het model dat wordt beschreven in vergelijking (2) en stap 6.9.3. Zoek naar bewijs van gebrek aan fit in de tabel met resultaten en de curve op de grafiek.
    4. Om de pH te interpoleren uit fluorescentieverhoudingen in andere experimenten, gaat u naar de tabel met de pHL-kalibratiegegevens. Plak de waarden van de fluorescentieverhouding onder de kalibratiegegevens in de y-kolom(men). Geef elke y-waarde een titel, maar laat de x-waarde (de pH) leeg omdat deze onbekend is.
    5. Klik in de galerij Resultaten op de interpolatieanalyse en ga vervolgens naar het tabblad Geïnterpoleerde X-replicaten . Zoek naar de geïnterpoleerde pH-waarden die naast de ingevoerde fluorescentieverhoudingswaarden worden vermeld.
      OPMERKING: De software gebruikt het model en de best passende parameterwaarden die zijn gevonden in de kalibratiegegevens om de pH te interpoleren op basis van fluorescentieverhoudingen voor experimenten waarbij de pH onbekend is.

7. Glucose-uithongering en add-back time-cursussen

  1. Induceer 's nachts 15 ml BSF pHL-parasieten met 1 μg/ml doxycycline geïncubeerd bij 37 °C, zoals beschreven in stap 1.1.
  2. Was 15 ml geïnduceerde pHL-cultuur in PBS aangevuld met 10 mM glucose. Herhaal deze stap 3x.
    1. Was tegelijkertijd 3 ml WT-kweek in PBS 3x zoals beschreven in stap 3.2.
    2. Na de eerste wasbeurt, wanneer het pHL-monster opnieuw wordt gesuspendeerd in 1 ml PBS, verwijdert u een aliquot van 0,1 ml pHL-celsuspensie om 10 mM glucose binnen te houden als een niet-uitgehongerde controle.
  3. Na de laatste wasbeurt resuspendeert u het pHL-monster in PBS, aangevuld met 1 μg/ml PI.
  4. Verkrijgen van flowcytometriegegevens
    1. Begin met het bewaken van de glycosomale pH voor zowel de uitgehongerde als niet-uitgehongerde monsters door elk monster elke 5, 10, 30 of 90 minuten op een flowcytometer te meten, afhankelijk van het experiment en het monster. Verkrijg flowcytometriegegevens zoals beschreven in stap 4.1 tot en met 4.3 en zorg ervoor dat de spanningen en plots vooraf zijn voorbereid.
    2. Voer de onbevlekte WT-regelaar eerst uit op 0 min.
    3. Voer het niet-uitgehongerde controlemonster elke 90 minuten uit op de cytometer vanaf 0 minuten. Voor de Starvation-tijdverlooptest voert u het uitgehongerde monster elke 10 minuten uit, beginnend bij 0 min. Voer voor de Glucose Addback-test het uitgehongerde monster uit op 0, 5, 10, 20, 30, 60 en 90 minuten; Herhaal dit na het introduceren van glucose.
    4. Incubeer de monsters bij kamertemperatuur tijdens de uithongeringstijd van 90 minuten en de cursus van 180 minuten voor glucose-addbacktijd.
  5. Analyseer de FCS-bestanden zoals beschreven in stap 5.1 tot en met 5.8.
    OPMERKING: Aanvullende afbeelding S4 laat zien hoe de gating moet worden uitgevoerd en hoe de puntplots eruit moeten zien. Aanvullende tabel S3 en aanvullende tabel S4 tonen respectievelijk de resultaten van de glucose-uithongeringstijdbelooptest en de glucose-add-back-tijdbelooptest.

