Methodenartikel

Detectie en isolatie van kanker in prostaatbiopten met behulp van gestimuleerde Raman-histologie en kunstmatige intelligentie

1.7K weergaven

DOI:

10.3791/68083

10 juni 2025

In dit artikel

Samenvatting

Hier presenteren we een gestandaardiseerd protocol voor het detecteren van prostaatkanker met behulp van gestimuleerde Raman-histologie (SRH) op biopsiemonsters vanwege de voordelen ten opzichte van traditionele histopathologie, met de nadruk op monstervoorbereiding, beeldvorming en kunstmatige intelligentie om de verhouding tussen kanker en weefsel te verbeteren. Daarnaast ondersteunt het biobanking voor transcriptomics, organoïde of xenotransplantaatmodellen en identificatie van intraoperatieve chirurgische marges.

Samenvatting

Prostaatkanker blijft een van de meest voorkomende maligniteiten bij mannen wereldwijd, waardoor vroege opsporing en vooruitgang in precisiegeneeskunde cruciaal zijn voor effectieve interventie en behandeling. Er wordt een gestandaardiseerd protocol gepresenteerd voor het gebruik van gestimuleerde Raman-histologie (SRH) met geïntegreerde kunstmatige intelligentie (AI) bij de detectie van prostaatkanker, wat aanzienlijke vooruitgang biedt ten opzichte van conventionele histopathologische methoden. SRH biedt deze vooruitgang door de efficiëntie te verbeteren door middel van bijna realtime, labelvrije beeldvorming van verse, ongekleurde weefsels, waardoor de vertragingen die gepaard gaan met traditionele biopsie-analyse worden geëlimineerd.

Door gebruik te maken van gestimuleerde Raman-verstrooiing (SRS)-microscopie om de specifieke trillingsfrequenties van CH2-bindingen geassocieerd met lipiden en CH3-bindingen gekoppeld aan eiwitten en DNA te detecteren, kunnen kankerachtige en goedaardige weefsels in prostaatbiopten worden onderscheiden. Het AI-model verbetert de diagnostische precisie verder en bereikt een nauwkeurigheid van 98,6% bij het identificeren van prostaatkanker. Het protocol schetst essentiële stappen voor monstervoorbereiding, beeldvorming en gegevensanalyse, waardoor verbeterde biobankprocessen worden vergemakkelijkt en downstream-toepassingen mogelijk worden gemaakt, zoals transcriptomics en xenotransplantaatstudies. Deze aanpak versnelt de diagnostische workflow en is veelbelovend voor intraoperatieve toepassingen, en kan chirurgen mogelijk helpen bij het intraoperatief identificeren van positieve marges. Bovendien maakt de mogelijkheid om kanker-tot-weefselverhoudingen opnieuw te scannen en aan te passen een meer op maat gemaakte analyse van biopsiemonsters mogelijk, waardoor de tumordetectie in onbewerkte weefsels wordt verbeterd. Verder onderzoek en validatie zijn nodig voor de wijdverbreide acceptatie van SRH in de klinische praktijk.

Inleiding

Prostaatkanker blijft een van de belangrijkste maligniteiten die mannen wereldwijd treffen, waarbij vroege opsporing cruciaal is voor succesvolle interventie en behandeling1. Historisch gezien is de diagnose van prostaatkanker sterk afhankelijk geweest van histopathologische evaluatie van prostaatbiopsiemonsters, meestal door hematoxyline en eosine (H&E) kleuring2. Hoewel effectieve, resulteren traditionele methoden voor prostaatbiopsie-analyse doorgaans in een wachttijd van enkele dagen tot weken, afhankelijk van de stad of het land, vanwege procedurele en logistieke factoren. Deze vertragingen zijn het gevolg van meerdere arbeidsintensieve stappen, waaronder formalinefixatie, paraffine-inbedding, secties en H&E-kleuring. De cumulatieve verwerkingstijd, verergerd door het grote aantal biopsiemonsters, kan dus de diagnose en behandelplanning vertragen.

