Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Onderzoek naar de Longissimus-spier: het ontrafelen van de correlatie met vleeskwaliteit bij Bos indicus en gekruiste stieren

1.5K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/66764

⸱

12 juli 2024

 ,  ,  ,  ,  , 
1School of Veterinary Medicine and Animal Science, São Paulo State University, Botucatu (São Paulo), 2School of Agricultural and Veterinary Sciences, São Paulo State University, Jaboticabal (São Paulo)

In dit artikel

Samenvatting

We onderzochten skeletspierweefsel in Bos indicus en gekruiste stieren om verschillen in vleeskwaliteitskenmerken te verklaren. De Warner-Bratzler-afschuifkracht (WBSF) bleek te variëren van 4,7 kg tot 4,2 kg. Myosine isovormen met zware ketens onthulden verschillen tussen dieren, en de myofibrilfragmentatie-index gaf meer inzicht in variaties in gevoeligheid (WBSF).

Samenvatting

In deze studie werd spierweefsel bij Bos indicus en gekruiste stieren onderzocht om verschillen in vleeskwaliteitskenmerken te verklaren. Karkaseigenschappen, vleeskwaliteitsparameters en biochemisch en moleculair onderzoek van myofibrillaire eiwitten worden beschreven. Methoden voor het evalueren van pH, intramusculair vet (IMF), vleeskleur (L*, a*, b*), waterverliezen, malsheid en moleculair-biologische assays zijn geschetst. Specifieke procedures voor kalibratie, monstervoorbereiding en gegevensanalyse voor elke methode worden beschreven. Deze omvatten technieken zoals infraroodspectroscopie voor IMF-inhoud, objectieve tederheidsbeoordeling en elektroforetische scheiding van MyHC-isovormen.

Kleurparameters werden benadrukt als mogelijke hulpmiddelen voor het voorspellen van de malsheid van rundvlees, een cruciaal kwaliteitskenmerk dat van invloed is op consumentenbeslissingen. De studie maakte gebruik van de Warner-Bratzler-afschuifkrachtmethode (WBSF), waarbij waarden van 4,68 en 4,23 kg werden onthuld voor respectievelijk Nellore en Angus-Nellore (P < 0,01). Totale kookverliezen en biochemische analyses, waaronder de myofibrilfragmentatie-index (MFI), gaven inzicht in malsheidsvariaties. Spiervezeltypes, met name myosine heavy chain (MyHC) isovormen, werden onderzocht, met een opmerkelijke afwezigheid van MyHC-IIb-isovorm bij de bestudeerde Zebu-dieren. De relatie tussen MyHC-I en de malsheid van vlees onthulde uiteenlopende bevindingen in de literatuur, wat de complexiteit van deze associatie benadrukte. Over het algemeen biedt de studie uitgebreide inzichten in de factoren die van invloed zijn op de vleeskwaliteit van Bos indicus en gekruiste (Bos taurus × Bos indicus) stieren, wat waardevolle informatie biedt voor de rundvleesindustrie.

Inleiding

Brazilië heeft de grootste commerciële veestapel ter wereld, telt ongeveer 220 miljoen dieren en is de op een na grootste vleesproducent, met een opbrengst van meer dan 9 miljoen ton karkasequivalent per jaar1. De vleesveeproductiesector levert een aanzienlijke bijdrage aan het nationale landbouwsysteem, met een totale jaarlijkse omzet van meer dan R$ 55 miljard. Sinds 2004 is Brazilië een belangrijke speler in de wereldwijde vleeshandel en exporteert het naar meer dan 180 landen, wat neerkomt op ~50% van de wereldhandelin vlees 2.

De malsheid van vlees is het belangrijkste kwaliteitskenmerk dat van invloed is op de tevredenheid van de consument en de vleesconsumptie3. Door biochemische en objectieve methoden te gebruiken om de malsheid van vlees te meten, willen onderzoekers waardevolle inzichten verschaffen in factoren zoals diergenetica, verwerkingstechnieken en opslagomstandigheden, waardoor uiteindelijk de kwaliteit en consistentie van vleesproducten voor consumenten wordt verbeterd. Dergelijke informatie is nuttig omdat de malsheid van vlees steeds belangrijker is geworden in de besluitvorming van de consument tijdens aankopen. Bovendien biedt de beoordeling van de malsheid van vlees waardevolle informatie voor kwaliteitscontrole in de vleesproductie- en -verwerkende industrie. Door de malsheid consequent te monitoren, kunnen producenten ervoor zorgen dat vleesproducten voldoen aan de gewenste normen en specificaties. In deze context omarmen Braziliaanse vleesveehouders geleidelijk intensieve feedlot-systemen met gekruiste dieren om de kapitaalomzet te verbeteren. Dit systeem is goed voor ongeveer 10% ton karkas dat jaarlijks in Brazilië wordt geproduceerd 4,5.

