Dit protocol beschrijft de toepassing van de chirurgische techniek die wordt gebruikt om gekloonde varkensembryo's via laparotomie bij gelten terug te plaatsen.
Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.
Methodenartikel
Embryotransferchirurgie via laparotomie bij gelten
In dit artikel
Samenvatting
Samenvatting
Dit protocol heeft tot doel de chirurgische techniek te demonstreren voor het overbrengen van gekloonde varkensembryo's naar de eileider, een methode die veel wordt gebruikt bij de productie van genetisch gemodificeerde varkens voor biomedisch onderzoek. Negen gelten ondergingen hormonale synchronisatie en laparotomie voor de overdracht van gekloonde embryo's geproduceerd door somatische celkernoverdracht (SCNT) in stadia van maximaal 4 cellen op dag 2 naar de eileider. De zwangerschapsdiagnose werd 30 dagen na de transferoperatie uitgevoerd via echografisch onderzoek. Zes van de negen geopereerde gelten vertoonden bij echografisch onderzoek tekenen van dracht. Omdat er echter geen progressie was in de ontwikkeling van de foetus zoals beoordeeld door echografie, ondergingen de gelten na 60 dagen obductie voor het verzamelen van biologisch materiaal en het beoordelen van het voortplantingssysteem. Verklevingen werden waargenomen in de baarmoederhoorns, eierstokken en eileiders. Uit het baarmoederlumen van twee van de geëuthanaseerde gelten werden één en vier embryonale structuren met een zwangerschapsduur tussen 12 en 20 dagen verkregen. Ondanks de afwezigheid van levende biggen, waarschijnlijk toegeschreven aan de lage efficiëntie van het terugplaatsen van gekloonde varkensembryo's, die wordt beïnvloed door verschillende factoren, waaronder het aantal en de kwaliteit van de teruggeplaatste embryo's, bleek de gepresenteerde chirurgische techniek snel en veilig te zijn.
Inleiding
Varkens zijn een uitstekend experimenteel model voor biomedisch onderzoek vanwege hun anatomische, fysiologische en genetische overeenkomsten met mensen1. Deze dieren zijn vaak gebruikt in onderzoek met betrekking tot xenotransplantatie, met de bedoeling organen, cellen of weefsels te produceren die een laag risico op afstoting bevorderen wanneer ze in mensen worden getransplanteerd. Onderzoek naar xenotransplantatie heeft tot doel het aanbod van organen voor menselijke transplantatie te vergroten, waardoor de wachtlijstvan patiënten wordt verkort.
De productie van varkens voor xenotransplantatie omvat verschillende stappen, waaronder de productie van klonen van genetisch bewerkte varkenscellen. Na de in vitro productie van genetisch gemodificeerde gekloonde embryo's, worden de embryo's overgebracht naar het voortplantingssysteem van een zeug met een gesynchroniseerde oestrische cyclus om de baarmoederfysiologie voor te bereiden op de ontvangst en dracht van de nieuwe conceptus3.
Embryotransfer bij varkens kan worden uitgevoerd met niet-invasieve of invasieve methoden4. Een van de niet-invasieve methoden is transcervicale overdracht, waarvoor geen chirurgische ingreep nodig is. Deze methode is echter beperkt tot het terugplaatsen van embryo's in latere ontwikkelingsstadia (d.w.z. morula- of blastocyststadia) en maakt het niet mogelijk om de inbrengplaats van de katheter of de afzetting van het embryo nauwkeurig te bepalen5. Laparoscopie en laparotomie worden beschouwd als invasieve methoden voor embryotransfer. Laparoscopie is minder invasief, maar vereist specifieke en dure apparatuur, en de efficiëntie varieert aanzienlijk (van minder dan 20% tot meer dan 80%) als gevolg van verschillende factoren, zoals moeilijkheden bij het manipuleren van voortplantingsstructuren en het type katheter dat wordt gebruikt 4,6. Daarom is overdracht via laparoscopie nog steeds minder efficiënt in vergelijking met chirurgische overdrachtsmethoden via laparotomie4.
