OPMERKING: De reagentia en de apparatuur die in deze studie zijn gebruikt, staan vermeld in de Materiaaltabel.
Klinische gegevensverzameling en preprocessing
Om de moleculaire signaturen van COPD te onderzoeken, werden transcriptomische datasets opgehaald uit de Gene Expression Omnibus (GEO) database. In totaal werden vijf datasets geselecteerd: GSE11784, GSE12472, GSE16972, GSE38974 en GSE222965. De ruwe data en platformannotatiebestanden werden gedownload voor probe-naar-gen-mapping. Wanneer meerdere probes zich richtten op één gen, bleef de maximale expressiewaarde behouden. De resulterende genexpressiematrices (rijen als genen, kolommen als monsters) werden samengevoegd tot één ontdekkingsdataset. Om rekening te houden met technische variaties tussen verschillende microarrayplatforms en studiecohorten, werd batch-effectcorrectie uitgevoerd met het ComBat-algoritme uit het sva R-pakket. De effectiviteit van de correctie werd gevalideerd via Principal Component Analysis (PCA)-plots. Na batchcorrectie werd de samengevoegde ontdekkingsdataset gebruikt voor differentiële analyse. Differentieel expressieve genen (DEGs) tussen COPD-patiënten en gezonde controles werden geïdentificeerd met behulp van het limma-pakket. De significantiedrempels werden vastgesteld op |logFC| ≥ 1 en p ≤ 0,05.
Om de meest robuuste karakteristieke genen te identificeren, werden drie onafhankelijke machine learning-algoritmen geïntegreerd. Om de betrouwbaarheid van de modellen te waarborgen en datalekken te voorkomen, werd het featureselectieproces waar van toepassing in de crossvalidatielussen geïntegreerd, en werd de discovery-dataset strikt gescheiden van de onafhankelijke validatiesets. Het LASSO-model werd toegepast op de DEG's met behulp van het glmnet-pakket. We gebruikten 10-voudige kruisvalidatie om de optimale strafparameter te bepalen. De optimale strafparameterwaarde die overeenkomt met de minimale kruisvalidatiefout werd geselecteerd als drempel om kernkenmerkegenen te identificeren. SVM werd gebruikt om genen te rangschikken op basis van hun discriminatievermogen. Er werd een 10-voudige kruisvalidatiestrategie geïmplementeerd om het punt van minimale generalisatiefout te identificeren, waarmee het optimale aantal karakteristieke genen werd bepaald. Het randomForest-pakket werd gebruikt om DEG's te rangschikken op basis van hun Mean Decrease Accuracy en Gini-index. Genen met de hoogste belangrijkheidsscores werden geselecteerd als ziektegerelateerde kenmerken.
De kruising van de kenmerken die door LASSO, SVM en randomForest zijn geïdentificeerd, werd gebruikt om de uiteindelijke kernkenmerkende genen te definiëren. De diagnostische prestaties van deze genen werden geëvalueerd met behulp van een Receiver Operating Characteristic (ROC) curve-analyse. Het Area Under the Curve (AUC) en de bijbehorende 95% betrouwbaarheidsintervallen (BI's) werden berekend met behulp van het pROC-pakket. Een gen werd beschouwd als een hoge diagnostische waarde als de AUC 0,70 >. Ten slotte werden de expressieniveaus en diagnostische nauwkeurigheid van deze genen verder gevalideerd in een onafhankelijke validatieset om de generaliseerbaarheid van de bevindingen te waarborgen.
Met behulp van PubChem (https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/) en drugbank (https://go.drugbank.com/) werden in totaal 12 specifieke geneesmiddelprofielen verkregen, zoals LABAs, LAMAs, SABAs, SAMAs, Fluticasononpropionaat, Budesonide, Beclomethason, Fluticason, Salmeterol, Umeclidinium, Vilanterol, Theofylline. De gecompileerde doelen werden gekalibreerd met behulp van de Uniprot-database (https://www.uniprot.org/), waarbij niet-menselijke genen werden verwijderd en ongeldige dubbele doelen werden verwijderd om gestandaardiseerde gennamen te verkrijgen. Door het trefwoord "chronische obstructieve longziekte", "COPD" in de GeneCards (https://www.genecards.org/), OMIM (https://www.omim.org/) en DisGENET (https://www.disgenet.org/) databases in te voeren, werden ziektegerelateerde doelen opgehaald. Alle doelen uit de drie databases werden samengevoegd in een Excel-bestand, dubbele genen werden verwijderd en de data werd gekalibreerd met behulp van de Uniprot-database om de uiteindelijke informatie over het ziektedoelgen te verkrijgen.