De toenemende vraag van consumenten naar een betere vleeskwaliteit heeft vleesveehouders ertoe aangezet om te kruisen met Europese rassen, voornamelijk Aberdeen Angus6. Deze strategie is gericht op het produceren van F1 Angus-Nellore-hybriden, die bekend staan om hun superieure prestaties, gewenste karkaseigenschappen en verbeterde vleeskwaliteit in vergelijking met pure zeboe-dieren 7,8. In de tropische regio's van Brazilië is het gebruikelijk om niet-gecastreerde dieren (stieren) van gevorderde rijpheid te gebruiken bij het afmesten van boerderijen, waardoor de vleeskwaliteitskenmerken zoals kleur, marmering en malsheid in gevaar kunnen komen. Uit een onderzoek blijkt met name dat 95% van de dieren die in Braziliaanse feedlots zijn afgemaakt, mannetjes zijn, waarbij 73% Nellore is, gevolgd door 22% gekruiste dieren en 5% andere genotypen 9,10.

Inzicht in de biochemische mechanismen die ten grondslag liggen aan de malsheid van vlees is cruciaal voor het verbeteren van de vleeskwaliteit. Een belangrijk aspect is postmortale proteolyse, die de structurele integriteit van spiervezels beïnvloedt11. De myofibrilfragmentatie-index (MFI) is een veelgebruikte biochemische test die de mate van myofibrildegradatie kwantificeert en inzicht geeft in de malsheid van vlees12. De MFI-methode omvat het meten van de fragmentatie van myofibrillaire eiwitten, wat direct verband houdt met de malsheid van het vlees. Deze test vormt een aanvulling op de traditionele vleeskwaliteitsbeoordelingen en biedt een beter begrip van de biochemische processen die bijdragen aan variaties in de malsheid van het vlees.

In deze context onderzocht de huidige studie de skeletspieren van Bos indicus versus gekruiste (Bos taurus × Bos indicus) stieren die in feedlot waren afgemaakt, met als doel verschillen in vleeskwaliteitskenmerken te verklaren.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

Alle procedures met dieren voldeden aan de ethische onderzoeksnormen die zijn opgesteld door de Commissie voor ethiek van diergebruik (CEUA) van de "Universidade Estadual Paulista Júlio de Mesquita Filho" - UNESP Botucatu Campus, onder protocol 0171/2018.

1. Proefdieren

  1. Maak 30 Nellore-stieren (Bos indicus) en 30 F1 Angus-Nillore-stieren (Bos taurus × Bos indicus) af, in de leeftijd van 20-24 maanden, in een weide. Huisvest beide groepen dieren in collectieve hokken van 5 m x 6 m met een betonnen vloer en uitgerust met schelpvormige waterbakken, die plaats bieden aan maximaal vijf dieren per hok. Zorg ervoor dat alle dieren tot dezelfde managementgroep behoren (geboren en getogen op dezelfde boerderij) en aan dezelfde voederperiode worden onderworpen.
    OPMERKING: In deze studie hadden de Nellore-stieren een gemiddeld aanvangslichaamsgewicht van 370,7 kg, terwijl de F1 Angus-Nellore-stieren een gemiddeld aanvangslichaamsgewicht hadden van 380,8 ± 17 kg.
  2. Feedlot-dieet
    1. Zorg ervoor dat het afwerkingsdieet bestaat uit 11,3% ruwvoer (Tifton hooi en suikerrietbagasse) en 88,7% krachtvoer (gemalen droge maïskorrel, sojameel, maïs natte distilleerdersgranen, droog maïsglutenvoer en minerale kern). Voer de dieren gedurende 120 dagen en geef de dië ad libitum twee keer per dag (om 10.00 uur en 16.00 uur).
  3. Slachten
    1. Registreer het uiteindelijke lichaamsgewicht (BWf) aan het einde van de experimentele periode. Verwerk alle dieren in een nabijgelegen slachthuis en volg de standaard inspectieprocedures. Zorg ervoor dat de dieren vóór het slachten minimaal 16 uur vasten, waarbij ze zich onthouden van zowel voer als water.
      OPMERKING: F1 Angus-Nellore-stieren vertoonden een uiteindelijk lichaamsgewicht van 615,09 ± 57,53 kg, terwijl Nellore-stieren een gewicht hadden van 545,47 ± 11,45 kg.
  4. Evaluatie van karkaskenmerken
    1. Weeg de runderkarkassen eerst en laat ze vervolgens 48 uur afkoelen bij 2-4 °C. Metingen omvatten heet karkasgewicht (HCW), ribooggebied (REA) en rugvetdikte (BFT) op de12e/13eribinterface , zoals aanbevolen13. Bepaal de REA met behulp van de rastermethode met een klein raster (18 cm x 13 cm) en meet de BFT in millimeters met behulp van een schuifmaat.
      1. Meet de REA in elk karkas met behulp van een netvormig raster (hetzelfde als gebruikt in het USDA Yield Grade-classificatiesysteem), verdeeld in vierkanten van 1 cm² met één stip in het midden. Voeg alle vierkanten binnen de omtrek van de ribeye en die langs de contouren van de tracering die door de middelste stip gaan, bij elkaar op.
      2. Meet de BFT op een specifieke positie op de beoordelingsplaats ergens tussen de12e/13eribben . Om deze positie te bepalen, meet je de lengte van de rib eye; Bepaal vervolgens, beginnend bij de mediale grens "A", een punt driekwart van de weg langs de rib eye en halverwege "B". Neem een schuifmaat door dit punt en haaks op de gespecificeerde rib op het grensvlak tussen het onderhuidse vet en het intermusculair vet. Meet het onderhuidse vet door de schuifmaat in een rechte hoek ten opzichte van de lijn van het onderhuidse vet te plaatsen, vanaf het interfacepunt (aanvullende figuur S1).
  5. Monsterneming
    1. Bemonster Longissimus thoracis (LT) van het linker halve karkas (deel van ± 12,0 cm vlees), tussen de 11een 13erib in de schedelrichting. Verdeel in het laboratorium de vleesmonsters in steaks van 2,54 cm.
  6. Veroudering
    1. Beoordeel de kwaliteitskenmerken van het vlees na een natte rijpingsperiode van 14 dagen bij een temperatuur van 0-2 °C in een incubator voor biologisch zuurstofverbruik (BZV). Gebruik steaks met een dikte van 2,54 cm voor de analyse van vleeskleur, pH, intramusculair vet, zuiveringsverlies, watervasthoudend vermogen, objectieve malsheid en kookverliezen. Verpak de steaks apart in plastic zakken voor een hoog vacuüm en een lage zuurstofdoorlaatbaarheid en bewaar ze na het bereiken van de rijpingstijd ingevroren bij -20 °C tot het moment van analyse. Ontdooi de rundvleesmonsters gedurende 24 uur bij 4 °C en stel ze gedurende 30 minuten bloot aan zuurstof bij 4 °C (bloeitijd).

