Methodenartikel

Studie van de coderende profielen van somatische stimulatie op cardiaal-vergrendelde neuronale responsen in de ruggengraatwervelkolom van de rat

DOI:

10.3791/68016

⸱

23 mei 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Institute of Acupuncture and Moxibustion, China Academy of Chinese Medical Sciences

In dit artikel

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

We beschrijven een protocol voor spinale meerkanaals extracellulaire registratie naast het registreren en analyseren van de hartfunctie van de spinale dorsale hoornneuronen. Deze methode biedt een tijdelijk gesynchroniseerd kader voor het bestuderen van spinale mechanismen die ten grondslag liggen aan thoracale viscerale functionele veranderingen veroorzaakt door acupunctuur.

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Veel onderzoeken hebben gesuggereerd dat elektroacupunctuur nuttig kan zijn bij de behandeling en preventie van hart- en vaatziekten. Het mechanisme ervan blijft echter slecht begrepen. De thoracale spinale dorsale hoorn (SDH) speelt een belangrijke rol bij het integreren en moduleren van somatische en viscerale inputs, die vervolgens de hartcontrole kunnen beïnvloeden. In tegenstelling tot de lumbale SDH, die uitgebreid is bestudeerd, is thoracale SDH minder onderzocht vanwege de moeilijkheid van chirurgische blootstelling en stereotactische fixatie. In deze studie bieden we een algemene benadering voor het gelijktijdig monitoren van neuronale activiteit en hartfunctie door de registratie van elektrocardiogrammen en micro-elektrode-arrays te combineren. Verder beschrijven we hoe hart-vergrendelde neuronen kunnen worden geïdentificeerd door de verdeling van de vuursnelheid van neuronale activiteit synchroon met hartslagen te berekenen. De strategie is van groot belang voor het bestuderen van de correlatie tussen cardiovasculaire functie en neuronale activiteit, evenals voor het begrijpen van de somatocardiale reflex die wordt veroorzaakt door perifere zenuwstimulaties.

Inleiding

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Acupunctuur of stimulatie van het lichaamsoppervlak, als een prominente therapeutische techniek in het kader van de traditionele Chinese geneeskunde (TCM), werkt door specifieke gebieden op het lichaamsoppervlak te stimuleren. Het vergemakkelijkt de regulering van de functies van het organisme op meerdere niveaus door de regulatie van viscerale functies via afferente routes, centrale integratie en autonome efferente zenuwmechanismen. Centraal in deze therapie staat het concept dat gerichte stimulatie van anatomisch gedefinieerde acupunten systemische fysiologische regulatie induceert. Groeiend klinisch bewijs ondersteunt de rol van acupunctuur als een complementaire modaliteit bij de behandeling van cardiovasculaire aandoeningen, met aangetoonde werkzaamheid in zowel primaire preventie- als aanvullende behandelingsprotocollen 1,2.

Primaire afferenten van sensorische neuronen eindigen voornamelijk in de spinale dorsale hoorn (SDH), dienovereenkomstig spelen de spinale dorsale hoornneuronen (SDHN's) een cruciale rol bij de integratie en modulatie van somatische inputs 3,4,5. Bovendien ontvangen de SDHRN's ook cardiale afferenten en geven ze viscerale informatie door aan spinale sympathische preganglionische neuronen (SPN's) voor cardiovasculaire modulatie6. De hartvergrendelde SPN's bevinden zich in de laterale hoek van het thoracale segment van het ruggenmerg (T1-T5), met axonen die uitsteken naar de cervicale of thoracale ganglia en vervolgens het hart innerveren via de hart-, midden- en onderzenuwen. Als gevolg hiervan speelt het thoracale ruggenmerg een cruciale rol bij de integratie en modulatie van somatische en viscerale inputs, die vervolgens de hartcontrole kunnen beïnvloeden. Het is dus belangrijk om te begrijpen hoe somatische stimulatie de hartfunctie reguleert door modulatie van de SDHRN's in het thoracale segment van het ruggenmerg.

