Insluiting van patiënten
Alle deelnemers gaven schriftelijke geïnformeerde toestemming nadat zij de inhoud van het onderzoek volledig hadden begrepen. De ethische commissie van het Shanghai Pudong New Area People's Hospital heeft dit onderzoeksprotocol beoordeeld en goedgekeurd (Nr. 2024k007). De steekproefomvang werd berekend met G*Power: de geselecteerde test was een t-test, en de statistische test was ontworpen om verschillen tussen twee onafhankelijke steekproeven te detecteren. Met een effectgrootte van d = 0,5, α = 0,05 en power = 0,9 gaf de berekening aan dat er minimaal 86 proefpersonen per groep geïncludeerd moesten worden. Om rekening te houden met mogelijke onvoorziene omstandigheden tijdens de studie, werden 116 patiënten per groep geïncludeerd. In totaal werden 116 patiënten met IBS-D die tussen juli 2024 en juli 2025 het Shanghai Pudong New Area People's Hospital bezochten, opgenomen in deze studie als de experimentele groep. De inclusiecriteria waren: (1) IBS-D conform de diagnostische criteria van Rome IV; (2) colonoscopie die geen organische letsels in de mucosa aantoonde. Exclusiecriteria: (1) patiënten met inflammatoire darmziekten (IBD), colorectale kanker, etc.; (2) diabetespatiënten; (3) patiënten met een recente voorgeschiedenis van abdominale chirurgie; en (4) patiënten met ernstig hart-, lever- of nierinsufficiëntie. Ondertussen werden 116 gezonde vrijwilligers die overeenkwamen met de demografische kenmerken van de patiënten, zoals leeftijd en geslacht, geworven als controlegroep. Voor de gezonde controles werd bevestigd dat er geen sprake was van een voorgeschiedenis van chronische gastro-intestinale aandoeningen of overeenkomstige klinische symptomen. Van alle proefpersonen werd vijf milliliter perifeer veneus bloed afgenomen. Het supernatant werd vervolgens overgebracht naar een ultra-laagtemperatuurvriezer bij -80 °C voor cryopreservatie voorafgaand aan de daaropvolgende RNA-extractie.
Elke deelnemer vulde een vragenlijst over een periode van 10 dagen in om de volgende klinische manifestaties vast te leggen: (a) beoordeling van de ernst van de buikpijn met behulp van een visuele analoge schaal van 10 punten; (b) frequentie van buikpijn tijdens de onderzoeksperiode (aantal pijnlijke dagen); (c) frequentie van de stoelgang (maximaal aantal stoelgangen per dag); (d) de Bristol Faecal Form Scale om de ontlastingskenmerken te beoordelen. De emotionele toestand van de proefpersonen werd geëvalueerd met de Hospital Anxiety and Depression Scale (HADS).
Celkweek en modellering
Caco-2-cellen werden routinematig gekweekt in Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) mengandung 10% foetaal runderserum (FBS) en 1% penicilline-streptomycine, in een incubator bij 37 °C en 5% CO₂. De Caco-2-cellijn differentieert spontaan tot een gepolariseerde monolaag van cellen met tight junctions en microvilli, waarbij morfologische en functionele kenmerken worden vertoond die vergelijkbaar zijn met die van mature intestinale epitheelcellen. LPS triggert een ontstekingsreactie en verstoort de tight junctions in het intestinale epitheel, waardoor de intestinale permeabiliteit toeneemt—een proces dat sterk lijkt op de pathologische kenmerken van IBS-D. Bovendien, aangezien LPS-behandelde Caco-2-cellen in eerdere studies19,20,21 breed zijn gebruikt om IBS-gerelateerde barrièredysfunctie en ontsteking te modelleren, werd in deze studie gekozen voor behandeling van Caco-2-cellen met lipopolysaccharide (LPS) om een in vitro model van IBS-D te vestigen. Zodra de cellen een confluentie van ongeveer 80% hadden bereikt, werd het kweekmedium vervangen door compleet medium mengandung 5 µg/ml LPS22, en werden de cellen gedurende 24 h gestimuleerd. Conventioneel gekweekte cellen zonder LPS werden als controlegroep gebruikt.