2. De pH van het vlees

  1. Meet de pH van het vlees met behulp van een digitale pH-meter die is uitgerust met een penetratiesonde. Kalibreer het met pH 4.0 en 7.0 buffers bij een kamertemperatuur van 25 °C. Meet de pH van het vlees op drie locaties van het LT-spiermonster. Registreer handmatig de gegevensmetingen en exporteer vervolgens het gegevensblad; bereken het gemiddelde van de drie metingen voor de pH van vlees.

3. Intramusculair vet

OPMERKING: Het intramusculair vetgehalte (IMF) werd bepaald met behulp van nabij-infraroodspectroscopie (NIR)14 en met gravimetrische methode15.

  1. Verwijder het onderhuidse vet van de LT-spier met behulp van een scalpel. Maal en homogeniseer de steak vervolgens gedurende 5 minuten met een mixer, waarbij u ongeveer 180 g van het monster opneemt. Plaats het monster in een beker, plaats het in de monsterkamer en voer subscanning uit van verschillende zones van het testmonster door de monsterbeker te draaien; Voeg de zones samen voor het eindresultaat.
  2. Voer drie metingen uit voor elk monster. Plaats de monsters na homogenisatie op de plaat voor verdere aflezing. Stel het apparaat in op NIR-transmissie, met een bewegende roostermonochromator die het gebied van 850 nm tot 1050 nm scant.
  3. Exporteer het gegevensblad en bereken vervolgens de gemiddelde drie metingen voor het IMF. Druk de resultaten uit als een percentage met behulp van de formule: [(IMF-gemiddelde ÷ steekproefgewicht) × 100].
  4. Combineer homogeniseer de LT-spiermonsters (3,0 g) met een chloroform/methanol-methanol/chloroform-oplossing (2:1) gedurende 2 minuten en onderwerp ze aan centrifugatie (700 × g; 10 min; 20 °C) om de hydrofiele (bovenste), vaste (midden) en hydrofobe (onderste) fasen te scheiden.
  5. Filtreer de na het centrifugeren verkregen hydrofobe fase met behulp van een filtreerpapier op een trechter met lichte zuigkracht. Breng het filtraat (onderste fase; lipiden in chloroform) over in een kolf met het label lipidefase en breng ten minste 5 mm filtraat over in een vooraf gewogen bekerkolf na het enkele minuten te hebben laten staan. Noteer vervolgens het volume van de chloroformlaag (minimaal 150 ml) en zuig de alcoholische laag op.
    1. Homogeniseer 100 g aliquots van het monster van vers of bevroren weefsel gedurende 2 minuten met een mengsel van 100 ml chloroform en 200 ml methanol. Voeg 100 ml chloroform toe aan het mengsel, meng gedurende 30 s, voeg 100 ml gedestilleerd water toe en meng nog eens 30 s.
    2. Filtreer het homogenaat door filtreerpapier op een trechter met lichte zuigkracht. Oefen druk uit met de bodem van een bekerglas wanneer het residu droog is geworden om een maximale terugwinning van het oplosmiddel te garanderen.
    3. Breng het filtraat over in een maatcilinder van 500 ml en laat het een paar minuten staan om het te scheiden en te klaren. Noteer het volume van de chloroformlaag (minimaal 150 ml) en zuig de alcohollaag op.
    4. Zorg ervoor dat u de toplaag volledig verwijdert; De chloroformlaag bevat het gezuiverde lipide. Voor kwantitatieve lipide-extractie herstelt u het lipide dat in het weefselresidu is opgesloten door het residu en het filterpapier te mengen met 100 ml chloroform.
    5. Filtreer het mengsel door de trechter en spoel de blenderkan en het residu af met in totaal 50 ml chloroform. Meng dit filtraat met het originele filtraat voordat u de alcohollaag verwijdert.
      OPMERKING: Filtratie is doorgaans snel; Oefen met de bodem van een bekerglas druk uit op het droogresidu om een maximale recuperatie van het oplosmiddel te garanderen.
  6. Droog de monsters in een oven, koel ze minstens 24 uur af in een exsiccator en plaats ze in een oven op 110 °C tot ze volledig zijn verdampt, koel ze een nacht verder af in een exsiccator en weeg ze ten slotte opnieuw.
  7. Bepaal het IMF-gehalte door het verschil tussen het begin- en eindgewicht van de beker te berekenen.