Embryotransferchirurgie bij zeugen via laparotomie is een relatief eenvoudige en snelle procedure, die doorgaans ongeveer 30 minuten duurt. Het moet echter worden uitgevoerd in een chirurgisch centrum dat is uitgerust met inhalatie-anesthesieapparatuur en een gespecialiseerd team. Voor commerciële varkensstammen (zoals Landras, Large White of hun kruisingen) zijn speciale apparatuur zoals takels voor het heffen van gelten en een brede, stevige operatietafel noodzakelijk vanwege het aanzienlijke gewicht van de dieren (ongeveer 130-150 kg).
Om de operatie te laten slagen, moeten de embryo's vooraf worden beoordeeld op hun ontwikkelingsstadium. Embryo's van maximaal 4 cellen worden aanbevolen om in de baarmoederbuis te worden geplaatst. Embryo's in stadia voorbij 4 cellen, zoals morula's en blastocysten, moeten worden overgebracht naar de baarmoederhoorn 7,8.
Hoewel onderzoeksgroepen over de hele wereld de productie en chirurgische overdracht van genetisch gemodificeerde gekloonde varkensembryo's uitvoeren, zijn er nog steeds geen goed gedefinieerde protocollen die deze procedure door middel van video's demonstreren. Deze aanpak is cruciaal voor het succes van de zwangerschap, aangezien de techniek een nauwkeurige afzetting van embryo's op de exacte locatie van de eileider vereist, waarbij de lokalisatie van het ostium van de eileiders en de introductie van de pipet met de embryo's worden ingebracht. Deze techniek kan beter worden begrepen door middel van verklarende video's van de hele procedure. Daarom is dit artikel bedoeld om de laparotomie-operatie aan te tonen voor het overbrengen van gekloonde embryo's naar de eileider van gelten, een essentiële voorwaarde voor de toekomstige productie van genetisch gemodificeerde varkens die worden gebruikt voor xenotransplantatie of andere gerelateerde doeleinden.
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Protocol
Deze studie werd goedgekeurd door de Ethische Commissie voor diergebruik in onderzoek van het College of Veterinary Medicine and Animal Science van de Universiteit van São Paulo, protocolnummer 6088030523. Negen zeven maanden oude gelten van de varkenshouderij Água Branca, gelegen in de stad Itu, in de staat São Paulo, Brazilië, werden direct na de tweede oestrusdetectie gebruikt. De details van de reagentia en de apparatuur die in het onderzoek zijn gebruikt, staan vermeld in de materiaaltabel.
1. Voorbereiding van dieren
- Vast de dieren gedurende 12 uur en beperk de toegang tot water gedurende 4 uur voor de chirurgische ingreep.
- Zuig met een naald van 40 mm x 12 mm 10 mg/kg ketamine en 0,2 mg/kg midazolam op in dezelfde spuit van 50 ml. Bevestig de spuit aan een infuustoedieningsset om de toediening van medicatie te vergemakkelijken, een veilige afstand tot het dier aan te houden en het vrij te laten bewegen.
- Dien de pre-anesthesiemedicatie toe via intramusculaire injectie in de trapeziusspier, caudaal naar de uitwendige gehoorgang.
- Kanuleer de oorader met een katheter van 20 G en sluit deze aan op een macrodruppeltoedieningsset voor intraoperatieve vloeistoftherapie met 0,9% NaCl-oplossing met een snelheid van 10 ml/kg/uur.
- Induceer anesthesie met 4 mg/kg propofol intraveneus (volgens institutioneel goedgekeurde protocollen).
- Voer orotracheale intubatie van het dier uit met behulp van een laryngoscoop en een orotracheale buis van maat 9 met een manchet10.
- Handhaaf de anesthesie met inhalatie van 1,5% tot 2% isofluraan. Controleer bovendien de anesthesie door fysiologische parameters te evalueren, zoals de hartslag, die tussen 100 en 120 slagen per minuut moet worden gehouden, de zuurstofverzadiging, die tussen 99% en 100% moet worden gehouden, spierontspanning, afwezigheid van beweging en evaluatie van reflexen.
