Hier introduceren we een gestandaardiseerde procedure voor endotracheale intubatie via tracheotomie gevolgd door thoracotomie bij ratten, gericht op het verbeteren van de precisie en reproduceerbaarheid van niet-overlevingstoepassingen die invasieve ventilatie en blootstelling van thoracale organen vereisen in in vivo rattenmodellen.
Methodenartikel
Endotracheale intubatie via tracheotomie en daaropvolgende thoracotomie bij ratten voor niet-overlevingstoepassingen
In dit artikel
Samenvatting
Samenvatting
Endotracheale intubatie en daaropvolgende beademing zijn vaak basisvereisten voor translationeel onderzoek in rattenmodellen voor verschillende interventies die gecontroleerde of hoge ventilatiedrukken of toegang tot de borstholte en organen vereisen. Conventionele endoorotracheale intubatie via de anatomisch bestaande route door de mond is zeer geschikt voor overlevingsexperimenten. Deze procedure brengt echter enkele uitdagingen met zich mee, waaronder over het algemeen hogere niveaus van de vereiste ervaring en technische vaardigheid, meer geavanceerde apparatuur en meer tijdsinspanning met relevante faalpercentages en complicaties van intubatie, zoals tracheale perforatie, tijdelijke systemische hypooxygenatie en relevante luchtlekkage.
Dit manuscript presenteert daarom een gedetailleerd stapsgewijs protocol voor endotracheale intubatie door middel van tracheotomie in niet-overlevende rattenmodellen wanneer gegarandeerd succes van intubatie, constante oxygenatieniveaus, hoge ventilatiedruk of open thoracotomie vereist zijn.
Het protocol benadrukt het belang van een nauwgezette chirurgische techniek om consistente en betrouwbare resultaten te garanderen, vooral voor onderzoekers die onervaren zijn of geen routine hebben in de techniek van endoorotracheale intubatie via directe laryngoscopie. Deze procedure zal naar verwachting daarom dierenleed en onnodige dierverliezen tot een minimum beperken.
Inleiding
Over het algemeen zijn knaagdieren in staat om ademnood veel langer te compenseren dan patiënten. Ze kunnen veel langer en tijdens meer invasieve procedures stabiel en voldoende stabiel en voldoende blijven in de cardiocirculatie onder spontane beademing, bijvoorbeeld zelfs door levertransplantatie, waarvan bekend is dat het een van de meest belastende procedures is voor de cardiopulmonale circulatie 1,2,3.
Endotracheale intubatie is echter een basisvereiste voor translationeel onderzoek in rattenmodellen voor verschillende instellingen en interventies afkomstig uit verschillende biomedische gebieden en is essentieel in het huidige wetenschappelijke landschap 4,5,6,7,8,9,10,11 . Hoewel het merendeel van het experimentele proefdierwerk bij ratten in het algemeen nog steeds geen invasieve beademingvereist12, zijn er bepaalde experimentele opstellingen die intubatie en gecontroleerde beademingshulp vereisen. Deze experimentele opstellingen omvatten elk experiment dat een beveiligde luchtweg, hoge ventilatiedruk en laparoscopie of directe toegang tot de borstholte en organen vereist.
Vooral in het geval van vereiste toegang tot de borstholte en organen, is endotracheale intubatie absoluut noodzakelijk, aangezien de collaps van de long zal resulteren in een fatale respiratoire insufficiëntie zodra de negatieve druk in de intrapleurale ruimte en het inspiratiemechanisme door de intercostale spieren en het middenrif verloren zijn gegaan13.
Hoewel er veel publicaties zijn over methoden voor niet-invasieve endoorotracheale intubatie bij knaagdieren 14,15,16,17, lijkt er een gebrek te zijn aan procedureprotocollen voor invasieve endotracheale intubatie door tracheotomie. Ondanks de invasiviteit van deze laatste, die alleen toepassing in niet-overlevingsdiermodellen mogelijk maakt, zijn er grote voordelen van intubatie via tracheotomie. Deze omvatten een steilere leercurve, hogere en meer aanhoudende slagingspercentages, minder vereiste technische apparatuur en verbeterde mogelijkheden voor het monitoren van succes18,19.