4. Kleur van het vlees

  1. Kalibreer het apparaat met behulp van een zwarte en een witte standaardplaat. Plaats de witte kalibratieplaat in de buurt van het midden van de plaat. Gebruik bij het uitvoeren van een kalibratie het gebied nabij het midden van de plaat. De kalibratie is voltooid nadat de lamp drie keer knippert.
  2. Meet na 30 minuten bij 4 °C (bloeitijd). Verkrijg kleurmetingen van drie verschillende locaties op het LT-spiermonster, waarbij bindweefsel en vet zorgvuldig worden vermeden.
  3. Bereken bij kamertemperatuur (20 °C) een gemiddelde van deze metingen, zoals aanbevolen16.

5. Waterverliezen

  1. Beoordeel het zuiveringsverlies (PL) voor alle monsters. Bepaal de PL van runderlendesecties door het verschil te meten tussen het begingewicht voor het invriezen en het eindgewicht na het invriezen/ontdooien.
    OPMERKING: Evalueer niet de PL van nooit ingevroren runderlende controlerunderen.
  2. Meet het watervasthoudend vermogen (WHC) aan de hand van het gewichtsverschil van een vleesmonster (ongeveer 1,0 g) voor en na blootstelling aan een druk van 10 kg gedurende 5 min17.

6. Objectieve malsheid van het vlees

OPMERKING: De meting van de Warner-Bratzler-schuifkracht (WBSF) werd uitgevoerd zoals beschreven18,19.

  1. Plaats de monsters op een rooster dat aan een vuurvast glas is bevestigd en kook ze in een industriële elektrische oven tot ze een eindtemperatuur van 71 °C hebben bereikt. Koel, weeg en koel de monsters na het koken gedurende 24 uur bij 4 °C.
  2. Bepaal de kookverliezen (CL) met behulp van de formule figure-protocol-1.
    1. Bepaal het druppelverlies door het vuurvaste materiaal voor en na het koken van het monster te wegen. Leg hiervoor de monsters op een rooster boven een vuurvast glas, zodat vleessappen en vet tijdens het koken kunnen worden afgevoerd.
    2. Bepaal het verdampingsverlies door alleen het monster voor en na het koken te wegen.
    3. Noteer het gewicht van de ruwe en gekookte koffie en bereken het percentage DL als het gewicht van de druppel na het koken gedeeld door het gewicht van het ontdooide vleesmonster.
    4. Bereken het verdampingsverliespercentage (EVP) met behulp van de formule [100 - (gewicht na koken) ÷ ruw gewicht × 100].
  3. Voor de bepaling van WBSF worden acht aders met een diameter van 1,27 cm doorsnede met behulp van een textuuranalysator, uitgerust met een Warner-Bratzler Shear Force-mes van 3,07 mm en een V-vormige (hoek van 60°) snijkant.
    1. Rapporteer de resultaten als het gemiddelde van zes waarden per monster, in kilogram (kg), na uitsluiting van de lage en hoge extremen19.

7. Biochemische test

OPMERKING: Postmortale proteolyse werd beoordeeld door de myofibrilfragmentatie-index (MFI) te schatten, volgens de oorspronkelijke procedure beschreven door Culler et al.20 en aangepast voor Bos indicus-runderen door Borges et al.21.

  1. Homogeniseer fragmenten van ongeveer 3 g LT-monsters (vetgestript spierweefsel en bindweefsel) in een bufferoplossing met 100 mM kaliumchloride, 20 mM kaliumfosfaat bij pH 7, 1 mM ethyleendiaminetetra-azijnzuur (EDTA), 1 mM magnesiumchloride en 1 mM natriumazide bij 2 °C, gevolgd door centrifugatie (1.000 × g gedurende 15 minuten bij 4 °C).
    1. Resuspendeer het bezinksel in 10 volumes (v/w) isolatiemedium met behulp van een roerstaaf, belijd het vervolgens opnieuw bij 1.000 × g gedurende 15 minuten en decanteer het supernatant.
    2. Resuspendeer het sediment in 2,5 volumes (v/w) isolatiemedium en scheid het bindweefsel en het puin door het door een polyethyleenzeef (18 mesh) te halen. Gebruik 2,5 extra volumes (v/w) om de myofibrillen door de zeef te laten gaan.
    3. Bepaal de eiwitconcentratie van de suspensie van myofibrillen met behulp van de biureetmethode van Gornall et al.22. Verdun een aliquot van de myofiblensuspensie met isolatiemedium tot een eiwitconcentratie van 0,5 ± 0,05 mg/ml.
    4. Meet direct de absorptie van deze suspensie bij 540 nm. Bepaal MFI met behulp van spectrofotometrie bij 540 nm. Vermenigvuldig de extinctie met 200 om de MFI voor elk monster te verkrijgen (en rapporteer deze als een index zonder meeteenheid).