OPMERKING: De lichaamstemperatuur moet ook worden gecontroleerd en gecontroleerd, tussen 37,5-38,5 °C. Indien nodig kan naast isofluraan propofol worden gebruikt om de parameters onder controle te houden. Fentanylhydrochloride moet worden toegediend als pijnstiller in een dosis van 0,02 mg/kg elke 20 minuten. Alle parameters moeten elke 5 minuten worden geregistreerd. - Dien perioperatieve analgesie toe met een enkele dosis van 0,002 mg/kg fentanyl intraveneus en 4 mg/kg tramadolhydrochloride intramusculair in de bilspier of trapeziusspier.
- Plaats hartelektroden op het thoracale gebied voor intraoperatieve monitoring van de hartslag. Registreer elke 5 minuten de hartslag, rectale temperatuur en zuurstofverzadiging.
2. Chirurgische ingreep
- Plaats het gelat op de operatietafel in dorsale ligging.
- Bedek de poten van het dier met procedurele handschoenen om besmetting van het operatieveld tot een minimum te beperken.
- Voer ventrale caudale abdominale ontharing uit tussen het voorlaatste paar borstklieren met behulp van een chirurgische tondeuse.
- Voer preoperatieve huidantisepsis uit met een met chloorhexidine geïmpregneerde antiseptische borstel en maak cirkelvormige bewegingen van het navelstrenglittekengebied naar het laatste paar borstklieren. Verwijder chloorhexidine met een schoon, bevochtigd kompres.
- Zorg ervoor dat de chirurg en de assistent chirurgische antisepsis uitvoeren en steriele operatiejassen en handschoenen dragen voor de operatie.
OPMERKING: Het dier moet worden voorbereid op de operatie in een voorbereidingsruimte die gescheiden is van de operatieplaats. - Bereid de operatietafel voor met de juiste en eerder gesteriliseerde instrumenten die worden vermeld in de Materiaaltabel.
- Voer de laatste antisepsis van het chirurgische veld uit met behulp van steriel gaas en chloorhexidine-antisepticum, waarbij het gebied in een visgraatpatroon wordt gereinigd, beginnend op de incisieplaats en lateraal uitbreidend.
- Herhaal deze procedure drie keer met chloorhexidine-antisepticum en herhaal vervolgens de procedure met alcoholisch chloorhexidine.
- Bedek het dier volledig met een steriel operatielaken en maak met een schaar een rechthoekige opening in het operatielaken, ongeveer 10 x 20 cm², als het laken niet is gefenestratiseerd.
- Plaats het chirurgisch laken over het voorlaatste paar liesachtige borstklieren. Plaats 4 Backhaus-klemmen om het operatielaken over de huid van het dier te bevestigen.
- Snijd de huid in met een scalpel en maak een incisie van ongeveer 10 cm lang.
- Bereik hemostase van onderhuidse bloedvaten met een hemostatische pincet en/of resorbeerbare hechtdraad maat 2.
- Ontleed het onderhuidse weefsel met de vingers of met behulp van een fijnpuntige schaar en verdiep de incisie om de linea alba in de buikspieren te bereiken.
OPMERKING: Palpeer de middellijn van de buik om de linea alba te voelen als een stijver en vezeliger gebied; Let op de scheiding van de spieren van de rectus abdominis en noteer de verandering in weefselconsistentie tijdens het ontleden om de linea alba nauwkeurig te identificeren11. - Pak met een Allis-tang de spier vast en til deze op om met een scalpel een steekincisie in de linea alba te maken.
- Steek de wijsvinger in de incisie om de aanwezigheid van verklevingen te beoordelen. Verleng de incisie caudaal en craniaal over de linea alba met een stompe/stompe of fijne/stompe schaar voorzichtig om te voorkomen dat andere organen en onderliggende structuren beschadigd raken.
- Maak een incisie van voldoende lengte zodat de ene hand van de chirurg in de buikholte kan worden ingebracht om de baarmoederhoorns en/of eierstokken te lokaliseren en naar buiten te brengen. Een Gosset-retractor kan worden gebruikt om het binnendringen in de buikholte en het hechten van de spieren in een enkele laag aan het einde van de procedure te vergemakkelijken.
- Als een van de baarmoederhoorns zich vóór de eierstokken bevindt, volg deze dan voorzichtig totdat u de punt van de baarmoederhoorn en de ipsilaterale eierstok bereikt. Beoordeel tijdens deze procedure de aanwezigheid van vloeistof in de baarmoeder, die de zwangerschap in gevaar kan brengen.
