De effecten van incisie en van de preoperatieve intrathecale toediening van propentofylline of U0126 op hyperalgesie na incisie
Mechanische hyperalgesie
Er waren geen significante verschillen in PWMT's tussen de zes groepen 24 u vóór de operatie (p > 0,05; Figuur 1A,B). In de IP-groep nam de PWMT af na de incisie en bleef deze significant lager dan de baseline van 2 u tot 72 u na de incisie (p < 0,05 t.o.v. baseline; Figuur 1A). In de NS- en DMSO-groepen waren er geen significante verschillen in PWMT's tussen de tijdstippen na de incisie (p > 0,05 t.o.v. de IP-groep; Figuur 1B). In de PPF-groep was de PWMT significant hoger dan in de IP-groep van 2 u tot 72 u na de incisie (p < 0,05 t.o.v. de IP-groep; Figuur 1A), en 72 u na de incisie was deze niet langer significant verschillend van de baseline (p > 0,05 t.o.v. baseline; Figuur 1A). In de U0126-groep waren de PWMT's significant hoger dan die in de IP-groep gedurende de eerste 24 u na de incisie (p < 0,05 t.o.v. de IP-groep; Figuur 1A), maar dit effect hield niet aan tot 72 u na de incisie, waarbij de PWMT significant lager bleef dan de baseline en niet langer significant verschilde van die in de IP-groep (p < 0,05 t.o.v. baseline; p > 0,05 t.o.v. de IP-groep; Figuur 1A).
Thermische hyperalgesie
Er waren geen significante verschillen in PWTLs tussen de zes groepen 24 u vóór de operatie (p > 0,05; Figuur 1C,D). In de IP-groep nam de PWTL af van 24,85 s ± 1,06 s vóór de operatie naar 4,38 s ± 1,02 s op 4 u na de incisie en steeg vervolgens gedeeltelijk naar 18,37 s ± 1,38 s op 72 u na de incisie, maar bleef gedurende de gehele observatieperiode significant lager dan de baseline (p < 0,05 vs baseline; Figuur 1C). In de NS- en DMSO-groepen waren er geen significante verschillen in PWTLs tussen de tijdstippen na de incisie (p > 0,05 vs de IP-groep; Figuur 1D). In de PPF-groep was de PWTL gedurende de gehele observatieperiode van 72 u significant hoger dan in de IP-groep (p < 0,05 vs de IP-groep; Figuur 1C), en op 72 u na de incisie was deze teruggekeerd naar een niveau dat niet significant verschilde van de baseline (p > 0,05 vs baseline; Figuur 1C). In de U0126-groep was de PWTL tijdens de eerste 24 u na de incisie significant hoger dan in de IP-groep (p < 0,05 vs de IP-groep; Figuur 1C); dit effect hield niet aan op 72 u na de incisie, waarbij de PWTL significant lager bleef dan de baseline en niet langer significant verschilde van die in de IP-groep (p < 0,05 vs baseline; p > 0,05 vs de IP-groep; Figuur 1C).
Western blot-analyse van temporele veranderingen in de expressie van spinale celmarkers en fosforylering van extracellulair signaal-gereguleerd kinase 1 en 2 na incisie
Op de PVDF-membranen werden met een specifieke antilichaam verschillende banden geïdentificeerd bij exacte moleculaire gewichten, waaronder NeuN (48 en 50 kD), GFAP (50 kD), Iba-1 (17 kD), p-ERK1/2 (p-ERK1 = 44 kD; p-ERK2 = 42 kD), t-ERK1/2 (t-ERK1 = 44 kD; t-ERK2 = 42 kD) en GAPDH (36 kD). De GAPDH-band werd gebruikt als controle voor NeuN, GFAP, Iba-1 en t-ERK1/2, en de t-ERK1/2-band werd gebruikt als controle voor p-ERK1/2.
