$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Dit experimentele onderzoek werd uitgevoerd met goedkeuring van de Institutional Animal Care and Use Committee (goedkeuringsnummer: LL-240077).
Celkweek en medicamenteuze interventie
Rat Schwann-cellen (SC's) werden gekweekt in Schwann Cell Medium, bestaande uit basaal medium, 5% foetaal runderserum, 1% Schwann-celgroeisupplement, 1% penicilline en 1% streptomycine. Alle cellen werden bewaard in een atmosfeer van 5% CO2 bij 37 °C. Wanneer ze mochten groeien tot een dichtheid van 70-80%, werden SC's verdeeld in vier groepen (n = 5 per groep): (1) NC-groep; (2) NC+CoCl2-groep ; (3) NC+CoCl2+Mus groep; (4) NC+CoCl2+siIL-1R1+Mus groep.
Van kobaltchloride (CoCl2), een vaak gebruikt middel om hypoxie na te bootsen, is bekend dat het reacties veroorzaakt die vergelijkbaar zijn met die van hypoxie, zoals de belemmerende afbraak en stabilisatie van hypoxie-induceerbare factoren en accumulatie van HIF-1α-eiwit15. Volgens de aangepaste methode op basis van Osuru et al.17 werden in de NC+CoCl2-groep en de NC+CoCl2+Mus-groep SC's gekweekt in Schwann Cell Medium aangevuld met 240 μM CoCl2 gedurende 8 uur, bij atmosferische omstandigheden van 95% lucht en 5% CO2 bij 37 °C in een bevochtigde incubator (21% O2). Vervolgens werd in de Mus-groepen de interventie van 1,25 μg/ml Mus gedurende nog eens 24 uur toegepast. Ondertussen werden de SC's in de NC+CoCl2+siIL-1R1+Mus-groep eerst behandeld met 24 uur siRNA-infectie, vervolgens continu gekweekt met 240 μM CoCl2 gedurende 8 uur, gevolgd door de interventie van 1,25 μg/ml Mus gedurende nog eens 24 uur, zoals in de eerste groepen. Het stroomschema van het experimentele proces is weergegeven in figuur 1.
Test op de levensvatbaarheid van cellen
De levensvatbaarheid van SC's werd bepaald met behulp van het celtellingskit-8 (CCK-8) testreagens volgens de instructies van de fabrikant. Gekweekte SC's met een dichtheid van 5 × 105 cellen/putje werden gezaaid in een celkweekplaat met 96 putjes met 100 μL compleet groeimedium bij 37 °C in een 5% CO2 bevochtigde atmosfeer. Toen de confluentie 70-80% bereikte, werd 10 μL CCK-8-oplossing aan elk putje toegevoegd en werden de platen gedurende 1 uur bij 37 °C geïncubeerd. De optische dichtheid (OD) van de platen met 96 putjes werd gemeten bij 450 nm met behulp van een microplaatlezer en de levensvatbaarheid van de cel werd berekend. De cellen werden verdeeld in vier groepen: NC-groep, NC+CoCl2-groep , NC+CoCl2+Mus-groep en NC+CoCl2+siIL-1R1+Mus-groep. De experimentele resultaten werden gecorrigeerd met behulp van een blanco putje (medium+CCK8-oplossing). Overlevingspercentage van cellen = [(experimentele groep - lege put)/(NC-groep - lege put)] × 100%.
siRNA-transfectie
De transfectie werd uitgevoerd volgens de instructies van de fabrikant van een commercieel in vitro siRNA/miRNA transfectiereagens gebruikend synthetisch siRNA duplexen van siIL-1R1 (AUAGUCUUGGAUUUUCCAA, GGAGAAAAUCCAAGACUAUGA) met een concentratie van 100 ng/μL gedurende 24 h. Na siIL-1R1-transfectie werden de siIL-1R1-expressies beoordeeld door RT-qPCR-analyse uit te voeren na 24 uur van transfectie18, en de efficiëntie moet worden gegarandeerd om hoger dan 80% te zijn
Enzymgekoppelde immunosorbenttest (ELISA)
Post-cultuur supernatanten werden verzameld en gecentrifugeerd onder groepsspecifieke omstandigheden (2950 g, 20 min, 25 °C). Extracellulaire niveaus van IL-1β, TNF-α, ROS en SOD werden getest via ELISA volgens de instructies van de kit. De uiteindelijke extinctiewaarden bij 450 nm werden verkregen met behulp van een microplaatlezer.
RNA-isolatie en kwantitatieve real-time PCR (RT-qPCR)
Volgens de instructies van de fabrikant werd totaal RNA geëxtraheerd uit gekweekte cellen met behulp van TRizol-reagens. Doelgenen (IL-1β, TNF-α, S-100b, IL-1R1) werden geamplificeerd in 20 μL SYBR qPCR-mixreacties gedurende 40 cycli op een PCR-instrument. Gegevensnormalisatie gebruikt β-actine, waarbij de PCR-specificiteit werd geverifieerd door analyse van de smeltcurve. De 2−ΔΔCt-methode kwantificeerde relatieve expressie van vijf onafhankelijke monsters die in drievoud werden getest. Primers staan vermeld in Tabel 1.
