Om de effectiviteit van de methode aan te tonen, werd een standaardmix van TA's (10 μg/ml elk van een acetyltropine/acetylpseudotropine-mix [monogesubstitueerd], 10 μg/ml elk van een mengsel van twee anisodamine-isomeren [gesubstitueerd], samen met hyoscyamine [monogesubstitueerd], littorine [monogesubstitueerd] en scopolamine [trigesubstitueerd]) geanalyseerd als positieve controle (Figuur 2). Een volledig Q1-scanchromatogram (weergegeven in de weergave van het basispiekchromatogram) wordt weergegeven in figuur 2A, waarbij de TA-standaardstructuren worden aangegeven door de bijbehorende pieken. De PrIS voor m/z 124 (figuur 2B) vertoont pieken in het chromatogram voor de monogesubstitueerde TA's; Ergo, de acetyltropine/pseudotropine-mix, hyoscyamine en littorine worden weergegeven. De pieken die overeenkomen met acetyltropine en pseudotropine in het m/z 124-chromatogram zijn klein (mogelijk omdat ze een lagere concentratie hebben dan de andere standaarden en mogelijk omdat ze een minder overvloedig m/z 124-fragment produceren dan de andere monogesubstitueerde TA's). Desalniettemin zijn ze nog steeds detecteerbaar in zowel dit chromatogram als in het bijbehorende PrIS-kanaal. Figuur 2C en Figuur 2D zijn PrIS-chromatogrammen voor respectievelijk m/z 122 en 140. Ze detecteren gedisubstitueerde TA-fragmenten en markeren beide de twee isomeren van anisodamine, met een sterker signaal zichtbaar op het m/z 140-kanaal. Aangezien verschillende TA's fragmenten van verschillende intensiteit kunnen bezitten, moeten de m/z 122- en 140-kanalen samen worden onderzocht. Ten slotte vertonen de kanalen m/z 156 (Figuur 2E) en m/z 138 (Figuur 2F), diagnostisch voor trigesubstitueerde TA's, beide één piek voor scopolamine (de enige trigesubstitueerde TA in de standaardmix).
NLS-chromatogrammen werden vervolgens gebruikt om de aanwezige estergroepen toe te wijzen. Figuur 2G toont het NLS-chromatogram voor 60 Da (verlies van azijnzuur uit acetaatesters): de twee geacetyleerde monogesubstitueerde TA-isomeren zijn zichtbaar. Het NLS-chromatogram voor 166 Da (figuur 2I), bedoeld om fenylmelkzuur- of tropische esters te identificeren, identificeert correct alle alkaloïden die een van deze groepen bevatten (hyoscyamine, littorine, de twee anisodamine-isomeren en scopolamine). Ten slotte, zoals voorspeld, is het chromatogram (figuur 2H) voor het verlies van 100 Da (diagnose van tigloylesters ) blanco met uitzondering van een kleine onzuiverheid bij r.t. 1,75 min, aangezien geen van de standaard alkaloïden deze groep bevat.
De methode werd vervolgens getest op valse positieven. Een water/methanol extract van tomatenblad (Solanum lycopersicum) diende als negatieve controle. Ondanks dat ze nachtschade zijn, produceren tomaten geen TA's. Een volledig Q1-scan base-peak chromatogram wordt weergegeven in figuur 3A. De PrIS voor m/z 124 (Figuur 3B) is grotendeels leeg, met kleine basislijnfluctuaties die waarschijnlijk detectorruis zijn (geen enkele signaal kwam overeen met die massa's in de Q1- of Q3-scans). Twee kenmerken met rt's van 2,6 en 3,4 min leveren een 124-fragment op, maar onderzoek van de DD-product-ionenscan onthult dat deze kenmerken geen andere monogesubstitueerde tropaanfragmenten produceren (m/z 93 of 142), wat suggereert dat het geen TA's zijn. Dit voorbeeld benadrukt ook het nut van het opnemen van de ionenscan van het DD-product in deze methode om valse positieven uit te sluiten. Evenzo vertoont het m/z 122-kanaal voor gedisubstitueerde TA's (figuur 3C) ook alleen ruis. De PrIS-chromatogrammen voor m/z 140, m/z 138 en m/z 156, en de drie NLS'en, die alleen niet-TA-kenmerken op de DD-scans suggereren, worden weergegeven in aanvullende figuur 1A-F.
