$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Transcriptionele subgroepen bij atopische dermatitis
RNA-seq-gegevens uit 266 AD-patiëntenmonsters werden geanalyseerd om transcriptionele heterogeniteit binnen de ziekte te onderzoeken. Na kwaliteitscontrole en correctie voor batcheffecten in meerdere studies, onthulde onbegeleide consensusclustering twee verschillende moleculaire subgroepen (Figuur 1A). Clusterstabiliteit en optimaal clusteraantal werden beoordeeld met behulp van de cumulatieve distributiefunctie (CDF) plot (Figuur 1B), delta-gebiedsplot (Figuur 1C) en consensusmatrix heatmap (Figuur 1D). Samen ondersteunen deze resultaten het bestaan van twee robuuste transcriptionele subtypes in AD, wat de onderliggende genetische heterogeniteit weerspiegelt.
Differentieel tot expressie gebrachte genen tussen AD-subgroepen
De t-SNE-grafiek gebaseerd op de genormaliseerde genexpressiematrix valideerde verder de transcriptionele subgroepen die door consensusclustering zijn geïdentificeerd. De t-SNE-grafiek toonde twee goed gescheiden clusters, elk overeenkomend met een van de eerder gedefinieerde subgroepen (Figuur 2A), wat de aanwezigheid van verschillende moleculaire profielen bij AD-patiënten ondersteunt. De differentiële expressie tussen de twee subgroepen werd vervolgens geanalyseerd met DESeq2, met een drempel van aangepaste p < 0,01 en |log₂ keer verandering| > 1. De resulterende vulkaangrafiek (Figuur 2B) toonde differentieel expressieve genen (DEGs), wat wijst op sterke transcriptionele divergentie. De top 10 upgereguleerde genen zijn ABHD2, ADAR, ADCY3, ADCY9, ADD1, ADIPOR2, AFF1, AGFG1, AGRN en AHNAK in cluster 1 en C2orf68, CTTN, GPR108, HERPUD1, LRPAP1, MAP1LC3B2, NKIRAS2, NR1H2, PDE5D en PMPCA in cluster 2 (Figuur 2C).
AD-subgroep geassocieerde genset
Gene Set Enrichment Analysis (GSEA) toonde verschillende functionele verrijkingsprofielen aan tussen de twee transcriptomische clusters (Figuur 3A). Cluster 1 vertoonde significante verrijking voor routes die betrokken zijn bij celsignalering en adhesie, waaronder focale adhesie (Figuur 3B) en MAPK-signaalweg (Figuur 3C), wat wijst op een actieve toestand gekenmerkt door verbeterde cel-cel-extracellulaire matrixinteracties en proliferatie. Daarentegen vertoonde Cluster 2 sterke verrijking voor oxidatieve fosforylering (Figuur 3D) en proteasoomfunctie (Figuur 3E), wat wijst op een actief oxidatief en proteolytisch metabolisch fenotype.
Geco-expressieerde genen in AD-moleculaire groepen
Om co-expressiemodules te identificeren die geassocieerd zijn met transcriptomische subtypes, werd WGCNA uitgevoerd na datapreprocessing. Outlier-monsters werden eerst geïdentificeerd en verwijderd op basis van hiërarchische clustering van steekproefafstanden om de robuustheid van downstream netwerkconstructie te waarborgen (Figuur 4A). Vervolgens werd een zachte drempelkracht geselecteerd met behulp van het schaalvrije topologiecriterium, waarbij een kracht van 6 werd gekozen om een schaalvrije R2 > 0,85 te bereiken (Figuur 4B). Genmodules werden geïdentificeerd door hiërarchische clustering en dynamisch boomkapen, gevolgd door eigengenclustering om nauw verwante modules te combineren (Figuur 4C en Figuur 4D). Het resulterende gennetwerk werd gevisualiseerd met behulp van een heatmap van topologische overlap, waarmee de aanwezigheid van verschillende genco-expressiepatronen werd bevestigd (Figuur 4E). Analyse van de relatie tussen module en eigenschap toonde een sterke en significante correlatie aan tussen de MEyellow-module (N-gen = 743) en de moleculaire subgroep (Figuur 4F).