Recente ontwikkelingen in beeldvormingstechnologieën, met name gestimuleerde Raman-verstrooiing (SRS) microscopie, kunnen diagnostische praktijken transformeren door een robuuste beeldvormingsmethode te bieden die achtergrondvrij en gemakkelijk interpreteerbaar is 3,4. SRS maakt gebruik van twee laserstralen, de pompstraal (ωp) en de Stokes-straal (ωs), die interageren met het monster. Wanneer het frequentieverschil (Δω = ωp −ωs) overeenkomt met een specifieke moleculaire trillingsfrequentie (Ω), wordt het signaal versterkt als gevolg van gestimuleerde Raman-versterking of -verlies. Dit proces verbetert het contrast van moleculaire trillingen, waardoor een zeer gevoelige beeldvorming van weefsels mogelijk is 3,4. SRS maakt de detectie mogelijk van moleculaire trillingen geassocieerd met CH2-rektrillingen (2.845 cm-1), gecorreleerd met lipiden, en CH3-rektrillingen (2.930 cm-1), gekoppeld aan eiwitten en DNA4. De detectie van het SRS-signaal omvat doorgaans een overdrachtsschema voor hoogfrequente modulatie, waardoor de zwakke trillingssignalen nauwkeurig kunnen worden geïsoleerd van achtergrondruis.

SRS-microscopie heeft optische doorsnedemogelijkheden die nauwkeurige driedimensionale beeldvorming mogelijk maken zonder dat fysieke weefseldoorsnede nodig is. Dit wordt bereikt door de pomp en Stokes-laserstralen uit te lijnen en te focussen op een diffractiebeperkte plek in het monster, waar specifieke moleculaire trillingen worden opgewekt. De confocale aard van SRS, afgeleid van de kwadratische afhankelijkheid van de intensiteit van de lasers, zorgt ervoor dat signalen beperkt blijven tot het brandpuntsvlak, waardoor onscherpe bijdragen worden uitgesloten en sterk gelokaliseerde chemische informatie wordt verstrekt 5,6. Deze beeldvorming met diepteresolutie behoudt de weefselintegriteit door mechanisch snijden te elimineren, de verwerkingstijd te verkorten en de biologische en moleculaire context van het monster te behouden.

Voortbouwend op de principes van SRS, gebruikt gestimuleerde Raman-histologie (SRH) deze moleculaire trillingsgegevens om in realtime pseudo-H&E-beelden van vers, ongekleurd weefsel te maken, waardoor clinici snellere en efficiëntere diagnostische hulpmiddelen krijgen 7,8. Dit vermogen om beelden van hoge kwaliteit te genereren, heeft SRH tot een onmisbaar hulpmiddel gemaakt voor onderzoek en mogelijke klinische toepassingen9. Onlangs leverde intraoperatieve margebepaling met behulp van SRH bijna realtime pathologische feedback op tijdens gedeeltelijke klierablatie en radicale prostatectomie, waardoor onmiddellijke aanpassingen van de behandeling mogelijk waren10,11.

De SRH-imager maakt gebruik van intrinsieke moleculaire trillingen om inzicht te krijgen in de weefselsamenstelling. SRH kan worden gebruikt om kankerachtig van goedaardig prostaatweefsel effectief te onderscheiden door de trillingseigenschappen van CH2 en CH3 te analyseren 7,12. De SRH-imager legt deze trillingen vast en produceert pseudo-H&E-beelden die het nucleaire contrast verbeteren, dienen als een snel alternatief voor conventionele histopathologie en leveren beelden van hoge kwaliteit in 2-8 minuten, afhankelijk van de weefselgrootte 7,8.

De werkzaamheid van SRH voor het snelle pathologische onderzoek van onbewerkte prostaatbiopten werd geëvalueerd. Pathologen werden opgeleid om SRG-beelden te interpreteren van prostaatbiopsiekernen die ex vivo waren verkregen uit prostatectomiemonsters8. De SRH-scanmethode is geoptimaliseerd om binnen enkele minuten beelden met een hoge resolutie te kunnen verkrijgen, waardoor de benodigde tijd aanzienlijk wordt verkort in vergelijking met traditionele histopathologie. Biopsiemonsters met een mix van goedaardige en kwaadaardige histologie dienden als een trainingsset voor de pathologen, die vervolgens een geblindeerde evaluatie uitvoerden van een afzonderlijke set biopsieën die door SRH waren afgebeeld en door H&E-kleuring waren verwerkt om als grondwaarheid te dienen. De resultaten toonden aan dat de gemiddelde nauwkeurigheid van de patholoog voor het identificeren van prostaatkanker 95,7% was, met een goede overeenstemming bij het detecteren van klinisch significante kankers, wat aangeeft dat SRH de diagnose in bijna realtime effectief kan ondersteunen8.