Om het gebruik van deze methode bij het depliceren van een TA-bevattend monster aan te tonen, werd een extract van D. metel var. 'fastuosa'-wortel geanalyseerd. De wortels zijn de belangrijkste plaats van TA-biosynthese in nachtschade, en er werd voorspeld dat er veel verschillende TA's aanwezig zouden zijn. Het volledige Q1-scanchromatogram wordt weergegeven in figuur 4A. Zoals verwacht werden talrijke kenmerken van verschillende abundantie gedetecteerd op de PrIS's voor m/z 124 (Figuur 4B), m/z 122 (Figuur 4C), m/z 140 (Figuur 4D), m/z 156 (Figuur 4E) en m/z 138 (Figuur 4F). Veel van deze TA's waren ook geacetyleerd of getigloyeerd, of afgeleid van fenylmelkzuur/tropenzuur, zoals blijkt uit de talrijke signalen in de NLS-chromatogrammen in respectievelijk figuur 4G-I.
Een spreadsheet, geleverd als een .xls bestand (een leeg blad voor lezersgebruik is Aanvullend Bestand 1, D. metel root is in Aanvullend Bestand 2), werd gebruikt om eerst te documenteren welke functies (massa's of RT's) TA-achtig leken (met behulp van criteria in stap 3.1). Vervolgens werden fragmenten en neutrale verliezen genoteerd die bij deze kenmerken hoorden. De methode is uiterst gevoelig: de PrIS-kanalen detecteerden zelfs gemakkelijk TA's met een lage abundantie die geen zichtbare pieken opleverden op de bijbehorende chromatogrammen. Met behulp van de fragmenten en neutrale verliezen kan vervolgens een structuur voor de alkaloïde worden voorgesteld door stap 3.5 te volgen.
Een voorbeeld van het gebruik van de spectrale gegevens om alkaloïden te annoteren is te vinden in figuur 5. Het volledige Q1-scanchromatogram voor D. metelwortel is in figuur 5A. Er is gekozen voor een functie op 14,4 min; het Q1-scanspectrum (Figuur 5B) toont een moedermassa van m/z 224 voor deze piek. Het spectrum van de ionenscan van het DD-product wordt weergegeven in figuur 5C. Het PrIS-kanaal voor m/z 124 (figuur 5D) geeft aan dat het 224-ion dit fragment produceert (ook zichtbaar in de DD-productionenscan). Het NLS-kanaal voor 100 Da (om getigloyeerde TA's te detecteren) markeert ook m/z 224 (ook bevestigd door de DD-productionenscan). Het optellen van het neutrale verlies en het TA-fragment met de laagste massa (100 + 124 Da) is gelijk aan de moedermassa, 224, wat bevestigt dat de tigloylgroep de enige substitutie is; een waarschijnlijke structuur voor deze alkaloïde is aangegeven in figuur 5C. Voor di- en tri-gesubstitueerde TA's werden waargenomen neutrale verliesmassa's toegevoegd aan de laagste TA-massa, en vervolgens werd een andere substitutie voorgesteld om rekening te houden met de resterende massa: bijvoorbeeld m/z 222, met gedisubstitueerde TA-fragmenten van 140 en 122 en een neutraal verlies van 100 Da, heeft een resterende massa van 100 (222-122 = 100), Waarschijnlijk een tweede Tilloll-groep. Deze workflow kan intuïtief worden gebruikt voor het eliminatieproces: een functie zonder tropaanfragmenten (zelfs als het 60, 100 of 166 Da kan verliezen) is waarschijnlijk geen TA. In een voorbeeld van grondige en snelle dereplicatie met behulp van deze workflow werden 71 verschillende TA's van verschillende overvloed en polariteit geïdentificeerd in D. metel-wortel , waaronder meerdere isomere verbindingen (aanvullend bestand 2). Sommige van deze verbindingen hadden estergroepen die niet gemakkelijk konden worden toegewezen, en sommige extra verbindingen werden gemarkeerd als potentiële TA's, maar konden niet met hoge betrouwbaarheid worden geannoteerd.
