Deze studie evalueert de effecten van menstruatiecyclusfasen op de afgifte van groeifactoren uit bloedplaatrijk fibrine (PRF).
Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.
Onderzoeksartikel
Deze studie evalueert de effecten van menstruatiecyclusfasen op de afgifte van groeifactoren uit bloedplaatrijk fibrine (PRF).
Bloedplaatjesrijk fibrine (PRF) wordt veel gebruikt in de tandheelkundige chirurgie voor regeneratieve ingrepen; Toch blijft variabiliteit in de biologische inhoud een belangrijke beperking voor standaardisatie. Deze studie had als doel een streng gecontroleerde experimentele workflow te implementeren om te evalueren hoe de fasen van de menstruatiecyclus de afgifte van groeifactoren uit PRF beïnvloeden. Veneuze bloedmonsters werden afgenomen van 21 gezonde vrouwelijke vrijwilligers in drie vooraf gedefinieerde menstruatiefasen (menstruatie: dag 1–5; follikel: dag 6–14; luteaal: dag 15–28), waarbij alle verzamelingen binnen een vast tijdsvenster (11:00–11:30 uur) werden uitgevoerd om circadiane variatie te minimaliseren. Voor elke fase werden aparte buizen toegewezen voor volledige bloedtelling, hormoonanalyse (oestrogeen, progesteron, follikelstimulerend hormoon [FSH] en luteïniserend hormoon [LH]) en PRF-bereiding. PRF werd geproduceerd door onmiddellijke centrifugatie onder gestandaardiseerde omstandigheden (708 × g voor 12 minuten; vaste hoek rotor, 40 °; straal 88 mm; geen antistollingsmiddel). Stolsels werden macroscopisch geverifieerd (homogene, elastische structuur), zorgvuldig gescheiden van de rode bloedcellaag en individueel gewogen. Om de groeifactorafgifte te standaardiseren, werd elk stolsel geïncubeerd in RPMI-1640 medium met een gewichtsverhouding (1 g PRF: 1 mL medium), gevolgd door gecontroleerde incubatie bij 37 °C met orbitale agitatie (100 rpm). Supernatanten werden verzameld en opgeslagen bij -80 °C voorafgaand aan analyse. Groeifactoren (IGF-1, PDGF, FGF-2, VEGF en TGF-β1) werden gekwantificeerd met behulp van enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) onder uniforme assaycondities. Binnen dit gestandaardiseerde protocol waren de FGF-2-niveaus significant hoger tijdens de folliculaire fase vergeleken met de menstruatie- en luteale fases. Er werd in deze fase een matige positieve correlatie waargenomen tussen FGF-2 en oestrogeenniveaus, terwijl er voor andere groeifactoren geen statistisch significante verschillen werden vastgesteld. Deze bevindingen wijzen erop dat de menstruatiecyclusfase kan bijdragen aan variabiliteit in door PRF afgeleide groeifactorprofielen. Het uiteengezette protocol biedt een reproduceerbaar kader om pre-analytische en analytische variabiliteit in PRF-studies te minimaliseren. De klinische implicaties van fase-gerelateerde verschillen rechtvaardigen verder onderzoek in studies met grotere cohorten en behandelingsuitkomsten.
Historisch gezien begon het gebruik van bloedplaatjesconcentraten met de ontwikkeling van fibrine-lijmen en evolueerde het tot diverse formuleringen en bereidingsprotocollen. Bloedplaatjesrijk fibrine (PRF), voor het eerst geïntroduceerd door Choukroun et al. in 2001, is een tweede-generatie bloedplaatjesconcentraat dat veel wordt gebruikt in de tandheelkunde1. Dit autologe biomateriaal wordt verkregen door centrifugatie zonder antistollingsmiddelen en vormt een fibrinematrix verrijkt met bloedplaatjes, leukocyten en circulerende immuuncomponenten2. Het fibrinenetwerk functioneert als een steiger die de geleidelijke afgifte van groeifactoren mogelijk maakt die essentieel zijn voor weefselherstel en regeneratie3.