Celtransfectie
Om de rollen van NEAT1 en miR-29b-3p in Caco-2-cellen te onderzoeken, werden Caco-2-cellen getransfecteerd. De cellen werden als volgt verdeeld in zes groepen: 1. controlegroep (geen behandeling); 2. LPS-groep; 3. LPS + si-NC-groep; 4. LPS + si-NEAT1-groep; 5. LPS + si-NEAT1 + inhibitor NC-groep; en 6. LPS + si-NEAT1 + miR-29b-3p inhibitor-groep. Er werden twee small interfering RNA's (si-NEAT1) ontworpen en gesynthetiseerd die gericht waren op NEAT1: si-NEAT1_1 (5′-GCCTTGTAGATGGAGCTTGC-3′) en si-NEAT1_2 (5′-GUGAGAAGUUGCUUAGAAAUU-3′). Een siRNA met een willekeurige niet-targeterende sequentie (si-NC) werd gebruikt als negatieve controle. Tegelijkertijd werden de miR-29b-3p inhibitor en de bijbehorende negatieve controle gesynthetiseerd. miR-29b-3p inhibitor: 5’-AACACUGAUUUCAAAUGGUGCUA-3’. Negatieve controle: 5’-CAGUACUUUUGUGUAGUACAA-3’.
Caco-2-cellen werden uitgeplaat in 24-wellplaten en getransfecteerd zodra de culturen een confluentie van 60–70% hadden bereikt, volgens het protocol van de fabrikant. Kort samengevat werd 1,25 µL siRNA verdund in 25 µL serumarm medium om een uiteindelijke siRNA-concentratie van 50 nM te verkrijgen. Voor miRNA-inhibitie werd 2 µL van de miR-29b-3p-inhibitor of de negatieve controle verdund in 25 µL serumarm medium tot een uiteindelijke concentratie van 100 nM. Apart werd 1,5 µL van het transfectiereagens gemengd met 25 µL serumarm medium. Het verdunde siRNA (of de inhibitor/negatieve controle) werd vervolgens gemengd met het verdunde transfectiereagens om het transfectiecomplex te vormen, dat druppelsgewijs aan de cellen werd toegevoegd. Zes uur na transfectie werd het transfectiemengsel vervangen door vers compleet medium en werden de cellen nog 48 u onderhouden voordat de functionele downstream-assays werden uitgevoerd. De knockdown- of inhibitie-efficiëntie werd vóór verdere experimenten bevestigd via RT-qPCR.
Real-time kwantitatieve reverse transcriptie-PCR (RT-qPCR)
Totaal RNA werd geïsoleerd uit serummonsters en Caco-2-cellen die waren onderworpen aan de aangegeven behandelingen. Kort samengevat werd elk monster gelyseerd met 1 mL RNA-extractiereagens en gecombineerd met 200 µL chloroform. Na centrifugatie bij 12.000 × g gedurende 15 min bij 4 °C werd de bovenste waterige fase overgebracht naar een nieuwe buis, gemengd met 500 µL isopropanol en 30 min bij −20 °C bewaard. De monsters werden vervolgens gecentrifugeerd bij 12.000 × g gedurende 10 min bij 4 °C. Het resulterende RNA-pellet werd tweemaal gewassen met 75% ethanol, aan de lucht gedroogd en opnieuw opgelost in 20 µL RNase-vrij water. De RNA-opbrengst en -zuiverheid werden gemeten met een microspectrofotometer, en alleen monsters met A260/A280 waarden van 1,8–2,0 werden gebruikt. Het RNA werd omgezet in cDNA via reverse transcriptie volgens het protocol van de fabrikant. Voor de detectie van NEAT1, ZO-1, occludine, claudine-2, en GAPDHVoor elke reverse-transcriptiereactie van 20 µL werd 1 µg totaal RNA gebruikt, bestaande uit 1× RT-buffer, 0,5 mM dNTP's, 0,5 µM oligo(dT)-primer, 200 U reverse transcriptase en RNase-vrij water. De reactie werd uitgevoerd bij 37 °C gedurende 15 min, gevolgd door inactivatie van het enzym bij 85 °C gedurende 5 s.
Kwantitatieve PCR werd uitgevoerd met cDNA als template met behulp van een SYBR Green-gebaseerd real-time PCR-systeem. De expressieniveaus van NEAT1, miR-29b-3p, ZO-1, occludin, en claudin-2 werden gemeten met genspecifieke primers. U6 diende als referentiegen voor miR-29b-3p, terwijl GAPDH werd gebruikt om NEAT1 en tight junction-gerelateerde genen te normaliseren. De relatieve expressie werd berekend met de 2−ΔΔCt-methode. De primersequenties zijn opgenomen in Tabel 1.
Cellevensvatbaarheidsassay
Caco-2-cellen in de log-fase werden gezaaid in 96-wells platen met 1 × 104 cellen per well. Er werden een blanco controlegroep (bevatten enkel het kweekmedium), een controlegroep (onbehandelde cellen) en een experimentele groep (Caco-2-cellen onder verschillende behandelingscondities) ingericht, met 5–6 dubbele wells per groep. De cellen werden toegewezen aan vier tijdspunten: 0, 24, 48 en 72 h. Voor elk tijdspunt werd een aparte kweekplaat klaargemaakt om te voorkomen dat de incubator tijdens de metingen herhaaldelijk geopend moest worden. Na de kweekperiode werd aan elke well 10 µL CCK-8-oplossing toegevoegd, waarbij vorming van belletjes werd vermeden. Vervolgens werd de kweekplaat teruggeplaatst in een incubator bij 37 °C en 5% CO₂ en gedurende 2 h in het donker geïncubeerd. De absorbentie van elke well werd onmiddellijk gemeten bij 450 nm met een microplatereader. Uiteindelijk werd de celviabiliteit uitgedrukt als een percentage.
