$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Het protocol werd goedgekeurd door het Institutioneel Comité voor Biomedisch Onderzoek bij Mensen (CIIBH) van het Instituto Nacional de Ciencias Médicas y Nutrición Salvador Zubiran (INCMNSZ) (REFERENTIE 1734). Alle deelnemers gaven geïnformeerde toestemming voordat ze in deze studie werden opgenomen.
Studieontwerp en populatie
Dit was een gerandomiseerde, placebogecontroleerde, dubbelblinde klinische studie met een follow-upperiode van 5 weken. Werknemers van de INCMNSZ werden uitgenodigd om deel te nemen aan de studie, en gezonde vrijwilligers van 20–50 jaar zonder antimicrobiële behandeling in de voorgaande maand die het informed consent-formulier accepteerden en ondertekenden, werden tussen 2011 en 2012 opgenomen. De proefpersonen werden 1:1 gerandomiseerd in de Synbiotic Gel-groep met 10,32 g agave-inuline als prebioticum en 4 × 109 CFU/g Lactobacillus acidophilus NCFM en 4 × 109 CFU/g Bifidobacterium lactis Bi07 per dag, opgenomen in 4 zakjes gedurende 5 weken, en 200 mg rifaximine twee keer per dag gedurende de eerste week. De placebo-gelgroep kreeg 4 pakjes van 15 g placebogel, met dezelfde presentatie en sensorische kenmerken als de synbiotische gel, gedurende 5 weken, en 200 mg rifaximine tweemaal daags gedurende de eerste week (Figuur 1).
Klinische evaluatie
In beide studiegroepen werden symptomen en ontlasting beoordeeld met behulp van de Bristol Scale. Gewicht, lengte en body mass index (BMI) werden ook gemeten. Er werd een dagboek gebruikt om de consumptie van synbiotische gel, placebogel en rifaximine te evalueren en om de aanwezigheid of afwezigheid van bijwerkingen gerelateerd aan gelinname te registreren.
Vezelconsumptie
De vezelinname werd beoordeeld met behulp van een voedingsdagboek en een 24-uurs terugroepactie per week in beide groepen.
Therapietrouw
De naleving van het gebruik van rifaximine en gel werd geëvalueerd door het aantal doseringen rifaximine en het aantal geurzakjes synbiotische en placebogels per deelnemer te tellen. De aanwezigheid van Lactobacillus acidophilus en Bifidobacterium lactis werd vastgesteld met behulp van Polymerase-kettingreactie (PCR).
Microbiologische beoordeling van ontlasting
Bij bezoek 0 en wekelijks voor 5 bezoeken (6 bezoeken) per groep werden de aantallen Lactobacillen, Bifidobacteriën en Enterobacteriën geëvalueerd in 120 ontlastingsmonsters met de plaattellingsmethode. Deze methode meet kolonievormende eenheden (CFU) door verdunde monsters op gespecialiseerd vast medium10 te plaatsen. Aan het begin van elk bezoek werden ontlastingsmonsters verzameld.
Om micro-organismen te identificeren, werden ontlastingsmonsters verzameld en opgeslagen in BBL-buizen. Het PBG-flesje werd gebruikt voor anaerobe bacteriën, en fecale monsters werden vervoerd in een piepschuimen koeler met bevroren gelpacks om een lage temperatuur te behouden voordat ze in het laboratorium verwerkt werden. Het deksel van het PBG-flesje voor coprocultuur werd verwijderd en het ontlastingsmonster werd met een wattenstaafje genomen, zodat het wattenstaafje met het monster werd geïmpregneerd. De applicator werd vervolgens in een buis geplaatst met een vast kweekmedium.