Functionele verrijking van de mitochondriale genen geassocieerd met de AD-subgroep
Vervolgens werd er een analyse van GO- en KEGG-verrijking uitgevoerd op de gekruiste genen (N = 85) tussen DEGs, genen in de MEyellow-module en een lijst van mitochondriale eiwitten uit MitoCarta3.0 (Figuur 5A) om de functionele rollen van mitochondriale geassocieerde genen te onderzoeken die de transcriptieverschillen tussen clusters aansturen. KEGG-routeanalyse stelde verrijking vast in oxidatieve fosforylering en metabole routes (Figuur 5B). GO-verrijkingsanalyse toonde een significante oververtegenwoordiging van termen die geassocieerd zijn met mitochondriale functie, waaronder protonen-motorkracht aangedreven mitochondriale ATP-synthese, respiratorische ketencomplex en NADH-dehydrogenase-activiteit (Figuur 5C), wat suggereert dat deze genen voornamelijk geassocieerd zijn met mitochondriale energiemetabolisme en energieregulatie.
Hubmitochondriale genen in AD moleculaire differentiatie
Om de sleutelgenen in de 85 mitochondriale transcriptoom-subgroep-geassocieerde genen te identificeren, werd een PPI-netwerk opgebouwd (Figuur 6A). Op basis van de rangschikking in elk van de zeven topologische maten (zie methoden) werden de top 30 genen geselecteerd en hun doorsneden geanalyseerd en gevisualiseerd in een UpSet-plot (Figuur 6B). Deze analyse resulteerde in vier hubgenen die consequent als centrale knooppunten werden geïdentificeerd op basis van alle rangschikkingscriteria (BAD, BOLA1, CHCHD5, ISOC2). Hun expressieprofielen werden onderzocht over de twee transcriptomische clusters en vonden dat alle vier de hubgenen significant waren opgereguleerd in Cluster 1 vergeleken met Cluster 2 (Figuur 6C). Paargewijze genexpressiecorrelatieanalyse toonde positieve correlaties tussen alle vier de genen, wat wijst op gecoördineerde regulatie, waarbij CHCHD5 en ISOC2 de sterkste correlatie vertoonden (Figuur 6D). Bovendien toonde een classificatiemodel dat we hebben gebouwd met de expressie van deze vier genen robuuste onderscheidingskracht tussen de twee clusters, waarbij de ROC-curve een oppervlakte onder de curve (AUC) > 0,7 toont (Figuur 6E). Daarnaast werd transcriptiefactor (TF) regulatienetwerkanalyse uitgevoerd om de regulerende mechanismen te bestuderen die de expressie van de vier geïdentificeerde hubgenen beheersen. Alle bekende en voorspelde transcriptiefactoren die deze hubgenen mogelijk reguleren, werden onderzocht bij hTFtarget, en de resultaten werden geïntegreerd en gevisualiseerd als een transcriptieregulatief netwerk (Figuur 7). In het TF-hub genregulatienetwerk had BAD het hoogste aantal TF's, en ATF3, BRD2, BRD4 en CEBPA hadden elk interactie met alle vier de hubgenen, wat wijst op een gedeeld regulerend mechanisme.
Vergelijking van immuuncelinfiltratie tussen AD-subgroepen
Om het immunologische landschap dat geassocieerd is met de transcriptomische subgroepen te onderzoeken, werd immunocelinfiltratieanalyse uitgevoerd met CIBERSORT, die de relatieve verhoudingen van 22 immuunceltypen schat op basis van bulktranscriptoomgegevens (Figuur 8). Onder de immuunsubsets bleken regulerende T-cellen (Tregs) significant talrijker te zijn in Cluster 1, wat wijst op een immunosuppressieve microomgeving die mogelijk geassocieerd is met mitochondriale activiteit en signaalroutes die in deze groep is opgereguleerd. Daarentegen werden folliculaire helper T-cellen significant verrijkt in Cluster 2, wat wijst op een mogelijk actievere adaptieve immuunrespons in deze subgroep.
BESCHIKBAARHEID GEGEVENS:
De transcriptomische gegevens die in deze studie zijn geanalyseerd, zijn openbaar beschikbaar in de Gene Expression Omnibus (GEO)-repository onder toegangsnummers GSE121212, GSE157194, GSE193309 en GSE277961 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/).