Celapoptose-assay
Apoptose werd gekwantificeerd met flowcytometrie na Annexine V-FITC/PI-kleuring. Caco-2-cellen van elke behandelingsgroep werden geoogst en tweemaal gespoeld met ijskoud PBS. Centrifugatie werd uitgevoerd bij 300 × g gedurende 5 min bij 4 °C. De celpellet werd vervolgens geresuspendeerd in 100 µL 1× bindingsbuffer, gevolgd door de opeenvolgende toevoeging van 5 µL Annexine V-FITC en 5 µL PI. Na voorzichtig mengen werden de monsters 15 min bij kamertemperatuur in het donker geïncubeerd. Vervolgens werd 300 µL 1× bindingsbuffer toegevoegd en werd de suspensie zorgvuldig gemengd vóór overdracht naar een flowcytometrie-buis van 5 mL. De monsters werden binnen 1 u geanalyseerd met flowcytometrie.
Transepitheliale elektrische weerstand (TEER)
De permeabiliteit werd beoordeeld door de TEER-waarden van Caco-2-cellen te meten23. Caco-2-cellen werden geïnoculeerd in Transwell-kamers en gedurende 21 dagen gekweekt om een dichte monolaag te vormen. Voor elke experimentele conditie werden zes onafhankelijke biologische replica's uitgevoerd, en daarnaast werden onder elke conditie vijf technische replica's uitgevoerd. Voor en na de experimentele behandeling werden de TEER-waarden van elke groep gemeten met een transmembraanweerstandsmeters met elektroden die waren gesteriliseerd met ethanol en gebalanceerd met PBS. Kort samengevat werd de lange staaf van de elektrode ondergedompeld in het basolaterale kweekmedium en de korte staaf in het apicale kweekmedium, om contact met het filtermembraan te vermijden. Na stabilisatie werd de weerstandswaarde (Ω) afgelezen, en de metingen werden herhaald totdat drie consistente readings waren verkregen. De weerstand van blanco Transwell-filters (zonder cellen) werd onder dezelfde omstandigheden gemeten, en deze waarde werd van alle experimentele readings afgetrokken. TEER (Ω·cm2) = (weerstand monster – blanco weerstand) × effectief membraanoppervlak. Gegevens worden gepresenteerd als: (experimentele groep/controlegroep) × 100%.
Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA)
De supernatanten van Caco-2-cellen uit verschillende behandelingsgroepen werden verzameld na 24 u cultuur. De spiegels van pro-inflammatoire cytokinen, waaronder tumornecrosefactor-alfa (TNF-α), interleukine-6 (IL-6), interleukine-8 (IL-8) en interleukine-1β (IL-1β), werden gemeten met commerciële ELISA-reagentia volgens de instructies van de fabrikant. De assay werd strikt uitgevoerd in overeenstemming met de instructies. De monsters en standaarden werden toegevoegd aan de wells die vooraf waren gecoat met antilichamen, waarna ze werden geïncubeerd en gewassen. Vervolgens werd het gebiotinyleerde detectieantilichaam toegevoegd. Na een verdere incubatie en wasstap werd streptavidine gelabeld met mierikswortelperoxidase toegevoegd. Ten slotte werd het TMB-substraat toegevoegd voor kleurontwikkeling, waarna de reactie werd beëindigd met de stopoplossing. De absorbantie van elke well werd onmiddellijk gemeten bij 450 nm met een microplate reader.
Western blot
Eiwitten werden geïsoleerd uit Caco-2-cellen na de aangegeven behandelingen met behulp van RIPA-buffer met proteaseremmers. Eiwitgehaltes werden gemeten met een bicinchoninezuur (BCA)-assay. Voor elk monster werd 30 µg eiwit per lane geladen, gescheiden op 10% SDS-PAGE-gels en overgebracht op PVDF-membranen. De membranen werden 1 uur bij kamertemperatuur geblokkeerd in 5% vetarme melk en vervolgens overnight bij 4 °C geïncubeerd met antilichamen tegen ZO-1 (1:1.000), occludine (1:500), claudine-2 (1:1.000) en GAPDH (1:5.000). Na het wassen werden de membranen 1 uur bij kamertemperatuur geïncubeerd met HRP-geconjugeerde secundaire antilichamen. Banden werden gedetecteerd via verbeterde chemiluminescentie (ECL) en de bandintensiteit werd geanalyseerd met ImageJ. GAPDH diende als loading control.
