Inschrijving van vakken
Patiënten met acuut ruggenmergletsel (n = 300) die van januari 2023 tot mei 2025 in het ziekenhuis werden behandeld, werden geselecteerd en geclassificeerd in de groep volledige ruggenmergletsel (CSCI) (graad A, n = 98), incomplete ruggenmergletsel (ISCI) groep (graden B, C en D; n = 95) en de normale neurologische functie (NNF) groep (graad E, n = 107) volgens de American Spinal Injury Association Impairment Scale (AIS-classificatie). Voor patiënten in de NNF-groep werd radiologisch bewijs van SCI, zoals oedeem, kneuzing of compressie, bevestigd door magnetische resonantiebeeldvorming (MRI), maar er werden geen sensorische of motorische tekorten aangetoond. Nog eens 90 gezonde deelnemers die in dezelfde periode werden gerekruteerd, werden geselecteerd als controlegroep. Inclusiecriteria waren: (1) diagnose van SCI bevestigd door beeldvorming (MRI of CT), in overeenstemming met de vastgestelde klinische richtlijnen16; (2) trauma opgelopen binnen 24 uur vóór ziekenhuisopname; en (3) volwassen deelnemers met volledige klinische gegevens. Uitsluitingscriteria waren: (1) voorgeschiedenis van eerdere operaties gerelateerd aan een fractuur of SCI; (2) ernstige coronaire hartziekte of significante cardiopulmonale aandoening; (3) acute ernstige craniocerebrale letsel; en (4) kwaadaardige tumoren, cardiovasculaire/cerebrovasculaire aandoeningen of immuunziekten. Goedkeuring voor deze studie werd verkregen van de Ethische Commissie van het Vierde Volksziekenhuis van Shenzhen, en geïnformeerde toestemming werd verkregen van de proefpersonen. De procedures die in deze studie werden gebruikt, hielden zich aan de principes van de Verklaring van Helsinki.
Verzameling exemplaren
Veneuze bloedmonsters (5 mL) werden bij opname bij opname afgenomen met serumseparatorbuizen binnen 24 uur na de verwonding. Het bloed werd 30 minuten bij kamertemperatuur laten stollen en vervolgens 10 minuten bij 3.000 × g gecentrifugeerd bij 4 °C. Het supernatantserum werd zorgvuldig gescheiden, gealiquoteerd in RNase-vrije microbuizen en opgeslagen bij -80 °C tot nadere analyse.
Celkweek en LPS-inductie
Rattenpheochromocytoomcellen (PC-12) en muis-microgliale cellen (BV-2) werden gekweekt in Dulbecco's aangepaste Eagle-medium, aangevuld met 10% foetaal rundserum bij 37 °C. Om in vitro ontstekingsbeschadigingsmodellen op te stellen, werden PC-12 en BV-2 cellen blootgesteld aan lipopolysaccharide (LPS) bij concentraties van 0, 1, 5 en 10 μg/mL gedurende 12 uuren 17. Elke concentratie werd getest in drie onafhankelijke biologische replicata.
RT-qPCR
Het totale RNA werd geïsoleerd uit de monsters met behulp van een fenol-chloroform-extractieprotocol, gevolgd door precipitatie met isopropanol. De zuiverheid van RNA werd beoordeeld met spectrofotometrie, en monsters met een A260/280 nm-verhouding binnen het bereik van 1,8–2,1 werden gebruikt voor downstream-analyse. RNA werd reverse-getranscribeerd in cDNA volgens het reverse transcription kit-protocol, en het resulterende cDNA werd gebruikt als sjabloon voor RT-qPCR-reacties met een SYBR Green-premix op een PCR-instrument. Glyceraldehyde 3-fosfaatdehydrogenase (GAPDH) werd gebruikt als referentiegen voor CASC11 en SPP1 mRNA, en klein nucleair RNA (U6) werd gebruikt als referentiegen voor miR-130b-5p. Voor serummonsters werd synthetisch cel-miR-39 in het serum gespiked vóór RNA-extractie om variaties in RNA-terugwinning te controleren. De primers waren als volgt: CASC11 forward 5'-ACCCTATGGAGAACCGAGAC-3' en reverse 5'-GAGGACCAACTCAGTAGGAAAT-3'; miR-130b-5p vooruit 5'-ATCCATGGTTGAGCTTCCCG-3' en achteruit 5'-TAGTGCAACCTCGTCAGAGC-3'; en SPP1 mRNA vooraan 5'-GTTAAACAGGCTGATTCTGG-3' en achteraan 5'-CATGGTCATCATCATCTCTTCA-3'. De expressie werd berekend met behulp van de 2-ΔΔCt-methode . Elke RT-qPCR-reactie werd uitgevoerd in drievoudige technische replicaten met drie biologische replicaten.
Transfectie
Silencing CASC11 (si-CASC11), miR-130b-5p mimic/inhibitor, SPP1 overexpressieplasmide (ov-SPP1) en hun respectievelijke negatieve controles (NC) werden gesynthetiseerd en getransfecteerd in PC-12 en BV-2 cellen met behulp van een transfectie-reagentia. De transfectie-efficiëntie werd 48 uur na transfectie beoordeeld in drievoudige biologische replicaten.