Bloedplaatjes spelen een centrale rol bij wondgenezing en hemostase door cytokines en groeifactoren vrij te geven bij activatie4. In PRF resulteert dit proces in de aanhoudende afgifte van belangrijke mediatoren, waaronder vasculaire endotheliale groeifactor (VEGF), fibroblastgroeifactor-2 (FGF-2), bloedplaatje-afgeleide groeifactor (PDGF), insuline-achtige groeifactor (IGF) en transformerende groeifactor-beta1 (TGF-β1)5. Ondanks het wijdverbreide klinische gebruik blijven de bevindingen over de regeneratieve effectiviteit van PRF inconsistent in studies 3,6. Een belangrijke bron van variabiliteit is de heterogeniteit van PRF-preparaten, die wordt beïnvloed door zowel technische als biologische factoren.
Vanuit methodologisch oogpunt kunnen verschillen in centrifugatieprotocollen (bijv. relatieve centrifugale kracht, duur, rotortype), buismaterialen en post-verzameling verwerking de PRF-architectuur en cellulairedistributie aanzienlijk veranderen. Daarnaast kan analytische variabiliteit—zoals gebrek aan standaardisatie in stolselverwerking, inconsistente normalisatiestrategieën en verschillen in incubatiecondities vóór ELISA—leiden tot aanzienlijke discrepanties in gerapporteerde groeifactorniveaus8. Deze inconsistenties beperken de vergelijkbaarheid tussen studies en verminderen de translationele betrouwbaarheid van PRF-onderzoek.
Biologische variabiliteit bemoeilijkt de interpretatie verder. Verschillende patiëntgerelateerde factoren, waaronder leeftijd, geslacht, aantal bloedplaatjes, breedte van de bloedplaatjesverdeling (PDW) en gemiddeld bloedplaatjesvolume (MPV), zijn bekend om invloed te hebben op de samenstelling van PRF9. Bovendien kunnen hormonale, genetische en omgevingsfactoren het bloedplaatjesgedrag en de afgifte van cytokinenmoduleren. Er is zowel direct als indirect bewijs dat geslachtshormonen de bloedplaatjesbiologiebeïnvloeden. Met name oestrogeen is aangetoond dat het de respons van bloedplaatjes op fysiologische agonisten verbetert en de door trombine geïnduceerde aggregatie via receptor-gemedieerde routesverhoogt 12. Aangezien oestrogeenniveaus fluctueren gedurende de menstruatiecyclus, kunnen de functie van de bloedplaatjes en de bijbehorende biologische output ook dienovereenkomstig variëren13. De literatuur blijft echter inconsistent, waarbij sommige studies een verhoogde activatie van de bloedplaatjes melden en andere neutrale of remmende effecten14.
Gezien deze gecombineerde technische en biologische variabiliteit is er een duidelijke behoefte aan methodologisch gecontroleerde workflows die pre-analytische en analytische bias minimaliseren bij het evalueren van PRF-afgeleide groeifactoren. In tegenstelling tot veel eerdere studies die vertrouwen op enkelvoudige tijdsbemonstering, niet-gestandaardiseerde stolselbehandeling of niet-genormaliseerde groeifactorkwantificatie, gebruikt deze studie een fasespecifiek, tijdgestuurd bloedafnameprotocol, vaste centrifugatieparameters en gewichtsgebaseerde normalisatie van PRF-stolsels voorafgaand aan incubatie en ELISA-analyse8. Deze benadering is ontworpen om de reproduceerbaarheid te verbeteren en een betrouwbaardere vergelijking van groeifactorafgifte tussen fysiologische toestanden mogelijk te maken.
Alternatieve benaderingen van PRF-onderzoek omvatten het gebruik van geavanceerde formuleringen zoals advanced-PRF7 en injecteerbare-PRF15, horizontale centrifugatiesystemen7, of directe membraanimplantatie zonder ex vivo analyse. Hoewel deze methoden de cellulaire opbrengst of klinische toepasbaarheid kunnen verbeteren, introduceren ze vaak extra variabiliteit in de kwantificatie van groeifactoren of beperken ze het vermogen om specifieke biologische effecten te isoleren. Daarentegen geeft de huidige workflow prioriteit aan analytische standaardisatie en gecontroleerde vergelijking, waardoor het bijzonder geschikt is voor het onderzoeken van fysiologische modificatoren zoals hormonale fluctuaties.