Het succes van intubatie is essentieel voor het resultaat. Hoewel verschillende valse intubaties, evenals herhaalde intubatiepogingen bij patiënten, duidelijk geassocieerd zijn met bijwerkingen en complicaties die zo ernstig zijn als de dood20,21, zijn dergelijke voorvallen ook schadelijk bij proefdieren. In het beste geval vertegenwoordigen ze een sterke verstorende variabele in het experiment, maar ze kunnen ook leiden tot onnodig verlies van het dier. Daarom is het zinvol om de slagingspercentages van intubatie te verhogen ten koste van niet-invasieve werking als de experimentele opzet en strategie dit toelaten.
Dit gestandaardiseerde protocol van intubatie via chirurgische tracheotomie biedt verschillende voordelen, waaronder verminderde variabiliteit in slagingspercentages van intubatie, minimale effecten op de cardiorespiratoire fysiologische parameters en volledige onderzoekscontrole en manipulatie van parameters. Het helpt bij het bieden van een beveiligde luchtweg, vooral voor onervaren onderzoekers in de procedure van endotracheale intubatie via directe laryngoscopie, en stelt onderzoekers in staat om niet-overlevingsstudies uit te voeren met sterk gecontroleerde omstandigheden. We belichten belangrijke anatomische oriëntatiepunten en geven inzicht in het oplossen van veelvoorkomende uitdagingen die zich tijdens de procedure voordoen.
Protocol
Alle hier beschreven dierenactiviteiten zijn goedgekeurd door de institutionele commissie voor dierenverzorging en -gebruik (IACUC) van de regionale raad van Baden-Württemberg in Karlsruhe, Duitsland. Proefdieren werden beheerd volgens institutionele normen en volgens de Duitse wetgeving voor gebruik en verzorging van dieren en volgens de richtlijnen van de Raad van de Europese Gemeenschap (2010/63/EU) en de ARRIVE-richtlijnen en werden uitgevoerd in geaccrediteerde faciliteiten. Er werden mannelijke Spraque Dawley-ratten van Janvier Labs gebruikt met een bestelgewicht van 400 g.
1. Voorbereiding van de procedure (Figuur 1)
- Bereid chirurgische voorbereidingshaken voor door canules in een hoek van 135° op 1 cm ten opzichte van de punt te vouwen, ze via Luer-lock aan te sluiten op plastic perfusiebuizen en spanning uit te oefenen met behulp van een chirurgische muggenklem (Figuur 1A,B).
- Bereid een chirurgisch blootstellingsapparaat voor knaagdieren voor.
LET OP: Naast de beschikbaarheid van commerciële platformen, kunnen deze ook eenvoudig kosteneffectief zelf worden gebouwd, zoals in deze studie.- Gebruik hiervoor een stalen plaat van 40 cm x 50 cm met een dikte van 4 mm. Maak met een staalboor op de gewenste plaats meerdere gaten van 8 mm voor volgende trekpunten. Plaats de Y-vormige bevestigingsstaven op deze plaatsen.
- Plaats een verwarmingskussen op de stalen plaat van het chirurgisch belichtingsapparaat om thermische ondersteuning te bieden.
- Bereid de chirurgische voorbereidingshaken voor met bevestigde plastic buizen en chirurgische muggenklemmen om later spanning op het weefsel uit te oefenen voor chirurgische blootstelling.
- Verwijder de plug van een plastic spuit van 10 ml met een mannelijk Luer-lock-uiteinde en knip het proximale uiteinde van de spuit af. Plaats het distale deel in de ventilatiezak zoals afgebeeld en sluit deze luchtdicht af door deze af te dekken met een krimpkous en zachte warmte toe te passen met behulp van een laboratoriumbrander (Figuur 1D-F).