Proliferatie- en apoptosetest
Voor de cellevensvatbaarheidstest werden cellen in 96-wellplaten geplaatst met 5 × 103 cellen per put en 24 uur gekweekt om hechting mogelijk te maken. Na deze incubatie werd 10 μL CCK-8-reagens in elke put gedoseerd, gevolgd door 2 uur incubatie bij 37 °C. De optische dichtheid werd vervolgens geregistreerd op 450 nm met een microplaatlezer. Voor apoptosedetectie werden de cellen losgemaakt met trypsine, tweemaal afgespoeld met fosfaatgevulde zoutoplossing (PBS) en in de bindingsbuffer gesuspendeerd tot een uiteindelijke concentratie van 1 × 106 cellen per put. Vervolgens werd 100 μL van de suspensie in een 5 mL flowcytometriebuis geplaatst, gevolgd door toevoeging van 5 μL Annexin V-FITC en 5 μL propidiumjodide (PI) kleuringsoplossing. Monsters werden voorzichtig gemengd en 15 minuten op kamertemperatuur bewaard om tegen licht te beschermen. Vervolgens werd een bindingsbuffer toegevoegd aan een laatste extra volume van 400 μL per buis, en apoptotische cellen werden gekwantificeerd met flowcytometrie. Alle condities werden geanalyseerd met drie technische replicaten in drie onafhankelijke biologische experimenten.
Dual-luciferase activiteitstest
De downstream-doelen van CASC11 en miR-130b-5p werden voorspeld via bio-informaticawebsites (lncRNASNP2 en TargetScan). Fragmenten met de wild-type (wt) of mutant (mutant) complementaire sequenties werden gesynthetiseerd en gekloond tot een dual-luciferase reportervector om wt- en mut-reporterplasmiden te construeren. PC-12-cellen werden gezaaid en co-transfecteerd met miR-130b-5p mimic/inhibitor en de geconstrueerde wt/mut plasmiden met behulp van een lipide-gebaseerd transfectie-reagens. Na 48 uur werd de activiteit van luciferase gekwantificeerd om de interactie te beoordelen. Elke groep bestond uit drie technische replicaten en drie biologische replicaten.
RNA-immunoprecipitatie (RIP) assay
RIP werd uitgevoerd met behulp van een RNA-bindend eiwit immunoprecipitatiekit. Cellen werden gelyseerd met een lysisbuffer en geïncubeerd met een anti-Ago2-antilichaam of een normaal IgG-antilichaam. RNA-eiwitcomplexen werden verrijkt met magnetische kralen. Na het wassen werden gebonden eiwitten verwijderd en werd immunoprecipiteerd RNA geïsoleerd. De verrijkingsniveaus van CASC11 en miR-130b-5p werden gekwantificeerd door RT-qPCR. Elke groep bestond uit drie technische replicaten en drie biologische replicaten.
Westelijk vlek
Eiwitlysaten werden bereid uit PC-12- en BV-2-cellen met behulp van een cellysebuffer, en het totale eiwitgehalte werd gemeten met een BCA-assay. Voor elk monster werd 30 μg eiwit geladen op 12% SDS-PAGE-gels en na elektroforetische scheiding overgedragen aan PVDF-membranen. De membranen werden 2 uur lang geblokkeerd bij kamertemperatuur in 5% magere melk, verdund in TBST, en vervolgens 's nachts geïncubeerd bij 4 °C met primaire antilichamen tegen Bcl-2, Bax, gesplitste caspase-3 en GAPDH bij een verdunning van 1:1.000. Na het wassen werden de membranen 1 uur bij kamertemperatuur geïncubeerd met HRP-geconjugeerde secundaire antistoffen. Eiwitsignalen werden geanalyseerd met behulp van beeldanalysesoftware en banddichtheden werden gebruikt om de expressie van apoptose-gerelateerde eiwitten te beoordelen. De western blot-experimenten omvatten drie biologische replicaten, met drie technische replicaten per groep.
ELISA
De concentraties van ontstekingscytokines TNF-α, IL-1β en IL-6 in patiëntserum en PC-12 en BV-2 celsupernatanten werden gekwantificeerd met ELISA-kits volgens de instructies van de fabrikant. Monsters werden geïncubeerd in voorgecoate putten en detectieantilichamen werden toegevoegd voor verdere incubatie. Enzymconjugaten werden toegevoegd en geïncubeerd. Na het wassen werden substraten toegevoegd voor kleurontwikkeling en werden de reacties beëindigd. De absorptie werd gemeten bij 450 nm met een microplaatlezer en omgezet naar concentraties van ontstekingsfactoren op basis van de verstrekte standaardcurve. Elke ELISA-assay werd uitgevoerd in driedubbele technische replicaten over drie onafhankelijke biologische replicaten.
Statistische analyse
Continue variabelen werden gerapporteerd als het gemiddelde ± standaarddeviatie (SD), en categorische variabelen werden gepresenteerd als getallen en percentages (n, %). Vergelijkingen tussen twee groepen werden uitgevoerd met behulp van de Student's t-test. Voor vergelijkingen met meer dan twee groepen werd eenrichtingsvariantieanalyse (ANOVA) toegepast, gevolgd door Tukey's post-hoc test. Het vermogen van CASC11 om te onderscheiden tussen klinische groepen werd geëvalueerd met behulp van een analyse van de receiver operating characteristic (ROC). Associaties tussen twee variabelen werden onderzocht met Pearson-correlatieanalyse. Voor celgebaseerde experimenten bevatte elke groep drie onafhankelijke biologische replicaten, en elke meting werd herhaald in drie technische replicaten. Statistische significantie werd gedefinieerd als P < 0,05.