Het voorgestelde protocol is het meest geschikt voor gecontroleerde experimentele of translationele studies die gericht zijn op het kwantificeren van groeifactorvrijgave onder gestandaardiseerde omstandigheden. Het kan minder toepasbaar zijn in omgevingen die zich uitsluitend richten op klinische uitkomsten, vereenvoudigde voorbereiding aan de stoel, of studies waar onmiddellijke PRF-aanvraag zonder verwerking vereist is. Onderzoekers zouden moeten overwegen deze workflow te adopteren wanneer het primaire doel is om variabiliteit te verminderen en de reproduceerbaarheid van PRF-gerelateerde metingen te verbeteren.
Daarom was het doel van deze studie om de correlatie te evalueren tussen hormoonniveaus over verschillende menstruatiefasen en de afgifte van groeifactoren uit PRF met behulp van een gestandaardiseerd en reproduceerbaar methodologisch kader.
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Deze studie werd uitgevoerd aan de afdeling Parodontologie, Faculteit Tandheelkunde, Çukurova Universiteit, Adana, Turkije, met deelname van 21 vrouwelijke vrijwilligers. Alle deelnemers werden in detail geïnformeerd over het doel, de opzet en de procedures van de studie, en er werd schriftelijke geïnformeerde toestemming verkregen voorafgaand aan opname. Het studieprotocol werd beoordeeld en goedgekeurd door de Ethische Commissie van de Faculteit Geneeskunde van de Universiteit van Cukurova (Goedkeuringsnummer: 125/56, gedateerd 16-09-2022). Alle procedures werden uitgevoerd in overeenstemming met de principes van de Verklaring van Helsinki voor onderzoek met menselijke proefpersonen.
Alle procedures met betrekking tot menselijk bloed, inclusief biologische veiligheidsmaatregelen en het omgaan en verwijderen van biologisch gevaarlijk en chemisch afval, werden uitgevoerd in overeenstemming met vastgestelde bioveiligheidsrichtlijnen zoals uiteengezet door de Centers for Disease Control and Prevention en de National Institutes of Health16. Het personeel gebruikte passende persoonlijke beschermingsmiddelen (PBM), zoals handschoenen, laboratoriumjas en beschermende brillen. Alle monsterbehandeling vond plaats in aangewezen laboratoriumgebieden om besmetting en blootstelling te voorkomen. Biologisch afval (bloedresiduen, PRF-resten, verbruiksartikelen) werd afgevoerd in overeenstemming met het Protocol voor Medische Afvalbeheersing van de Universiteit van Cukurova en nationale regelgeving voor biomedisch afval. De scherpe voorwerpen werden in prikbestendige containers geplaatst; Het vloeibare afval werd chemisch gedesinfecteerd vóór verwijdering en het vaste biohazardafval werd geautoclaveerd voordat het onder licentie werd afgevoerd.
Selectie van deelnemers
Personen die aan de volgende criteria voldeden, werden in het onderzoek opgenomen: Afwezigheid van systemische aandoeningen, regelmatige menstruatiecyclus van 27–30 dagen en leeftijd tussen 18–25 jaar
Personen die aan de volgende criteria voldeden, werden uitgesloten van het onderzoek: aanwezigheid van systemische aandoeningen, onregelmatige menstruatiecyclus, gebruik van medicatie of hormonale preparat, aanwezigheid van endocriene of bloedingsstoornissen en geschiedenis van overmatig bloedverlies tijdens de menstruatie
Bloedafname en groepstoewijzing
De eerste dagen van de menstruatiecyclus van elke deelnemer werden gebruikt om een planningsprotocol op te stellen. Op basis van algemeen aanvaarde fysiologische classificaties werd de cyclus verdeeld in drie fasen: Dag 1–5 als menstruatiefase (geassocieerd met endometriumuitscheiding), Dagen 6–14 als folliculaire fase (gekenmerkt door stijgende oestrogeenspiegels en follikelontwikkeling), en Dagen 15–28 als de luteale fase (gekenmerkt door verhoogde progesteronsecretie na de eisprong)12,13. Bloedmonsters werden van elke deelnemer genomen tijdens de overeenkomstige fasen. Gedurende één cyclus werden in totaal negen bloedbuisjes per proefpersoon verzameld: drie voor het volledige bloedbeeld (één per fase), drie voor geslachtshormoonanalyse (oestrogeen, progesteron, luteïniserend hormoon (LH), follikelstimulerend hormoon (FSH)) en drie voor PRF-voorbereiding en ELISA-gebaseerde groeifactoranalyse. Alle bloedmonsters werden elke dag tussen 11:00 en 11:30 uur op hetzelfde tijdstip genomen om de biologische variabiliteit te minimaliseren. Veneuze bloedmonsters werden genomen uit de antecubitale vena met behulp van een steriel, vacuümgebaseerd bloedafnamesysteem en 21G vlindernaalden om atraumatische bemonstering te garanderen. Het bloed werd direct verzameld in steriele glazen buizen van 10 mL zonder antistollingsmiddel (PRF-buizen), volgens standaard PRF-bereidingsprotocollen. Om pre-analytische variabiliteit te minimaliseren, werden alle monsters onder gestandaardiseerde omstandigheden door dezelfde getrainde verpleegkundige genomen.