Eerdere studies hebben aangetoond dat elektroacupunctuur op PC6 (georganiseerd in het T3-ruggenmergsegment als een homotope structuur-functie-eenheid) de symptomen van myocardischemie kan verlichten door modulatie van het autonome zenuwstelsel 7,8,9. Real-time kwantitatieve synchronisatie van de effecten van acupunctuur op de hartslag met de activiteit van het zenuwstelsel is echter nog niet gerealiseerd. Alleen onmiddellijke autonome zenuwactiviteit en indicatoren voor elektrocardiogram (ECG) na acupunctuur zijn gedocumenteerd. Onderzoek dat SDHN's in verband brengt met viscerale fysiologische functies blijft schaars. Vanwege de fysiologische kromming van de thoracale wervels en de smalle ruimte tussen aangrenzende thoracale wervelsegmenten, met name T1-T5, is toegang tot deze gebieden een uitdaging, wat resulteert in weinig direct bewijs voor het ophelderen van de spinale mechanismen die ten grondslag liggen aan acupunctuur bij het T3 spinale homotope acupunt PC6 dat de hartfunctie reguleert bij de behandeling van HVZ.

Om de relatie tussen SDH en acupunctuur-gemedieerde hartfunctieregulatie beter te begrijpen, moet synchrone registratie van hartfunctie en neurale activiteiten worden geïmplementeerd. Hier zullen we een algemene benadering bieden voor spinale meerkanaals extracellulaire opname, naast de registratie van de hartfunctie en het analyseren van de hartvergrendelde SDHRN's. Deze methode biedt een tijdelijk gesynchroniseerd kader voor het bestuderen van spinale mechanismen die ten grondslag liggen aan thoracale viscerale functionele veranderingen veroorzaakt door acupunctuur.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Het protocol dierproeven hield zich strikt aan de eisen van de nationale norm "Guidelines for Ethical Review of Welfare of Laboratory Animals" (GB/T 35892-2018) en werd goedgekeurd door de Ethische Commissie van de instelling. Mannelijke SPF-grade Sprague-Dawley (SD) ratten in de leeftijd van 6-8 weken en met een gewicht van ongeveer 220 g werden in deze studie gebruikt. Tijdens alle experimenten werden laboratoriumjassen, handschoenen en maskers gedragen. De details van de gebruikte reagentia en de gebruikte apparatuur staan vermeld in de materiaaltabel. Aan het eindpunt van het experiment werden ratten geëuthanaseerd via hartperfusie onder diepe anesthesie, gevolgd door cervicale dislocatie.

1. Preoperatieve installatie

  1. Sluit het beademingscircuit aan op de Y-vormige endotracheale tube en zorg voor een veilige en luchtdichte interface.
  2. Controleer de juiste ventilatie door de instellingen voor een stabiele luchtstroom, het juiste ademvolume en de ademhalingsfrequentie op het scherm van de ventilator te controleren.
  3. Zorg ervoor dat er geen condensaat of deeltjesverontreinigingen in de slang zitten door alle segmenten visueel te onderzoeken onder fel licht.
  4. Voer de versterkte ECG-signalen tegelijkertijd in zowel de elektrocardiograafingang als de analoge ingangspoort van het micro-elektrode-array-opnamesysteem in met behulp van een drieweg BNC-connector.
  5. Leid de versterkte signalen door een drieweg BNC-splitter om tegelijkertijd de analoge ingang van de elektrocardiograaf en de analoge ingangspoort van het micro-elektrode-array-opnamesysteem aan te sluiten.
  6. Breng synchronisatietriggers tot stand door de TTL-uitgang van de elektrocardiograaf aan te sluiten op de digitale ingang van het opnamesysteem van de micro-elektrode-array. Gebruik een BNC-naar-Dupont-interfacekabel om gelijktijdige acquisitie op beide systemen te starten en de tijdelijke uitlijning te verifiëren.

2. Preoperatieve voorbereiding

  1. Verdoving
    1. Induceer anesthesie met 3-5% isofluraan door inhalatie en dien vervolgens een intraperitoneale injectie van pentobarbital-natrium (50 mg/kg) toe aan de verdoofde rat. Dien isofluraan toe voor inhalatie-anesthesie voordat u de elektroden plaatst, waarbij een concentratie van ~1,2% wordt aangehouden. Ga alleen verder als Beoordeel de diepte van de anesthesie door in de teen te knijpen voordat u verder gaat.
    2. Verwijder de haren van de voorste nek en achterste rug van de ratten.
    3. Plaats de rat in rugligging op een verwarmende deken en breng zalf aan op de ogen van de rat om uitdroging te voorkomen. Observeer de ademhalingsfrequentie en controleer op ontwenningsreacties door met een tang druk uit te oefenen op het voetkussen.