8. Moleculair-biologische test

OPMERKING: Voor de analyse van myosine heavy chain (MyHC), het meest voorkomende eiwit in de skeletspieren van runderen, werden LT-monsters van beide groepen verwerkt volgens het protocol dat in de literatuur wordt beschreven23,24.

  1. Bereik elektroforetische scheiding met behulp van een gradiënt SDS-PAGE-gel (7-10%) en een 4% stapelgel. Breng 25 μL van elk monster aan op de gel en laat het gedurende 1 uur op 70 V, 28 mA en 4 °C draaien, gevolgd door een run op 180 V, 12 mA en 4 °C gedurende 29 uur.
  2. Gebruik twee verschillende buffers in de runs: de bovenste gelbuffer bestaande uit glycine, tris(hydroxymethyl)aminomethaanbase, natriumdodecylsulfaat (SDS) en gedestilleerd water, terwijl de onderste gelbuffer identiek is aan de bovenste buffer, met toevoeging van mercaptoethanol.
  3. Kleur de gels met Coomassie Blue en maak foto's met behulp van de juiste software.
  4. Identificeer MyHC-isovormen (MyHC-I, MyHC-IIa, MyHC-IIx/d) op basis van hun molecuulgewicht (respectievelijk 223.900, 224.243 en 223.875 kDa). Voer een semi-kwantitatieve analyse uit door densitometrie van de banden die overeenkomen met elke isovorm, met behulp van geschikte software.
  5. Gebruik de Rat soleus en de Extensor digitorum longus (EDL)-spier als positieve controles om MyHC-isovormen te classificeren, waarbij u in elke gel één putje reserveert voor het laden van 40 μl van het verwerkte monster.
  6. Voer voor alle gegevens de variantieanalyse (ANOVA) uit met behulp van de F-test, met behulp van het volgende model:
    Yij = μ + ti + Ɛij
    waarbij Yij de waargenomen waarde is van de experimentele eenheid die verwijst naar behandeling i in herhaling j; μ is het algemene effect van het gemiddelde; t is het behandelingseffect (genetische groep) en ε is de experimentele fout.
  7. Vergelijk de gemiddelden met behulp van de t-toets van de student en neem de P-waarde < 0,05 aan als de kritische kans.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Tabel 1 toont de karkaskenmerken van de twee genetische groepen die in dit onderzoek zijn onderzocht. Er werden met name verschillen geïdentificeerd (P < 0,01) in HCW, REA en BFT, waarbij gekruiste dieren grotere waarden vertoonden, wat een heterosis-effect suggereert.

...
Variabele¹Kanton NelloreF1 Angus x NelloreSEMP-waarde

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Tijdens de evaluatie van het karkas is het van cruciaal belang om de groei- en kwaliteitskenmerken na een afkoelperiode van 48 uur nauwkeurig te meten om consistente en vergelijkbare gegevens te verkrijgen. De twee biologische modellen vertoonden uiteenlopende karkaskenmerken, met name HCW, REA en BFT, die consistent zijn met bevindingen die in andere onderzoeken zijn gerapporteerd. Het gemiddelde HCW van Nellore-stieren komt overeen met de Braziliaanse marktvoorkeuren, die prioriteit geven aan een grotere vleesproductie...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben niets te onthullen. De financiers hadden geen rol bij de opzet van het onderzoek, de gegevensverzameling en -analyse, de beslissing om te publiceren of de voorbereiding van het manuscript.