Direct na het verzamelen werden de buizen voorzichtig en zonder beweging behandeld en binnen 60–90 seconden in de centrifuge overgebracht om voortijdige stolling te voorkomen en consistente fibrinepolymerisatie te waarborgen. Buizen werden symmetrisch in de rotor geplaatst om balans te behouden en trillingsgerelateerde variabiliteit tijdens centrifugatie te voorkomen. Er werden in geen enkel stadium van de procedure additieven of antistollingsmiddelen gebruikt.
Als gevolg hiervan werden drie studiegroepen opgericht: Groep 1: Monsters van de menstruatiefase, Groep 2: Monsters van de follikelfase, en Groep 3: Monsters van de luteale fase
PRF-voorbereidingsstappen:
Bloedmonsters werden onmiddellijk gecentrifugeerd zonder antistollingsmiddelen met behulp van een werkbankcentrifuge uitgerust met een rotor met een vaste hoek (40 °; straal: 88 mm). Centrifugatie werd uitgevoerd onder gestandaardiseerde omstandigheden bij 708 × g gedurende 12 minuten bij kamertemperatuur (22°C–24 °C). Relatieve centrifugale kracht (RCF) werden berekend met behulp van de standaardformule (RCF = 1,118 × 10⁻5 × r × g2), waarbij de rotorstraal (88 mm) werd meegenomen, in overeenstemming met de vastgestelde PRF-protocollen beschreven door Choukroun et al.17 en daaropvolgende standaardisatiestudies 1,3,18. Na centrifugatie werden de drie verschillende lagen geïdentificeerd: een onderste rode bloedcellaag, een bovenste plasmalaag met weinig bloedplaatjes en een tussenliggende PRF-stolsel. Het PRF-stolsel werd voorzichtig verwijderd met steriele pincetten, zodat de erythrocytinterface niet werd verstoord. Resterende rode bloedcellen werden zorgvuldig geknipt met een steriele schaar.
PRF-stolsels werden macroscopisch geëvalueerd op een glad en homogeen oppervlak, elastische cilindrische structuur en dichte, stevige consistentie volgens vooraf gedefinieerde criteria19,20. Stolsels die niet aan deze criteria voldeden, werden weggegooid en er werden indien nodig nieuwe bloedmonsters genomen. Alle monsters werden onder gestandaardiseerde omstandigheden verwerkt en binnen 30 minuten na afname ingevroren bij -80 °C om proteolytische afbraak te minimaliseren. Monsters werden voor een gecontroleerde, uniforme duur (tot 4 weken) opgeslagen vóór batchanalyse om de variabiliteit tussen de assays te verminderen en de vergelijkbaarheid van groeifactormetingen te waarborgen.
Groeifactor ELISA-analysestappen:
PRF-stolsels werden onder aseptische omstandigheden zorgvuldig gescheiden van de rode bloedcellen met behulp van steriele chirurgische schaar en individueel gewogen met een gekalibreerde analytische balans. RPMI-1640 kweekmedium werd aan elk monster toegevoegd in een vaste verhouding gebaseerd op het stolselgewicht (1 g PRF: 1 mL medium) om de extractie van groeifactoren te standaardiseren en de variabiliteit die samenhangt met verschillen in stolselmassa te minimaliseren. Monsters werden geïncubeerd bij 37 °C op een orbitale shaker van 100 × g om homogene diffusie van oplosbare groeifactoren uit de PRF-matrix naar het kweekmedium te vergemakkelijken. Na de incubatie werden de supernatanten verzameld en opgeslagen bij -80 °C tot analyse.