8. Optimalisatie van de test voor drugsscreening

  1. Was ongeveer 32 ml BSF-parasieten die pHL tot expressie brengen en 3 ml WT-cellen, beide bij ongeveer 2 × 106 cellen/ml, 2x in PBS zoals eerder beschreven.
    OPMERKING: Er moeten meer dan 10.000 gebeurtenissen per put worden geregistreerd om de variabiliteit van de gemeten fluorescentieverhoudingen te minimaliseren en de Z-factorstatistiek nauwkeurig te meten. De minimale kweek die nodig is om dit te bereiken is ongeveer 26 ml, maar we raden 32 ml aan voor gebruiksgemak.
    1. Scheid het pHL-monster na de eerste wasbeurt gelijkmatig in twee microcentrifugebuisjes.
  2. Resuspendeer na de wasbeurten één pHL-monster in 18 ml PBS met 5 mM glucose, 0,1% DMSO en TR. Resuspendeer het andere pHL-monster in 18 ml PBS plus 0,1% DMSO en TR.
    OPMERKING: De DMSO wordt gebruikt om de buffersamenstelling in een geneesmiddelscreening na te bootsen, aangezien verbindingen doorgaans worden opgelost in DMSO.
  3. Breng deze twee celoplossingen over in een reservoir met 12 putjes, 9 ml per putje.
  4. Gebruik een pipetteerrobot om de celoplossingen in afzonderlijke helften van een plaat met 384 putjes te pipetteren, 80 μl per putje.
  5. Incubeer de plaat gedurende 1,5 uur bij kamertemperatuur, schud zachtjes en wikkel in aluminiumfolie om de fluoroforen tegen licht te beschermen.
  6. Laat de plaat lopen op een flowcytometer die platen met 384 putjes kan uitvoeren.
    OPMERKING: De volgende workflow is aangepast aan een Attune NxT met Cytkick Max Auto Sampler. Als er een andere flowcytometer wordt gebruikt, blijf dan de belangrijkste stappen volgen.
    1. Draai voor de plaat met het hoogste debiet (1.000 uL/min) en schakel de boost-modus in. Verkrijg 20 μL/putje. Neem een mengcyclus en een spoelcyclus tussen elk putje.
    2. Maak plots zoals beschreven in stap 4.1.3.
    3. Voer een ongekleurde WT-buisregeling uit en optimaliseer voltages zoals beschreven in stappen 4.1.3 en 4.1.4. Voer een uitgehongerd pHL-buismonster uit en optimaliseer de VL2- en BL1-spanningen zoals beschreven in stap 4.1.
    4. Begin met het verkrijgen van de plaat op de flowcytometer. Laat de plaat horizontaal lopen, zodat er geen significant verschil in acquisitietijd is tussen de uitgehongerde en niet-uitgehongerde monsterputten. Zorg ervoor dat de plaatacquisitie binnen ~1.5 uur is voltooid.
  7. Exporteer de FCS-bestanden en analyseer de gegevens zoals beschreven in stap 5.1 tot en met 5.8. Zoek het gemiddelde (AVG) en de standaarddeviatie (SD) van de fluorescentieverhoudingen voor de monsters die zijn behandeld met glucose (Glc) of geen glucose (uitgehongerd).
    OPMERKING: De gegevens van onze Z-factorexperimenten zijn te vinden in aanvullende tabel S5.
  8. Bereken de Z-factor20-statistiek met behulp van vergelijking (3).
    figure-protocol-3(3)

figure-protocol-4
Figuur 1: Diagram van de methode voor het scoren van glycosomale pH in levende BSF-trypanosomen. (A) Afbeelding van cellijnen die glycosomaal gelokaliseerde pHluorin2-sensor tot expressie brengen. De opname van een peroxisomale targetingsequentie biedt controle over de lokalisatie. OPMERKING: We verwachten dat eliminatie van de PTS-1 zou leiden tot cytosolische lokalisatie, waardoor toekomstige analyse van pH in dat subcellulaire compartiment mogelijk wordt. (B) Weergave van de sensorvalidatietest. Afkorting: BSF = bloedbaanvorm. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

OPMERKING: De Z-factorstatistiek wordt gebruikt om te bepalen hoe geschikt een test is voor HTS. Waarden tussen 0,5 en 1,0 betekenen over het algemeen dat de testkwaliteit acceptabel is voor HTS.

Resultaten

pHLuorin2-PTS1 lokalisatie naar glycosomen in BSF T. brucei
Om de subcellulaire lokalisatie van de pHluorin2-PTS1 te beoordelen, werden parasieten onderworpen aan immunofluorescentietests. Signaal van het transgen gelokaliseerd met anti-sera verhoogd tegen een glycosoom-resident eiwit, aldolase (TbAldolase) (Figuur 2A). De gemiddelde Pearson's correlatiecoëfficiënt van colokalisatie tussen anti-TbAldolase en pHluorin2-PTS1 was 0,895, wat aangeeft dat pHluorin2-PTS1 voornamelijk gelokaliseerd was in glycosomen. Met pHluorin2-PTS1 gelokaliseerd in het glycosoom, gingen we verder met het onderzoeken van de pH van BF-glycosoom.