- Kort en schuin verschillende maten intraveneuze katheters in en breng een voerdraad van een arteriële leiderkatheter met het flexibele draaduiteinde aan het uiteinde in de kathetermaat die het meest geschikt is voor de respectieve diergrootte (vermoedelijk 14 G) voor de volgende Seldinger-techniek22,23 tijdens intubatie (Figuur 1G,H).
Figuur 1: Experimentele opstelling. (A) Een gevouwen canule die is aangesloten op een perfusiebuis die wordt gebruikt als haak voor chirurgisch preparaat. (B) Voorbereidingshaak met klem geplaatst in een metalen bevestigingsstang. (C) Verdoofd dier voorafgaand aan de interventie. (D) Ventilatiezak van neonatologie. (E-F) Luchtdichte montage van een Luer-lock spuit op de ventilatiezak met behulp van een krimpkous. (G) Verkorte en afgeschuinde intraveneuze katheters in verschillende maten met een voerdraad van een arteriële leider-katheterset voor de Seldinger-techniek. (H) Definitieve constructie op maat. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
2. Anesthesie en analgesie
- Verdoof de rat met de medicatie van uw keuze.
OPMERKING: Hier werden anesthesie en analgesie vastgesteld met behulp van ketamine 10% (100 mg/ml), xylazine 2% (20 mg/ml), carprofen 50 mg/ml en isofluraan. Een verdunning van 1:10 van xylazine en carprofen werd gebruikt als standaardoplossingen voor toepassing.- Induceer anesthesie door het dier in een inductiebox te plaatsen die wordt overspoeld met 100% zuurstof met een instroomsnelheid van 5 l/min, aangevuld met 4% (v) isofluraan met behulp van een verdamper.
- Nadat bewusteloosheid is bereikt, haalt u het dier uit de inductiebox en injecteert u het (i.p.) met 100 mg/kg lichaamsgewicht ketamine en 4 mg/kg lichaamsgewicht xylazine.
OPMERKING: Dit komt overeen met 40 mg ketamine (0,4 ml van de oorspronkelijke oplossing) en 1,6 mg xylazine (0,08 ml van de oorspronkelijke oplossing of 0,8 ml van de 1:10-oplossing) voor een dier van 400 mg. - Plaats het dier terug in de met isofluraan overgoten inductiebox totdat het effect van de i.p.-injectie optreedt.
- Garandeer een goede anesthesiediepte door het gebrek aan reactie van de rat op een stevige teenknijp te testen.
- Breng oogzalf aan op de ogen.
- Beoordeel en behoud de diepte van de anesthesie tijdens de operatie.
- Wanneer de verdovende effecten in de loop van de tijd (ongeveer elk uur) leken af te nemen, injecteer het dier dan met een extra 50 mg/kg lichaamsgewicht ketamine en 1 mg/kg lichaamsgewicht xylazine. Dit komt overeen met 20 mg ketamine (0,2 ml van de oorspronkelijke oplossing) en 0,4 mg xylazine (0,2 ml van de 1:10-oplossing) voor een dier van 400 mg.
- Geef extra analgesie vóór de thoracotomie met een s.c. injectie van 5 mg/kg lichaamsgewicht carprofen. Dit komt overeen met 2 mg carprofen (0,04 ml van de oorspronkelijke oplossing of 0,4 ml van de 1:10-oplossing) voor een dier van 400 mg.
3. Chirurgische voorbereiding (Figuur 2)
- Verzadig de bloedsomloop van het dier met zuurstof door 100% zuurstof in te ademen via een transnasaal neonataal masker (Figuur 2A).
- Schakel na 5 minuten over van het transnasale neonatale masker naar de constructie van een neonatale beademingszak met een Luer-lock-tip van een plastic spuit voor mannen zoals hierboven beschreven en bied zuurstof aan in overloop met de spuitpunt dicht bij de neustip van het dier (Figuur 2B).
- Voer een mediane incisie in de thoracocervicale huid uit over de gewenste lengte en leg de chirurgische situs bloot met behulp van de chirurgische voorbereidingshaken (Figuur 2C,D).