Dankbetuigingen

Dit onderzoek werd gefinancierd door FAPESP (subsidies 2023/05002-3; 2023/02662-2 en 2024/09871-9), CAPES (financieringscode 001), CNPq (304158/2022-4), en door PROPE (IEPe-RC subsidienummer 149) van de School of Veterinary Medicine and Animal Science, São Paulo State University.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
AcetoneMerk, Darmstadt, GermanyCAS 67-64-1 | 100014oplossingen die worden gebruikt voor de elektroforetische scheidingen
Anti-MYH-1 AntilichaamMerk, Darmstadt, GermanyMABT846Rattensoleus
Anti-Myosine antilichaamAbcam, Massachusetts, Verenigde Statenab37484Myosine zware keten
Anti-Myosine-2 (MYH2) AntilichaamMerk, Darmstadt, GermanyMABT840Extensor digitorum longus (EDL)
Biologische zuurstofbehoefte (BOD) incubatorTECNAL, São Paulo, BrazilTE-371/240LVleesrijping
Chloroform; absoluut analytisch reagensSigma-Aldrich, Missouri, Verenigde Staten67-66-3Intramusculair vet
CIELab systeemKonica Minolta Sensing, Tokio, JapanCR-400 colorimeterVleeskleur
Coomassie BlueSigma-Aldrich, Missouri, Verenigde StatenC.I. 42655)Myosine zware keten
Elektrische ovenVenâncio Aires, Rio Grande do Sul, BrazilVlees malsheid
EthanolMerk, Darmstadt, Germany64-17-5oplossingen die worden gebruikt voor de elektroforetische scheidingen
EthyleendiaminetetraazijnzuurSigma-Aldrich, Missouri, Verenigde Staten60-00-4Post-mortem proteolyse
GlaskolvenSigma-Aldrich, Missouri, Verenigde Statenoplossingen die worden gebruikt voor de elektroforetische scheidingen
GlycineSigma-Aldrich, Missouri, Verenigde StatenG6761Myosine zware keten
Infrarood spectroscopie - FoodScanFoss NIRSystems, Madson, Verenigde StatenFoodScan™ 2Intramusculair vet
MagnesiumchlorideSigma-Aldrich, Missouri, Verenigde Staten 7786-30-3Post-mortem proteolyse
MercaptoethanolSigma-Aldrich, Missouri, Verenigde StatenM6250Myosine zware keten
Methanol, absoluut analytisch reagensSigma-Aldrich, Missouri, Verenigde Staten67-56-1Intramusculair vet
pH meterLineLab, São Paulo, BrazilAKLA 71980Vlees pH
PlusOne 2-D Quant KitGE Healthcare ProductCode 80-6483-56Post-mortem proteolyse
PolypropyleenSigma-Aldrich, Missouri, Verenigde Statenoplossingen die worden gebruikt voor de elektroforetische scheidingen
KaliumchlorideSigma-Aldrich, Missouri, Verenigde Staten7447-40-7Post-mortem proteolyse
KaliumfosfaatSigma-Aldrich, Missouri, Verenigde StatenP0662Post-mortem proteolyse
R softwareWenen, Oostenrijkversie 3.6.2Gegevensanalyse
NatriumazidSigma-Aldrich, Missouri, Verenigde Staten26628-22-8Post-mortem proteolyse
Natriumdodecylsulfaat  (SDS)Sigma-Aldrich, Missouri, Verenigde Staten822050Myosine zware keten
SpectrofotometerPerkin Elmer, Shelton, Verenigde StatenPerkin Elmer
Lambda 25 UV/Vis		Post-mortem proteolyse
Statistisch analysesysteemSAS, Cary, North Carolina, Verenigde Statenversie 9.1,Gegevensanalyse
Textuur AnalyzerAMETEK Brookfield, Massachusetts, Verenigde
Staten		CTXVlees malsheid
Tris(hydroxymethyl)aminomethaanSigma-Aldrich, Missouri, Verenigde Staten77-86-1Myosine zware keten
UltrafreezerIndrel Scientific, Londrina, Paraná, Brazil.INDREL IULT 335 D - LCDStapelopslag
Ultrapuur waterElga PURELAB Ultra Ionic systeemoplossingen die worden gebruikt voor de elektroforetische scheidingen
Ultra-Turrax hoge scheurmixerMarconi – MA102/E, Piracicaba, São Paulo, BrazilPost-mortem proteolyse