- Nadat u de eierstok hebt gelokaliseerd, trekt u er voorzichtig aan en legt u deze voorzichtig bloot. Beoordeel de aanwezigheid van pre-ovulatoire follikels, hemorragische corpora lutea, cyclische corpora lutea en corpus albicans om te evalueren of de synchronisatie van het gelt is zoals verwacht.
- Verwijder voorzichtig de fimbriae van de baarmoederbuis die de eierstok bedekt, verwijder het slijmvlies en zoek het ostium van de baarmoederbuis.
OPMERKING: Als de chirurg het moeilijk vindt om het ostium van de fimbriae te identificeren, kan een pocket op de ampulla van de eileider worden gedaan met een ronde hechtnaald, waarbij het doorboren van bloedvaten wordt vermeden, om de Tomcat-katheter met de embryo's in te brengen. - Breng voorzichtig een Tomcat-katheter met de embryo's in het ostium van de fimbriae totdat u het ampulla-gebied van de baarmoederbuis bereikt.
- Bevestig een spuit van 1 ml aan de Tomcat-katheter om de embryo-bevattende vloeistof in de baarmoederbuis te duwen. Bedek de eierstok met de fimbriae en plaats deze terug in de buikholte.
- Zoek de contralaterale baarmoederhoorn en eierstok en herhaal stap 2.17-2.21.
- Verplaats de structuren in de buikholte en voeg 1 L zoutoplossing of Ringer's lactaatoplossing verwarmd (39 °C) toe om verklevingen te voorkomen voordat met abdominorraphy wordt begonnen.
- Hecht de buikspieren met resorbeerbare hechtdraad maat 2 in "X" steken (Sultan) onderbroken.
- Benader het onderhuidse weefsel met een doorlopende matrashechting met behulp van resorbeerbare hechtdraad maat 2.
- Sluit de huid met nylon hechtdraad maat 2 in onderbroken eenvoudige hechtingen, chirurgische nietjes of ethylcyanoacrylaatlijm. In deze procedure hebben we gekozen voor het gebruik van lijm.
- Reinig de operatiewond met een gaas gedrenkt in waterstofperoxide en droog af met een kompres om de fixatie van de operatielijm op de operatiewond te verbeteren. Breng rifamycine of Pearson's zalf aan, bedek met gaas en breng ten slotte chirurgische lijm aan.
OPMERKING: De wond moet 5 dagen gesloten blijven met een verband.
3. Postoperatieve zorg
- Evalueer de dieren op tekenen van kenmerkende klinische pijn gedurende ten minste de volgende 3 opeenvolgende dagen, volgens de schaal voorgesteld door Luna et al.12.
OPMERKING: Deze schaal is gebaseerd op verschillende gedragingen die varkens vertonen bij het ervaren van verschillende niveaus van pijn, zoals houding, interactie en interesse in de omgeving, activiteit, eetlust en aandacht voor het getroffen gebied. De score varieert van 0 tot 3, afhankelijk van het type gedrag dat wordt vertoond, voor elke geëvalueerde parameter. Aan het einde van de evaluatie weerspiegelt de som van alle scores de intensiteit van de pijn die het dier ervaart, waarbij 0 staat voor geen pijn en 18 voor zeer intense pijn12. - Dien een enkele dosis van 15 mg/kg amoxicilline en 0,4 mg/kg 2% meloxicam toe, zowel intramusculair (in de bilspier of cervicale spier) eenmaal per dag gedurende 3 dagen als postoperatieve zorg om pijn, ontstekingsprocessen en infectie te voorkomen.
OPMERKING: Als de pijnscore gelijk is aan of groter is dan 6 op de gebruikte pijnschaal (score van 0 tot 18), dien dan eenmaal per dag 5.000 mg/dier natriumdipyron intramusculair (in de bilspier of cervicale spier) toe naast het ontstekingsremmende en antibioticum. U kunt ook analgesie uitvoeren zoals beschreven in de lokale IACUC-richtlijnen. - Verwijder op de 6e dag na de operatie de chirurgische lijm voor wondreiniging met gaas gedrenkt in 2% alcoholische chloorhexidine-oplossing en breng actuele Pearson's zalf aan tot de 10e dag, wanneer het verwijderen van hechtingen of het verwijderen van chirurgische nietjes, indien gebruikt, wordt aanbevolen.
