Alle dierprocedures werden uitgevoerd volgens de institutionele richtlijnen en goedgekeurd door de Animal Ethics Committee van de Nanjing University of Chinese Medicine (Ethische Goedkeuring nr. 202108A006). Al het afval dat werd geproduceerd tijdens celkweek en kleuringsprocedures werd verzameld in afgesloten containers en biohazardzakken en afgevoerd door een erkende medische afvalbeheerdienst.
Diermodel en therapeutische interventies
Om interindividuele variatie te minimaliseren, werden 40 muizen willekeurig toegewezen aan vijf groepen (n = 8 per groep) en onderworpen aan de volgende interventies: (1) Controlegroep: Kreeg intragastrische toediening van 0,2 mL zoutoplossing per muis; (2) Modelgroep: Kreeg dagelijks subcutane injecties van D-galactose (250 mg/kg), toegediend als 0,2 mL van een 25 mg/mL oplossing per muis; (3) CCP-groep met lage dose: Kreeg D-galactose-injecties gecombineerd met intragastrische toediening van CCP bij 50 mg/kg (0,2 mL van een 5 mg/mL oplossing per muis); (4) Hoogdosis CCP-groep: Kreeg D-galactose-injecties gecombineerd met intragastrische toediening van CCP bij 100 mg/kg (0,2 mL van een 10 mg/mL oplossing per muis); (5) Vitamine E-groep: Kreeg D-galactose-injecties gecombineerd met intragastrische toediening van vitamine E bij 100 mg/kg (0,2 mL van een 10 mg/mL oplossing per muis). Na 8 weken behandeling werden muizen geëuthanaseerd en werden serum-, urine- en nierweefselmonsters verzameld voor latere analyses.
Analyse van de nierfunctie
De nierfunctie werd beoordeeld met commerciële assay-kits om creatinine, urinezuur en urine-eiwit te meten volgens de instructies van de fabrikant. De absorptiewaarden werden gemeten op 505 nm voor creatinine, 510 nm voor urinezuur en 585 nm voor urineproteïne met behulp van een multifunctionele microplaatlezer.
Weefseldoorsnedekleuring
Paraffine-ingebedde nierweefsels werden doorgesneden met een dikte van 4 μm. De secties werden gedeparaffiniseerd, 5 minuten geïncubeerd met hematoxyline, afgespoeld met stromend water, gedifferentieerd met 1% zuuralcohol gedurende 5 seconden, en opnieuw afgespoeld. Na een 1 minuut durende fosfaatgebakken zoutoplossing (PBS) wasbeurt werden secties 3 minuten gekleurd met eosine, gedehydrateerd en gemonteerd. Voor Massons trichrome kleuring werden secties gedeparaffiniseerd en gekleurd met hematoxyline zoals hierboven beschreven, gevolgd door Ponceau S gedurende 5 minuten en anilineblauw gedurende 5 minuten. Secties werden vervolgens uitgedroogd en gemonteerd.
Cellevensvatbaarheidstest
HK-2-cellen werden in 12-wellplaten geplaatst met 1 × 10⁵ cellen per put. Na 24 uur blootstelling aan D-galactose en Cordyceps-polysacchariden werd 10% CCK-8-oplossing aan elke put14 toegevoegd. Na incubatie bij 37 °C gedurende 30 minuten werd de absorptie geregistreerd bij 450 nm met een microplaatlezer. Kwaliteitscontroledocumentatie voor Cordyceps-polysacchariden en STR-authenticatie van HK-2-cellen wordt verstrekt in Supplemental File 1.
Omgekeerde transcriptie kwantitatieve polymerasekettingreactie
Na 24 uur celkweek werd het kweekmedium verwijderd en werd het totale RNA geëxtraheerd met het extractiereagens. De RNA-concentratie werd bepaald met een microplaatspectrofotometer en de integriteit van RNA werd geverifieerd door 2% agarosegelelektroforese. Genomisch DNA werd verwijderd en cDNA werd gesynthetiseerd door reverse transcriptie. Primerreeksen worden vermeld in de Materiaaltabel.
Meting van intracellulaire ROS-niveaus
HK-2-cellen werden in 12-wellplaten geplaatst met 1 × 10⁵ cellen per put. Bij het bereiken van 60-70% confluentie ondergingen cellen een voorbehandeling met D-galactose gedurende 12 uur. Na 24 uur blootstelling aan het medicijn werd het medium afgevoerd en werden de cellen één keer gespoeld met PBS. Intracellulaire ROS werd gedetecteerd door incubatie met een ROS-gevoelige fluorescerende sonde bij 37 °C gedurende 20 minuten, en fluorescentiebeelden werden gemaakt bij excitatie-/emissiegolflengten van 488/525 nm15.
Westelijk vlek
Cellulaire eiwitten werden gelyseerd met behulp van een RIPA-buffer en geklarificeerd door centrifugatie bij 13.000 × g gedurende 15 minuten bij 4 °C. Eiwitten werden gedenatureerd door 10 minuten te koken, en gelijke hoeveelheden eiwit (20 μg per monster) werden elektroforetisch gescheiden en overgedragen aan PVDF-membranen. Na 1 uur blokken werden membranen 's nachts geïncubeerd met primaire antistoffen. Vervolgspoelingen van PBST werden gevolgd door incubatie met HRP-geconjugeerde secundaire antilichamen, en detectie werd uitgevoerd met een versterkt chemiluminescentie (ECL) substraat16. Gegevens over antistoffen en reagensidentificaties staan vermeld in de Materiaaltabel.
SA-β-gal verouderingskleuring
HK-2-cellen werden geplateerd in platen met 12 putten met een dichtheid van 1 × 10⁵ cellen per put. Wanneer de cellen 60-70% confluentie bereikten, werden ze voorbehandeld met D-galactose gedurende 12 uur. SA-β-gal kleuring werd uitgevoerd volgens het protocol van de fabrikant, en gekleurde cellen werden waargenomen met een optische microscoop17.
Meting van het mitochondriale membraanpotentiaal
Het mitochondriale membraanpotentiaal werd geëvalueerd met de JC-1 fluorescentieprobe volgens de instructies van de leverancier. JC-1 monomeren werden gedetecteerd bij excitatie-/emissiegolflengten van 490/530 nm, terwijl JC-1 aggregaten werden gedetecteerd bij 525/590 nm. Beelden werden gemaakt wanneer heldere rode of groene fluorescentiesignalen werden waargenomen.
Statistische analyse
De gegevens werden gepresenteerd als staaf- of puntdiagrammen en geanalyseerd met behulp van de geraadpleegde software. Western-blotbandintensiteiten werden gekwantificeerd met behulp van ImageJ. De gegevens werden geanalyseerd door variantieanalyse (ANOVA) met daaropvolgende t-tests voor vergelijkingen tussen groepen. Statistische significantie werd gedefinieerd als een P-waarde < 0,05. Symbolen geven vergelijkingen aan met de controlegroep (*) of de D-gal groep (#) (*P < 0,05, **P < 0,01, ***P < 0,001).