Multimodale diagnose en behandeling van gastrische tuberculose: een casusrapport

Samenvatting

Dit casusrapport presenteert een stapsgewijze multimodale workflow voor het diagnosticeren van maagtuberculose, waarbij gastroscopie, dwarsdoorsnedebeeldvorming, endoscopische echografie, histopathologie en moleculaire tests worden geïntegreerd om infectie te bevestigen wanneer oppervlakkige biopten niet diagnostisch zijn.

Samenvatting

Gastrische tuberculose is een uitzonderlijk zeldzame vorm van extrapulmonale tuberculose en presenteert zich vaak met niet-specifieke symptomen en endoscopische verschijningen, waarbij ze vaak submucosale tumoren, maagzweerziekte of maligniteit nabootsen. Deze overlappingen, samen met de beperkte opbrengst van oppervlakkige biopten, kunnen de definitieve diagnose uitstellen. Hier rapporteren onderzoekers een geval van maagtuberculose en benadrukken ze het methodologische voordeel van een multimodale diagnostische strategie die endoscopie, dwarsdoorsnedebeeldvorming, histopathologie en moleculair testen integreert om de diagnostische onzekerheid steeds verder te versmallen. Gastroscopie toonde een gelokaliseerde maaglaesie aan, terwijl beeldvorming complementaire laesiekarakterisering bood en mogelijke extra-gastrische betrokkenheid suggereerde, wat verdere evaluatie op granulomatische infectie aanmoedigde. Herhaalde endoscopische bemonstering leverde geen diagnose op, en daarom werd een laparoscopische partiële gastrectomie uitgevoerd om voldoende diep weefsel te verkrijgen voor een uitgebreide beoordeling. Histopathologisch onderzoek toonde granulomatische ontsteking met caseeuze necrose aan, en moleculaire tests ondersteunden infectie met het Mycobacterium tuberculosis-complex , wat gastrische tuberculose bevestigde. Het postoperatieve verloop verliep zonder incidenten en de patiënt kreeg vervolgens standaard antituberculeuze therapie. De symptomen verdwenen en er werd geen recidisie waargenomen tijdens de langdurige follow-up. Deze casus benadrukt praktische diagnostische uitdagingen en biedt een reproduceerbare, stapsgewijze aanpak die clinici kan helpen maagtuberculose eerder in vergelijkbare presentaties te vermoeden, te onderscheiden en te bevestigen.

Inleiding

Gastrische tuberculose is een uitzonderlijk zeldzame manifestatie van Mycobacterium tuberculosis-infectie in het menselijk lichaam¹. De incidentie is extreem laag, en zelfs in regio's met een hoge tuberculoselast wordt maagbetrokkenheid doorgaans gerapporteerd als verantwoordelijk voor minder dan 1% van de gevallen van gastro-intestinale tuberculose². Deze lage incidentie wordt toegeschreven aan verschillende lokale beschermende factoren, waaronder het bactericide effect van maagzuur, de integriteit van de maagslijmvliesbarrière en snelle maaglediging, die samen het aanhoudende bacillaire contact met de maagwand^verminderen.

De klinische manifestaties van maagtuberculose zijn heterogeen en missen pathognomonische kenmerken, waarbij symptomen en tekenen variëren afhankelijk van de locatie van de laesie, de diepte van betrokkenheid en de ziekteprogressie⁴. Patiënten kunnen zich presenteren met pijn of ongemak in de bovenbuik, misselijkheid, braken, anorexia en gewichtsverlies⁵. Wanneer maagbetrokkenheid samenvalt met extra-maagtuberculose, kunnen constitutionele symptomen zoals lichte koorts, nachtelijk zweten en vermoeidheid ook optreden⁶. Deze manifestaties zijn echter niet specifiek en klinische verdenking wordt vaak uitgesteld omdat de ziekte kan lijken op veelvoorkomende maagaandoeningen, waaronder maagzweerziekte, maagkanker, lymfoom en submucosale tumoren⁷.