4. Echografische zwangerschapsdiagnose van zwangerschap
- Voer transabdominale zwangerschapsechografische evaluatie uit met een ultrasoon apparaat (frequentiebereik 4.5 tot 8.5 MHz) 30 dagen na de embryotransferoperatie.
- Breng ultrasone gel aan op de sonde en plaats deze in de buurt van de liesstreek, mediaal gericht.
OPMERKING: Visualisatie van afgeronde echovrije embryonale blaasjes, als gevolg van vloeistof in het baarmoederlumen, geeft zwangerschap aan. Niet-visualisatie van intra-uteriene vloeistof, of aanwezigheid van intra-uteriene vloeistof zonder afbakening van embryonale blaasjes, suggereert de afwezigheid van zwangerschap.
5. Euthanasie van de dieren
OPMERKING: Euthanaseer de gelten die bij het echografisch onderzoek geen foetussen vertoonden van grootte en uiterlijk die overeenkomen met de zwangerschapsduur.
- Zuig met een naald van 40 mm x 12 mm 15 mg/kg ketamine en 2 mg/kg midazolam op in dezelfde spuit van 50 ml die is aangesloten op een intraveneuze toedieningsset en dien intramusculair toe in de trapeziusspier in het cervicale gebied caudaal naar de uitwendige gehoorgang, als pre-anesthesie.
- Annuleer de oorader met een katheter van 20 G en induceer anesthesie met 4 mg/kg propofol intraveneus in een bolus totdat bradycardie optreedt (volgens institutioneel goedgekeurde protocollen).
- Dien vervolgens 10 tot 20 ml 19,1% kaliumchloride intraveneus toe. Bevestig cardiopulmonale stilstand door de afwezigheid van ademhalingsbewegingen, bleke slijmvliezen, verlies van hoornvliesreflex en afwezigheid van hartslagen te observeren door een stethoscoop over het hartgebied te plaatsen.
- Verzamel elk type intra-uteriene inhoud (embryonaal weefsel, vloeistof of slijmafscheidingen) van necropsievrouwtjes13 en stuur het door voor microbiologische analyse om mogelijke pathogenen te detecteren en ook voor genotypische karakterisering van de klonen (indien nodig). Controleer visueel de aan- of afwezigheid van corpora lutea, cysten in de eierstokken, abnormale afscheidingen en het optreden van verklevingen in de baarmoeder, eierstokken en eileiders14.
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Resultaten
Dit artikel is bedoeld om de laparotomie-operatie te demonstreren voor het overbrengen van gekloonde embryo's naar de eileider van gelten. Alle dieren bleven in een adequaat anesthesievlak, zonder enige intraoperatieve incidenten of complicaties tijdens het herstel van de anesthesie. De gelten hadden gemiddeld 2-3 uur nodig om op te staan nadat de operatie was afgelopen.
Alle chirurgische ingrepen duurden gemiddeld 44 minuten. Negen gelten ondergingen een oper...
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Discussie
De beschreven chirurgische methode is eerder uitgevoerd door andere onderzoeksgroepen die werken met de productie van gekloonde varkens of genetisch gemodificeerde gekloonde varkens, met meldingen van geboorten na de implementatie van deze techniek 15,16,17,18,19,20. De zwangerschaps- en gebo...
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Openbaarmakingen
Geen van de auteurs maakt enig belangenconflict bekend
Dankbetuigingen
We willen het Equine Veterinary Hospital en het Ruminants Veterinary Hospital van het College of Veterinary Medicine, University of Sao Paulo (FMVZ/USP), Sao Paulo, Brazilië, FAPESP (subsidie 2022/11459-3, Sao Paulo Research Foundation), EMS Pharma, CNPq (subsidie 405254/2022-9) en Água Branca varkenshouderij, Itu, Sao Paulo, Brazilië, bedanken.