figure-results-1
Figuur 2: Lokalisatie van pHluorin2-PTS1 naar glycosomen in BSF Trypanosoma brucei. (A) Colokalisatie van pHluorin2-PTS1 met het glycosomaal residente eiwit TbAldolase. BF 90-13 parasieten werden getransfecteerd met pLEWpHluorin2-PTS1 en expressie werd geïnduceerd met Doxycycline (1 μg/ml). TbAldolase werd gelokaliseerd met behulp van anti-TbAldolase sera, gevolgd door incubatie met geit anti-konijn Alexa fluor 568. De gemiddelde correlatiecoëfficiënt van Pearson was 0,895 (30 cellen). (B) Kalibratie van pHluorin2-PTS1 in BSF T. brucei. Schaalbalken = 4 μm. Afkorting: BSF = bloedbaanvorm. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

pHluorin2-PTS1 kalibratie
Veranderingen in pH veranderen het excitatiespectrum van pHluorin2-PTS1. Onder neutrale pH is de pHluorin2-PTS1-excitatie bij 405 nm groter dan bij 488 nm; als de pH daalt, is het omgekeerde waar 9,21. Om de relatieve pH van het glycosoom te meten door middel van flowcytometrie, hebben we de emissie gemeten wanneer geëxciteerd door de 405 nm laser (VL2-kanaal) en emissie wanneer geëxciteerd door de 488 nm laser (BL1-kanaal), met behulp van de verhouding VL2/BL1 (fluorescentieverhouding) om de relatieve glycosomale pH te meten. Om de fluorescentieverhouding om te zetten in pH, hebben we de intracellulaire en glycosomale pH in evenwicht gebracht met de extracellulaire pH met behulp van de ionoforen valinomycine en nigericine17,18, gevolgd door flowcytometrie-analyse om de fluorescentieverhouding te vinden. Zoals verwacht nam de fluorescentieverhouding toe naarmate de extracellulaire pH toenam met een intracellulaire Kd van pH 6,5 (Figuur 2B). Deze Kd was iets lager dan de gerapporteerde in vitro Kd van pHluorin29. Interessant is dat de BSF glycosomale pH in aanwezigheid van glucose ~pH 8,0 was, wat meer basisch was dan PF-glycosomen in aanwezigheid van glucose22. We gebruikten deze kalibratiecurve om de fluorescentieverhouding om te zetten in pH-waarden in volgende experimenten.

Glycosoomverzuring door glucose-uithongering
Terwijl T. brucei PF-parasieten hun glycosomen verzuren wanneer ze worden uitgehongerd van glucose22, is het onbekend hoe BSF-glycosomen reageren op glucose. Om dit te onderzoeken, wasten we BSF-parasieten die pHluorin2-PTS1 tot expressie brachten in PBS plus 10 mM glucose om het kweekmedium te verwijderen en vervolgens de cellen opnieuw te suspenderen in PBS zonder glucose. De sensorrespons op deze verstoring werd onmiddellijk gemeten en daarna elke 10 minuten gedurende 1,5 uur door middel van flowcytometrie. Responsen werden vergeleken met cellen in PBS plus 10 mM glucose (niet-uitgehongerd).

Als reactie op de hongersnood zagen we in de loop van de tijd een geleidelijke milde verzuring, die met ~90 min een plateau bereikte (Figuur 3A). Deze verandering in glycosomale pH was statistisch significant (p < 0,0001) en herhaalbaar in drie afzonderlijke experimenten. Dit suggereert dat BSF-cellen hun glycosomen licht verzuren wanneer ze geen glucose krijgen, vergelijkbaar met de respons die wordt waargenomen in de PF-levensfase9.

figure-results-2
Figuur 3: Omkeerbare verzuring van glycosomen van BSF T. brucei bij ontbering van glucose. (A) Glycosomale pH van cellen die zijn gekweekt in afwezigheid (uitgehongerd, blauw) of aanwezigheid (niet-uitgehongerd, rood) van glucose. De uitgehongerde cellen werden ~2 minuten voorafgaand aan de eerste meting op een Attune NxT-flowcytometer geresuspendeerd in PBS zonder glucose. Er werden drie biologische replica's van het tijdsverloop uitgevoerd. Niet-uitgehongerde parasieten werden geïncubeerd in PBS plus 10 mM glucose. Er werd een ongepaarde tweezijdige t-test van de student uitgevoerd waarin de uitgehongerde en niet-uitgehongerde tijdstippen van 90 minuten werden vergeleken, ***p = 0,0001. (B) Tijdsverloop van glycosomale pH-verandering uitgehongerde (blauwe) en niet-uitgehongerde (rode) BSF-parasieten met 10 mM glucose opnieuw geïntroduceerd na 90 min (groene stippellijn). Er werden vijf biologische replicaties van het tijdsverloop uitgevoerd. NS = niet significant (p = 0,25, ongepaarde tweezijdige t-toets van de student). Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Omkeerbare glycosomale verzuring als reactie op glucose
Vervolgens testten we of BSF-glycosoomverzuring omkeerbaar was door de cellen uit te hongeren en vervolgens glucose opnieuw te introduceren. Parasieten werden geïncubeerd in afwezigheid van glucose gedurende 90 minuten. Vervolgens werd glucose (10 mM) toegevoegd en werd de sensorrespons gemeten door middel van cytometrie gedurende nog eens 90 minuten (Figuur 3B). We zagen dat nadat glucose opnieuw was geïntroduceerd, de glycosomale pH in ~30 minuten terugkeerde naar het niveau van vóór de hongersnood. Deze resultaten suggereren dat de glycosomale pH van BSF dynamisch en reguleerbaar is als reactie op glucose, vergelijkbaar met de pH-respons die wordt waargenomen bij PF-parasieten.