Referenties

  1. Nunes, C. L. deC., Pflanzer, S. B., Rezende-de-Souza, J. H., Chizzotti, M. L. Beef production and carcass evaluation in Brazil. Anim Front. 14 (2), 15-20 (2024).
  2. MAPA. Projeções Do Agronegócio: Brasil 2017/18 a 2027/28 Projeções de Longo Prazo / Ministério Da Agricultura, Pecuária e Abastecimento. Biblioteca Nacional de Agricultura. , BINAGRI. Brasília-DF. (2018).
  3. Bernués, A., Ripoll, G., Panea, B. Consumer segmentation based on convenience orientation and attitudes towards quality attributes of lamb meat. Food Qual Prefer. 26, 211-220 (2012).
  4. Andrade, T. S., et al. Perception of consultants, feedlot owners, and packers regarding management and marketing decisions on feedlots: A national survey in Brazil (Part II). Can J Anim Sci. 100 (4), 759-770 (2020).
  5. de Andrade, T. S., et al. Perception of consultants, feedlot owners, and packers regarding the optimal economic slaughter endpoint in feedlots: A national survey in Brazil (Part I). Can J Anim Sci. 100 (4), 745-758 (2020).
  6. Santiago, B., et al. Comparison of dental carcass maturity in non-castrated male F1 Angus-Nellore cattle finished in feedlot. Food Sci Anim Resour. 41 (3), 554-562 (2021).
  7. Miguel, G. Z., et al. Immunocastration improves carcass traits and beef color attributes in Nellore and Nellore×Aberdeen Angus crossbred animals finished in feedlot. Meat Sci. 96 (2), 884-891 (2014).
  8. Costa, N. V., et al. Carcass and meat quality traits in Nellore and F1 Nellore-Araguaia crosses. Genet Mol Res. 14 (2), 5379-5389 (2015).
  9. Pinto, A. C. J., Millen, D. D. Nutritional recommendations and management practices adopted by feedlot cattle nutritionists: the 2016 Brazilian survey. Can J Anim Sci. 99 (2), 392-407 (2019).
  10. Costa Junior, C., et al. Brazilian beef cattle feedlot manure management: A country survey. J Anim Sci. 91 (4), 1811-1818 (2013).
  11. Huang, C., et al. Proteomics discovery of protein biomarkers linked to meat quality traits in post-mortem muscles: Current trends and future prospects: A review. Trends Food Sci Technol. 105, 416-432 (2020).
  12. Muniz, M. M. M., et al. Use of gene expression profile to identify potentially relevant transcripts to myofibrillar fragmentation index trait. Funct Integr Genomics. 20, 609-619 (2020).
  13. Official United States Standards for Grades of Carcass Beef. United States Standards for Grades of Carcass Beef. USDA. , Available from: https://www.ams.usda.gov/sites/default/files/media/CarcassBeefStandard.pdf 1-20 (1997).
  14. Anderson, S. Determination of fat, moisture, and protein in meat and meat products by using the FOSS FoodScan near-infrared spectrophotometer with FOSS artificial neural network calibration model and associated database: Collaborative study. J AOAC Int. 90 (4), 1073-1083 (2007).
  15. Bligh, E. G., Dyer, W. J. A rapid method of total lipid extraction. Can J Biochem Physiol. 37 (8), 911-917 (1959).
  16. Hernández Salueña, B., Sáenz Gamasa, C., Diñeiro Rubial, J. M., Alberdi Odriozola, C. CIELAB color paths during meat shelf life. Meat Sci. 157, 107889(2019).
  17. Rao, M. V., Gault, N. F. S., Kennedy, S. Variations in water-holding capacity due to changes in the fibre diameter, sarcomere length and connective tissue morphology of some beef muscles under acidic conditions below the ultimate pH. Meat Sci. 26 (1), 19-37 (1989).
  18. Wheeler, T. L., Koohmaraie, M., Cundiff, L. V., Dikeman, M. E. Effects of cooking and shearing methodology on variation in Warner-Bratzler shear force values in beef. J Anim Sci. 72 (9), 2325-2330 (1994).
  19. AMSA. Research Guidelines for Cookery, Sensory Evaluation, and Instrumental Tenderness Measurements of Meat. American Meat Science Association Educational Foundation. , (2015).
  20. Culler, R. D., Parrish, F. C., Smith, G. C., Cross, H. R. Relationship of myofibril fragmentation index to certain chemical, physical and sensory characteristics of bovine longissimus muscle. J Food Sci. 43 (4), 1177-1180 (1978).
  21. Borges, B. O., et al. Polymorphisms in candidate genes and their association with carcass traits and meat quality in Nellore cattle. Pesqui Agropecu Bras. 49 (5), 364-371 (2014).
  22. Gornall, A. G., Bardawill, C. J., David, M. M. Determination of serum proteins by means of the biuret reaction. J Biol Chem. 177 (2), 751-766 (1949).
  23. Chardulo, L. A. L., et al. Gene and protein expression of myosin heavy chain in Nellore cattle comparing growth or meat tenderness traits. Anim Biotechnol. 32 (3), 300-309 (2019).
  24. Vechetti-Júnior, I. J., et al. NFAT isoforms regulate muscle fiber type transition without altering can during aerobic training. Int J Sports Med. 34 (10), 861-867 (2013).
  25. Ferraz, J. B. S., de Felício, P. E. Production systems - An example from Brazil. Meat Sci. 84, 238-243 (2010).
  26. Liang, R. R., et al. Tenderness and sensory attributes of the longissimus lumborum muscles with different quality grades from Chinese fattened yellow crossbred steers. Meat Sci. 112, 52-57 (2016).
  27. Viljoen, H. F., De Kock, H. L., Webb, E. C. Consumer acceptability of dark, firm and dry (DFD) and normal pH beef steaks. Meat Sci. 61 (2), 181-185 (2002).
  28. Lopes, L. S. F., et al. Application of the principal component analysis , cluster analysis , and partial least square regression on crossbreed Angus-Nellore bulls feedlot finished. Trop Anim Health Prod. 52 (6), 3655-3664 (2020).