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Materialen
| Naam | Bedrijf | Catalogusnummer | Opmerkingen |
|---|---|---|---|
| 0.25 mL rietje | generic | - | Chirurgisch materiaal |
| 1 mL spuit | Descarpack | 341001 | Chirurgisch materiaal |
| 10 mL spuit | Descarpack | 324601 | Chirurgisch materiaal |
| 20 mL spuit | Descarpack | 324801 | Chirurgisch materiaal |
| 3 mL spuit | Descarpack | 324201 | Chirurgisch materiaal |
| 5 mL spuit | Descarpack | 324401 | Chirurgisch materiaal |
| 60 mL spuit | Descarpack | 323201 | Chirurgisch materiaal |
| 9 mm endotracheale tube | Rusch | 112482-000090 | Chirurgisch materiaal |
| Allis pincet | generic | - | Chirurgisch instrument |
| Amox LA | JA Saúde Animal | MAPA registratie: 8.781/2004 | Farmaceutisch geneesmiddel |
| Bakhaus pincet | generic | - | Chirurgisch instrument |
| Catheter 20G | Descarpack | 362401 | Catheter voor intraveneuze toegang |
| Cetamin | Agener União | MAPA registratie: SP-000292-5.000011 | Anesthetisch middel |
| Geleidend klinisch gel | RMC | ANVISA registratie: 80122200013 | Chirurgisch materiaal |
| Dipyrone D-500 | Zoetis | MAPA registratie: SP0000728-46 | Farmaceutisch geneesmiddel |
| Vaste scalpel nr. 22 | Wiltex | ANVISA registratie: 10150470565 | Chirurgisch instrument |
| Vaste steriele spons-kwast | Rioquimica | 7.89778E+12 | Chirurgische asepsis |
| Easy-Scan:Go | IMV | ESCG01 | Echografie |
| Endozime AW Plus | Ruhof | 34514 | Detergent voor chirurgische instrumenten |
| Fentanil (Fentanest) | Cristália | ANVISA registratie: 1029800810159 | Anesthetisch middel |
| Gosset retractor | generic | - | Chirurgisch instrument |
| Halstead-mosquito hemostatisch pincet | generic | - | Chirurgisch instrument |
| Genezende zalf - Unguento Pearson | Pearson SA | MAPA registratie: SP0000094-16 | Farmaceutisch geneesmiddel |
| Waterstofperoxide-oplossing | Rioquimica | ANVISA registratie: 218690015 | Chirurgisch materiaal |
| Isofluraan | Biochimico | ANVISA registratie: 100630222 | Anesthetisch middel |
| IV-druppelset verlengstuk | generic | - | Vloeistoftherapie |
| IV Macro druppelset | Descarpack | 410301 | Vloeistoftherapie |
| Lactofur (ceftiofur) | Ourofino SA | MAPA registratie: SP0000051-50 | Farmaceutisch geneesmiddel |
| Larnygoscope | - | - | Chirurgisch instrument |
| Maxicam 2% | Ourofino SA | MAPA registratie: SP0000051-69 | Farmaceutisch geneesmiddel |
| Micropore kleefstof 5 cm x 10 cm | generic | 1530 | Chirurgisch materiaal |
| Midazolam | Hipolabor | ANVISA registratie: 1134301430035 | Anesthetisch middel |
| Multi-Way IV-infusieset | Descarpack | 413201 | Vloeistoftherapie |
| Naald 40 mm x 1,2 mm | Descarpack | 353601 | Steriele naald voor het toedienen van geneesmiddelen en anesthetica. |
| Naald 40 mm x 1,6 mm | Wiltex | ANVISA registratie: 10150470664 | Steriele naald voor het toedienen van geneesmiddelen en anesthetica. |
| Naaldhaakje | generic | - | Chirurgisch instrument |
| Nylon 2-naaddraad | Shalon Medical | N502CTI40 | Chirurgisch materiaal |
| Gewone pen | generic | - | Normale pen voor het maken van aantekeningen |
| Fysiologische oplossing 0,9% 500 mL zak | JP Farma | MS:1.0491.0070 | Vloeistoftherapie |
| Polyglycolzuur 2-naaddraad | Atramat | G4099-75H | Chirurgisch materiaal |
| Kaliumchloride | Samtec | ANVISA registratie: 1559200010139 | Parenteraal geneesmiddel |