In latere studies werd kunstmatige intelligentie (AI) geïntegreerd om de diagnostische nauwkeurigheid, efficiëntie en implementatiegemak verder te verbeteren. Dit AI-model maakt gebruik van deep learning-technieken om vibrationele en morfologische kenmerken te analyseren die zijn vastgelegd door SRH, waardoor geautomatiseerde classificatie van prostaatbiopsiemonsters in goedaardige, kankerachtige en niet-diagnostische regio's mogelijk is, waardoor het pathologische beoordelingsproces aanzienlijk wordt gestroomlijnd9. De SRH-AI-integratie toonde een indrukwekkende nauwkeurigheid en bereikte 96,5% bij de detectie van prostaatkanker, met gevoeligheids- en specificiteitspercentages van respectievelijk 96,3% en 96,6%9. Door AI te integreren met SRH werden diagnostische prestaties bereikt die overeenkwamen met die van ervaren pathologen.

Door de uitgebreide evaluatie van SRH met pathologen en de ontwikkeling van een AI-model dat is geïntegreerd in de SRH-imager, zijn de mogelijkheden van deze technologie aanzienlijk verbeterd. Dit protocol schetst de gedetailleerde stappen voor het voorbereiden van prostaatbiopsiemonsters, het beeldvorming ervan met behulp van de SRH-imager en het analyseren van de gegevens met AI-ondersteunde tools. Door deze stappen te volgen, kunnen onderzoekers en clinici deze nieuwe techniek gebruiken om de opsporing, het onderzoek en de behandeling van prostaatkanker te verbeteren.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

Dit protocol omvat het gebruik van menselijke exemplaren en voldoet aan de richtlijnen voor menselijke zorg van de University of British Columbia. Het onderzoek is goedgekeurd door de Institutional Review Board (IRB) onder de volgende ethische goedkeuringsnummers: SRH: H23-00459, AI: H24-00585 en Biobank: H21-03722. Voorafgaand aan het verzamelen van specimens werd schriftelijke geïnformeerde toestemming verkregen van alle proefpersonen. Alle procedures werden uitgevoerd in overeenstemming met institutionele en regelgevende ethische normen om de bescherming en vertrouwelijkheid van de deelnemers te waarborgen.

1. Zet de SRH Imager aan

  1. Schakel de SRH-imager in (Afbeelding 1A). Laat het systeem 30 minuten opwarmen om ervoor te zorgen dat de laser de optimale bedrijfstemperatuur bereikt voor nauwkeurige beeldvorming.

2. Bereid de vloeistofkamer voor

  1. Bevestig een spuit van 50 ml gevuld met gesteriliseerd water aan de spuitklep aan de linkerkant van de SRH-imager-interface (Afbeelding 1B). Zorg ervoor dat de spuit goed vastzit om een goede vloeistofcirculatie te behouden.

3. Log in op het systeem

  1. Zodra het systeem is geladen, gebruikt u de touchscreen-monitor om de gebruikersnaam en het wachtwoord in te voeren.
  2. Selecteer de juiste gebruikersnaam en typ het wachtwoord. Tik op Inloggen.
  3. Accepteer de disclaimer om te erkennen dat het onderzoek voor onderzoeksdoeleinden is indien het buiten de Verenigde Staten of de Europese Unie wordt gebruikt.

4. Maak een nieuw onderzoek aan

  1. Selecteer Nieuwe studie maken in de weergaveopties: Nieuwe studie maken, Bestaande studie voortzetten en Bestaande studie bekijken.

5. Voer case-informatie in

  1. Voer relevante casusinformatie in, waaronder achternaam, voornaam, medisch dossiernummer, geboortedatum, toetredingsnummer, studie-ID, naam arts, kamernummer, primaire anatomische locatie en analysemodule.
  2. Sla de samples op als John Doe (bijvoorbeeld).
  3. Selecteer onder Primaire anatomische locatie de optie Prostaat (alleen voor onderzoek).
  4. Kies voor de analysemodus Prostaatkanker (alleen voor onderzoeksgebruik) om de geïntegreerde AI te gebruiken voor de detectie van prostaatkanker.