Ontwikkeling van machine learning-modellen
Een multi-algoritmisch machine learning-framework werd opgebouwd door sequentieel gebruik te maken van R-pakketten glmnet, e1071 en randomForest. Specifiek werd LASSO-regressie uitgevoerd voor strafgebaseerde dimensionaliteitsreductie, werd Support Vector Machine (SVM)-analyse gebruikt om validatiefouten te evalueren op basis van steekproefgroepering, en Random Forest werd gebruikt om kenmerken te filteren op basis van belangrijkheidsscores. Dit proces leverde bijbehorende diagnostische visualisaties op, waaronder kruisvalidatiecurves en genbelang-bubbelplotten. Na modelconstructie werd een Venn-diagramanalyse uitgevoerd op de gensets die door deze meerdere algoritmen werden geïdentificeerd om de overlappende "intersectie"-genen te extraheren, waardoor de betrouwbaarheid van de potentiële biomarkers werd verhoogd. De expressiematrix van deze doorsnede genen werd vervolgens geëxtraheerd om intergroepsexpressieverschillen te visualiseren via vioolplots. Ten slotte werden ROC-curves gegenereerd via iteratieve lussen voor elk gen om het Area Under the Curve (AUC) te berekenen, waarmee hun diagnostische waarde als kandidaat-biomarkers werd gevalideerd.
Inductie van diermodel
Het experimentele protocol werd goedgekeurd door de Animal Ethics Committee van de Guizhou Medical University (2303411) en volgde de ARRIVE-richtlijnen en dierenwelzijnsvoorschriften. In totaal 72 mannelijke Sprague-Dawley (SD) ratten van SPF-kwaliteit (230 ± 20 g). Na 1 week adaptieve huisvesting onder standaardomstandigheden (25 ± 1 °C, 50 ± 5% luchtvochtigheid, 12 uur licht-donker cyclus) werden de ratten willekeurig verdeeld in de controlegroep (C-groep) (n = 24) en de modelgroep (M-groep) (n = 48).
De M-groep werd onderworpen aan dual-factor modellering: Intermitterende blootstelling aan sigarettenrook (9 weken, 6 dagen per week, 3 onderzoekswaardige sigaretten per dag, verdeeld over 2 sessies, 30 minuten per sessie) en intratracheale instillatie van LPS (200 μg per instillatie, eens om de week)18,19. De C-groep ontving een gelijk volume normale zoutoplossing. Na succesvolle modellering werden de groepen willekeurig verdeeld in de M-groep (n = 12), de hoge dosis BTHTT-groep (H-groep) (hoog, 1× klinische dosis, n = 12) en de laag-dosis BTHTT-groep (L-groep) (laag, 1/2× klinische dosis, n = 12), met continue gavage-interventie gedurende 2 weken. De C- en M-groepen kregen synchroon gedestilleerd water.
Lichaamsgewicht en parameters voor spontane activiteit werden wekelijks geregistreerd. Aan het einde van modellering en behandeling werden longweefsel, serum en serum- en bronchoalveolaire lavagevloeistof (BALF) verzameld. De niveaus van ontstekingsmarkers (d.w.z. TNF-α, IL-1β, IL-6, IL-8, OPN en MCP-1) werden gemeten met ELISA volgens de instructies van de kit. Er werden ook weefselpathologie- en multi-omics-analyses uitgevoerd.