3. Tracheale intubatie

  1. Plaats de ratten in rugligging en desinfecteer het nekgebied met jodiumtinctuur.
  2. Voer een longitudinale incisie uit van ongeveer 1 cm langs de middellijn van de nek en ontleed botweg het spierweefsel.
  3. Zodra de schildklier bloot komt te liggen, scheidt u voorzichtig het dunne membraan tussen de twee schildklierkwabben en zorgt u ervoor dat het schildklierweefsel niet wordt beschadigd. Ga verder met het blootleggen van de luchtpijp.
  4. Onderzoek de "Y-vormige canule om te bevestigen dat deze volledig droog is. Gebruik een veerschaar om een transversale incisie in de luchtpijp te maken, gevolgd door het inbrengen van de canule in de tracheale opening. Zet de tracheacanule vast met 3-0 niet-resorbeerbare hechtingen om luchtlekkage en onbedoelde extubatie te voorkomen.
  5. Hecht de nekspieren en huid voorzichtig vast en sluit de rat aan op een beademingsapparaat. Stel de ademhalingsfrequentie in op 85 ademhalingen/min en het ademvolume op 3,5 ml, afhankelijk van het lichaamsgewicht van de rat7 (Figuur 1B).

4. ECG-detectie

  1. Steek drie elektroden in de huid van de rat: de positieve elektrode in de linker onderste ledemaat, de negatieve elektrode in de rechter bovenste ledemaat en de massa-elektrode in de rechter onderste ledemaat10.
  2. Gegevens verzamelen met behulp van een elektrocardiograaf (filterinstellingen: laagdoorlaat bij 100 Hz, hoogdoorlaat bij 1 kHz; bemonsteringsfrequentie: 4 kHz/s). Gebruik ECG-opnamesoftware om gegevens op te nemen, op te slaan en te analyseren.

5. Pericardiale katheterisatie voor medicijntoediening bradykinine (BK)

  1. Leg de rat in rugligging en desinfecteer de huid op de borst met jodium.
  2. Voer een thoracotomie uit tussen het 1e en 3e ribkraakbeen op de linker bovenborst om de thymus bloot te leggen. Ontleed de thymus botweg langs de middellijn om het hartzakje bloot te leggen (zie figuur 1C,D).
  3. Gebruik de punt van een glazen snijnaald (0,5 mm in diameter) om een kleine opening in het hartzakje te maken.
  4. Breng een siliconenkatheter in, 10-15 cm lang, met verschillende kleine gaatjes aan het distale uiteinde door de incisie in het hartzakje. Bevestig de katheter met biolijm aan het weefsel van de borstwand.
  5. Sluit de borstholte laag voor laag en zorg ervoor dat de ademhaling van de rat vrij blijft (zie figuur 1D).

6. Blootstelling van het T3-ruggenmerg

  1. Plaats de rat in buikligging en voer routinematige desinfectie uit met jodium. Maak een incisie van ongeveer 8 cm langs de middellijn van de rug van de T2- tot T6-wervels.
  2. Gebruik een veerschaar om door de huid en spierlagen te knippen, inclusief de trapeziusspier. Plaats een retractor tussen de spieren om het operatieveld verder bloot te leggen.
  3. Scheid de vet- en winterslaapklieren aan de voorkant van de borstwervels van de rat voorzichtig en vermijd de bloedvaten onder de klieren (zie figuur 1E).
  4. Verwijder de spieren die aan de hoofdklem en het rechte deel van de lange nekspieren vastzitten, waardoor de doornuitsteeksels van T2 bloot komen te liggen.
  5. Verplaats de semispinalis- en spinalisspieren om de wervelboog van T2 naar T6 bloot te leggen (zie figuur 1E). Gebruik rongeurs om de processus spinosus van de T3-wervel te verwijderen, waardoor het T3-ruggenmerg bloot komt te liggen.
    OPMERKING: Zorg er tijdens het blootleggen van de borstwervels voor dat speciale aandacht wordt besteed aan het behoud van de processus spinosus van T2, aangezien dit dient als het primaire krachtpunt voor de daaropvolgende blootstelling van het T3-ruggenmerg.
  6. Verwijder de dura mater en het arachnoïdale membraan en druppel paraffineolie op het oppervlak van het ruggenmerg om de levensvatbaarheid van de spinale neuronen te behouden (zie figuur 1F).
    OPMERKING: De bloedvaten van het bruine vetweefsel van de rat vinden hun oorsprong in de T3-, T4- of T5-lamina en worden verdeeld als een veneuze sinus. Zorg ervoor dat u ze niet aanraakt, omdat dit overmatig bloedverlies bij de rat kan veroorzaken.