6. Voltooi de studiecreatie en vul de vloeistofkamer

  1. Tik op Onderzoek maken nadat u de casusgegevens hebt ingevoerd.
  2. Wanneer het systeem hierom vraagt, tikt u op Bevestigen om te bevestigen dat de gegevens alleen voor onderzoeksdoeleinden worden gebruikt.
  3. Vul de vloeistofkamer met gesteriliseerd water volgens de instructies.
  4. Tik op Volgende wanneer daarom wordt gevraagd en selecteer vervolgens Verkrijgen uit de weergegeven opties.
  5. Tik op Nieuw monster laden en het systeem geeft Monster voorbereiden en NIO-dia laden weer.

7. Voorbereiding van het preparaat en het objectglaasje

  1. Haal het prostaatbiopsieglaasje op. Gebruik een tissuetang met tanden om het bijgevoegde dekglaasje voorzichtig te openen. Terwijl u het glaasje en het dekglaasje open houdt, gebruikt u de weefseltang om de prostaatbiopsie van de RPMI-media stevig in de groef van het glaasje te plaatsen. Sluit het dekglaasje voorzichtig en zet het monster vast.
  2. Open de diahouder op de SRH-imager-interface en plaats de voorbereide dia in de diahouder, zorg voor een goede uitlijning. Sluit het deksel van de SRH-imager. Wanneer het systeem het gesloten deksel detecteert, tikt u op Volgende om verder te gaan.

8. Stel parameters voor beeldacquisitie in

  1. Stel de volgende beeldvormingsparameters in:
    1. Voor de naam van het monster: Selecteer Biopsie 1 A voor de eerste biopsie.
    2. Voor scangebied: Selecteer 0,4 mm x 6,1 mm, 3 regio's (alleen voor onderzoek) om de volledige biopsie te scannen.
    3. Voor scanpositie: Gebruik de afbeelding op het scherm om de scanlocatie handmatig aan te passen.
  2. Tik op Afbeelding ophalen om verder te gaan.
  3. Bekijk de voorbeelddetails die op het scherm worden weergegeven en bevestig door Doorgaan te selecteren.

9. Verkrijg het SRG-imago

  1. Laat de SRH-imager autofocus gebruiken en beelden maken die het uiteindelijke SRH-beeld genereren.
  2. Laat de imager de biopsie in drie secties scannen (scan 1, scan 2 en scan 3) zoals weergegeven in afbeelding 2A.
  3. Laat de imager de secties combineren om een compleet SRH-beeld te vormen (Figuur 2B), waardoor een pseudo-H&E-beeld ontstaat voor evaluatie.

10. Weergave van het SRG-beeld

  1. Bekijk het SRH-beeld van de verse, ongekleurde prostaatbiopsie. De afbeelding bootst H&E-kleuring na met behulp van een roze/paars kleurenschema dat CH2 moleculaire trillingen (geassocieerd met lipiden) en CH3 moleculaire trillingen (gerelateerd aan eiwitten en DNA) benadrukt.

11. AI-interpretatie van het SRG-beeld alleen voor onderzoeksgebruik

  1. Pas de AI-overlay toe door op het pictogram (>>) op het scherm te klikken. De AI-overlay identificeert kankergebieden in rood, niet-kankergebieden in groen en niet-diagnostische regio's in violet (Figuur 3A).
  2. Bekijk het staafdiagram dat het percentage kankerweefsel, niet-kankerweefsel en niet-diagnostisch weefsel kwantificeert (Figuur 3B).
  3. Keer terug naar de oorspronkelijke SRH-afbeelding zonder de AI-overlay door op het pictogram (<<) te klikken.

12. Zoom en navigatie van het SRG-beeld

  1. Gebruik de in- en uitzoomfuncties op het touchscreen om verschillende delen van de biopsie in detail te verkennen.
  2. Gebruik de navigatiepictogrammen om door de afbeelding te navigeren voor een uitgebreid onderzoek van het biopsiemonster.

