1. De voorbereiding van actine
De bron van actine die in deze test was niet-spier menselijke bloedplaatjes (β-actine) verkregen van cytoskelet Inc Stock fracties bij 10 mg / ml worden bewaard in de -70 º C vriezer. Voor de test, is het actine verdund tot 0,4 mg / ml in een buffer die 5 mM Tris pH 8, 0,2 mM CaCl2, 0,2 mM ATP en 0,5 mM DTT, gecentrifugeerd bij 20.000 g gedurende 10 minuten bij 4 º C. De bovenstaande vloeistof, die wordt monomere actine is klaar om te worden gepolymeriseerd. Actine polymerisatie wordt veroorzaakt door de toevoeging 50 mM KCl, 1 mM ATP en 2 mM MgCl 2. De polymerisatie gebeurt bij kamertemperatuur gedurende 1 uur.
2. Toebereiding van proteïne
In deze test gebruiken we de C-terminus van Tallinn, die is gezuiverd als een GST-gelabeld eiwit. Het eiwit te gebruiken in de test wordt onderworpen aan een hoge snelheid centrifugeren om pre-clear van aggregaten voorafgaand aan de incubatie met F-actine.
Het eiwit wordt gesponnen bij 100.000 g in een Beekman ultracentrifuge voor 20 minuten bij 22 º C.
3. Actine-eiwit Incubatie
De hoeveelheid actine en eiwit in een assay zal variëren. In dit voorbeeld gebruiken we actine in overmaat. Normaal gesproken wordt een molaire verhouding berekend, bijvoorbeeld. een 4:1 molaire verhouding van actine aan eiwit.
In de volgende test, het uiteindelijke reactie volume is 150 pl. De buffer, waarin het eiwit en F-actine worden geïncubeerd zal afhangen van het eiwit te testen en over het vereiste voorwaarden. In dit voorbeeld gebruiken we een buffer die 10 mM Tris pH 7,0, 1 mM ATP, 0,2 mM DTT, 1 mM EGTA, 0,1 mM CaCl 2 en 2 mM MgCl 2. Het eiwit-en F-actine worden geïncubeerd in de buffer gedurende 1 uur bij kamertemperatuur.
4. Sedimentatie van F-actine
Na de incubatie, zijn de monsters gecentrifugeerd bij 100.000 g bij 22 º C. We maken gebruik van een Beekman ultracentrifuge in de video. De rotor is voorzichtig verwijderd, omdat niet aan de pellets verstoren.
5. Analyse van proteïne co-afzetting met F-actine
De supernatanten worden zorgvuldig verwijderd door pipetteren in een eppendorfbuisje en 5 X Laemmli SDS-PAGE sample buffer wordt toegevoegd. Een geschikt volume van een X Laemmli SDS-PAGE sample buffer wordt toegevoegd aan de pellets resterende gepipetteerd op en neer, en overgebracht naar nieuwe eppendorf buizen. De relatieve hoeveelheden van eiwit in de pellets en de supernatanten worden geanalyseerd na hun scheiding door SDS-PAGE en Coomassie Blue kleuring van de gel of Western blotting.
Met het oog op de specificiteit van eiwit interacties te bepalen met actine, de concentratie actine-afhankelijke co-afzettingen kunnen worden uitgevoerd. Voor dit soort van experiment, een vast bedrag van het eiwit en een reeks van toenemende hoeveelheden van actine worden geïncubeerd, en de analyse wordt uitgevoerd zoals hierboven beschreven.