Behandelingstoediening
Buti Huatan Tang (BTHTT) bestaat uit negen traditionele Chinese medicinale kruiden: Astragalus membranaceus (Fisch.) Bge. (Astragali Radix, 15 g), Pseudostellaria heterophylla (Miq.) Pax (Pseudostellariae radix, 15 g), Cinnamomum cassia (L.) J. Presl (Cinnamomi Cortex, 15 g), Angelica sinensis (Oliv.) Diels (Angelicae Sinensis Radix, 10 g), Salvia miltiorrhiza Bge. (Salviae miltiorrhizae radix et rhizoma, 15 g), Perilla frutescens (L.) Britt. (Perillae Folium, 10 g), Raphanus sativus L. (Raphani Semen, 10 g), Lepidium apetalum Willd. (Descurainiae Semen, 10 g), en Mahonia fortunei (Lindl.) Fedde (Mahoniae Folium, 10 g). De kruidenmaterialen werden 30 minuten in water geweekt met 10 keer hun gezamenlijke gewicht en vervolgens 1 uur gedecocteerd. Het aftrek werd gefilterd en het filtraat werd verzameld en in drie gelijke porties verdeeld voor orale toediening.
Op basis van klinische veiligheid en werkzaamheid was de standaarddosis BTHTT voor volwassenen 1,57 g∙kg-1∙dag-1 volgens de klinische medicatierichtlijnen. Rekening houdend met de dosisconversiefactor voor ratten, die aangaf dat de standaard dosis van ratten 6,3× de menselijke standaarddosis was, was de overeenkomstige H-groep voor ratten ingesteld op 9,9 g∙kg-1∙dag-1, en de L-groep op de helft van deze dosis (4,95 g∙kg-1∙dag-1). Aangezien het uiteindelijke geconcentreerde volume van BTHTT 50 mL was, was het toegediende volume voor de H-groep bij ratten ongeveer 1,6 mL, en voor de L-groep ongeveer 0,8 mL. Het medicijn werd eenmaal per dag toegediend via orale gavage.
Weefsel- en BALF-verzameling
Bij de experimentele eindpunten (week 9 en week 11) werden ratten verdoofd via intraperitoneale injectie van 5% natriumpentobarbital (1 mL/100 g). Bloed werd verzameld uit de portader, liet het 30 minuten staan bij kamertemperatuur, en werd vervolgens 15 minuten gecentrifugeerd bij 13.000 × g bij 4 °C. Het supernatant werd opgeslagen bij -80 °C. Longweefsels werden snel ingevroren in vloeibare stikstof en opgeslagen bij -80 °C. BALF werd verzameld door drie opeenvolgende lavages met koude PBS.
Analyse van transcriptomics
Totaal RNA werd uit longweefsel geëxtraheerd en kwaliteitsgecontroleerd met behulp van (A260/A280 > 1,8) (RIN ≥ 7,0). RNA-sequencingbibliotheken werden geconstrueerd: mRNA werd verrijkt met oligo(dT), gefragmenteerd en gebruikt om dubbelstrengs cDNA te synthetiseren, dat vervolgens werd geligeerd aan adapteroligonucleotiden en geamplificeerd door PCR. Bibliotheken werden gekwantificeerd en kwaliteitsgecontroleerd voordat ze werden gesequenced. Inclusief inspectie van inhoudsdistributie, FPKM-dichtheidsverdelingsanalyse van elk monster, en algehele kwaliteitsbeoordeling van RNA-seq20.
Ruwe transcriptomics-gegevens die door het sequencingplatform werden gegenereerd, werden verwerkt met Perl-scripts om adaptersequenties en laagwaardige reads te verwijderen (reads met Q ≤ 25 bases die > 60% of N-rate > 5% uitmaken). Na dit filterproces werden schone reads verkregen. De schone reads werden afgestemd op het referentiegenoom met behulp van HISAT2, en genexpressieniveaus werden gekwantificeerd om FPKM-waarden te berekenen. Er werd een differentiële expressieanalyse uitgevoerd (met screeningscriteria van |log2FC| > 1 en p-adj < 0,05). De annotatie van transcriptiefactoren was gebaseerd op Animal TFDB of Pfam/DBD databases, waarbij gen-ID's en eiwitdomeininformatie21 werden overeengekomen.