7. Fixatie en instellingen van de borstwervels

  1. Gebruik een op maat gemaakte spinale klem om de gewrichtsprocessen van T2 en T6 vast te zetten. Bevochtig de omliggende spieren met zoutoplossing om de hydratatie te behouden.
  2. Bevestig de elektrode-array aan de micromanipulator van een stereotactisch instrument en steek deze verticaal in de dorsale hoorn van het ruggenmerg bij het T3-ruggenmergsegment door de dorsale mediane sulcus, 500 μm lateraal van de middellijn, tot een diepte van 1.500 μm.
  3. Steek de referentie-elektrode in de rugspier (zie afbeelding 1G).
  4. Start de meerkanaals extracellulaire opnamesoftware en navigeer naar Bestand | Hardware configuratie; Selecteer de 32-kanaals array in de lijst met apparaatinterfaces; klik met de rechtermuisknop op de geselecteerde kanaalgroep; en kies vervolgens Eigenschappen in het contextmenu. Configureer signaalverwerkingsparameters: Stel onder het tabblad Filter het banddoorlaatfilter (BP) in op 250 Hz - 5 kHz; voer in het veld Bemonsteringsfrequentie 30 kHz/s in; Schakel algoritmen voor piekdetectie in door het vakje met het label Spikeverwerking inschakelen aan te vinken om realtime pieksortering en gebeurtenisextractie op basis van drempelwaarden te activeren.
    OPMERKING: Zorg voor een grondige verwijdering van de spieren en weefsels rond de gewrichtsprocessen van T2 en T6, vooral in het gebied waar de aangepaste spinale klem wordt aangebracht voor spinale fixatie, om verplaatsing tijdens volgende experimenten te voorkomen.

8. Somatische en BK stimuli

  1. Gebruik BK (1 μg/ml in gedestilleerd water) om cardiale nociceptieve stimulatie op te wekken. Injecteer 4 μL van de BK-oplossing met een microspuit die is aangesloten op een siliconenkatheter met verschillende kleine openingen11.
  2. Observeer veranderingen in de hartslag (neemt toe of af) en neuronale afscheiding (neemt toe of af) in de dorsale hoorn van het T3-ruggenmerg binnen 30 minuten na de injectie om dynamische interacties tussen neuronen van de dorsale hoorn van het thoracale ruggenmerg te identificeren.
  3. Voer handmatige acupunctuur uit op acupunt PC6 (MAPC6) met behulp van de stimulatieparameter van 1 Hz. PC6 (Neiguan acupunt) bevindt zich 2 mm proximaal van het carpale gewricht op de ventrale onderarm, tussen de flexor carpi radialis en de mediane zenuwstam. Steek de naalden (0,25 mm x 25 mm) in de PC6 acupunten op een diepte van ~3 mm. Vergelijk de veranderingen in neuronale activiteit en hartfunctie voor en na de somatische stimuli.