  29. Oddy, V. H., Harper, G. S., Greenwood, P. L., McDonagh, M. B. Nutritional and developmental effects on the intrinsic properties of muscles as they relate to the eating quality of beef. Aust J Exp Agric. 41 (7), 921-942 (2001).
  30. Purchas, R. W., Burnham, D. L., Morris, S. T. Effects of growth potential and growth path on tenderness of beef longissimus muscle from bulls and steers. J Anim Sci. 80 (12), 3211-3221 (2002).
  31. Wulf, D. M., O’Connor, S. F., Tatum, J. D., Smith, G. C. Using objective measures of muscle color to predict beef Longissimus tenderness. J Anim Sci. 75 (3), 684-692 (1997).
  32. Baldassini, W. A., et al. Meat quality traits of Nellore bulls according to different degrees of backfat thickness: A multivariate approach. Anim Prod Sci. 57 (2), 363-370 (2017).
  33. Chardulo, L. A. L., Silveira, A. C., Vianello, F. Analytical aspects for tropical meat quality assessment. Food Quality, Safety and Technology. Lima, G. P. P., Vianello, F. , Springer-Verlag Wien. 53-62 (2013).
  34. Chen, L., Opara, U. L. Texture measurement approaches in fresh and processed foods - A review. Food Research International. 51 (2), 823-835 (2013).
  35. Luo, L., Guo, D., Zhou, G., Chen, K. An investigation on the relationship among marbling features, physiological age and Warner–Bratzler Shear force of steer longissimus dorsi muscle. J Food Sci Technol. 55 (4), 1569-1574 (2018).
  36. Essex, E. Objective measurements for texture in foods. J Texture Stud. 1, 19-37 (1969).
  37. Wheeler, T. L., Koohmaraie, M., Shackelford, S. D. Standardized Warner-Bratzler shear force procedures for meat tenderness measurement. , Available from: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30400510/protocols/shearforceprocedures.pdf (1995).
  38. Severino, M., et al. Proteomics unveils post-mortem changes in beef muscle proteins and provides insight into variations in meat quality traits of crossbred young steers and heifers raised in feedlot. Int J Mol Sci. 23 (20), 12259(2022).
  39. Bertola, N. C., Bevilacqua, A. E., Zaritsky, N. E. Heat treatment effect on texture changes and thermal denaturation of proteins in beef muscle. J Food Process Preserv. 18 (1), 31-46 (1994).
  40. Palka, K., Daun, H. Changes in texture, cooking losses, and myofibrillar structure of bovine M. semitendinosus during heating. Meat Sci. 51 (3), 237-243 (1999).
  41. Pearce, K. L., Rosenvold, K., Andersen, H. J., Hopkins, D. L. Water distribution and mobility in meat during the conversion of muscle to meat and ageing and the impacts on fresh meat quality attributes - A review. Meat Sci. 89 (2), 111-124 (2011).
  42. Muniz, M. M. M., et al. Use of gene expression profile to identify potentially relevant transcripts to myofibrillar fragmentation index trait. Funct Integr Genomics. 20 (4), 609-619 (2020).
  43. Baldassini, W., et al. Meat quality and muscle tissue proteome of crossbred bulls finished under feedlot using wet distiller grains by-product. Foods. 11 (20), 3233(2022).
  44. della Malva, A., et al. In-depth characterization of myofibrillar muscle proteome changes in lambs fed hazelnut skin by-products. Food Biosci. 53, 102836(2023).
  45. Koohmaraie, M., Kent, M. P., Shackelford, S. D., Veiseth, E., Wheeler, T. L. Meat tenderness and muscle growth: Is there any relationship. Meat Sci. 62 (3), 345-352 (2002).
  46. Lefaucheur, L., et al. Muscle characteristics and meat quality traits are affected by divergent selection on residual feed intake in pigs. J Anim Sci. 89 (4), 996-1010 (2011).
  47. Picard, B., et al. Inverse relationships between biomarkers and beef tenderness according to contractile and metabolic properties of the muscle. J Agric Food Chem. 62 (40), 9808-9818 (2014).
  48. Chikuni, K., Muroya, S., Nakajima, I. Myosin heavy chain isoforms expressed in bovine skeletal muscles. Meat Sci. 67 (1), 87-94 (2004).
  49. Picard, B., Cassar-Malek, I. Evidence for expression of IIb myosin heavy chain isoform in some skeletal muscles of Blonde d’Aquitaine bulls. Meat Sci. 82 (1), 30-36 (2009).
  50. Crouse, J. D., Koohmaraie, M., Seideman, S. D. The relationship of muscle fibre size to tenderness of beef. Meat Sci. 30 (4), 295-302 (1991).
  51. Zamora, F., et al. Predicting variability of ageing and toughness in beef M. Longissimus lumborum et thoracis. Meat Sci. 43 (3-4), 321-333 (1996).
  52. Strydom, P. E., Naude, R. T., Smith, M. F., Scholtz, M. M., Van Wyk, J. B. Characterisation of indigenous African cattle breeds in relation to meat quality traits. Meat Sci. 55 (1), 79-88 (2000).
  53. Renand, G., Picard, B., Touraille, C., Berge, P., Lepetit, J. Relationships between muscle characteristics and meat quality traits of young Charolais bulls. Meat Sci. 59 (1), 49-60 (2001).
  54. Chriki, S., et al. Meta-analysis of the comparison of the metabolic and contractile characteristics of two bovine muscles: Longissimus thoracis and semitendinosus. Meat Sci. 91 (4), 423-429 (2012).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Tags

Intramusculair vetWarner-Bratzler shearmyofibrillaire fragmentatiespiervezeltypenvlees malsheidelektroforetische scheiding
Onderzoek naar de Longissimus-spier: het ontrafelen van de correlatie met vleeskwaliteit bij Bos indicus en gekruiste stieren
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan de bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleidsoverzicht

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.