Aanpassing van de pHluorin2-assay voor high-throughput drug screening
Glycosomen zijn essentiële organellen voor het trypanosoom, omdat ze belangrijke metabole routes herbergen. Het belang van glycosomen suggereert dat remmers van hun homeostase veelbelovend kunnen zijn als potentiële therapeutische aanwijzingen. Hier hebben we de test voor glycosomale pH aangepast naar een high-throughput-formaat, waardoor aanpassing aan medicijnschermen mogelijk is om remmers van glycosomale pH te identificeren. We verwachten dat verstoring van de regulatie van deze respons schadelijk kan zijn voor de parasiet, gezien de bekende impact van pH op de glycosoom-residente eiwitfunctie7.

Om het high-throughput-formaat vast te stellen, hebben we de robuustheid van de test gescoord. Om dit compleet te maken, werden parasieten die werden geïnduceerd om de pHluorin2-PTS1 tot expressie te brengen, geplateerd in een microtiterplaat met 384 putjes in 5 mM glucose (hoge controles) of geen glucose (lage controles) en vervolgens gedurende 90 minuten bij kamertemperatuur geïncubeerd. De plaat werd vervolgens geanalyseerd door middel van flowcytometrie. Zoals te zien is in figuur 4, was er een lage variabiliteit tussen gerepliceerde metingen en zijn de hoge en lage controles goed gescheiden, kenmerken die resulteerden in een acceptabele Z-factor van 0,645. Tests met waarden > 0,5 worden over het algemeen robuust genoeg geacht voor aanpassing aan screeningcampagnes met een hoge doorvoer. Gezien het succes hier, verwachten we dat deze sensor en aanpak zullen worden gebruikt in toekomstige high-throughput medicijnscreenings.

figure-results-3
Figuur 4: Analyse om de geschiktheid van de pHluorin2-PTS1 sensordragende BSF voor toekomstige HTS-campagnes te beoordelen. De cellen werden gedurende 90 minuten geïncubeerd met glucose (hoge controle, rood, 5 mM glucose) of zonder de hexose (lage controle, blauw, geen extra glucose). De berekende Z-factor was 0,645. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Aanvullende figuur S1: Klonen van het pHluorin2-PTS1-gen in de induceerbare T. brucei-expressievector pLEW100v5. (A) Beide vectoren werden met dubbele restrictie verteerd door HindIII en BamHI en vervolgens gezuiverd. Het pHluorin2-PTS1-genfragment werd geligeerd in pLEW100v5 met behulp van T4 DNA-ligase. (B) pLEW100-pHlourin2-PTS1. Klik hier om dit bestand te downloaden.

Aanvullende figuur S2: Colokalisatie van pHL met TbAldolase BF 90-13 parasieten getransfecteerd met pLEWpHluorin2-PTS1. Expressie werd geïnduceerd met doxycycline (1 μg/ml). TbAldolase werd gelokaliseerd met behulp van anti-TbAldolase sera (verdund 1:500 in blok), gevolgd door incubatie met geit en G-konijn Alexa fluor 568. De gemiddelde correlatiecoëfficiënt van Pearson was 0,895 (30 cellen). Schaalbalken = 10 μm. Klik hier om dit bestand te downloaden.

Aanvullende figuur S3: Representatieve gating en dot plots voor de kalibratie van de cellijn van de BSF pHL-sensor met behulp van het pH 8-kalibratiebuffermonster als voorbeeld. Monsters werden gekleurd met de levensvatbaarheidskleurstof PI om te beoordelen hoe pH de levensvatbaarheid beïnvloedde met behulp van het YL2-H-kanaal, maar levensvatbaarheid werd niet gebruikt in het poortschema. Een brede poort op FSC-A versus SSC-A werd gebruikt om cellen te poorten, aangezien zowel levende als dode cellen werden gebruikt bij de kalibratie. Na het afschermen van cellen werden enkele cellen (singlets) omheind met behulp van FSC-A versus FSC-H. Ten slotte werd een strenge poort gebruikt voor evenementen fluorescerend voor pHL in de BL1-H- en VL2-H-kanalen. Afkortingen: BSF = bloedbaanvorm; PI = propidiumjodide; FSC-A = voorwaarts verstrooiingspiekgebied; SSC-A = zijwaarts verstrooiingspiekgebied; FSC-H = voorwaartse strooipiekhoogte. Klik hier om dit bestand te downloaden.