- Bespoedig het preparaat door middel van een stompe dissectie met een fijne schaar door de cervicale fascia. Leg de sternocleidomastoïde en infrahyoïdale spier bloot en lateraliseer de mediane infrahyoïdale spier naar rechts na dissectie van het linker laterale membraan (Figuur 2E-G).
- Voer een stompe dissectie uit in de richting van de luchtpijp en tunneling van de luchtpijp met behulp van overholtklemmen (Figuur 2H-I).
- Slinger de luchtpijp met behulp van een siliconen vatlus en dubbelplak de distale luchtpijp met behulp van een polyfilament hechtdraad voor latere fixatie van de endotracheale canule (Figuur 2J-N).
Figuur 2: Voorbereiding van de luchtpijp. (A) Inademing van zuurstof via masker. (B) Schakel over van masker naar Luer-lock-spuit voor mannen voor zuurstoftoepassing. (C) Thoracocervicale incisie in de huid. (D) Voorbereiding door de cervicale fascia. (E) blootstelling van de sternocleidomastoïde spier en de infrahyoïdale spier. (F) Lateralisatie van de mediane infrahyoïdale spier. (G) Stompe dissectie in de richting van de luchtpijp. (H) tunnelen van de luchtpijp met behulp van overholt-klemmen. (I) Slingeren van de luchtpijp met behulp van een siliconen vaatlus. (J-N) Caudale dubbele slingering van de luchtpijp met behulp van een polyfilament hechtdraad voor latere fixatie van de endotracheale canule. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
4. Intubatieprocedure (Figuur 3)
- Verleng de luchtpijp caudaal met behulp van een atraumatische tang (Figuur 3A,B).
- Voer een gedeeltelijke incisie van de luchtpijp uit met een omtrek van 180° met behulp van een schaar (Figuur 3C-F).
- Breng een Seldinger-voerdraad met het flexibele uiteinde in de luchtpijp (Figuur 3G-H) en breng vervolgens de gemodificeerde intraveneuze katheter met de juiste omtrek in de luchtpijp die wordt geleid door de Seldinger-draad (Figuur 3I-N).
- Verwijder de Seldinger-draad (Figuur 3O), sluit de Luer-lock-tip van de tracheale katheter aan op de aangepaste beademingszak en begin met zachte longbeschermende handmatige beademing met hoge frequentie en laag teugvolume (Figuur 3P). Voer handmatige beademing uit zolang er geen mediane thoracotomie is uitgevoerd en de long niet duidelijk zichtbaar is.
- Bind de eerder geplaatste vergrendelingshechting vast met een glijdende knoop om luchtlekkage en onbedoelde verwijdering van de katheter te voorkomen (Figuur 3Q-T).
Figuur 3: Endotracheale intubatie via tracheotomie. (A) Beginsituatie na bereiding. (B) Caudale verlenging van de luchtpijp met behulp van een atraumatische tang. (C-F) Gedeeltelijke incisie van de luchtpijp met een omtrek van 180°. (G,H) Introductie van een Seldinger voerdraad in de luchtpijp. (I-M) Inbrengen van de gemodificeerde intraveneuze katheter in de luchtpijp geleid door de Seldinger-draad. (N-O) Verwijdering van de Seldinger-draad. (P) Luer-lock-aansluiting van de tracheale katheter op de aangepaste beademingszak. (Q-T) Binden van de eerder geplaatste borghechting om te voorkomen dat de katheter per ongeluk wordt verwijderd. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
5. Handmatige ventilatie en mediane thoracotomie (figuur 4)
- Begin de mediane thoracotomie vanaf de xiphoid met behulp van een stompe en stabiele materiaalschaar (Figuur 4A,B) en ga craniaal verder door het borstbeen. Pauzeer de ventilatie altijd een paar seconden wanneer u met de schaar substernaal beweegt en wanneer u knipt om trauma aan de long te voorkomen (Figuur 4C-E).
- Verkrijg thoracale blootstelling met behulp van chirurgische voorbereidingshaken en verwijder mediastinale serosale membranen (Figuur 4F-H).