Een methanol/water-extract van gemalen D. stramonium-zaden werd ook geanalyseerd. Het volledige Q1-scanbasis-piekchromatogram voor D. metelwortel wordt weergegeven in figuur 6A. De PrIS voor m/z 124 is weergegeven in figuur 6B en de PrIS voor m/z 122 is weergegeven in figuur 6C; de andere chromatogrammen zijn weergegeven in aanvullende figuur 2A-F. Figuur 6B toont een zeer overvloedige monogesubstitueerde tropaanalkaloïde bij een r.t. = 12,6 min, waarschijnlijk hyoscyamine. De spreadsheet met seed TA-annotaties is opgenomen in aanvullend bestand 3. De prestaties van de methode leken lager met dit specifieke monster: twee zeer overvloedige kenmerken met een m/z van 259 bij rts van 8,5 en 10,2 minuten leverden pieken op de NLS-chromatogrammen op voor 60 en 100 Da (aanvullende figuur 2 D,E) met een massa van m/z 260 (een M+1-isotoop) aangegeven op de overeenkomstige spectra. Deze verbindingen zijn geen TA's, maar in plaats daarvan gevormde fragmenten die consistent zijn met bèta-carboline-alkaloïden27. Ze zijn niet geacetyleerd of getigloyeerd, maar verliezen 60 of 100 van hun M+1-isotoop, waardoor hun verschijning op deze twee NLS-kanalen onjuist is. Bovendien leverde scopolamine (r.t. = 10,5 min) een m/z 122-fragment op van zijn m/z 305 M+1-isotooppiek, een isotoop van het verwachte m/z 121-fragment van scopolamine. Hoewel deze methoden gebruik maken van de-isotopenfuncties, is enige isotopenlekkage mogelijk bij deze hoge monsterconcentraties. Hoewel dit een gebeurtenis kan zijn die uniek is voor het instrument dat in dit onderzoek of deze steekproef is gebruikt, is het vermeldenswaard.
Veertig TA's werden geannoteerd in D. stramoniumzaden met behulp van deze methode, waaronder verschillende die geglycosyleerd lijken te zijn en massa's van 162 (hexose), 146 (deoxyhexose) of 132 Da (xylose of een vergelijkbare suiker) verliezen. Hoewel hexose-bevattende TA's zijn gerapporteerd in Merremia (Convolvulaceae)28, Duboisia29 en Atropa25, is dit de eerste melding van deoxyhexose- of xylose-bevattende TA's. Eén TA had een rt van 13,8 min (Figuur 7A) en een massa van m/z 436 (Q1-scan in Figuur 7B). Deze functie produceerde een signaal op het m/z 124-kanaal, wat wijst op een monogesubstitueerde TA (Figuur 7D), maar produceerde geen signalen op een ander PrIS- of NLS-kanaal. De DD-productionenscan (figuur 7C) gaf de verwachte m/z 124 aan, een verlies van 312 Da, mogelijk 166 + 146 Da, van het moederion. MS/MS met hoge resolutie werd verkregen op een quadrupool time-of-flight-instrument (spectrum in figuur 7E), dat een m/z 290-fragment aangaf, wat suggereert dat hyoscyamine of littorine geglycosyleerd is op het esterhydroxylgedeelte met rhamnose of een vergelijkbare suiker; de gemeten nauwkeurige massa lag ook zeer dicht bij de exacte massa berekend voor rhamnosyl-hyoscyamine of littorine (structuur in figuur 7E). Vanwege zijn ongekende structuur en overvloed verdient deze alkaloïde isolatie uit D. stramoniumzaden , een voorbeeld dat het gebruik van deze methode bij nieuwe alkaloïden aantoont.

Figuur 1: Relevante fragmenten en verliezen waargenomen bij MS van TA's. (A) Karakteristieke fragmenten (en hun diagnostische massa's) gevormd uit monogesubstitueerde, digesubstitueerde en trisubgesitueerde TA's, evenals representatieve voorbeelden van alkaloïden in elke klasse. (B) Gemeenschappelijke neutrale verliezen waargenomen van estergroepen in TA's (en hun diagnostische massa's). Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 2: Positieve controle precursor ion en neutraal verlies scans. Voor alle chromatogrammen is de X-as de retentietijd en de Y-as de telling (ionenovervloed). (A) Het totale ionenchromatogram, in base-peak chromatogramweergave, van de alkaloïde standaardmix. Structuren van de normen worden aangegeven; De bijbehorende pieken worden aangeduid met rode pijlen. (B-F) zijn PrIS-chromatogrammen voor (B) m/z 124, (C) 122, (D) 140, (E) 156 en (F) 138. (G-I) NLS-chromatogrammen voor 60 Da (acetyl, G), 100 Da (tigloyl, H) en 166 Da (fenylmelkzuur/tropenzuur, I). Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 3: Negatieve controle precursor ionen en neutrale verliesscans. Voor alle chromatogrammen is de X-as de retentietijd en de Y-as de telling (ionenovervloed). (A) Het totale ionenchromatogram, in basis-piekchromatogramweergave, van een methanol/waterextract van het blad van S. lycopersicum . (B) Het PrIS-chromatogram voor m/z 124 met slechts twee niet-tropane kenmerken bij rt 2,6 en 3,4 min. (C) Het PrIS-chromatogram voor m/z 122, blanco behalve voor detectorruis. De gebruikte schalen zijn dezelfde als in figuur 2; de overige chromatogrammen staan in aanvullende figuur 1. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 4: Toepassing van de MS/MS-methode op D. metel var. 'fastuosa' wortels. Voor alle chromatogrammen is de X-as de retentietijd en de Y-as de telling (ionenovervloed). (A) Het totale ionenchromatogram, in base-peak chromatogramaanzicht, van een methanol/waterextract van D. metel var. "fastuosa" wortels. (B-F) zijn PrIS-chromatogrammen voor m/z (B) 124, (C) 122, (D) 140, (E) 156 en (F) 138. (G-I) zijn NLS-chromatogrammen voor 60 Da (acetyl, G), 100 Da (tigloyl, H) en 166 Da (fenylmelkzuur/tropenzuur, I). Let op de overvloedige signalen op elk chromatogram die overeenkomen met talrijke TA's. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 5: Toepassing van een gecombineerde DD-productionenscan, een voorloper-ionenscan en een neutrale verliesscanmethode voor het voorstellen van de structuur voor een TA. (A) Het totale ionenchromatogram, in basis-piekchromatogramweergave, van een methanol/waterextract van D. metel var. 'fastuosa' -wortels. Een piek op r.t. = 14,4 min wordt aangegeven door een rode pijl. (B) De Q1 (surveyscan), met een overvloedige massa van m/z 224 voor deze piek. Voor alle spectra is de X-as massa en de Y-as de intensiteit. (C) De ionenscan van het DD-product, die de fragmentatie van het m/z 224-ion aangeeft, wat een verlies van 100 Da en een m/z 124-fragment aangeeft (rode pijlen). Deze verbinding komt voor op zowel het (D) m/z 124 PrIS-kanaal als (E) het 100 Da NLS-kanaal, wat aangeeft dat het zowel monogesubstitueerd als tigloyaal is (structuur in paneel C). Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 6: Toepassing van de MS/MS-methode op zaden van D. stramonium . Voor alle chromatogrammen is de X-as de retentietijd en de Y-as de telling (ionenovervloed). (A) Het totale ionenchromatogram, in basis-piekchromatogramaanzicht, van een methanol/waterextract van D. stramoniumzaden. (B) Het PrIS-chromatogram voor m/z 124; (C) geeft het PrIS-chromatogram voor m/z 140 weer. De overige chromatogrammen staan in aanvullende figuur 2. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 7: Annoteren van een nieuwe alkaloïde in D. stramonium zaden. Voor alle chromatogrammen is de X-as de retentietijd en de Y-as de telling (ionenovervloed). (A) Het totale ionenchromatogram, in basis-piekchromatogramweergave, van een methanol/waterextract van D. stramoniumzaden. Een functie op r.t. = 13,7 min wordt aangegeven. (B) De Q1 (survey-scan) die een massa van m/z 436 voor deze piek laat zien. Voor alle spectra is de X-as massa en de Y-as de intensiteit. (C) De ionenscan van het DD-product die de fragmentatie van het m/z 436-ion aantoont. (D) Deze monogesubstitueerde TA-verbinding verschijnt op het m/z 124 PrIS-kanaal. (E) Het MS/MS-spectrum met hoge resolutie voor deze nieuwe TA, samen met de voorgestelde structuren en exacte massa. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Aanvullende figuur 1: Aanvullende scans van negatieve controleprecursorionen en neutraal verlies. (A-C) PrIS-chromatogrammen voor m/z (A) 140, (B) 156 en (C) 138. (D-F) NLS-chromatogrammen voor 60 Da (acetyl, D), 100 Da (tigloyl, E) en 166 Da (fenylmelkzuur/tropenzuur, F). De gebruikte schalen zijn dezelfde als in figuur 2. Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullende figuur 2: Toepassing van de MS/MS-methode op zaden van D. stramonium; aanvullende chromatogrammen. (A-C) zijn PrIS-chromatogrammen voor m/z (A) 140, (B) 156 en (C) 138. (D-F) NLS-chromatogrammen voor 60 Da (acetyl, D), 100 Da (tigloyl, E) en 166 Da (fenylmelkzuur/tropenzuur, F). Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullend bestand 1: Lege spreadsheet gebruikt voor alkaloïde annotaties. Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullend bestand 2: Spreadsheet van alkaloïde annotaties en structuren voor D. metel var. 'fastuosa' wortels. Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullend bestand 3: Spreadsheet van alkaloïde annotaties en structuren voor D. stramonium zaden. Klik hier om dit bestand te downloaden.