| Procedurehandschoenen | Descarpack | 122401 | Persoonlijk beschermingsmiddel (PBM) |
| Propofol (Provive) | União Química | ANVISA registratie: 1049714490057 | Anesthetisch middel |
| Ringer-lactaat-oplossing 500 mL zak | JP Farma | MS:1.0491.0061 | Vloeistoftherapie |
| Riohex 0,5% clorexidino alcoholoplossing | Rioquimica | 218690356 | Chirurgische asepsis |
| Riohex 2% clorexidino-oplossing met oppervlakte-actieve stof | Rioquimica | 218690356 | Chirurgische asepsis |
| Scalp 21 G | Descarpack | 421201 | Chirurgisch materiaal |
| Schoenenovertrekken | generic | - | Persoonlijk beschermingsmiddel (PBM) |
| Steriele kompressen | Cremer | ANVISA registratie: 10071150065 | Chirurgisch materiaal |
| Steriele gaaspad | Procitex | ANVISA registratie: 80245210083 | Chirurgisch materiaal |
| Steriele chirurgische drapen 140 cm x 90 cm | Venkuri | 7010003 | Chirurgisch materiaal |
| Steriele chirurgische drapen 150 cm x 190 cm | PolarFix | F00208 | Chirurgisch materiaal |
| Steriele chirurgische handschoenen | Mucambo | CA: 39.317 | Persoonlijk beschermingsmiddel (PBM) |
| Stethoscoop | generic | - | Chirurgisch materiaal |
Referenties
- Lunney, J. K., et al. Importance of the pig as a human biomedical model. Sci Transl Med. 13 (621), 5758(2021).
- Xi, J., et al. Genetically engineered pigs for xenotransplantation: Hopes and challenges. Front Cell Dev Biol. 10, 1093534(2023).
- Chen, P. R., et al. Production of pigs from porcine embryos generated in vitro. Front Anim Sci. 3, 826324(2022).
- Wieczorek, J., et al. Laparoscopic embryo transfer in pigs - comparison of different variants and efficiencies of the method. Pol J Vet Sci. 26 (2), 295-306 (2023).
- Martinez, E. A., et al. Design, development, and application of a non-surgical deep uterine embryo transfer technique in pigs. Anim Front. 3 (4), 40-47 (2013).
- Wieczorek, J., et al. A new concept in minimally invasive embryo transfer. Ann Anim Sci. 20 (4), 1289-1308 (2020).
- Brussow, K. P., Torner, H., Kanitz, W., Ratky, J. In vitro technologies related to pig embryo transfer. Reprod Nutr Dev. 40 (5), 469-480 (2000).
- Chen, P. R., et al. Production of pigs from porcine embryos generated in vitro. Front Anim. Sci. 3, 826324(2022).
- Langendijk, P., vanden Brand, H., Soede, N. M., Kemp, B. Effect of boar contact on follicular development and on estrus expression after weaning in primiparous sows. Theriogenology. 54 (8), 1295-1303 (2000).
- Costea, R., Ene, I., Pavel, R. Pig sedation and anesthesia for medical research. Animals. 13, 3807(2023).
- Vierstraete, M., Der Vekens, N. V. an, Beckers, R., Renard, Y., Muysoms, F. Descriptive anatomy of the porcine ventral abdominal wall as a basis for training ventral hernia repair techniques. J Abdom Wall Surg. 3, (2024).
- Luna, S. P. L., et al. Validation of the UNESP-Botucatu pig composite acute pain scale (UPAPS). PLoS One. 15 (6), e0233552(2020).
- Arruda, P. H. E., Gauger, P. Optimizing sample selection, collection, and submission to optimize diagnostic value. Diseases of swine. 11th ed. Zimmerman, J. J., Karriker, L. A., Ramirez, A., Schwartz, K. J., Stevenson, G. W., Zhang, J. , Wiley-Blackwell. Hoboken, NJ. 98-111 (2019).
- Althouse, G. C., Kauffold, J., Rossow, S. Diseases of the reproductive system. Diseases of swine. 11th ed. Zimmerman, J. J., Karriker, L. A., Ramirez, A., Schwartz, K. J., Stevenson, G. W., Zhang, J. , Wiley-Blackwell. Hoboken, NJ. 373-392 (2019).