Een belangrijke diagnostische barrière die in de bredere literatuur wordt beschreven, is dat routinematige endoscopische tangbiopsie vaak niet-diagnostisch is, vooral wanneer laesies overwegend submucosaal zijn of wanneer granulomatische veranderingen fragmentarisch zijn, wat leidt tot bemonsteringsfout⁸. Om dit te overwinnen, biedt de hier gepresenteerde multimodale diagnostische strategie aanzienlijke voordelen ten opzichte van conventionele endoscopische beoordelingen met één modaliteit. Door cross-sectional imaging, diepweefselverwerving en moleculaire testen (PCR) te integreren, verhoogt deze uitgebreide aanpak het diagnostisch vertrouwen aanzienlijk en minimaliseert het vertragingen wanneer conventionele zuurvaste kleuringen negatief⁹ zijn.

Het algemene doel van dit protocol is het formaliseren van een reproduceerbare, stapsgewijze diagnostische workflow voor vermoedelijke maagtuberculose. De reden voor het presenteren van dit specifieke geval is om aan te tonen hoe clinici systematisch kunnen navigeren door diagnostische onzekerheid wanneer de eerste oppervlakkige biopten falen en de laesie sterk een submucosale tumor nabootst.

Dit representatieve geval is zeer geschikt voor clinici en endoscopisten die praktische richtlijnen zoeken voor het behandelen van atypische, refractaire maaglaesies die samengaan met onverklaarbare systemische bevindingen zoals lymfadenopathie¹⁰. Door dit multimodale protocol te volgen, kunnen behandelaars vroege herkenning verbeteren, onnodige radicale resecties vermijden en gerichte anti-tuberculosetherapie efficiënter starten in klinische omgevingen¹¹.

Casepresentatie:
Een 70-jarige vrouw presenteerde zich met een maand lange geschiedenis van buikpijn zonder typische constitutionele symptomen van tuberculose. Lichamelijk onderzoek en laboratoriumonderzoek waren onopvallend, maar gastroscopie toonde een onbepaalde subepitheliale laesie in de maagfundus aan.

Diagnose, Beoordeling en Plan:
Gezien het niet-diagnostische resultaat van oppervlakkige endoscopische biopten werden dwarsdoorsnedebeeldvorming en endoscopische echo uitgevoerd, die gelijktijdige systemische lymfadenopathie en een massa afkomstig van muscularis propria aantoonden. Om een definitieve diagnose te stellen, werd een laparoscopische partiële gastrectomie uitgevoerd voor volledige weefselverwerving. Histopathologie toonde granulomatische ontsteking met caseose necrose aan, en de daaropvolgende weefselpolymerasekettingreactie (PCR) bevestigde de aanwezigheid van het Mycobacterium tuberculosis-complex. De patiënt werd succesvol behandeld met standaard eerstelijns anti-tuberculosetherapie, wat resulteerde in volledige symptomenoplossing zonder complicaties.

Protocol

Dit protocol werd uitgevoerd in overeenstemming met de richtlijnen van de Institutional Human Research Ethics Committee van het Dongguan People's Hospital onder goedkeuringsnummer LW 2026-001. Schriftelijke geïnformeerde toestemming werd van de patiënt verkregen voorafgaand aan alle diagnostische, therapeutische en vervolgprocedures.