Voor anaerobe bacteriën werden de flesjes gewogen en werd 5–10 g ontlasting met een lepel verzameld. De ontlasting werd vervolgens gemengd met de inhoud van het flesje en stevig verzegeld. Voor de verwerking van monsters werden de flesjes met de monsters en steriele Stomacher-zakken gewogen. Het monster werd in een zak geleegd, 60 seconden gecentrifugeerd, waarna 4,5 mL 0,1% peptonwater werd toegevoegd. Vervolgens werd 500 μL van het monster overgebracht in een buisje en gevortexed om het mengsel te homogeniseren. Nadat 100 μL van het monster dubbel was geïnëntificeerd op elke plaat van het specifieke selectiemedium, Man Rogosa Sharpe (MRS) medium voor lactobacillen en DP Beerens medium met cysteïne + cycloheximide (om ongewenste flora te elimineren) voor bifidobacteriën, tot verdunning 8 (verdunningsfactor 0,1 mL). Voor enterobacteriën werd MacConkey-medium gebruikt bij verdunningen van 5–8 (verdunningsfactor 0,1 mL), waarbij bacteriële kolonies werden gescheiden en gekwantificeerd11. Elk medium poeder werd opgelost in gezuiverd gedestilleerd water, de oplossing werd tot kookpunt verhit om volledige oplossing te garanderen, en het werd 15 minuten gesteriliseerd in een autoclaaf bij 121 °C. Het mengsel werd afgekoeld tot 46,5 °C om de gietplaattechniek uit te voeren, waarbij 1 mL per bord dubbel werd gegoten in steriele Petrischalen met 15–20 mL kweekmedium, waardoor de platen konden stollen. De geïnëntificeerde monsters werden geïncubeerd bij 37 °C in een CO2-verrijkte atmosfeer in anaerobe GasPak-systemen om anaerobe omstandigheden gedurende 24–48 uur te behouden. De kolonievormende eenheden (CFU) werden met een pen gemarkeerd en geteldmet 12. De volgende formule werd toegepast:
CFU/mL = (aantal kolonies × totale verdunningsfactor)/volume van de geplateerde kweek (mL)
Identificatie van morfologische kenmerken van lactobacillen en bifidobacteriën
Gram Stain werd gebruikt om de morfologische kenmerken van het exemplaar te identificeren. Een monster van bacteriekolonies van elke stam werd op een microscoopglaasje geplaatst, 1 minuut gekleurd met kristalviolet en daarna afgespoeld met gedestilleerd water. Een jodiumoplossing werd 1 minuut aangebracht en daarna afgespoeld met gedestilleerd water. Een alcohol-acetonoplossing werd 10 seconden gebruikt als ontkleuringsmiddel en afgespoeld met gedestilleerd water. Tot slot werd safranine als tegenkleuring 1 minuut aangebracht en afgespoeld met gedestilleerd water. De microscoopglaasjes werden waargenomen onder een optische microscoop met immersieolie en een 100x objectief.
Totale kwantificatie werd uitgevoerd met conventionele polymerasekettingreactie (PCR) op willekeurig geselecteerde fecale monsters van vijf proefpersonen per groep, waarbij in totaal 60 monsters over 5 weken werden verkregen. Isolaten uit kweekmedia werden verwerkt voor genetisch materiaalextractie. De PCR werd uitgevoerd met universele bacteriële primers om een fragment van het 16S rRNA-gen13 te amplificeren. PCR-producten werden gezuiverd en gesequenced. De sequenties werden geverifieerd en ingediend bij de GenBank-database om de aanwezigheid van lactobacillus- en bifidobacteriële stammen die uit de fecale monsters waren geïsoleerd te bevestigen.
Statistische analyse
De gegevens worden gepresenteerd als absolute en relatieve frequenties of mediaan (p25-P75). De cumulatieve ernst van de symptomen werd bepaald met behulp van de Likert-score (mild, 1; matig, 2; ernstig, 3) bij elke follow-up. Intergroepvergelijkingen werden uitgevoerd met behulp van de Wilcoxon-rangsomtest en chi-kwadraat of de exacte Fisher-test. Intra-groep vergelijkingen tussen week 0 en 5 werden uitgevoerd met behulp van de Friedman-test en meervoudige vergelijkingen met Durbin-Conover. De statistische significantie werd vastgesteld op P < 0,05.