- Hao, Y., et al. Porcine skin-derived stem cells can serve as donor cells for nuclear transfer. Cloning Stem Cells. 11 (1), 101-109 (2010).
- Rim, C. H., et al. The effect of the number of transferred embryos, the interval between nuclear transfer and embryo transfer, and the transfer pattern on pig cloning efficiency. Anim Reprod Sci. 143 (1-4), 91-96 (2013).
- Choi, K., et al. Production of heterozygous alpha 1,3-galactosyltransferase (GGTA1) knock-out transgenic miniature pigs expressing human CD39. Transgenic Res. 26 (2), 209-224 (2017).
- Shim, J., et al. Human immune reactivity of GGTA1/CMAH/A3GALT2 triple knockout Yucatan miniature pigs. Transgenic Res. 30 (5), 619-634 (2021).
- Glanzner, W. G., Rissi, V. B., Bordignon, V. Somatic cell nuclear transfer in pigs. Methods Mol Biol. 2647, 197-210 (2023).
- Kim, J. H., et al. Analysis of production efficiency of cloned transgenic Yucatan miniature pigs according to recipient breeds with embryo transfer conditions. Theriogenology. 218, 193-199 (2024).
- Navarro-Serna, S., Piñeiro-Silva, C., Romar, R., Parrington, J., Gadea, J. Generation of Gene Edited Pigs. , 71-130 (2022).
- Geisert, R. D., et al. Rapid conceptus elongation in the pig: An interleukin 1 beta 2 and estrogen-regulated phenomenon. Mol Reprod Dev. 84 (9), 760-774 (2017).
- Besenfelder, U., Mödl, J., Müller, M., Brem, G. Endoscopic embryo collection and embryo transfer into the oviduct and the uterus of pigs. Theriogenology. 47 (5), 1051-1060 (1997).
- Hazeleger, W., Kemp, B. Recent developments in pig embryo transfer. Theriogenology. 56 (8), 1321-1331 (2001).
- Youngs, C. R. Factors influencing the success of embryo transfer in the pig. Theriogenology. 56 (8), 1311-1320 (2001).
- Wieczorek, J., Koseniuk, J., Mandryk, I., Poniedziałek-Kempny, K. Piglets born after intrauterine laparoscopic embryo transfer. Pol J Vet Sci. 18 (2), 425-431 (2015).
- Brüssow, K. P., Rátky, J., Antosik, P., Kempisty, B., Jaśkowski, J. M. Embryo transfer in swine - an indispensable key for the application of reproduction techniques. Electron J Pol Agric Univ. 21 (3), (2018).
- Cadwallader, J. A., Alley, M. R. Malignant hyperthermia in a crossbred landrace-large white pig. N Z Vet J. 23 (9), 207-211 (1975).
- Fatehi Hassanabad, A., et al. Prevention of postoperative adhesions: A comprehensive review of present and emerging strategies. Biomolecules. 11 (7), 1027(2021).
- Shi, J., et al. Influence of embryo handling and transfer method on pig cloning efficiency. Anim Reprod Sci. 154, 121-127 (2015).
- Castagna, C. D., et al. Ovarian cysts and their consequences on the reproductive performance of swine herds. Anim Reprod Sci. 81 (1-2), 115-123 (2004).
- Knox, R. V. Factors influencing follicle development in gilts and sows and management strategies used to regulate growth for control of estrus and ovulation. J Anim Sci. 97 (4), 1433-1445 (2019).
- Galvin, J. M., Killian, D. B., Stewart, A. N. V. A procedure for successful nonsurgical embryo transfer in swine. Theriogenology. 41 (6), 1279-1289 (1994).
- Lins, R. D. A. U., et al. Use of cyanoacrylate in the coaptation of edges of surgical wounds. An Bras Dermatol. 87 (6), 871-876 (2012).
- Horvath-Pereira, B. deO., et al. Case report: An innovative non-invasive technique to manage shell injuries in C. carbonarius. Front Vet Sci. 9, 930419(2022).
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Herprints en machtigingen