Er werd een orthologe genmappingstrategie toegepast om methodologische nauwkeurigheid voor cross-species validatie te waarborgen. Deze strategie hield in dat orthologen in ratten werden teruggevonden voor kerngenen van mensen (bijv. SRPX2, IL-1R2, TFF3) met behulp van de NCBI HomoloGene en Ensembl BioMart databases. De selectie was beperkt tot genparen met een duidelijke "één-op-één" mapping relatie en hoge eiwitsequentie-identiteit. In gevallen waarin meerdere kandidaten aanwezig waren, werd voorkeur gegeven aan orthologe paren die door de HGNC waren gecertificeerd. Om een hoge detectieprecisie te waarborgen, werden specifieke RT-qPCR-primers ontworpen op basis van de mRNA-sequenties van de geïdentificeerde ratorthologen. Validatiecriteria werden gedefinieerd door consistentie in expressierichting en functionele verificatie. Consistentie in expressierichting: In een rook-geïnduceerd rat COPD-model toonde RT-qPCR aan dat de expressietrends van doelgenen in longweefsel van ratten volledig consistent waren met die waargenomen in menselijke GEO-klinische datasets. Genen met dezelfde polariteit van verandering tussen soorten werden beschouwd als conserveringsbiomarkers als ziekte-biomarkers. Pathologische verificatie: Na expressieconsistentie werd correlatieanalyse uitgevoerd om de betrokkenheid van deze genen in de pathologische evolutie van COPD te verifiëren.
Metabolomics-workflow
Longweefsel (20–50 mg) werd gehomogeniseerd in voorgekoeld methanol-acetonitril-water (2:2:1, v/v) en soniceerd in een ijsbad. Het homogenaat werd 13.000 × g gecentrifugeerd gedurende 20 minuten bij 4 °C. De supernatant werd vacuümgeconcentreerd, opnieuw opgelost in acetonitrilwater (1:1, v/v) en gefilterd door een membraan van 0,22 μm voor LC-MS-analyse22.
Chromatografische scheiding werd bereikt met behulp van een amide-gebaseerde UPLC-kolom (1,7 μm, 2,1 mm × 100 mm). De kolomtemperatuur bleef op 25 °C gehandhaafd. De mobiele fase bestond uit (A) water met 25 mM ammoniumacetaat en 25 mM ammoniak, en (B) acetonitril. De debiet werd ingesteld op 0,5 mL/min en het injectievolume was 2 μL. Het gradiëntelusieprogramma was als volgt: 0–0,5 min, 95% B; 0,5–7 min, lineaire afname van B van 95% naar 65%; 7–8 min, lineaire afname van B van 65% naar 40%; 8–9 min, B bleef op 40%; 9–9,1 min, lineaire stijging van B van 40% naar 95%; 9,1–12 min, B bleef op 95%. Tijdens de gehele analyse werden de monsters op 4 °C in de autosampler gehoud. Om de stabiliteit van het systeem en de betrouwbaarheid van de experimentele gegevens te waarborgen, werden monsters in een willekeurige volgorde geanalyseerd, waarbij kwaliteitscontrolemonsters (QC) in de wachtrij werden geplaatst. Massaspectrometrie-analyse werd uitgevoerd met een ultra-high-performance vloeistofchromatografie (UHPLC) systeem gekoppeld aan een massaspectrometer. Monsters werden geïoniseerd met behulp van elektrospray-ionisatie (ESI) in zowel positieve als negatieve ionenmodi. ESI-bron- en MS-instellingen waren als volgt: vernevelaarsgas (Gas 1) werd ingesteld op 50, hulpgas (Gas 2) op 2, ionenbrontemperatuur op 350 °C, en sprayspanning (ISVF) op 3.500 V in positieve ionenmodus en 2.800 V in negatieve ionenmodus. Het massabereik voor MS1 werd ingesteld van 70 tot 1.200 Da, met een resolutie van 60.000 en een scanaccumulatietijd van 100 ms. Voor MS2 werd data-afhankelijke acquisitie (DDA) met getrapte botsingsenergie gebruikt. Het massabereik voor MS2 werd ook ingesteld van 70 tot 1.200 Da, met een resolutie van 60.000 en een scanaccumulatietijd van 100 ms. De dynamische uitsluitingstijd was ingesteld op 4 seconden.