- Ga door met handmatige beademing met de gewenste frequentie en het ademvolume en breid de monitoring uit (bijv. het uitvoeren van een intra-arteriële bloeddrukmeting, het installeren van een centraal veneuze of pulmonale arteriële katheter, afhankelijk van het doel of de respectieve onderzoeksvraag) (Figuur 4I-L).
Figuur 4: Handmatige beademing en mediane thoracotomie. (A) beginsituatie na intubatie. (B-E) Mediane thoracotomie beginnend bij de xiphoid. (F-I) Thoracale blootstelling met behulp van chirurgische voorbereidingshaken. (J) Definitieve opstelling tijdens ventilatie. (K-L) het proces van handmatige ventilatie. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
6. Euthanasie
- Bereik euthanasie door abrupte scherpe cardiectomie met een schaar bij het diep verdoofde dier.
Resultaten
Endotracheale intubatie via tracheotomie en daaropvolgende thoracotomie werd uitgevoerd bij 10 mannelijke ratten (gemiddeld gewicht 405 ± 30 g) voor toepassingen die niet overleefden. De procedure werd uitgevoerd door een tweedejaars chirurgisch arts. Het slagingspercentage gedefinieerd door overleving gedurende 20 minuten intubatie en beademing was 100%. De gemiddelde duur van de voorbereidings- en intubatieprocedure vanaf de incisie in de huid tot de fixatie van de intubatiebuis was 6:55 ± 0:53 minuten (Tabel 1).
| Aantal gebruikte dieren | 10 |
| Lichaamsgewicht (gemiddelde en standaarddeviatie) | 405 ± 30 g |
| Slagingspercentage van intubatie | 100% |
| Duur van de procedure (gemiddelde en standaardafwijking) | 6:55 ± 0:53 min |
| Gemiddelde zuurstofverzadiging | 96% |
| Minimale zuurstofverzadiging | 92% |
Tabel 1: Representatieve resultaten. Representatieve resultaten van het protocol bij 10 dieren.
De verzadiging werd gecontroleerd door middel van een zelfklevende pulsoximetriesonde voor eenmalig gebruik op het achterbeen en kwam nooit onder de 92%. Spontane ventilatie werd ingeperkt tot de incisie van het middenrif. Alle ratten overleefden de 20 minuten die nodig waren voor de experimentele metingen tot de opzettelijke euthanasie door abrupte scherpe cardiectomie (Figuur 5).
Figuur 5: Perifere zuurstofverzadiging. Perifere zuurstofverzadiging gemeten over de gehele duur van deze procedure. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Discussie
Alleen al in de VS worden ongeveer 110 miljoen ratten en muizen per jaar gebruikt in dierproeven24. Hoewel er geen betrouwbare statistieken kunnen worden gevonden, zal een relevant percentage hiervan ondersteunde beademing krijgen, vooral op het gebied van long- en hartonderzoek en anesthesiologie. De meeste van deze dieren krijgen niet-invasieve endoorotracheale intubatie, wat een aantal uitdagingen met zich meebrengt. Deze omvatten langzamere leercurves, hogere percentages van intubatiefalen, grotere aantallen reïntubaties en bijbehorende ademhalingscomplicaties, evenals ademhalingslekken25. Niet-invasieve intubatie zal daarom over het algemeen meer ervaren onderzoekspersoneel vergen, meer geavanceerde technologie zoals glasvezel, capnometrie en mechanische ventilatoren, en meer financiële en materialistische middelen26. Het hele aspect van intubatie is daarom een betekenisvolle confounder die relevant is voor latere statistische analyse en interindividuele heterogeniteit van de resultaten. Niet-invasieve endoorotracheale intubatie is echter vaak de enige haalbare optie in longitudinale experimentontwerpen.
Alternatieven zijn tracheostomie voor vereiste langdurige toegang tot tracheale toegang in longitudinale experimenten of chirurgische tracheotomie voor "eenmalig gebruik" in niet-overlevingsexperimenten. Hoewel er protocollen beschikbaar zijn over de microchirurgische techniek voor tracheostomie bij ratten27, zijn er momenteel geen protocollen voor endotracheale intubatie via tracheotomie in niet-overlevende rattenmodellen.