9. Gegevensanalyse en -verwerking

  1. Importeer de opgenomen neurale gegevens in ns6-formaat in de software als volgt:
    1. Bestandsconversie: Navigeer naar Bestand | Open om het ns6-bestand te laden. Selecteer bestand | Sla op als en kies het .nex5-formaat om gestandaardiseerde spike-treingegevens te genereren.
    2. Spike Sorting: Importeer de geconverteerde .nex5-bestanden in de classificatiesoftware voor neuronale classificatie. Sorteer piekgolfvormen op basis van golfvormkenmerken en hoofdcomponentenanalyse (PCA), met drempelparameters ingesteld op ±3 SD ten opzichte van basislijnruis.
    3. Voer vervolgens de relevante code uit voor het filteren en categoriseren van de signalen.
  2. Analyseer SDRN's met hartvergrendeling.
    1. Neem de R-golf als referentiegebeurtenis en tel het aantal neuronen dat wordt afgevuurd binnen een venster van 0,2 s voor en na elke R-golf.
    2. Nadat u de R-golven met intervallen van 50 ms hebt geteld, maakt u een histogram van ringgebeurtenissen. Normaliseer het histogram (d.w.z. trek de gemiddelde ontladingssnelheid af in 0,2 s voor en na de R-golfgebeurtenis) om de verdeling van de ontladingssnelheid van de activiteit van elk neuron tijdens de hartslag te verkrijgen.
    3. Beoordeel de statistische significantie via Monte Carlo 12-permutatietests, geïmplementeerd met 1.000 geschudde iteraties. Verkrijg de verdeling van de vuursnelheid en het betrouwbaarheidsinterval van het neuron tijdens het proces van de gerandomiseerde hartslag door 0,2 s van de tijd voor en na elke hartslag R-golf willekeurig te maken (het bereik is ± 0,1 s). Als de vuurverdeling van de hartslag van een neuron groter is dan (groter dan of kleiner dan) het 95%-betrouwbaarheidsinterval van de vuursnelheidsverdeling van het gerandomiseerde hartslagproces, identificeer het neuron dan als een hartvergrendeld neuron (zie aanvullend bestand 1).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Volgens het bovenstaande protocol werden de T3 SDHN's blootgesteld, waarbij bradykinine (BK) of somatische naalden werden toegediend aan pericardiale/acupuntgebieden. Dit onderzoek kwantificeerde stimulus-opgewekte neuronale activeringsprofielen (type/frequentie) en gelijktijdige elektrocardiografische (ECG) veranderingen tijdens nociceptieve viscerale input, BK-toepassing en somatosensorische modulatie.

Figuur 2A toont een dwarse...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Het decoderen van SDH neuronale coderingsprofielen is essentieel voor het begrijpen van het neuromodulerende mechanisme van acupunctuur-geïnduceerd therapeutisch effect op viscerale disfunctie. Hier combineerden we de MEA in vivo opnametechniek met het ECG-registratiesysteem om tegelijkertijd de ontladingsactiviteit van de T3 SDHN's en het ECG te registreren. Stimulatie van hartpijn kan type C nociceptoren activeren die het hart innerveren en nociceptieve informatie anterieur do...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs hebben geen belangenconflicten te melden.

Dankbetuigingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Deze studie werd ondersteund door de National Natural Science Foundation of China (No.82330127, No.82105029), het National Key R&D Program of China (No.2022YFC3500702) en de Fundamental Research Funds voor de Central Public Welfare Research Institutes (nr. ZZ-2023008) en het project van de afdeling Provinciaal Onderwijs (nr. 2019JM-027).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Anesthesia SystemKent ScientificSomnoSuite
Central v6.5Black MicrosystemsCerebus-128
Fine ScissorsFine ScissorsFine Scissors
Friedman-Pearson RongeursFine Science T ools16220-14
Gelatin SpongesColtene274-007
Intubation CannulaHarward Apparatus73-2737
IsofluraneRWDR510
LabChart Professional SoftwareLabChart Professional SoftwareVersie 8.0
microband electrode arrayNeuronexusA1x32-6mm-50-177
micromanipulatorNarishigeDMA-1510
naaldenZhongyantaihe0,25 mm x 0,25 mm
NeuroExplorer software (V5.0)PlexonV5.0
offline Sorter PlexonV4.0
PowerlabADInstrumentsPL26T04
rattenthe Experimental Center of the Academy of Military Medical Sciences of the People's Liberation Army of China
Spinal AdaptorN/AN/AOp maat gemaakt
Spring ScissorsFine Science Tools15023-10
stereotactisch instrumentNarishigeSR-5R-HT