13. Isolatie van geselecteerd weefsel

  1. Verwijder na de eerste scan voorzichtig de biopsie van het objectglaasje. Gebruik een weefseltang met tanden om het bijgevoegde dekglaasje op te tillen en de biopsie voorzichtig los te maken.
  2. Plaats de biopsie op een bevochtigde Telfa gedrenkt in zoutoplossing om de integriteit van het weefsel te behouden tijdens het trimmen.
  3. Gebruik een chirurgisch mesje om niet-kankergebieden bij te snijden die zijn geïdentificeerd in de door AI gegenereerde overlay van het SRG-beeld door de overlay visueel te beoordelen om de optimale gebieden voor verwijdering te bepalen. Concentreer u op het verwijderen van gebieden die zich doorgaans aan de uiteinden van de biopsie bevinden om de verhouding tussen kanker en weefsel te verhogen. Zorg ervoor dat er voldoende weefsel overblijft om opnieuw te scannen.

14. Scan de biopsie opnieuw

  1. Scan de biopsie opnieuw volgens dezelfde procedure als beschreven in stap 9-11.
  2. Pas het scangebied en de positie aan om een verhoogde kanker-weefselverhouding te bevestigen (te zien in figuur 3C-E). Bekijk de bijgewerkte SRH-afbeelding en AI-overlay om de percentages kanker- en niet-kankerregio's te verifiëren.
  3. Herhaal het bijsnijden en opnieuw scannen totdat de gewenste verhouding is bereikt.

15. Biobankieren en cryopreservatie

  1. Verwijder de biopsie van het objectglaasje met behulp van een weefseltang met tanden. Plaats de biopsie in een cryobuis.
  2. Vries de cryobuis in vloeibare stikstof in om een snelle bewaring van het monster te garanderen.
  3. Breng de cryobuis in vloeibare stikstof over naar een vriezer van -80 °C of een opslagfaciliteit voor vloeibare stikstof voor langdurige bewaring.

16. Afbeeldingsgegevens exporteren

  1. Tik op het pictogram van het papieren vliegtuigje om afbeeldingsgegevens te exporteren voor opslag en verdere analyse.
  2. Om de exportlocatie te selecteren, tikt u op de optie Exportlocatie selecteren en kiest u uit USB (Gede-identificeerd), USB (Compleet) en iPhone (Compleet). Selecteer USB (Compleet) en kies een externe harde schijf voor het exporteren van gegevens.
  3. Als u de beeldreeks wilt selecteren die u wilt exporteren, selecteert u Gehele onderzoek om alle SRG-beeldreeksen voor de patiënt te exporteren in plaats van een specifieke reeks.
  4. Wacht tot het systeem Export in Progress weergeeft en tik op Bevestigen zodra de export is voltooid.

17. Schakel de SRH-microscoop uit

  1. Tik op Afsluiten en volg de afsluitinstructies die op het scherm worden weergegeven.
  2. Selecteer Doorgaan zonder wanneer u wordt gevraagd om afbeeldingsgegevens te archiveren (indien al geëxporteerd).
  3. Gooi het monster weg volgens de juiste laboratoriumprotocollen.
  4. Tik op Volgende en leeg de vloeistofkamer met behulp van de bijgevoegde spuit, volgens de instructies.
  5. Tik op Volgende wanneer daarom wordt gevraagd en selecteer vervolgens Ja in de weergegeven opties.
  6. Verwijder de spuit en gooi deze weg.
  7. Tik op Afsluiten om de SRH-microscoop volledig uit te schakelen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

De toepassing van SRH geïntegreerd met AI demonstreerde de snelle detectie en karakterisering van prostaatkanker in biopsiemonsters in enkele minuten. Figuur 2A schetst de scanprocedure in meerdere stappen van de SRH-imager, waarbij drie afzonderlijke scans (scan 1, scan 2 en scan 3) werden uitgevoerd in het biopsiemonster. Elke scan legde unieke moleculaire trillingssignaturen vast die overeenkomen met het lipide-, eiwit- en DNA-gehalte, essentieel voor het...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Het SRG-protocol voor de opsporing van prostaatkanker vertegenwoordigt een aanzienlijke vooruitgang in medische beeldvorming en histopathologie. SRH maakt bijna realtime, labelvrije beeldvorming van vers, ongekleurd weefsel mogelijk, waardoor kanker snel kan worden opgespoord zonder de vertragingen die gepaard gaan met traditionele histopathologische methoden 3,4,5,6,7,8,9.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

C. Freudiger is werknemer, aandeelhouder en directeur van Invenio Imaging en bezit patenten op gestimuleerde Raman-spectroscopische microscopie die onafhankelijk in licentie zijn gegeven. A. Ion-Margineanu is aandeelhouder van Invenio Imaging.