Aanvullende figuur S4: Representatieve gating en dot plots voor glucose-uithongering en add-back tijdsbeloopassays. De Starved 0 min-steekproef wordt als voorbeeld gebruikt. Levende cellen werden afgesloten op het YL2-H-kanaal omdat PI werd gebruikt. Cellen werden omheind met FSC-A versus SSC-A om puin en aggregaten uit te sluiten. Singlets werden omheind met behulp van FSC-A versus FSC-H. Kanalen BL1-H en VL2-H werden gebruikt om te gaten voor pHL+ evenementen. Een WT-regeling werd gebruikt om auto-fluorescerende gebeurtenissen uit te sluiten bij het instellen van deze poort. Afkortingen: PI = propidiumjodide; FSC-A = voorwaarts verstrooiingspiekgebied; SSC-A = zijwaarts verstrooiingspiekgebied. Klik hier om dit bestand te downloaden.

Aanvullende tabel S1: Kanaal en algemene naam gebruikt voor flowcytometrie. De kanaalnaam, de algemene naam en het gebruikte laser- en emissiefilter worden vermeld. Klik hier om dit bestand te downloaden.

Aanvullende tabel S2: Resultaten van pHL-kalibratie met nigericine en valinomycine in verschillende pH-buffers. Deze tabel bevat de geëxporteerde statistieken van de FlowJo-analyse van de .fcs-bestanden. Deze waarden werden gebruikt om de fluorescentieverhouding (VL2-H/BL1-H) te vinden voor het kalibreren van pHL, zoals weergegeven in figuur 2. Deze pH-kalibratieresultaten werden ook gebruikt om de pH te interpoleren voor de glucose-uithongerings- en add-back-tijdverloopexperimenten (Figuur 3). Voor de kwaliteitscontrole werden de volgende statistieken gebruikt: Totaal aantal gebeurtenissen, aantal pHL+, PI- (%), PI+ (%) en pHL+ (%). Gegevens voor elke biologische replicaat staan op een apart tabblad en het tabblad met het label "Samengevatte resultaten" bevat de fluorescentieverhoudingen voor elke pH-behandeling en replicatie. Klik hier om dit bestand te downloaden.

Aanvullende tabel S3: Geanalyseerde gegevens van BSF pHL glucose-uithongeringstijd-belooptest gepresenteerd in figuur 3A. Deze tabel bevat geëxporteerde statistieken van .fcs-bestanden die zijn geanalyseerd in FlowJo-software. Fluorescentieverhoudingen werden berekend door de verhouding van mediaan VL2-H en mediaan BL1-H te nemen (beide uit de pHL+-populatie). Deze ratio's zijn verzameld in het tabblad met het label "Samengevatte resultaten". PI- (%) werd gebruikt om de impact van glucose-uithongering op de levensvatbaarheid in de loop van de tijd te bepalen. Voor de kwaliteitscontrole werd gebruik gemaakt van de totale telling en de pHL+ telling. Klik hier om dit bestand te downloaden.

Aanvullende tabel S4: Geanalyseerde gegevens van de BSF pHL-glucose-add-back-tijdverlooptest gepresenteerd in figuur 3B. Deze tabel bevat geëxporteerde statistieken van .fcs-bestanden die zijn geanalyseerd in FlowJo-software. De pHL+ mediaan VL2/BL1 waarden zijn berekend op basis van pHL+ mediaan VL2-H en BL1-H in Excel. De overige statistieken werden gebruikt voor de kwaliteitscontrole. Klik hier om dit bestand te downloaden.

Aanvullende tabel S5: Resulterende gegevens uit FlowJo-analyse van de Z-Factor-studie high-throughput screeningstest met behulp van pHL. Tabbladen met het label "0 mM Glucose" (Laag) en "5 mM Glucose" (Hoog) bevatten gegevens van cellen die zijn behandeld met respectievelijk 0 of 5 mM glucose. Deze fluorescentieverhoudingen zijn weergegeven in figuur 4. In het tabblad "Gepoolde analyse" werden de fluorescentieverhoudingen voor beide behandelingen samengesteld en werden voor elk de gemiddelde en standaarddeviatie van het monster (SD) berekend. De statistiek van de Z-factor werd berekend met behulp van vergelijking 3. De verhouding tussen het gemiddelde Hoog/Laag werd berekend om de scheiding van de gemiddelden te meten. Klik hier om dit bestand te downloaden.