Western blot-gegevens van het ruggenmerg in de IP-groep toonden stijgingen van variërende mate na de incisie (Figuur 2A). De expressie van neuron-specifiek nucleair eiwit bereikte haar hoogste waarde 4 u na de incisie (p < 0,001 t.o.v. baseline; Figuur 2A) en bleef significant verhoogd 72 u na de incisie (p < 0,001 t.o.v. baseline; Figuur 2A). De spiegels van gliaal fibrillair zuur eiwit namen geleidelijk toe gedurende de observatieperiode van 72 u (p < 0,001 t.o.v. baseline; Figuur 2A), waarbij de hoogste waarde werd waargenomen op 72 u onder de gemeten tijdstippen. Op dezelfde wijze bereikte Iba-1 ook een significant verhoogd niveau 4 u na de incisie (p < 0,001 t.o.v. baseline; Figuur 2A) en fluctueerde dit binnen een klein bereik. Opvallend is dat de Western blot-gegevens van het ruggenmerg in de IP-groep toonden dat de ERK1/2-activatie alleen toenam gedurende de eerste 24 u na de incisie (p < 0,05 t.o.v. baseline; Figuur 2B), maar afnam op 72 u na de incisie (p < 0,05 t.o.v. baseline; Figuur 2B), terwijl de expressie van t-ERK/2 op geen enkel tijdstip een significante verandering vertoonde.
Western blot-analyse van de effecten van de preoperatieve intrathecale toediening van propentofylline of U0126 op de expressie van celmarkers en gefosforyleerde extracellular signal-regulated kinase 1 en 2 in het ruggenmerg
Western blotting-gegevens lieten zien dat de NeuN-expressie haar hoogste niveau bereikte 4 u na de incisie, op het moment dat de gedragsmatige meting op haar laagste drempelwaarde lag. Daarom werden de effecten op de expressie van celmarkers en de ERK1/2-fosforylering van intrathecaal toegediende PPF en U0126, 30 min vóór de operatie, geëvalueerd 4 u na de incisie.
Western blot-gegevens toonden aan dat, vergeleken met de blanco groep, de spinale expressie van alle celmarkers significant was toegenomen in de IP-groep 4 u na de incisie (p < 0,05 t.o.v. baseline; Figuur 3). Vergeleken met de IP-groep verminderde preoperatieve intrathecale toediening van PPF de spinale expressie van NeuN (p < 0,05 vs de IP-groep; Figuur 3A), GFAP (p < 0,05 vs de IP-groep; Figuur 3B) en Iba-1 (p < 0,01 vs de IP-groep; Figuur 3C). Vergeleken met de IP-groep verminderde preoperatieve intrathecale toediening van U0126 eveneens de spinale expressie van NeuN (p < 0,01 vs de IP-groep; Figuur 3D), GFAP (p < 0,05 vs de IP-groep; Figuur 3E) en Iba-1 (p < 0,01 vs de IP-groep; Figuur 3F). Wanneer deze echter werden vergeleken met de blanco groep, bleef de NeuN-expressie in de PPF-groep significant hoger dan de baseline (p < 0,01 vs baseline; Figuur 3A), terwijl de NeuN-expressie in de U0126-groep significant lager was dan in de blanco groep (p < 0,01 vs baseline; Figuur 3D). Voor GFAP en Iba-1 benadrukt de tekst nu de vergelijking met de IP-groep, zoals getoond in Figuur 3. De preoperatieve intrathecale toediening van NS en DMSO had geen significant effect op de expressie van enige celmarkers.
Western blot-gegevens lieten zien dat de spinale t-ERK1/2-expressie 4 u na de incisie niet significant verschilde tussen de Blank-, IP-, NS- en PPF-groepen (Figuur 4A). In contrast hiermee was de p-ERK1/2-expressie 4 u na de incisie significant verhoogd in de IP- en NS-groepen vergeleken met de blank-groep (p < 0,001 vs de blank-groep; Figuur 4B). Vergeleken met de IP-groep verminderde preoperatieve intrathecale toediening van PPF de p-ERK1/2-expressie significant 4 u na de incisie (p < 0,001 vs de IP-groep; Figuur 4B). Vergeleken met de NS-groep was de p-ERK1/2-expressie in de PPF-groep ebenfalls significant lager (p < 0,01 vs de NS-groep; Figuur 4B). Echter, vergeleken met de blank-groep bleef de p-ERK1/2-expressie in de PPF-groep 4 u na de incisie significant verhoogd. Op soortgelijke wijze verschilde de spinale t-ERK1/2-expressie 4 u na de incisie niet significant tussen de Blank-, IP-, DMSO- en U0126-groepen (Figuur 4C). Vergeleken met de blank-groep was de p-ERK1/2-expressie 4 u na de incisie significant verhoogd in de IP- en DMSO-groepen (p < 0,001 vs de blank-groep; Figuur 4D). Vergeleken met de IP-groep verminderde preoperatieve intrathecale toediening van U0126 de p-ERK1/2-expressie significant (p < 0,001 vs de IP-groep; Figuur 4D). Vergeleken met de DMSO-groep was de p-ERK1/2-expressie in de U0126-groep eveneens significant lager (p < 0,001 vs de DMSO-groep; Figuur 4D). Opmerkelijk is dat de p-ERK1/2-expressie in de U0126-groep 4 u na de incisie niet significant verschilde van die in de blank-groep. Voorbehandeling met NS of DMSO had geen significant effect op de p-ERK1/2-expressie in vergelijking met de IP-groep.