1. Geschiktheid van de patiënt en eerste beoordeling

1. Medische geschiedenis
   1. De belangrijkste klacht werd geregistreerd en het begin van de symptomen, de duur, locatie, het karakter, verergerende factoren (bijv. postprandiaal of nachtelijk) en verlichtende factoren gedocumenteerd.
   2. Geregistreerde bijbehorende symptomen (bijv. boeren, misselijkheid, braken, reflux, een opgeblazen gevoel, diarree, rillingen, koorts, hematochezie/melena) en beoordeelde alarmkenmerken (bijv. onbedoeld gewichtsverlies, aanhoudende koorts).
   3. Gedocumenteerde medische geschiedenis en huidige medicatie (bijv. hypertensie en type 2 diabetes mellitus; antihypertensiva en glucoseverlagende therapie).
   4. Gescreend op tuberculosegerelateerde risicofactoren (blootstellingsgeschiedenis, eerdere tuberculose, immunosuppressie) en kankergerelateerde voorgeschiedenis.
2. Lichamelijk onderzoek
   1. Algemene status en vitale functies (bloeddruk, hartslag, temperatuur, ademhalingsfrequentie) beoordeeld om de klinische stabiliteit te bevestigen.
   2. Heb de huid en de sclera onderzocht op geelzucht.
   3. Palpeerde oppervlakkige lymfekliergebieden (cervicaal, supraclavikulaculair, axillair) handmatig met behulp van de kussentjes van de wijs- en middelvinger om te beoordelen op vergroting, gevoeligheid of fixatie.
   4. Onderzocht de buik systematisch via visuele inspectie, auscultatie van darmgeluiden en zowel lichte als diepe handmatige palpatie om te beoordelen op opzetting, gevoeligheid (inclusief rebound/guarding), tastbare massa's en Murphy's teken.
   5. Gewrichten en onderledematen onderzocht op afwijkingen (bijv. oedeem, erythema, misvorming).
3. Eerste laboratoriumonderzoeken
   1. Volledige bloedtelling (CBC) verkregen met standaard laboratoriumapparatuur (zie Materiaaltabel).
   2. Lever- en nierfunctietests [alanineaminotransferase (ALT), aspartaataminotransferase (AST), bilirubine, creatinine, ureum] afgenomen.
   3. Verkreeg serumelektrolyten [natrium (Na⁺), kalium (K⁺), chloride (Cl⁻)].
   4. Heb stollingstests [protrombinetijd (PT), geactiveerde partiële tromboplastinetijd (APTT)] en harttroponine uitgevoerd wanneer klinisch geïndiceerd.
   5. Verkreeg serumtumormarkers [bijv. carcinoembryonale antigeen (CEA), koolhydraatantigeen 19–9 (CA19–9), alfa-fetoproteïne) (AFP)] ter ondersteuning van differentiële diagnose.
   6. Ontlasting voor occult bloed uitgevoerd.
   7. Helicobacter pylori werd beoordeeld met een institutionele methode (serologie, ureumademtest of ontlastingsantigeen).
      OPMERKING: De gebruikte methode en de interpretatiedrempel daarvan geregistreerd.