De hierin beschreven gestandaardiseerde procedure voor endotracheale intubatie via tracheotomie en daaropvolgende thoracotomie bij ratten is daarom een waardevolle methode voor onderzoekers die zich bezighouden met niet-overlevingsstudies. Deze procedure vereist geen deskundig personeel of uitgebreide training. Het heeft een slagingspercentage van intubatie dat veel hoger is dan endoorotracheale intubatie en maakt veel meer gecontroleerde procedurele stappen mogelijk.
Beperkingen van de gepresenteerde technieken omvatten voornamelijk de invasiviteit van de procedure en, achtereenvolgend, de exclusieve compatibiliteit met niet-overlevingsexperimenten. Vanwege de grote defecten in huid en zacht weefsel, evenals de incisie-tracheale fistels, zijn extubatie en herstel van deze procedure niet haalbaar of aanbevolen, vooral in combinatie met thoracotomie.
Bij het oplossen van veelvoorkomende uitdagingen die zich tijdens de procedure voordoen, willen we de aandacht vestigen op de volgende punten en aanbevelingen: men moet apparatuur en medicatie zo uitgebreid mogelijk voorbereiden. De onderzoeker moet de hemostatische controle nauwgezet uitvoeren door middel van een fijne voorbereiding en het gebruik van niet-traumatische wattenstaafjes. De onderzoeker moet de luchtpijp over een lengte van ten minste 0,5 cm voorbereiden om voldoende mobiliteit mogelijk te maken en de siliconen vaatlus gebruiken om de luchtpijp na incisie niet te verliezen, aangezien dit kan leiden tot aspiratie en verstikking wanneer de luchtpijp verloren gaat in de weefseldiepte als gevolg van achtergrondverschijnsel. Snijd de luchtpijp slechts gedeeltelijk in met één duidelijke beweging van de schaar. Idealiter zou men een omtrek van 180° moeten insnijden. Daaronder kan dit ertoe leiden dat er geen intuber kan worden gemaakt. Daarboven kan dit leiden tot het breken van de luchtpijp met terugtrekking van beide uiteinden in de diepte van het weefsel en daaropvolgende verstikking. Bij het binden van de polyfilamenthechting om de intubatiebuis vast te zetten, moet een glijdende knoop worden gebruikt om ervoor te zorgen dat de buis voldoende strak zit om luchtlekkage of onbedoelde ontwrichting van de buis te voorkomen en tegelijkertijd onbedoelde sluiting van de buis te voorkomen. Door de Seldinger-draad tijdens het hechten op zijn plaats te laten, kunt onbedoelde sluiting worden voorkomen. Bij het uitvoeren van handmatige beademing met behulp van de beademingszak, moet men barotrauma van de long door hoge teugvolumes strikt vermijden. In plaats daarvan zou men moeten streven naar longbeschermende, hoogfrequente en laagademige beademing, vooral zolang er geen thoracotomie is uitgevoerd en de longvolumes niet visueel kunnen worden beoordeeld.
Door een gedetailleerde en reproduceerbare methodologie aan te bieden, vergemakkelijkt dit protocol de standaardisatie van experimentele procedures, waardoor de betrouwbaarheid van de gegevens en de vergelijkbaarheid tussen onderzoeken worden verbeterd. Als gevolg hiervan draagt deze methode bij aan de verfijning van wetenschappelijke technieken in preklinisch onderzoek, wat uiteindelijk de translationele relevantie van bevindingen op het gebied van fysiologie, farmacologie, chirurgische en biomedische wetenschappen vergroot.
Openbaarmakingen
De auteurs hebben niets te onthullen.