Ruwe metabolomics-gegevens werden omgezet naar het mzXML-formaat en vervolgens verwerkt voor piekuitlijning, retentietijdcorrectie en piekoppervlakte-extractie. De workflow voor de gegevensvoorverwerking omvatte de volgende stappen: Ten eerste werden ionpieken met een ontbrekende snelheid > 50% verwijderd. Ten tweede werden de resterende ontbrekende waarden geïnimputeerd met behulp van het KNN-algoritme. Ten derde werden metabole kenmerken met een relatieve standaardafwijking (RSD) >50% weggelaten. De kwaliteit van de experimentele gegevens werd beoordeeld met behulp van principal component analysis (PCA) en clustering van QC-monsters. Vervolganalyses omvatten univariate statistieken (bijv. t-tests), multivariate statistieken (PLS-DA), differentiële metabolietscreening (VIP > 1 en p < 0,05) en KEGG-padverrijkingsanalyse (hypergeometrische test)23,24.
Vaststelling van analytische methoden voor in vivo en in vitro componenten
Voorbereiding van BTHTT-monsters voor in vitro testen: BTHTT werd gewonnen door aftrek in water (2 x 30 min), geconcentreerd tot 1,1–1,2 g/mL, en vervolgens gevriesdroogd. Voor de analyse werd 600 μL van de vriesgedroogde poederoplossing gemengd met 400 μL methanol, opnieuw opgelost in 40% methanol en gecentrifugeerd om het supernatant op te vangen.
Voorbereiding van BTHTT-monsters voor in vivo testen: Serum werd gedeïnproteiniseerd door te mengen met methanol (1:1) en te precipiteren bij −20 °C gedurende 30 minuten, gevolgd door centrifugatie bij 20 minuten. Het supernatant werd vacuümgedroogd en opnieuw opgelost in 40% methanol om het uiteindelijke monster te verkrijgen. Voor de voorbereiding van blanco serum + BTHTT-monsters werd een passende hoeveelheid blanco serum vergiftigd met het in vitro BTHTT-supernatant, en de resterende stappen werden zoals beschreven uitgevoerd.
Monsters werden gescheiden met behulp van een UHPLC-systeem uitgerust met een omgekeerde fase UPLC-kolom (2,1 mm × 100 mm, 1,8 μm). De kolomtemperatuur bleef op 35 °C en de debiet werd ingesteld op 0,3 mL/min. De mobiele fase bestond uit (A) 0,1% mierenzuur in water en (B) 0,1% mierenzuur in acetonitril. De gradiëntelutie werd uitgevoerd zoals weergegeven in Tabel 1.
Een massaspectrometer werd gebruikt voor de verwerving van zowel MS1- als MS2-spectra. De massaspectrometer was gekoppeld aan het UHPLC-systeem en werkte zowel in positieve als negatieve ESI-modi. ESI-parameters waren als volgt: sprayspanning 3.800 V (ESI+) / 3500 V (ESI-), mantelgasdruk 45 arb, hulpgasdruk 20 arb, ionentransportbuistemperatuur 320 °C en verdampertemperatuur 350 °C. De detectiemodus was ingesteld op volledig scan-/data-afhankelijke MS2 (Full-MS/dd-MS2) met resoluties van 60.000 voor MS1 en 15.000 voor MS2. De top 10 MS1-ionen werden geselecteerd voor MS/MS-fragmentatie met getrapte genormaliseerde botsingsenergieën van 20, 40 en 60. Het massabereik voor MS1 werd vastgesteld van 90 tot 1.300 Da.
Voor in vivo analyse, inclusief blanco groepsmonsters, gedoseerde groepsmonsters en blanco groep + BTHTT-monsters, werd 6 μL van elk monster nauwkeurig geïnjecteerd. Voor de in vitro-analyse van BTHTT werd 2 μL van het monster geïnjecteerd. Elke batch blanco en gedoseerde groepmonsters werd één keer geïnjecteerd, terwijl de blanco groep + BTHTT-monsters in drievoud werden geïnjecteerd en de BTHTT-monsters in vijfdelige exemplaren.