Dankbetuigingen

We erkennen de bijdragen van het onderzoeksteam van het Vancouver Prostate Centre en NYU Langone Health, en de technische ondersteuning van Invenio Imaging. Dit werk werd gefinancierd door de Innovation Hub van het British Columbia Ministry of Health.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Benchtop Liquid Nitrogen ContainerThermo Scientific11-670-4B
CytotubeGreiner Bio-One126279
Dumont #5 Fine ForcepsFine Science Tools11254-20
NIO Prostate Biopsy SlideInvenio Imaging, Inc.AT0013
RPMI SolutionThermo Fisher Scientific11875093
Saline SolutionBaxter
SRH Imager (NIO Laser Imaging System)Invenio Imaging, Inc.
Surgical BladeFisher Scientific501094395

Referenties

  1. Siegel, R. L., Miller, K. D., Jemal, A. Cancer statistics, 2020. CA Cancer J Clin. 70 (1), 7-30 (2020).
  2. Epstein, J. I., et al. The 2014 International Society of Urological Pathology (ISUP) Consensus Conference on Gleason Grading of Prostatic Carcinoma: Definition of grading patterns and proposal for a new grading system. Am J Surg Pathol. 40 (2), 244-252 (2016).
  3. Freudiger, C. W., et al. Stimulated Raman scattering microscopy with a robust fibre laser source. Nat Photonics. 8 (2), 153-159 (2014).
  4. Freudiger, C. W., et al. Label-free biomedical imaging with high sensitivity by stimulated Raman scattering microscopy. Science. 322 (5909), 1857-1861 (2008).
  5. Hu, F., Shi, L., Min, W. Biological imaging of chemical bonds by stimulated Raman scattering microscopy. Nat Methods. 16 (9), 830-842 (2019).
  6. Cheng, Q., Miao, Y., Wild, J., Min, W., Yang, Y. Emerging applications of stimulated Raman scattering microscopy in materials science. Matter. 4 (5), 1460-1483 (2021).
  7. Orringer, D. A., et al. Rapid intraoperative histology of unprocessed surgical specimens via fibre-laser-based stimulated Raman scattering microscopy. Nat Biomed Eng. 1, 0027(2017).
  8. Mannas, M. P., et al. Stimulated Raman histology, a novel method to allow for rapid pathologic examination of unprocessed, fresh prostate biopsies. Prostate. 83 (11), 1060-1067 (2023).
  9. Mannas, M. P., et al. Stimulated Raman histology interpretation by artificial intelligence provides near-real-time pathologic feedback for unprocessed prostate biopsies. J Urol. 211 (3), 384-391 (2024).
  10. Mannas, M. P., et al. Intraoperative margin assessment with near real time pathology during partial gland ablation of prostate cancer: A feasibility study. Urol Oncol. 43 (1), 64.e19-64.e25 (2024).
  11. Mannas, P. M., et al. MP61-18 stimulated Raman histology, a novel method for intraoperative surgical margin assessments during robotic assisted laparoscopic prostatectomy. J Urol. 209 (Supplement 4), (2023).
  12. Hollon, T., et al. Artificial-intelligence-based molecular classification of diffuse gliomas using rapid, label-free optical imaging. Nat Med. 29 (4), 828-832 (2023).
  13. Lee, M., et al. Recent advances in the use of stimulated Raman scattering in histopathology. Analyst. 146 (3), 789-802 (2021).
  14. Sarri, B., et al. In vivo organoid growth monitoring by stimulated Raman histology. Npj Imaging. 2 (1), 18(2024).
  15. Ao, J., et al. Stimulated Raman scattering microscopy enables Gleason scoring of prostate core needle biopsy by a convolutional neural network. Cancer Res. 83 (4), 641-651 (2023).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

Detectie van prostaatkankerSRS microscopielabelvrije beeldvormingpreparatie van biopsiemonstersdiagnostische workflowtumordetectieintraoperatieve toepassingen

Gerelateerde artikelen