Discussie

Omgevingsperceptie en responsmechanismen in het Afrikaanse trypanosoom zijn slecht begrepen. Het is bekend dat veranderingen in de beschikbaarheid van voedingsstoffen verschillende reacties in de parasiet veroorzaken, waaronder verzuring van glycosomen. Hier hebben we een methode beschreven om de glycosomale pH-respons op omgevingsverstoringen in levende cellen te bestuderen met behulp van een erfelijke eiwitsensor, pHluorin2, en flowcytometrie.

Er zijn verschillende kritieke stappen in het gebruik van de sensor. Ten eerste is de karakterisering van getransfecteerde parasieten die het transgen tot expressie brengen belangrijk, omdat er cel-tot-cel variatie in expressie kan zijn. De expressieniveaus van sommige transgenen kunnen in de loop van de tijd dalen. Hoewel dat tot nu toe niet is waargenomen met de pHluorin2-dragende cellen, kan het nodig zijn om de cultuur te klonen als de responsiviteit van de sensor zeer variabel wordt (bijv. na inductie is het sensorsignaal niet robuust), omdat sommige leden van de populatie het eiwit op hogere niveaus tot expressie kunnen brengen dan andere. Als alternatief zijn retransformatie en selectie nuttig gebleken voor het genereren van nieuwe cellijnen met een hogere (zij het mogelijk voorbijgaande) expressie. Als re-transfectie nodig is, raden we aan om individuele lijnen uit te klonen, omdat de expressie van het transgen van belang een subtiel groeinadeel kan opleveren dat in de loop van de tijd leidt tot verlies van hoge expressoren in de populatie.

Bovendien is het essentieel om de levensvatbaarheid van parasieten te controleren, zowel tijdens de test als tijdens het routinematig onderhouden van culturen. We hebben hiervoor PI of thiazoolrood opgenomen tijdens de test, en deze verslaggevers zorgen ervoor dat de gegevens alleen de reacties in levende cellen weerspiegelen. Door ervoor te zorgen dat de celverdubbelingstijd tijdens normale kweek constant is, met name voorafgaand aan het starten van grootschalige tests (bijv. HTS-type tests), wordt de bezorgdheid beperkt over het starten van tests met cellen die niet gedijen, wat hoge en lage controlesignalen negatief zou kunnen veranderen en de algehele robuustheid van het scherm zou kunnen beïnvloeden.

De aanpak die we hier hebben beschreven voor het meten van glycosomale pH is robuust en gevoelig. Er zijn echter beperkingen aan de aanpak. Ten eerste is toegang vereist tot cytometers met de juiste mogelijkheden, waaronder monsternemers die microtiterplaten kunnen accepteren. Hoewel ratiometrische gegevens kunnen worden verzameld door fluorescentiemicroscopie, beperkt het beperkte aantal monsters dat op die manier kan worden geanalyseerd het nut van benaderingen zoals schermen (en op tijdverloop gebaseerde assays).

Een tweede mogelijke beperking is dat de tests betrekking hebben op een agens dat van belang is voor de bioveiligheid. Het is mogelijk dat kernfaciliteiten waarin de instrumenten zijn ondergebracht die nodig zijn voor het werk, geen levende parasieten op hun apparatuur toestaan. Deze beperkingen, samen met de technische uitdagingen van het genereren en onderhouden van transgene trypanosomen, kunnen worden overwonnen door samenwerking tussen groepen met de juiste expertise op het gebied van parasietenbiologie en celanalyses.

Het hier beschreven werk richt zich op het gebruik van de glycosomale pH-sensor in Afrikaanse trypanosomen, maar de tool kan worden aangepast voor gebruik in andere kinetoplastid-parasieten. Hoewel het onduidelijk is welke rol verzuring van het organel zou kunnen hebben in de biologie van Leishmania spp. of Trypanosoma cruzi, is het mogelijk dat pHLuorin2-PTS1 tot expressie kan worden gebracht als een transgen in de cellen, aangezien er parasietspecifieke expressievectoren beschikbaar zijn en dat de glycosomale importmachinerie vergelijkbaar is in de organismen 5,23,24.