2. Diagnostische workflow voor gastro-intestinale en systemische laesies

1. Gastroscopie en eerste bemonstering
   1. Diagnostische gastroscopie uitgevoerd om de slokdarm, maag (inclusief fundus in retroflexe weergave) en duodenum te evalueren.
   2. Gedocumenteerde locatie van de laesion, grootte, macroscopisch uiterlijk en vermoedelijke oorsprongslaag, en gearchiveerde representatieve afbeeldingen.
   3. De duodenuszweer is geclassificeerd met een standaard endoscopisch stadiesysteem (bijvoorbeeld actief stadium met exsudate) en gearchiveerde beelden.
   4. Concangbiopten werden verkregen van het laesieoppervlak en aangrenzende mucosa (≥6 fragmenten indien technisch mogelijk) met endoscopische pincetten (zie Materiaaltabel) en monsters geplaatst in 10% neutraal gebuffreerd formaline (zie Tabel van Materiaal).
   5. Gelabelde exemplaren met patiëntidentificatie en bemonsteringsplaatsen werden binnen 1 uur na de verzameling aan de pathologie geleverd.
   6. Er werd gestart met zuursuppressietherapie voor de actieve zweer en de symptomrespons werd tijdens de follow-up opnieuw beoordeeld.
2. Dwarsdoorsnedebeeldvorming
   1. Voerde non-contrast borst computertomografie (CT) uit met een standaard volwassen protocol (bijv. 120 kVp; automatische buisstroommodulatie; toonhoogte 0,9–1,2).
   2. Gereconstrueerde beelden met een slicedikte van 1,0 mm met multiplanaire herformatten en beoordeeld met behulp van long- en mediastinale vensters.
   3. Gedocumenteerde longknobbels (locatie, maximale diameter, dichtheid) en mediastinale/hilaire lymfadenopathie (stations, kortasdiameter).
   4. Vergeleken met eerdere beeldvorming wanneer beschikbaar om intervalveranderingen te beoordelen.
3. Contrastversterkte CT van de bovenbuik
   1. Contrastversterkte CT van de bovenbuik uitgevoerd, tenzij dit niet was geïndiceerd.
   2. Toegediend met jodiënte contrastmiddelen (zie Materiaaltabel) bij 1,5 mL/kg (maximaal 120 mL) via een vermogensinjector bij 3,0 mL/s, gevolgd door een spoeling van 30–40 mL zoutoplossing (zie Materiaaltabel).
   3. Arteriële fase verworven bij 25–30 seconden en portale veneuze fase bij 60–70 seconden na injectie, en gereconstrueerd bij een sneeddikte van 1,0–1,25 mm.
   4. Gedocumenteerde verdikking/versterking van de gastro-intestinale wand (duodenale bol, cardia, maagantrum) en in kaart gebrachte abdominale lymfadenopathie (pericardial, hepatogastriaal, retroperitoneaal) op locatie en grootte.
4. Endoscopische echografie (EUS) en bemonstering
   1. Voerde EUS uit met een lineair-array echoendoscoop (typisch frequentiebereik 5–12 MHz; zie Materiaaltabel).
   2. De laesie werd gelokaliseerd en de oorsprongslaag (bijv. muscularis propria) en de grootte van de laesie (bijv. 12,4 mm × 5,3 mm), echogeniciteit, homogeniteit en posterieure akoestische kenmerken met beeldarchivering bepaald.
   3. Voerde EUS-geleide fijne naaldaspiratie/biopsie uit om de weefselopbrengst voor submucosale laesies te verbeteren.
   4. Gebruikte een naald van 22 gauge (zie Materiaaltabel) en voerde 3 passes uit (2 passes met zuiging met een 10 mL spuit; 1 pass zonder zuiging), met 10–15 heen-en-weer bewegingen per pass onder continue echovisualisatie.
   5. Directe vegen voorbereid bij elke passage; Meteen één glaasje vastgezet in 95% ethanol voor cytologie en één preparaat aan de lucht gedroogd voor snelle kleuring indien beschikbaar.
   6. Restmateriaal werd geplaatst in 10% neutrale formaline om een celblok voor histologie te creëren en een apart deel in een steriele buis geplaatst voor moleculaire tests.
   7. Minimaal 2 uur na de procedure wordt gemonitord op directe complicaties (pijn, bloedingen, perforatie) en de vitale functies en symptoomstatus werden gedocumenteerd.
      OPMERKING: Als het gepresenteerde geval geen fijnnaaldaspiratie (FNA)/fijnnaaldbiopsie (FNB) bevatte, vervang dan stappen 2.4.3–2.4.7 door de exacte gebruikte bemonsteringsmethode en geef de beperking expliciet aan.