Groeifactorconcentraties, waaronder insuline-achtige groeifactor-1 (IGF-1), bloedplaatje-afgeleide groeifactor (PDGF), fibroblastgroeifactor-2 (FGF-2), vasculaire endotheliale groeifactor (VEGF) en transformerende groeifactor-β1 (TGF-β1), werden gekwantificeerd met commercieel verkrijgbare enzymgekoppelde immunosorbentassay (ELISA) kits volgens de instructies van de fabrikant. De volgende kits werden gebruikt: Human IGF-1 ELISA Kit, Human PDGF ELISA Kit, Human FGF-2 ELISA Kit, Human VEGF ELISA Kit en Human TGF-β1 ELISA Kit. Alle monsters en standaarden werden dubbel geanalyseerd en de absorptie werd gemeten op 450 nm met een microplaatlezer. Kalibratiecurves werden gegenereerd met behulp van vierparameter logistische (4-PL) regressie om analytenconcentratieste bepalen 5.
ELISA-stappen
De verdunning van het monster werd bepaald volgens het verwachte concentratiebereik en de instructies van de fabrikant voor elke ELISA-kit. Monsters waarvan werd verwacht dat ze binnen het standaardcurvebereik zouden vallen, werden zonder verdunning geanalyseerd. Wanneer voorlopige metingen of verwachte analyteconcentraties de bovengrens van de standaardcurve overschreden, werden monsters verdund met het in de kit meegeleverde verdunningsmiddel en opnieuw geanalyseerd. De uiteindelijke concentraties werden berekend door de gemeten waarden te vermenigvuldigen met de bijbehorende verdunningsfactor.
Standaarden (100 μL), bereid door seriële verdunning volgens de instructies van de FineTest-kit, en onverdunde of passend verdunde monsters werden aan elke put van een voorgecoate 96-put microplaat toegevoegd. De plaat werd 90 minuten geïncubeerd bij 37 °C om antigeenbinding mogelijk te maken. Alle monsters en standaarden werden dubbel geanalyseerd. Na incubatie werd de vloeistof verwijderd zonder te wassen, en werd 100 μL biotine-gelabelde detectie-antistofwerkoplossing aan elke put toegevoegd. De plaat werd 60 minuten geïncubeerd bij 37 °C. Na de incubatie werden de putten geaspireerd en drie keer gewassen met 350 μL 1× wasbuffer per put. De wasbuffer werd ongeveer 1 minuut in de putten gelaten tijdens elke wascyclus om voldoende verwijdering van ongebonden componenten te waarborgen. Vervolgens werd 100 μL mierikswortelperoxidase (HRP)–streptavidine conjugaatwerkoplossing aan elke put toegevoegd, en de plaat werd 30 minuten geïncubeerd bij 37 °C. De putten werden vijf keer gewassen met 350 μL washbuffer per put om het achtergrondsignaal te minimaliseren. Vervolgens werd 90 μL tetramethylbenzidine (TMB) substraatoplossing aan elke put toegevoegd, en de plaat werd 10–20 minuten in het donker geïncubeerd bij 37 °C om kleurontwikkeling mogelijk te maken, terwijl de reactie visueel werd gemonitord. De enzymatische reactie werd beëindigd door 50 μL van de stopoplossing die bij de kit werd geleverd aan elke put toe te voegen, wat resulteerde in een kleurverandering van blauw naar geel.
De absorptie werd gemeten op 450 nm met een microplaatlezer binnen 5 minuten nadat de stopoplossing was toegevoegd. Een standaardcurve werd gegenereerd met behulp van de bekende concentraties die in de kit werden verstrekt, en de curve werd aangepast met een vierparameter logistisch (4-PL) regressiemodel. De monsterconcentraties werden dienovereenkomstig berekend en gecorrigeerd voor eventuele verdunningsfactoren.