Een mogelijke toepassing van de sensordragende cellen is de identificatie van kleine moleculen die het cellulaire vermogen om het glycosoom te verzuren veranderen. Deze zouden waarschijnlijk schadelijk zijn voor de parasiet, aangezien een veranderde pH een mogelijk middel is gebleken voor de regulatie van hexokinase, een glycosoom-eiwit dat essentieel is in de pathogene levenscyclusfase van het Afrikaanse trypanosoom7. De hier beschreven test is aangepast om een hoge doorvoer te hebben (figuur 4), waardoor grote chemische collecties voor deze activiteit kunnen worden ondervraagd.

Samengevat biedt deze tool de mogelijkheid om mechanismen te ontleden die betrokken zijn bij dynamische reacties in een parasietspecifiek organel. Met behulp van de sensorlijnen in combinatie met voorwaartse en achterwaartse genetica is het waarschijnlijk dat unieke parasietspecifieke routes zullen worden geïdentificeerd. Verder bieden de sensorlijnen de mogelijkheid voor de identificatie van kleine molecuulremmers van de respons, wat de deur opent naar de ontdekking van nieuwe medicijndoelen.

Openbaarmakingen

De auteurs verklaren dat er geen sprake is van belangenverstrengeling.

Dankbetuigingen

pHluorin2-PTS1 werd gekloond in pLEW100v5 door Twist Bioscience, die het construct leverde in een kloonvector met hoge kopieën; pLEW100v5 was een geschenk van Dr. George Cross. Antiserum tegen T. brucei aldolase is op aanvraag verkrijgbaar bij Dr. Meredith T. Morris, Clemson University. Het werk van de JCM- en KAC-laboratoria werd gedeeltelijk ondersteund door een prijs van de National Institutes of Health (R01AI156382). SSP werd ondersteund door NIH 3R01AI156382.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
50 mL Tissue Culture Flasks (Non-treated, sterile)VWR10861-572
75 cm2 Tissue Culture Flask (Non-Treated, sterile)Corning431464U
80 µL flat-bottom 384-well plateBrandTech 781620
Amaxa Human T Cell Nucleofector  KitLonzaVPA-1002
Attune NxT Flow Cytometerinvitrogen by Thermo Fisher ScientificA24858FlowJo software
BRANDplates 96-Well, flat bottom plateMillipore SigmaBR781662
Coloc 2 plugin of ImageJhttps://imagej.net/plugins/coloc-2
CytKick Max Auto Samplerinvitrogen by Thermo Fisher ScientificA42973
CytoFLEX Flow CytometerBeckman-Coulter
Electron Microscopy Sciences 16% Paraformaldehyde Aqueous Solution, EM Grade, 10 mL AmpouleFisher Scientific50-980-487
GraphPad Prismstatistisch software
Nigericin (sodium salt)Cayman Chemical11437
Nucleofector 2bLonzaDiscontinued Product
OP2 Liquid HandleropentronsOP2
poly-L-lysine, 0.1% (w/v) in H2OSigma Life ScienceCAS:25988-63-0Pipettering robot voor HTS-test
Thiazole Red (TO-PRO-3)biotium#40087We hebben een aangepaste acryl plaatstandaard gemaakt, zodat dit merk plaat kon worden gedetecteerd en gebruikt op onze CytKick Max Auto Sampler
valinomycinCayman Chemical10009152Pipettering robot voor HTS-test
      Voor pH-kalibratie
      Voor pH-kalibratie