3. Chirurgische ingrepen en bevestigend laboratoriumonderzoek

1. Laparoscopische partiële gastrectomie
   1. Bevestigde het ontbreken van chirurgische contra-indicaties (bijv. ongecontroleerde stollingsziekte, onstabiele cardiopulmonale aandoening) en bekeek preoperatieve laboratoriumresultaten.
   2. Geïnduceerde algehele anesthesie en vestigde pneumoperitoneum bij 12–14 mmHg.
   3. Standaard laparoscopische poorten werden geplaatst (bijv. 10 mm navelstrengcamerapoort plus 2–3 werkpoorten; zie Materiaaltabel) en systematische verkenning uitgevoerd.
   4. De laesie werd gelokaliseerd op basis van preoperatieve endoscopische/beeldvormende informatie (bijv. fundus nabij de cardia/grotere kromming).
   5. Wigge/gedeeltelijke gastrectomie uitgevoerd om de laesie te verwijderen met een bruto marge van ≥1 cm wanneer anatomisch haalbaar was en behaalde hemostase en veilige sluiting volgens de institutionele praktijk.
   6. Het monster werd direct naar de pathologie gebracht, de tijd tot fixatie geregistreerd en het monster (proximaal/distaal of anterieur/posterior) georiënteerd voor een grove beoordeling.
2. Histopathologie
   1. Gefixeerd weefsel in 10% neutrale formaline voor 24–48 uur bij kamertemperatuur.
   2. Er werden representatieve gebieden bemonsterd (laesiecentrum, grensvlak met aangrenzend weefsel en sterk necrotische gebieden waar aanwezig), verwerkt voor paraffine-inbedding, en doorsneden van secties met een dikte van 3–4 μm.
   3. Voerde hematoxylin- en eosinekleuring uit (H&E) en beoordeelde op granulomatische ontsteking en necrose (inclusief caseeuze necrose).
   4. Speciale kleuringen uitgevoerd: periodiek zuur-schiff kleuring (PAS) en periodiek zuur-zilver methenamine kleuring (PASM) voor schimmelelementen, en Ziehl–Neelsen of auramine–rhodamine kleuring voor zuurvaste bacillen.
      OPMERKING: Een negatieve zuurvaste bacilluskleuring (AFB) sloot tuberculose niet uit; interpretatie werd geïntegreerd met moleculaire tests en klinische/beeldvormende bevindingen.
3. Moleculaire testen [weefselpolymerasekettingreactie (PCR)]
   1. Er werd weefsel geselecteerd voor moleculaire tests met schone instrumenten om kruisbesmetting te voorkomen en aparte werkruimtes gebruikt voor pre- en postamplificatiestappen.
   2. Geëxtraheerd DNA uit vers weefsel (voorkeur) of formaline-gefixeerd, paraffine-ingebed (FFPE) weefsel met behulp van een gevalideerde extractiekit. Voor FFPE-weefsel werden gedeparaffiniseerde secties met xyleen (2 × 10 min) gevolgd door gegradueerde ethanolwashes (100%, 95%, 70%) (zie Materiaaltabel voor reagentia), en aan de lucht gedroogd vóór de lyse.
   3. Realtime PCR uitgevoerd gericht op het M. tuberculosis-complex (bijv. IS6110 of een ander gevalideerd doel).
   4. Gebruikte de volgende cyclische condities als standaard realtime PCR-profiel: initiële denaturatie bij 95 °C gedurende 5 minuten; 40 cycli van 95 °C voor 15 seconden en 60 °C voor 60 s.
   5. Resultaten werden geïnterpreteerd met laboratoriumdrempels [bijv. cyclusdrempel (Ct) ≤ 38 als positief, Ct 38–40 als onbepaald en vereist herhaald testen, en geen versterking als negatief] en bevestigde onbepaalde resultaten door herhaalde extractie en herhaalde PCR.
      OPMERKING: Vervang doelgen(en) en CT-drempels door die van het laboratorium als ze anders zijn.
4. Interferon-gamma afgifte-assay (IGRA)
   1. Volbloed IGRA uitgevoerd ter ondersteuning van tuberculose-infectiebeoordeling.
   2. Er werd 1 ml bloed in elke assaybuis verzameld [geen controle, tuberculosebacillus (TB) antigeenbuisjes, mitogencontrole] en direct na afname 10 keer omgedraaid.
   3. Buisjes werden geïncubeerd bij 37 °C gedurende 16–24 uur, gecentrifugeerd bij 2.000–3.000 × g gedurende 15 minuten, en plasma geoogst voor enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) meting van interferon-gamma.
   4. Interpreteerde IGRA als positief wanneer (TB-antigeen − nul) ≥0,35 IE/mL en ≥25% van nul, met een adequate mitogenrespons volgens assaycriteria.
      OPMERKING: Als IGRA in dit geval niet is uitgevoerd, vermeld dit dan expliciet en geef de reden aan.
5. Diagnostische integratie
   1. De diagnose werd vastgesteld door (i) granulomatische ontsteking te integreren met caseeuze necrose op histopathologie, (ii) moleculair bewijs van M. tuberculosis-complex op PCR, en (iii) ondersteunende klinische/beeldvormende bevindingen.
   2. Geregistreerde alternatieve diagnoses overwogen (bijv. maligniteit, lymfoom, schimmelinfectie) en de negatieve bevindingen die uitsluiting ondersteunen.