Figuur 1: Consensusclustering van atopische dermatitis-laesiemonsters op basis van transcriptomische profielen. (A) Heatmap en hiërarchische clustering van de consensusmatrix over atopische dermatitis (AD) monsters. (B) Consensus cumulatieve verdelingsfunctie (CDF) plot gebruikt om het optimale aantal clusters te bepalen (k = 2–10). (C) Delta-gebiedsplot dat de relatieve verandering in het oppervlak onder de CDF-curve voor elke k toont. (D) Consensusclustertoewijzing voor k = 2. Elke kolom vertegenwoordigt een individueel monster, en kleuren geven het lidmaatschap van de cluster aan (Cluster 1, rood; Cluster 2, teal). Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 2: Differentiële genexpressie van atopische dermatitis, moleculaire subtypes. (A) t-gedistribueerde stochastische buur-embedding (t-SNE) plot van AD-monsters. Elk punt vertegenwoordigt een monster dat in twee dimensies wordt geprojecteerd en is gekleurd volgens clustertoewijzing. (B) Vulkaangrafiek van differentieel expressieve genen (DEGs) tussen Cluster 1 en Cluster 2. Elk punt vertegenwoordigt een gen, uitgezet door log2-voudige verandering (x-as) en −log10 aangepaste p-waarde (y-as). Rode en blauwe punten geven respectievelijk significante opgewaardeerde genen in Cluster 1 en Cluster 2 aan, terwijl grijze punten niet-significante genen aangeven. (C) Heatmap van de top 10 hoogexpressieve genen in Cluster 1 en Cluster 2. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 3: Analyse van genensetverrijking van atopische dermatitis-moleculaire subtypes. (A) Tweezijdige balkgrafiek die GSEA-resultaten toont tussen Cluster 1 en Cluster 2, waarbij de bovenste significant verrijkte paden zijn. Paden die in Cluster 1 zijn verrijkt, worden rechts weergegeven, en die in Cluster 2 zijn aan de linkerkant weergegeven. (B–E) Representatieve verrijkingsplots voor focale adhesie, MAPK-signaalroute, oxidatieve fosforylering en proteasoompaden. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 4: Analyse van gewogen genco-expressienetwerk van atopische dermatitismonsters. (A) Monsterclustering dendrogram gebaseerd op genexpressieprofielen. (B) Schaalvrije topologie-fitindex en gemiddelde connectiviteit over zachte drempelmachten (1–30). (C) Clustering en warmtekaart van module-eigengenen, waarbij kleuren paargewijze correlaties aangeven. (D) Hiërarchisch clustering dendrogram dat genen toont die zijn gegroepeerd in co-expressieve modules. (E) Heatmap van de topologische overlappingsmatrix (TOM), die co-expressie-gelijkenis tussen genparen weergeeft. (F) Heatmap van module–eigenschapsrelaties, die correlaties toont tussen module-eigengenen en klinische eigenschappen. Correlatiecoëfficiënten worden binnen elke cel weergegeven, en de kleurintensiteit geeft de sterkte en richting van de correlatie aan (rood, positief; blauw, negatief). Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 5: Genontologie en KEGG-routeverrijking van subtype-geassocieerde mitochondriale genen. (A) Venn-diagram dat overlap toont tussen DEGs, subtype-geassocieerde modulegenen en mitochondriale genen. (B) Bubbelgrafiek van de top 20 verrijkte KEGG-routes van elkaar kruisende genen. (C) Top 10 verrijkte genontologie (GO) termen voor Biologisch Proces (BP), Cellulaire Component (CC) en Moleculaire Functie (MF). Alle verrijkingsanalyses werden uitgevoerd met een aangepaste p-waarde < 0,05 (valse ontdekkingssnelheid) als significantiedrempel. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 6: Analyse van eiwit-eiwitinteracties en identificatie van hubgenen. (A) Eiwit-eiwitinteractie (PPI) netwerk van 85 kruisende genen. Knooppunten vertegenwoordigen eiwitten, en randen geven voorspelde of experimenteel gevalideerde interacties aan uit de STRING-database. (B) UpSet-grafiek met kruispunten tussen de top 30 gerangschikte genen op basis van zeven netwerkcentraliteitsmetingen. (C) Boxplots die expressieniveaus tonen van vier hubgenen in Cluster 1 en Cluster 2. (D) Pargewijze correlatieanalyse tussen de vier hubgenen. (E) Receiver operating characteristic (ROC) curve die classificatieprestaties toont, waarbij gevoeligheid wordt uitgezet tegen specificiteit. Het gebied onder de kromme (AUC) geeft de algehele nauwkeurigheid aan. De statistische significantie in paneel (C) werd beoordeeld met behulp van de Wilcoxon rangsomtest (*p < 0,05). Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 7: Regulerend netwerk van hubgenen. Rode cirkels vertegenwoordigen hubgenen en blauwe cirkels vertegenwoordigen geassocieerde transcriptiefactoren (TF's). Randen geven regulatorische interacties aan. De grootte van elke hubgenknoop weerspiegelt het aantal interacterende TF's. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 8: Vergelijking van immuuncelinfiltratie tussen atopische dermatitis-subgroepen. Boxplots die de geschatte verhoudingen van 22 immuunceltypen in elk cluster tonen (Cluster 1, rood; Cluster 2, teal). Asterisken (*) geven statistisch significante verschillen tussen clusters aan, beoordeeld met de Wilcoxon rangsomtest met correctie voor valse ontdekkingssnelheid voor meervoudige vergelijkingen. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.