Referenties

  1. Coley, A. F., Dodson, H. C., Morris, M. T., Morris, J. C. Glycolysis in the African trypanosome: Targeting enzymes and their subcellular compartments for therapeutic development. Molecular Biology International. 2011, 123702(2011).
  2. Mcconville, M. J., Saunders, E. C., Kloehn, J., Dagley, M. J. Leishmania carbon metabolism in the macrophage phagolysosome- feast or famine. F1000Res. 4, 938(2015).
  3. Parsons, M. Glycosomes: Parasites and the divergence of peroxisomal purpose. Molecular Microbiology. 53 (3), 717-724 (2004).
  4. Parsons, M., Furuya, T., Pal, S., Kessler, P. Biogenesis and function of peroxisomes and glycosomes. Molecular and Biochemical Parasitology. 115 (1), 19-28 (2001).
  5. Haanstra, J. R., Gonzalez-Marcano, E. B., Gualdron-Lopez, M., Michels, P. A. Biogenesis, maintenance and dynamics of glycosomes in trypanosomatid parasites. Biochimica et Biophysica Acta. 1863 (5), 1038-1048 (2016).
  6. Allmann, S., Bringaud, F. Glycosomes: A comprehensive view of their metabolic roles in t. Brucei. International Journal of Biochemistry and Cell Biology. 85, 85-90 (2017).
  7. Dodson, H. C., Morris, M. T., Morris, J. C. Glycerol 3-phosphate alters Trypanosoma brucei hexokinase activity in response to environmental change. The Journal of Biological Chemistry. 286 (38), 33150-33157 (2011).
  8. Lin, S., Morris, M. T., Ackroyd, P. C., Morris, J. C., Christensen, K. A. Peptide targeted delivery of pH sensor for quantitative measurements of intraglycosomal pH in live Trypanosoma brucei. Biochemistry. 52 (21), 3629-3637 (2013).
  9. Mahon, M. J. Phluorin2: An enhanced, ratiometric, pH-sensitive green florescent protein. Advances in Bioscience and Biotechnology. 2 (3), 132-137 (2011).
  10. Wirtz, E., Leal, S., Ochatt, C., Cross, G. A. A tightly regulated inducible expression system for conditional gene knock-outs and dominant-negative genetics in Trypanosoma brucei. Molecular and Biochemical Parasitology. 99 (1), 89-101 (1999).
  11. Restriction digest v.2. , Available from: https://www.protocols.io/view/restriction-digest-nkqdg33pg25z/v2 (2018).
  12. Ligation protocol with t4 DNA ligaase (m0202) v.3. , Available from: https://www.protocols.io/view/ligation-protocol-with-t4-dna-ligase-m0202-95qpvorzv4o1/v3 (2021).
  13. Burkard, G., Fragoso, C. M., Roditi, I. Highly efficient stable transformation of bloodstream forms of Trypanosoma brucei. Molecular and Biochemical Parasitology. 153 (2), 220-223 (2007).
  14. Crowe, L. P., Wilkinson, C. L., Nicholson, K. R., Morris, M. T. Trypanosoma brucei pex13.2 is an accessory peroxin that functions in the import of peroxisome targeting sequence type 2 proteins and localizes to subdomains of the glycosome. mSphere. 5 (1), e00744(2020).
  15. Kucejova, B., Kucej, M., Petrezselyova, S., Abelovska, L., Tomaska, L. A screen for nigericin-resistant yeast mutants revealed genes controlling mitochondrial volume and mitochondrial cation homeostasis. Genetics. 171 (2), 517-526 (2005).
  16. Huynh, M. H., Carruthers, V. B. Toxoplasma gondii excretion of glycolytic products is associated with acidification of the parasitophorous vacuole during parasite egress. PLoS Pathogens. 18 (5), e1010139(2022).
  17. Lehoux, S., Abe, J., Florian, J. A., Berk, B. C. 14-3-3 binding to Na+/H+ exchanger isoform-1 is associated with serum-dependent activation of Na+/H+ exchange. TheJournal of Biological Chemistry. 276 (19), 15794-15800 (2001).
  18. Jankowski, A., et al. In situ measurements of the ph of mammalian peroxisomes using the fluorescent protein phluorin. The Journal of Biological Chemistry. 276 (52), 48748-48753 (2001).
  19. Jankowski, A., Grinstein, S. A. A noninvasive fluorimetric procedure for measurement of membrane potential. Quantification of the NADPH oxidase-induced depolarization in activated neutrophils. The Journal of Biological Chemistry. 274 (37), 26098-26104 (1999).
  20. Zhang, J. H., Chung, T. D., Oldenburg, K. R. A simple statistical parameter for use in evaluation and validation of high throughput screening assays. Journal of Biomolecular Screening. 4 (2), 67-73 (1999).
  21. Miesenbock, G., De Angelis, D. A., Rothman, J. E. Visualizing secretion and synaptic transmission with pH-sensitive green fluorescent proteins. Nature. 394 (6689), 192-195 (1998).
  22. Lin, S., et al. Ph regulation in glycosomes of procyclic form Trypanosoma brucei. The Journal of Biological Chemistry. 292 (19), 7795-7805 (2017).
  23. Ha, D. S., Schwarz, J. K., Turco, S. J., Beverley, S. M. Use of the green fluorescent protein as a marker in transfected Leishmania. Molecular and Biochemical Parasitology. 77 (1), 57-64 (1996).
  24. Kelly, J. M., Ward, H. M., Miles, M. A., Kendall, G. A shuttle vector which facilitates the expression of transfected genes in Trypanosoma cruzi and Leishmania. Nucleic Acids Research. 20 (15), 3963-3969 (1992).

Herprints en machtigingen

Tags

GlucosemetabolismepHluorin2 biosensorflowcytometrieglycosoomverzuringlive cell imagingparasietglycolysepH sensorkalibratietransgene parasieten
Meten van dynamische glycosomale pH-veranderingen bij levende Trypanosoma brucei
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan de bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleidsoverzicht

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.