4. Therapeutisch beheer en vervolgtherapie tegen tuberculose

1. Overleg met infectieziektespecialisten om het regime te bevestigen na diagnostische bevestiging.
2. Standaard eerstelijns anti-tuberculosetherapie toegediend (rifampicine, isoniazide, pyrazinamide, ethambutol) volgens institutionele/nationale richtlijnen.
3. Aangepaste doseringen op basis van lichaamsgewicht en lever-/nierfunctie en gedocumenteerde basis- en vervolgwaarden van laboratorium.
4. Ze hielden de bijwerkingen in de gaten (gastro-intolerantie, hepatotoxiciteit, uitslag, visuele symptomen) en behandelden deze volgens institutionele praktijk.
5. Geplande follow-up 2 weken na ontslag en vervolgens elke 4 weken tijdens de vroege behandeling, met daaropvolgende intervallen geïndividualiseerd op basis van klinische respons.
6. Bij elk bezoek werden CBC- en leverfunctietests uitgevoerd.
7. Symptomen werden geëvalueerd en gescreend op recidieven op basis van klinische beoordeling en herhaalde beeldvorming/endoscopie wanneer klinisch geïndiceerd.

Resultaten

Eerste beoordelingsresultaten
Een vrouw van 70 jaar kreeg een maand lang buikpijn. Ze meldde geen bekende tuberculose en ontkende constitutionele of alarmsymptomen, waaronder misselijkheid, braken, koorts en aanzienlijk gewichtsverlies. Haar medische geschiedenis omvatte goed gecontroleerde hypertensie en type 2 diabetes mellitus, beheerd met chronische orale medicatie. Bij lichamelijk onderzoek was ze alert en hemodymisch stabiel. Er werd geen geelzucht of palpabele ...

Discussie

Gastrische tuberculose is een zeldzame manifestatie van gastro-intestinale tuberculose en kan ontstaan door hematogene of lymfatische verspreiding, directe extensie van aangrenzende laesies, of implantatie in een omgeving van een verstoorde mucosale verdediging. Omdat symptomen niet-specifiek zijn en endoscopische verschijningen vaak overlappen met maagzweerziekte, maligniteit, lymfoom en subepitheliale tumoren, wordt de diagnose vaak uitgesteld en kan een stapsgewijze aanpak vereisen di...