Statistische analyse
Numerieke variabelen werden samengevat als gemiddelde ± standaarddeviatie voor normaal verdeelde gegevens, en als mediaan met minimum–maximumwaarden wanneer aan normaliteitsaannames niet werd voldaan. Categorische variabelen werden uitgedrukt als frequenties en percentages. De normaliteit van numerieke gegevens werd beoordeeld met behulp van de Shapiro–Wilk-test. Voor vergelijkingen van herhaalde numerieke metingen verkregen van dezelfde individuen op verschillende tijdstippen, werd herhaalde metingen van variantie (ANOVA) toegepast wanneer parametrische aannames waren voldaan; anders werd de Friedman-test gebruikt. Correlaties tussen niet-normaal verdeelde numerieke variabelen werden geëvalueerd met behulp van Spearmans rangcorrelatiecoëfficiënt. Statistische analyses werden uitgevoerd met statistische software (IBM SPSS Statistics versie 26.0), en een tweezijdige p-waarde < 0,05 werd als statistisch significant beschouwd.
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Er ontbraken geen gegevens, aangezien alle deelnemers de bemonstering voltooiden in alle drie de menstruatiefasen. De parameters van de volledige bloedtelling lagen binnen fysiologische referentiebereiken voor alle monsters, wat de consistentie van de kwaliteit van het monster en de betrouwbaarheid van PRF-voorbereiding ondersteunde.
Evaluatie van bloedwaarden over menstruatiefasen heen
Een vergelijking van hematolo...
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
De menstruatiecyclus is een complex fysiologisch proces dat wordt georkestreerd door hormonale schommelingen die veranderingen in verschillende systemen binnen het vrouwelijk lichaam aanjagen. In deze studie onderzochten we het gehalte van PRF dat werd verkregen uit bloedmonsters die tijdens verschillende fasen van de menstruatiecyclus werden verzameld en analyseerden we de niveaus van groeifactoren binnen deze PRF.
De menstruatiecyclus werd onderverdeeld in d...
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
De auteurs hebben niets te onthullen. Het ChatGPT AI-programma werd gebruikt voor taalbewerking.
De auteurs willen de afdeling Biochemie van de Faculteit Geneeskunde van de Universiteit van Cukurova bedanken voor hun ondersteuning bij het uitvoeren van de ELISA-analyse.
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
| Naam | Bedrijf | Catalogusnummer | Opmerkingen |
|---|---|---|---|
| Analytische weegschaal | Precisieweegschaal (0,001 g afleesbaarheid) | Sartorius | Entris |
| Bloedopvangbuisjes | Glasbuisjes, geen anticoagulantia (10 mL) | BD | Vacutainer-systeem |
| Centrifuge | Tabelcentrifuge | Hettich | Universal 320R |
| ELISA-kit – FGF | Human FGF ELISA-kit | FineTest | EH0541 |
| ELISA-kit – IGF-1 | Human IGF-1 ELISA-kit | FineTest | ER0030 |
| ELISA-kit – PDGF | Human PDGF ELISA-kit | FineTest | ER1240 |
| ELISA-kit – TGF-β1 | Human TGF-β1 ELISA-kit | FineTest | EH0287 |
| ELISA-kit – VEGF | Human VEGF ELISA-kit | FineTest | EH0327 |
| HRP–streptavidine-conjugaat | ELISA-reagens (inbegrepen in kit) | FineTest | Inbegrepen in kit |
| Incubator | Temperatuurgeregelde incubator (37 °C) | Memmert | — |
| Microcentrifugebuisjes | Steriele buisjes (1,5–2 mL) | Eppendorf | — |
| Microplaatlezer | 450 nm absorptieleeser | BioTek | ELx800 |
| Naald | 21G steriele wegwerpnaald | BD | — |
| Orbitaal shaker | Instelbare shaker (100 rpm) | IKA | KS 3000 i control |
| Persoonlijk beschermingsmateriaal | Handschoenen, laboratoriumjas, beschermende brillen | Verschillende | — |
| RPMI-1640-medium | Celcultuurmedium | Gibco (Thermo Fisher Scientific) | 11875-093 |
| Statistische analysesoftware | Gegevensanalysesoftware (versie 26.0) | IBM | SPSS Statistics |
| Stopoplossing | ELISA-stopreagens | FineTest | Inbegrepen in kit |
| TMB-substraat | Chromogeen substraat voor ELISA | FineTest | Inbegrepen in kit |
| Wasbuffer | ELISA-wasbuffer (1×) | FineTest | Inbegrepen in kit |