Alle dierproeven werden uitgevoerd in overeenstemming met de ethische normen voor proefdieren die zijn opgesteld door de afdeling Wetenschap en Technologie van het Sichuan Hoger Instituut voor Traditionele Chinese Geneeskunde (Goedkeuring nr: 2023DS01). De gebruikte reagentia en de gebruikte apparatuur staan vermeld in de materiaaltabel.
1. Experimenteel ontwerp en procedure
- Dieren
Zesendertig mannelijke, 12 weken oude CD-Sprague-Dawley-ratten werden gehuisvest en gedurende de experimentele periode voorzien van ad libitum voeding. De omgeving werd op een temperatuur van 20-25 °C en een luchtvochtigheid van 50%-60% gehouden, met een licht/donkercyclus van 12 uur.
- Ontwerp van de groep
Na een week adaptieve voeding werden de ratten willekeurig toegewezen aan een controlegroep (Con, n = 6) of een uitputtende oefengroep (EE, n = 30). De ratten in de EE-groep ondergingen aanpassingstraining door gedurende drie dagen met een snelheid van 10 m/min 15 minuten op een bergopwaartse loopband met een helling van 10 graden te rennen. Na de adaptieve training werd de EE-groep verder onderverdeeld in vijf tijdsubgroepen: 0 uur, 6 uur, 12 uur, 24 uur en 48 uur na uitputtende oefening.
- Interventie procedure
Ratten in de controlegroep oefenden niet, terwijl die in de EE-groep uitputtend renden op een bergopwaartse loopband met een helling van 10 graden (Figuur 1A). Volgens het Bedford-protocol9 werd de trainingsbelasting verdeeld in drie niveaus: niveau 1 met 10 m/min gedurende 15 minuten, niveau 2 met 15 m/min gedurende 15 minuten en niveau 3 met 20 m/min tot uitputting (Figuur 1B). Uitputting werd vastgesteld wanneer een rat niet meer kon rennen en binnen een periode van minder dan 1 minuut10 drie keer op de baan bleef steken, ondanks herhaalde elektrische (150 V, 0,5 mA wisselstroom) en geluidsstimulatie met lage intensiteit (70 dB).
De ratten werden geofferd via overmatige intraperitoneale injectie van 3% natriumpentobarbital (200 mg/kg) op de gespecificeerde tijdstippen (0 uur, 6 uur, 12 uur, 24 uur en 48 uur na uitputtingsinspanning). De huid en het onderhuidse weefsel van de calcaneus werden zorgvuldig ontleed en de achillespees werd 2 cm boven de calcaneus afgesneden met een oogheelkundige schaar. De rechter calcaneus (inclusief de aangehechte achillespees) werd geconserveerd in 4% paraformaldehyde voor histopathologisch onderzoek en immunohistochemisch onderzoek. Bovendien werden drie willekeurige monsters van de linkerkant opgeslagen in 2% paraformaldehyde-2,5% glutaaraldehyde-oplossing voor elektronenmicroscopie om ultrastructurele veranderingen te bestuderen ( Figuur 1C).
2. Histologie van pees-botovergang
De monsters werden gedurende 48 uur gefixeerd in 4% paraformaldehyde en gedurende 4 weken bij kamertemperatuur (20-25 °C) ontkalkt met 15% EDTA, waarbij de oplossing dagelijks werd ververst. Het ontkalkingsproces eindigde toen het bot gemakkelijk met een naald kon worden doorboord zonder enige kracht uit te oefenen. Na ontkalking ondergingen de monsters dehydratatie via een geautomatiseerd proces met een gesorteerde reeks ethanol en xyleen, gevolgd door drie wasbeurten met PBS. De monsters werden sagittaal ingebed in paraffine en doorgesneden bij 5 μm. Hematoxyline-eosinekleuring werd uitgevoerd volgens standaardprocedures en beelden werden vastgelegd met een digitaal trioculair microcamerasysteem van Panthera met een vergroting van 20× en 40×.
3. Elektronenmicroscopie scan
De linkermonsters werden gedurende 48 uur voorafgegaan door 2% paraformaldehyde-2,5% glutaaraldehyde, vervolgens gedehydrateerd in een reeks acetonoplossingen, geïnfiltreerd in een epoxy-uithardingsanalysator en sagittaal ingebed. Halfdunne secties werden gekleurd met methyleenblauw om het pees-botovergangsgebied te identificeren. Ultradunne secties, ongeveer 60-90 nm dik, werden gesneden met een diamantmes. Deze secties werden gedurende 10-15 minuten gekleurd met uranylacetaat, gevolgd door loodcitraat gedurende 1-2 minuten. De secties werden onderzocht onder een transmissie-elektronenmicroscoop bij vergrotingen van 6000×, 12000× en 25000×.
4. Immunohistochemische test
De pees-botovergang werd routinematig ontkalkt en doorgesneden zoals eerder beschreven. Na incubatie met een oplossing voor het ophalen van citraatbufferantigeen gedurende 10 minuten, werden de monsters gedurende 10 minuten behandeld met 3% H2O2 om de endogene peroxidaseactiviteit te blokkeren, gevolgd door blokkering met normaal geitenserum gedurende 20 minuten bij 25 °C. De secties werden vervolgens een nacht bij 4 °C geïncubeerd met primaire antilichamen, waaronder GRP78 (1:100), CHOP (1:100 ) en Caspase-12 (1:100). Vervolgens werden de monsters gedurende 2 uur bij 25 °C geïncubeerd met secundaire antilichamen. Kleurontwikkeling werd bereikt met DAB gedurende 8 minuten bij 25 °C, wat resulteerde in een bruingeel positief signaal. De kernen werden gedurende 3 minuten opnieuw gekleurd met hematoxyline. Image-Pro Plus 6.0-software werd gebruikt om de gemiddelde dichtheid te analyseren. Drie interessegebieden van het pees-botovergangsgebied (pees, fibrokraakbeen en gemineraliseerd fibrokraakbeen) werden geselecteerd voor analyse en de gemiddelde waarde werd berekend.
5. Statistische analyse
GraphPad Prism 8 werd gebruikt om de gegevens te analyseren en grafieken te genereren. Alle gegevens worden uitgedrukt als gemiddelde ± standaarddeviatie. Vergelijkingen tussen verschillende groepen werden gemaakt met behulp van eenrichtings-ANOVA, en de Least Significant Difference (LSD)-test werd gebruikt voor paarsgewijze vergelijkingen. Een P-waarde van < 0,05 werd als statistisch significant beschouwd.