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel

Naam	Bedrijf	Catalogusnummer	Opmerkingen
Acid-fast stain kit (Ziehl–Neelsen)	BD Difco	215073	Voor AFB-kleuring; auramine-kleuring acceptabel alternatief
Centrifuge (2.000–3.000 × g)	Eppendorf	5810 R	Plasmascheiding voor IGRA
Dekvlakken	Citotest	10212424C	Voor microscoopvoorbereiding
CT-scanner (multi-detector)	Siemens Healthineers	SOMATOM Definition AS+	Elke ≥64-slice CT acceptabel; noteer kVp, snededikte, fasen
Weggeef biopsietang	Boston Scientific	1395 (Radial Jaw 4)	Voor mucosaal/oppervlaktebiopsieën; elke steriele wegwerptang acceptabel
DNA-extractiekit (FFPE)	QIAGEN	56404 (QIAamp DNA FFPE Tissue Kit)	Indien FFPE-secties worden gebruikt voor PCR
DNA-extractiekit (weefsel)	QIAGEN	69504 (DNeasy Blood & Tissue Kit)	Voor DNA-extractie uit vers weefsel
ELISA plate reader	BioTek (Agilent)	Synergy H1	Voor IGRA ELISA-uitlezing (indien kit met reader wordt gebruikt)
EUS-echografieprocessor	Olympus	EU-ME2	Elke equivalente EUS-processor acceptabel
EUS-FNA/FNB naald, 22G	Cook Medical	EchoTip Ultra (22G)	Indien uw geval FNA/FNB gebruikte; noteer gauge en aantal passen
Gastroscoop	Olympus	GIF-HQ190	Standaard diagnostische gastroscoop; equivalente modellen acceptabel
Grocott’s methenamine zilver (GMS/PASM) kit	Abcam	ab150680	Voor schimmelscreening (PASM/GMS)
H&E kleuringskit of reagentia	Sigma-Aldrich (Merck)	HT110116	Hematoxyline en eosine kleuring
IGRA-testkit	Qiagen	QuantiFERON-TB Gold Plus	IGRA op volbloed; noteer interpretatiecriteria
Beeldanalyse/labeling software	NIH	ImageJ/Fiji	Voor het toevoegen van schaalbalken/annotaties aan histologiebeelden
Insufflator	Karl Storz	ENDOMAT	Pneumoperitoneum onderhouden; noteer gebruikte druk
Laparoscoop	Karl Storz	26003BA	10 mm laparoscoop; equivalent acceptabel
Laparoscopische specimenopvangzak	Applied Medical	Endo Catch II	Voor veilige extractie van specimen
Laparoscopische stapler (wedge/gedeeltelijke gastrectomie)	Medtronic	Endo GIA	Gebruik institutionele stapler; noteer cartridgetype indien relevant
Laparoscopische toren (camera + lichtbron)	Karl Storz	IMAGE1 S	Elk equivalent laparoscopisch beeldvormingssysteem acceptabel
Lineaire EUS-echoendoscoop	Olympus	GF-UCT180	Lineaire EUS aanbevolen voor bemonstering; equivalent acceptabel
Microscoopglazen	Citotest	188105	Voor cytologie-uitstrijkjes
Microtoom	Leica Biosystems	RM2235	Voor 3–4 μm sneden
Montagemedium	Sigma-Aldrich (Merck)	6522	Coverslipping
MTB-complex PCR-kit (gevalideerd)	Sansure Biotech	MTB DNA Diagnostic Kit	Gebruik de gevalideerde MTB-complex PCR van uw instelling; noteer doelwit en Ct-drempel
Nonionisch gejodeerd contrast (voor CT)	GE Healthcare	Omnipaque 350	Gebruik institutioneel standaard contrast; noteer concentratie en dosis
Paraffine-inbeddingssysteem	Leica Biosystems	HistoCore Arcadia	Elk equivalent inbeddingssysteem acceptabel
PAS-kleuringskit	Sigma-Aldrich (Merck)	395B	Voor schimmelscreening
PCR-schone workflowmaterialen (filtertips)	Thermo Fisher Scientific	2069G	Gebruik aerosolresistente tips om contaminatie te verminderen
Power injector voor contrast	Bayer	MEDRAD Stellant	Elke injector acceptabel; noteer injectiesnelheid en zoutoplossingsspoeling
Real-time PCR-instrument	Roche	LightCycler 480 II	Elk gevalideerd real-time PCR-systeem acceptabel
Specimencontainer (lekvrij)	Thermo Fisher Scientific	02-544-208	Voor transport van formaline-gefixeerd weefsel
Statistisch/figuursoftware	GraphPad Software	Prism	Indien gebruikt voor plotten; optioneel
Spuit (10 mL)	BD	309604	Voor zuiging tijdens FNA wanneer gebruikt
Videogastroscoopsysteem (diagnostische boven-GI-endoscopie)	Olympus	CV-190 (processor), CLV-190 (lichtbron)	Elk equivalent endoscopieplatform is acceptabel; noteer gebruikt model
10% neutraal gebufferd formaline	Sigma-Aldrich (Merck)	HT501128	Fixatie van biopsie- en resectiespecimens
37 °C incubator	Thermo Fisher Scientific	Heratherm	Voor IGRA-incubatie
95% Ethanol	Sigma-Aldrich (Merck)	459844	Onmiddellijke fixatie van cytologieglazen