Gegevens in het mzXML-formaat werden verwerkt en verbindingen werden geïdentificeerd op basis van een lokale commerciële TCM-massaspectrometriedatabase met hoge resolutie. De criteria voor identificatie werden als volgt vastgesteld: een massafout van <25 ppm voor MS1 en een matchscore > 0,7 voor MS2 (waarbij de score de gelijkenis van fragmentionen weerspiegelde, met ≥0,7 als betrouwbare drempel)25,26. De statistische analyse omvatte het tellen en classificeren van verbindingen (bijv. flavonoïden, alkaloïden), die werden uitgevoerd in combinatie met annotaties uit de massaspectrometriedatabase27.
Moleculaire koppeling en MD-simulatie
Om mogelijke bindingsmodi tussen de geïdentificeerde karakteristieke eiwitten en hun bijbehorende liganden te onderzoeken, werd in silico moleculaire koppeling uitgevoerd. De driedimensionale structuren van de kleine moleculen werden opgehaald uit de PubChem-database en hun geometrische configuraties geoptimaliseerd. De kristalstructuren van de doeleiwitten zijn verkregen uit de RCSB Protein Data Bank (PDB). Met PyMOL werden watermoleculen en heteroatomen verwijderd en werden co-gekristalliseerde liganden geëxtraheerd om de coördinaten van de actieve plaatsen te definiëren. Waterstofatomen werden toegevoegd en Gasteiger-ladingen werden via software toegewezen. Docking-simulaties werden uitgevoerd, waarbij 15 onafhankelijke conformaties per run werden gegenereerd. De conformatie met de laagste bindingsenergie werd geselecteerd voor verdere analyse. Om de niet-covalente interacties rigoureus te karakteriseren, werden de receptor-ligandcomplexen geanalyseerd met behulp van de Protein-Ligand Interaction Profiler (PLIP). OPMERKING: Het is belangrijk te benadrukken dat deze koppelingsresultaten structurele ondersteuning bieden voor potentiële moleculaire interacties en dienen als basis voor verdere dynamische verfijning; ze vormen echter geen op zichzelf staand bewijs van biologische effectiviteit.
Om de stabiliteit en conformationele evolutie van de voorspelde eiwit-ligandencomplexen onder fysiologisch relevante omstandigheden te evalueren, werden moleculaire dynamica-simulaties uitgevoerd met behulp van het GROMACS-softwarepakket. Topologiebestanden voor zowel eiwitten als liganden werden gegenereerd op basis van het GROMOS96 43a1 krachtveld. Elk complex werd in het midden van een dodecaëdrische doos geplaatst, met een minimale afstand van 1,0 nm van de randen van de doos, en werd opgelost met behulp van het SPC-watermodel. Om elektrische neutraliteit te waarborgen, werden natrium- of chlorideionen aan het systeem toegevoegd indien nodig. Energieminimalisatie werd uitgevoerd met het steilste daalalgoritme totdat de maximale kracht minder was dan 1.000,0 kJ∙mol-1∙nm-1. Het systeem werd vervolgens in twee fasen in balans gebracht: eerst werd een NVT-ensemble gebruikt om het systeem te verwarmen tot 300 K over 100 pk met behulp van een V-rescale thermostaat; ten tweede werd een NPT-ensemble gebruikt om de druk te stabiliseren bij 1 bar boven 100 ps met behulp van een Parrinello-Rahman barostaat. Productiesimulaties werden uitgevoerd voor een totale duur van 10 ns met een tijdstap van 2 fs. Langeafstands-elektrostatische interacties werden berekend met de Particle Mesh Ewald (PME)-methode, terwijl korteafstands-van der Waals- en elektrostatische interacties werden beheerd met een cutoff-straal van 1,2 nm. Om de betrouwbaarheid van de simulaties te waarborgen, werden waar mogelijk drie onafhankelijke runs uitgevoerd. De stabiliteit van de complexen werd kwantitatief beoordeeld door de Root Mean Square Deviation (RMSD) en Root Mean Square Fluctuation (RMSF) van de eiwit-ruggraatatomen ten opzichte van de initiële structuur te berekenen. Het bereiken van een plateau in het RMSD-profiel werd gebruikt als het primaire criterium voor systeemevenwicht en structurele stabiliteit.
Algemene statistische analyse
In dit experiment werden groepsberekeningen uitgevoerd met behulp van t-tests of eenrichtingsvariantieanalyse (ANOVA).