Westerse vlek
Na de behandeling werden SC's van alle experimentele groepen gedurende 24 uur geïncubeerd en geoogst. Totaal eiwit werd geëxtraheerd met behulp van een totale eiwitextractiekit. Eiwitlysaten werden gecombineerd met natriumdodecylsulfaatpolyacrylamidegelelektroforese (SDS-PAGE) laadbuffer gedenatureerd bij 98 °C gedurende 5 minuten en gescheiden (20 μg per baan) op 10-12% SDS-polyacrylamidegels. Opgeloste eiwitten werden elektroforetisch overgebracht naar polyvinylideenfluoride (PVDF) membranen. De membranen werden gedurende 60 minuten bij kamertemperatuur geblokkeerd met 5% magere droge melk en vervolgens een nacht bij 4 °C geïncubeerd in een volume van 6 ml met de volgende primaire antilichamen: anti-HIF-1α-antilichaam (1:1000), anti-GAPDH-antilichaam (1:1000), anti-IL-1R1-antilichaam (1:1000), anti-C-JUN-antilichaam (1:1000), anti-GDNF-antilichaam (1:1000), anti-IRAK1-antilichaam (1:1000), anti-IKK-antilichaam (1:1000), anti-p65-antilichaam (1:800), anti-p50-antilichaam (1:900), anti-IκB-α-antilichaam (1:900) en anti-β-actine-antilichaam (1:1000). Na het wassen werden de membranen gedurende 60 minuten bij 25 °C gesondeerd met mierikswortelperoxidase (HRP)-geconjugeerde secundaire antilichamen. Eiwitsignalen werden gedetecteerd met behulp van Image Studio Digits Ver 4.0. Bandintensiteiten werden gekwantificeerd met ImageJ-software en genormaliseerd naar β-actine en GAPDH-expressie. Er werden drie onafhankelijke experimenten uitgevoerd.
Immunofluorescentie
IL-1R1-lokalisatie in SC's werd beoordeeld volgens Zhao et al.19. Oogst cellen tijdens de logaritmische groeifase door trypsinisatie, suspendeer ze opnieuw in vers volledig medium en trituleer grondig om een uniforme eencellige suspensie te verkrijgen. Zaai de cellen op kweekplaten met steriele dekglaasjes. Zodra de cellen volledige samenvloeiing hebben bereikt, spoelt u ze 1-2 keer af met fosfaatgebufferde zoutoplossing (PBS), verwijdert u voorzichtig de dekglaasjes en fixeert u de aanhangende cellen met 4% paraformaldehyde in PBS gedurende 10 minuten, permeabiliseert met 0,05% Triton X-100 (10 min) en blokkeert u met 5% geitenserum (1 uur). Primaire incubatie gebruikte konijn anti-rat IL-1R1 mAb. Na PBS-wasbeurten werden de monsters gedurende 2 uur bij kamertemperatuur geïncubeerd met FITC-geconjugeerd geitenanti-konijn IgG. Voeg wateroplosbare bevestigingsmiddelen toe aan de afdekbon voor montage. Immunogelabelde cellen werden gevisualiseerd en gekwantificeerd met behulp van een fluorescentiemicroscoop met een excitatiegolflengte van 492 nm en een emissiegolflengte van 520 nm.
Ultrastructuur analyse
Volgens protocol19 van Zhao et al. werden SC's gefixeerd in 2,5% glutaaraldehyde en 's nachts gefixeerd bij 4°C in 1% osmiumtetroxide. Monsters ondergingen een serie ethanol/aceton-dehydratatie. Ultradunne secties (80 nm) werden gekleurd met uranylacetaat en loodcitraat voorafgaand aan ultrastructureel onderzoek met behulp van een transmissie-elektronenmicroscoop.
Verwijdering van gevaarlijke chemische reagentia
Het medium en de oplossingen die CoCl2 bevatten, worden verzameld in een daarvoor bestemde afvalcontainer voor zware metalen. Alle wegwerpmaterialen die in contact zijn gekomen met de bovengenoemde vloeistoffen, inclusief pipetpunten, centrifugebuisjes en handschoenen, worden geclassificeerd als gevaarlijk afval van zware metalen en worden overgedragen aan een erkend bedrijf voor het beheer van gevaarlijk afval dat door de relevante autoriteiten is goedgekeurd voor correcte verwijdering. Gooi het paraformaldehyde-afvaloplossing weg in een speciale aldehyde-afvalcontainer. Gebruikte verbruiksartikelen moeten worden ingezameld als aldehydeafval en worden verwerkt door hetzelfde erkende bedrijf voor het beheer van gevaarlijk afval.
Statistische analyse
Vergelijkingen met meerdere groepen werden geanalyseerd door eenrichtings-ANOVA met Tukey's post-hoctest in GraphPad Prism 8.0. Statistische significantie werd gedefinieerd als P < 0,05. De gegevens worden weergegeven als gemiddelde ±± standaarddeviatie (SD).