Dual-luciferase reporter (DLR) assay
De potentiële bindingsplaatsen van miR-29b-3p aan de NEAT1-sequentie werden voorspeld via de ENCORI-database (https://rnasysu.com/encori/). Vervolgens werden NEAT1-fragmenten met wildtype (WT) of gemuteerde (MUT) bindingsplaatsen gekloond in de pmirGLO-reportervector. Het geconstrueerde recombinante plasmide werd samen met miR-29b-3p mimics (Sense: 5’-UAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’; Antisense: 5’-CACUGAUUUCAAAUGGUGCUAUU-3’) of inhibitoren en hun respectievelijke negatieve controles (mimic NC, Sense: 5’-UUCUCCGAACGUGUCACGUTT-3’; Antisense: 5’-ACGUGACACGUUCGGAGAATT-3’) in de cellen getransfecteerd. Vierenveertig uur na transfectie werden de cellen geoogst en werden de activiteiten van firefly luciferase en renilla luciferase bepaald met behulp van een dual luciferase detectiereagens. De renilla luciferase-activiteit diende als interne referentie voor standaardisatie.
RNA-immunoprecipitatie (RIP)-assay
Voor de RIP-assay werden Caco-2-cellen geoogst, gespoeld met PBS en 15 min op ijs geïncubeerd in 200 µL RIP-lysebuffer aangevuld met protease- en RNase-remmers. Cellysaten werden gecentrifugeerd bij 16.000 × g gedurende 10 min bij 4 °C, waarbij 10 µL van elk supernatant werd bewaard als inputcontrole. Voor immunoprecipitatie werden 40 µL Protein A/G-magnetische beads gedurende 30 min bij kamertemperatuur geroteerd met 5 µg anti-Ago2-antilichaam of normaal IgG in 200 µL RIP-wasbuffer. Na drie wasbeurten met 500 µL RIP-wasbuffer werd 100 µL van de bead-suspensie gecombineerd met 100 µL lysaat, aangevuld tot een eindvolume van 1 mL met RIP-wasbuffer, en overnight bij 4 °C geïncubeerd onder rotatie. De beads werden vervolgens vijf keer gewassen met 500 µL RIP-wasbuffer en resuspendeerd in 150 µL van dezelfde buffer. Proteïnevertering werd uitgevoerd door toevoeging van 15 µL proteinase K (20 mg/mL) en 15 µL 10% SDS, gevolgd door incubatie bij 55 °C gedurende 30 min met schudden. Het supernatant werd verzameld en RNA werd geïsoleerd met het extractiereagens en overnight geprecipiteerd. De verrijking van NEAT1 en miR-29b-3p werd vervolgens bepaald via RT-qPCR.
Subcellulaire lokalisatieanalyse
Caco-2 cellen werden gescheiden in nucleaire en cytoplasmatische fracties met behulp van het genoemde commercieel verkrijgbare reagens voor nucleair-cytoplasmatische scheiding, volgens de instructies van de fabrikant. Totaal RNA werd geëxtraheerd uit deze twee componenten, en de distributie van NEAT1 in de nucleus en het cytoplasma werd gedetecteerd via RT-qPCR. De kalibratie werd uitgevoerd met U6 (voornamelijk nucleair) en GAPDH mRNA (voornamelijk cytoplasmatisch) als indicatoren voor de scheidingsactiviteit.
Statistische analyse
Voor klinische serummonsters gaf een poweranalyse (t-toets, d = 0.5, α = 0.05, power = 0.9) aan dat een minimum van 86 proefpersonen per groep vereist was. Om rekening te houden met eventuele onvoorziene omstandigheden tijdens het onderzoek, werden 116 patiënten per groep geïncludeerd om klinisch significante verschillen te kunnen detecteren. De normaliteit van de data voor continue variabelen werd geëvalueerd met de Shapiro-Wilk-toets. Omdat alle continue data normaal verdeeld waren (P > 0.05), werden parametrische analyses toegepast. Categorische variabelen werden geanalyseerd met de chi-kwadraattoets. Cel-gebaseerde experimenten omvatten zes onafhankelijke biologische replica's, met vijf technische replica's voor elke biologische replica. Gegevens worden gepresenteerd als gemiddelde ± SD. Vergelijkingen tussen twee groepen met continue variabelen werden uitgevoerd met de Student's t-toets, terwijl vergelijkingen tussen meerdere groepen werden geanalyseerd via een eenweg-ANOVA gevolgd door de post-hoc toets van Tukey. Statistische significantie werd gedefinieerd als P < 0.05.