Dankbetuigingen
De auteurs zijn dankbaar voor de gegevensopslagservice die SDS@hd ondersteund door het Ministerie van Wetenschap, Onderzoek en Kunsten Baden-Württemberg (MWK) en de Duitse Onderzoeksstichting (DFG) via de subsidie INST 35/1314-1 FUGG en INST 35/1503-1 FUGG. Bovendien zijn de auteurs dankbaar voor de steun van het NCT (National Center for Tumor Diseases in Heidelberg, Duitsland) via het gestructureerde postdoc-programma en het Surgical Oncology-programma. We erkennen ook de steun via staatsfondsen die zijn goedgekeurd door het deelstaatparlement van Baden-Württemberg voor de Innovation Campus Health + Life Science Alliance Heidelberg Mannheim van het gestructureerde postdoc-programma voor Alexander Studier-Fischer: Artificial Intelligence in Health (AIH) - Een samenwerking van DKFZ, EMBL, Universiteit van Heidelberg, Universitair Ziekenhuis Heidelberg, Universitair Ziekenhuis Mannheim, Centraal Instituut voor Geestelijke Gezondheid, en het Max Planck Instituut voor Medisch Onderzoek. Verder erkennen we de steun via het DKFZ Hector Cancer Institute in het Universitair Medisch Centrum Mannheim. Voor de publicatiekosten erkennen we financiële steun van Deutsche Forschungsgemeinschaft binnen het financieringsprogramma "Open Access Publikationskoste" en van de Universiteit van Heidelberg.
Materialen
| Naam | Bedrijf | Catalogusnummer | Opmerkingen |
|---|---|---|---|
| Ambu Spur II Single-Use ventilatiezak voor neonaten | Meier Medizintechnik | 335 102 000 | Ventilatiezakken |
| BD Microlance 3 canule 20 G | BD (Beckton, Dickinson) | 301300 | Canule |
| BD Microlance Discardit II 20 mL Spuit | BD (Beckton, Dickinson) | 300296 | Kunststof spuit |
| Fixatiestang | Legefirm | 500343896 | Stevige vorken gebruikt als Y-vormige metalen fixatiestang |
| Thermoslinkbuis | Sekesoer | RSG-400 | Thermoslinkbuis |
| Intraveneuze katheter | BD (Beckton, Dickinson) | 393230 | BD Venflon Pro Safety intraveneuze katheter 14 G; ingekort met schaar; alternatief kunnen ook 16 G of 18 G worden gebruikt |
| Kunststof perfusorslang | M. Schilling GmbH | S702NC150 | Verbindingsslang COEX 150 cm |
| Polyfilament hechtdraad | COVIDIEN | CL331 | Polyfilament chirurgische hechtdraad aanbevolen met een sterkte van 1 tot 2; naald kan worden verwijderd |
| Royal Gardineer verwarmingskussen Maat S, 20 Watt | Royal Gardineer | IP67 | Verwarmingskussen |
| Seldinger gidsdraad | VYGON | 115.798 | Metalen gidsdraad uit het arteriële leadercath-set |
| Siliconen vaatlus | SERAG WIESSNER | SL26 | Siliconen vaatlus 2,5 mm rood |
| Spraque Dawley-ratten | Janvier Labs | Mannelijke ratten met een gewicht van 400 gram | |
| Stalen plaat | Maschinenbau Feld GmbH | C010206 | Gegalvaniseerde plaat, 40 x 50 cm, dikte 4,0 mm |
Referenties
- Czigany, Z., et al. Limb remote ischemic conditioning of the recipient protects the liver in a rat model of arterialized orthotopic liver transplantation. PLoS One. 13 (4), e0195507(2018).
- Czigány, Z., et al. Improving research practice in rat orthotopic and partial orthotopic liver transplantation: A review, recommendation, and publication guide. Eur Surg Res. 55 (1-2), 119-138 (2015).
- Nagai, K., Yagi, S., Uemoto, S., Tolba, R. H. Surgical procedures for a rat model of partial orthotopic liver transplantation with hepatic arterial reconstruction. J Vis Exp. 73, e4376(2013).
- Jahshan, F., et al. A novel rat model for assessment of laryngotracheal injury following transoral intubation. Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 113, 4-10 (2018).
- Lamoureux, L., Radhakrishnan, J., Gazmuri, R. J. A rat model of ventricular fibrillation and resuscitation by conventional closed-chest technique. J Vis Exp. 98, 52413(2015).