Immunofluorescentie-observaties van spinale celmarkers en inflammatoire mediatoren
De resultaten van de immunofluorescentie toonden kwalitatief een sterkere NeuN-immunoreactiviteit aan in de ipsilaterale dorsale hoorn 4 u na de incisie vergeleken met de contralaterale zijde (Figuur 5). In de blanco groep toonden representatieve beelden de baselinereactiviteit van NeuN, GFAP en Iba-1 in de ipsilaterale dorsale hoorn van het ruggenmerg (Figuur 6A–C). In de IP-groep was de NeuN-immunoreactiviteit kwalitatief sterker dan in de blanco groep (Figuur 6D vs Figuur 6A), was de GFAP-immunoreactiviteit eveneens sterker (Figuur 6E vs Figuur 6B) en was ook de Iba-1-immunoreactiviteit verhoogd (Figuur 6F vs Figuur 6C). Tegelijkertijd leken astrocyten en microglia in de IP-groep hypertrofisch, met vergrote cellichamen en dikkere, sterker vertakte uitlopers (Figuur 6E,F).
In de PPF-groep suggereerden representatieve afbeeldingen een zwakkere NeuN-immunoreactiviteit dan in de IP-groep (Figuur 6G vs Figuur 6D), een zwakkere GFAP-immunoreactiviteit (Figuur 6H vs Figuur 6E) en een zwakkere Iba-1-immunoreactiviteit (Figuur 6I vs Figuur 6F). In de U0126-groep suggereerden representatieve afbeeldingen op soortgelijke wijze een zwakkere NeuN-immunoreactiviteit dan in de IP-groep (Figuur 6J vs Figuur 6D), een zwakkere GFAP-immunoreactiviteit (Figuur 6K vs Figuur 6E) en een zwakkere Iba-1-immunoreactiviteit (Figuur 6L vs Figuur 6F). In zowel de PPF- als de U0126-groepen leken astrocyten en microglia minder hypertrofisch, met kleinere cellichamen en minder en dunnere uitlopers (Figuur 6H,I,K,L). De bijbehorende analyse van de fluorescentie-intensiteit van NeuN, GFAP en Iba-1 was consistent met de representatieve immunofluorescentie-observaties (Figuur 6M–O, respectievelijk).
Vier uur na de incisie waren de immunoreactiviteit en de relatieve fluorescentie-intensiteit van TNF-α en COX-2 verhoogd in de ipsilaterale dorsale hoorn van de IP-groep vergeleken met de blanco-groep. Beide maten waren lager na preoperatieve intrathecale behandeling met PPF of U0126 (Figuur 7A–C).
Cellulaire lokalisatie van spinale p-ERK1/2 via immunofluorescentie
De resultaten van de immunofluorescentie toonden aan dat de p-ERK1/2-immunoreactiviteit in de blanco groep zwak was in het ruggenmerg en alleen werd waargenomen in NeuN-positieve neuronen (Figuur 8A–C). In tegenstelling hiermee was de p-ERK1/2-immunoreactiviteit 4 u na de incisie duidelijk verhoogd in de ipsilaterale dorsale hoorn van het ruggenmerg en co-lokaliseerde deze niet alleen met neuronen, maar ook met GFAP-positieve astrocyten en Iba-1-positieve microglia (Figuur 8D–I). Deze bevinding geeft aan dat de incisie een bredere cellulaire distributie van p-ERK1/2 induceerde, van uitsluitend neuronen onder baseline-condities naar neuronen, astrocyten en microglia na het letsel.