Referenties

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Nakahara, H., Ueda, S. Y., Kawai, E., Higashiura, R., Miyamoto, T. Effects of pre-exercise acupuncture stimulation on heart rate response during short-duration exercise. BMC Sports Sci Med Rehabil. 13 (1), 129(2021).
  2. de Lima Pimentel, R., Duque, A. P., Moreira, B. R., Rodrigues, L. F. J. Acupuncture for the treatment of cardiovascular diseases: A systematic review. J Acupunct Meridian Stud. 12 (2), 43-51 (2019).
  3. Ma, Q. A functional subdivision within the somatosensory system and its implications for pain research. Neuron. 110 (5), 749-769 (2022).
  4. Hsieh, M. T., Donaldson, L. F., Lumb, B. M. Differential contributions of A- and C-nociceptors to primary and secondary inflammatory hypersensitivity in the rat. Pain. 156 (6), 1074-1083 (2015).
  5. Meyr, A. J., Steinberg, J. S. The physiology of the acute pain pathway. Clin Podiatr Med Surg. 25 (3), 305-326 (2008).
  6. Ardell, J. L. Heart failure: Mechanisms of spinal cord neuromodulation for heart disease. Nat Rev Cardiol. 13 (3), 127-128 (2016).
  7. Xi, H., et al. Continuous peripheral electrical nerve stimulation improves cardiac function via autonomic nerve regulation in MI rats. Heart Rhythm. 21 (10), 2010-2019 (2024).
  8. Cui, X., et al. Referred somatic hyperalgesia mediates cardiac regulation by the activation of sympathetic nerves in a rat model of myocardial ischemia. Neurosci Bull. 38 (4), 386-402 (2022).
  9. Li, X., et al. In vivo thoracic dorsal root ganglia (DRG) calcium imaging and ECG recording for studying reripheral nerve stimulation. J Vis Exp. (210), e67283(2024).
  10. Azhar, A., El-Bassossy, H. M. Pentoxifylline alleviates cardiac ischemia and dysfunction following experimental angina in insulin resistance. PLoS One. 9 (5), e98281(2014).
  11. Liu, X., Zhang, Q., Han, M., Du, J. Intrapericardial capsaicin and bradykinin induce different cardiac-somatic and cardiovascular reflexes in rats. Auton Neurosci. 198, 28-32 (2016).
  12. Metropolis, N., Ulam, S. The Monte Carlo method. J Am StatAssoc. 44 (247), 335-341 (1949).
  13. Coote, J. H., Chauhan, R. A. The sympathetic innervation of the heart: Important new insights. Auton Neurosci. 199, 17-23 (2016).
  14. Sun, X. Y., et al. Inhibitory effect of acupoint electrostimulation with different layers and intensities on muscular inflammatory pain and spinal WDR neuron activity. Zhen Ci Yan Jiu. 49 (2), 103-109 (2024).
  15. Duan-Mu, C. L., et al. Electroacupuncture-induced muscular inflammatory pain relief was associated with activation of low-threshold mechanoreceptor neurons and inhibition of wide dynamic range neurons in spinal dorsal horn. Front Neurosci. 15, 687173(2021).
  16. Davalos, D., Akassoglou, K. In vivo imaging of the mouse spinal cord using two-photon microscopy. J Vis Exp. (59), e2760(2012).
  17. Li, P. Neural mechanisms of the effect of acupuncture. International Congress Series. 1238, 71-77 (2002).
  18. Wu, X. L., et al. Acupuncture modulation of the ACE/Ang II/AT1R and ACE2/Ang(1-7)/MasR pathways in the rostral ventrolateral medulla reduces sympathetic output and prevents cardiac injury caused by SHR hypertension. Neuroreport. 35 (13), 839-845 (2024).
  19. Qin, C., Farber, J. P., Foreman, R. D. Gastrocardiac afferent convergence in upper thoracic spinal neurons: a central mechanism of postprandial angina pectoris. J Pain. 8 (6), 522-529 (2007).
  20. Yao, Y., et al. Cardiovascular baroreflex circuit moonlights in sleep control. Neuron. 110 (23), 3986-3999.e6 (2022).
  21. Liu, S., et al. Somatotopic organization and intensity dependence in driving distinct NPY-expressing sympathetic pathways by electroacupuncture. Neuron. 108 (3), 436-450.e7 (2020).
  22. Liu, S., et al. A neuroanatomical basis for electroacupuncture to drive the vagal-adrenal axis. Nature. 598 (7882), 641-645 (2021).
  23. Ma, Q. Somatotopic organization of autonomic reflexes by acupuncture. Curr Opin Neurobiol. 76, 102602(2022).
  24. Wang, J., et al. Spinal cord stimulation reduces cardiac pain through microglial deactivation in rats with chronic myocardial ischemia. Mol Med Rep. 24 (6), 835(2021).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

Cardiac Locked NeuronsSpinal Dorsal HornElectroacupuncture ModulationNeuronal Activity RecordingMicroelectrode ArrayECG SynchronizationThoracic Spinal CordBradykinin StimulationAcupuncture PC6Spike Train Analysis

Gerelateerde artikelen