- Wang, Z., et al. Autoinducer-2 of streptococcus mitis as a target molecule to inhibit pathogenic multi-species biofilm formation in vitro and in an endotracheal intubation rat model. Front Microbiol. 7, 88(2016).
- Jahshan, F., et al. A novel rat model for tracheal mucosal damage assessment of following long term intubation. Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 128, 109738(2020).
- Rivard, A. L., et al. Rat intubation and ventilation for surgical research. J Invest Surg. 19 (4), 267-274 (2006).
- Na, N., Zhao, D. Q., Huang, Z. Y., Hong, L. Q. An improved method for rat intubation and thymectomy. Chin Med J (Engl). 124 (17), 2723-2727 (2011).
- Cicero, L., Fazzotta, S., Palumbo, V. D., Cassata, G., Lo Monte, A. I. Anesthesia protocols in laboratory animals used for scientific purposes. Acta Biomed. 89 (3), 337-342 (2018).
- Fuentes, J. M., et al. Videoendoscopic endotracheal intubation in the rat: A comprehensive rodent model of laparoscopic surgery. J Surg Res. 122 (2), 240-248 (2004).
- Bryda, E. C. The mighty mouse: The impact of rodents on advances in biomedical research. Mo Med. 110 (3), 207-211 (2013).
- Lazopoulos, A., et al. Open thoracotomy for pneumothorax. J Thorac Dis. 7 (S1), S50-S55 (2015).
- Rendell, V. R., Giamberardino, C., Li, J., Markert, M. L., Brennan, T. V. Complete thymectomy in adult rats with non-invasive endotracheal intubation. J Vis Exp. 94, 52152(2014).
- Thomas, J. L., et al. Endotracheal intubation in mice via direct laryngoscopy using an otoscope. J Vis Exp. 86, 50269(2014).
- Nelson, A. M., Nolan, K. E., Davis, I. C. Repeated orotracheal intubation in mice. J Vis Exp. 157, 60844(2020).
- Das, S., Macdonald, K., Chang, H. Y., Mitzner, W. A simple method of mouse lung intubation. J Vis Exp. 73, e50318(2013).
- Massick, D. D., et al. Quantification of the learning curve for percutaneous dilatational tracheotomy. Laryngoscope. 110 (2 Pt 1), 222-228 (2000).
- Giugliano, G., et al. Learning curve for translaryngeal tracheotomy in head and neck surgery. Laryngoscope. 111 (4 Pt 1), 628-633 (2001).
- Mort, T. C. Emergency tracheal intubation: Complications associated with repeated laryngoscopic attempts. Anesth Analg. 99 (2), 607-613 (2004).
- Hasegawa, K., et al. Association between repeated intubation attempts and adverse events in emergency departments: An analysis of a multicenter prospective observational study. Ann Emerg Med. 60 (6), 749-754.e742 (2012).
- Titu, I. M., Delaca, G. B., Teterea, F., Ciulic, S. A., Palade, E. Percutaneous tracheostomy using the Seldinger technique. Multimed Man Cardiothorac Surg. 2023, (2023).
- Garry, B. P., Bivens, H. E. The Seldinger technique. J Cardiothorac Anesth. 2 (3), 403(1988).
- Carbone, L. Estimating mouse and rat use in American laboratories by extrapolation from animal welfare act-regulated species. Sci Rep. 11 (1), 493(2021).
- Su, C. S., et al. Efficacious and safe orotracheal intubation for laboratory mice using slim torqueable guidewire-based technique: Comparisons between a modified and a conventional method. BMC Anesthesiol. 16, 5(2016).
- Clary, E. M., O'halloran, E. K., De La Fuente, S. G., Eubanks, S. Videoendoscopic endotracheal intubation of the rat. Lab Anim. 38 (2), 158-161 (2004).
- Ghali, M. G. Z. Microsurgical technique for tracheostomy in the rat. MethodsX. 5, 61-67 (2018).
Herprints en machtigingen