In vitro validatie van het ERK1/2-afhankelijke mechanisme in spinale astrocyten
Om verder te evalueren of PPF de afgifte van inflammatoire mediatoren op cellulair niveau kon onderdrukken via ERK1/2-gerelateerde signalering, werden primaire spinale astrocyten van ratten gestimuleerd met LPS en behandeld met PPF of U0126 (10 µM). Western blot-analyse toonde aan dat PPF de LPS-geïnduceerde expressie van p-ERK1/2 reduceerde, terwijl de fosforylering van p-p38 en p-JNK niet duidelijk veranderd was (Figuur 9A), wat wijst op een relatieve selectiviteit voor de ERK1/2-route onder deze omstandigheden. Parallel hieraan reduceerde PPF de spiegels van TNF-α, PGE2 (een downstreamproduct van COX-2-activiteit) en IL-6 in het supernatants van de kweek in vergelijking met de Stim-groep; U0126 vertoonde vergelijkbare remmende effecten (Figuur 9B).
Om te testen of persistente ERK1/2-activering het ontstekingsremmende effect van PPF zou kunnen verzwakken, werden rescue-experimenten uitgevoerd. Endogene ERK1/2 werd neergeslagen met behulp van siRNA, waarna een constitutief actief ERK1/2 (CA-ERK1/2) construct werd geïntroduceerd (Figuur 9C). In astrocyten die CA-ERK1/2 tot expressie brachten, reduceerde PPF de spiegels van TNF-α, PGE2 of IL-6 niet langer in dezelfde mate (Figuur 9D), wat aantoont dat de onderdrukking van ERK1/2-fosforylering bijdraagt aan het ontstekingsremmende effect van PPF in dit in vitro astrocytenmodel.
Collectief leveren deze in vitro bevindingen mechanistische ondersteuning op cellulair niveau dat PPF de afgifte van inflammatoire mediatoren remt via een ERK1/2-afhankelijk mechanisme in spinale astrocyten, wat de in vivo observationele gegevens aanvult.

Figuur 1: Effecten van preoperatieve intrathecale PPF of U0126 op door incisie geïnduceerde mechanische en thermische hyperalgesie. (A) PWMT in de blanco, IP, PPF en U0126-groepen. (B) PWMT in de IP- en vehicle-controlegroepen. (C) PWTL in de blanco, IP, PPF en U0126-groepen. (D) PWTL in de IP- en vehicle-controlegroepen. Gegevens zijn gemiddelde ± SD (n = 6 ratten per groep) en zijn geanalyseerd via twee-weg repeated-measures ANOVA. ***p < 0.001 ten opzichte van de baseline; #p < 0.05, ##p < 0.01 en ###p < 0.001 ten opzichte van de IP-groep. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 2: Tijdverloop van de expressie van spinale celmarkers en ERK1/2-fosforylering na incisie. (A) Kwantificering en representatieve Western blots van NeuN, GFAP en Iba-1 in de IP-groep vanaf de baseline tot 72 u na de incisie. (B) Kwantificering en representatieve Western blots van t-ERK1/2 en p-ERK1/2 over dezelfde periode. Waarden werden genormaliseerd ten opzichte van de blanco-groep (100%) en worden weergegeven als gemiddelde ± SD (n = 3 ratten per tijdspunt). Algemene verschillen werden geanalyseerd met een-weg ANOVA met de aangegeven paarsgewijze vergelijkingen. *p < 0,05, **p < 0,01 en ***p < 0,001 ten opzichte van de baseline. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 3: Effecten van preoperatieve intrathecale PPF of U0126 op spinale neuronale en gliale markers 4 u na incisie. (A–C) NeuN, GFAP en Iba-1 in de blanco, IP, normale zoutoplossing- en PPF-groepen. (D–F) NeuN, GFAP en Iba-1 in de blanco, IP, dimethylsulfoxide- en U0126-groepen. Representatieve Western blots worden rechts getoond. Waarden zijn genormaliseerd naar de blancogroep (100%) en worden weergegeven als gemiddelde ± SD (n = 3 ratten per groep). *p < 0,05, **p < 0,01 en ***p < 0,001 ten opzichte van blanco; #p < 0,05 en ##p < 0,01 ten opzichte van IP; Δp < 0,05, ΔΔp < 0,01 en ΔΔΔp < 0,001 ten opzichte van de overeenkomstige vehikelgroep. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 4: Effecten van preoperatieve intrathecale PPF of U0126 op spinale ERK1/2-fosforylering 4 u na incisie. (A,B) t-ERK1/2 en p-ERK1/2 in de blanco, IP, normale zoutoplossing en PPF-groepen. (C,D) t-ERK1/2 en p-ERK1/2 in de blanco, IP, dimethylsulfoxide en U0126-groepen. Representatieve Western blots worden rechts getoond. Waarden zijn genormaliseerd ten opzichte van de blancogroep (100%) en worden weergegeven als gemiddelde ± SD (n = 3 ratten per groep). **p < 0,01 en ***p < 0,001 versus blanco; ###p < 0,001 versus IP; ΔΔp < 0,01 en ΔΔΔp < 0,001 versus de overeenkomstige vehikelgroep. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 5: Ipsilaterale en contralaterale spinale NeuN-immunoreactiviteit na incisie. Een representatieve transversale sectie van het lumbale ruggenmerg van de IP-groep 4 u na incisie toont NeuN-kleuring in de contralaterale en ipsilaterale dorsale hoorns. De afbeelding is representatief voor n = 3 ratten en wordt verstrekt voor kwalitatieve anatomische vergelijking. Schaalbalk = 500 µm. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 6: Effecten van PPF en U0126 op spinale neuronale en gliale immunoreactiviteit 4 u na incisie. (A–C) NeuN, GFAP en Iba-1 in de blanco-groep. (D–F) Overeenkomstige kleuring in de IP-groep. (G–I) Overeenkomstige kleuring na PPF-behandeling. (J–L) Overeenkomstige kleuring na U0126-behandeling. (M–O) Respectievelijk relatieve fluorescentie-intensiteiten van NeuN, GFAP en Iba-1. Balken tonen gemiddelde ± SD (n = 3 ratten per groep); *p < 0.05, **p < 0.01 en ***p < 0.001 voor de aangegeven vergelijkingen.Schaalbalken = 200 µm. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 7: Spinale TNF-α en COX-2 immunoreactiviteit na incisie en behandeling. (A) Representatieve TNF-α en COX-2 beelden van de blanco, IP, PPF en U0126 groepen 4 u na de incisie. (B) Relatieve TNF-α fluorescentie-intensiteit. (C) Relatieve COX-2 fluorescentie-intensiteit. Staven tonen het gemiddelde ± SD (n = 3 ratten per groep); ***p < 0,001 voor de aangegeven vergelijkingen. Schaalbalken = 200 µm. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 8: Cellulaire lokalisatie van spinale p-ERK1/2 op 4 u na incisie. (A–C) p-ERK1/2 co-kleuring met respectievelijk NeuN, GFAP en Iba-1 in de controlegroep. (D–F) Overeenkomstige co-kleuring in de IP-groep; pijlen identificeren representatieve co-gelokaliseerde cellen. Rood geeft p-ERK1/2 aan, groen geeft de celmarker aan en geel geeft co-lokalisatie aan. (G–I) Relatieve fluorescentie-intensiteiten geassocieerd met respectievelijk NeuN-, GFAP- en Iba-1-positieve regio's. Staven tonen het gemiddelde ± SD (n = 3 ratten per groep); **p < 0,01 en ***p < 0,001 voor de aangegeven vergelijkingen. Schaalbalken = 100 µm. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 9: ERK1/2-afhankelijke ontstekingsremmende effecten van PPF in primaire astrocyten uit het ruggenmerg van ratten. (A) Representatieve Western blots die laten zien dat PPF de door LPS geïnduceerde p-ERK1/2 verminderde zonder een duidelijk effect op p-p38 of p-JNK. (B) Concentraties van TNF-α, PGE2 en IL-6 in kweeksupernatanten na behandeling met LPS, PPF of U0126. (C) Western blots die de siRNA-gemedieerde ERK1/2-knockdown en expressie van constitutief actieve ERK1/2 (CA-ERK1/2) bevestigen. (D) Concentraties van TNF-α, PGE2 en IL-6 na CA-ERK1/2-expressie met of zonder PPF. Staven tonen het gemiddelde ± SD van onafhankelijke in vitro experimenten; ***p < 0,001 voor de aangegeven vergelijkingen; ns, niet significant. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Aanvullend bestand 1: Gegevens ter ondersteuning van de bevindingen van deze studie.Klik hier om dit bestand te downloaden.