Transcriptomanalyse van gezonde patiënten en patiënten met PE
Voor de verschillen in genexpressie tussen de normale groep (Normal) en PE-patiënten werd de differentiële expressie in de samengevoegde datasets geanalyseerd met het R-pakket limma. In totaal werden 89 DEG's geïdentificeerd (p < 0,05 en |log2FC| > 0,5), waarvan 69 genen upgereguleerd en 20 genen gedownreguleerd waren voor GSE75010 (Figuur 1A). Er zijn 2.097 differentieel tot expressie gebrachte genen, waarvan er 1.121 upgereguleerd en 976 gedownreguleerd zijn (Figuur 1B). Voor de dataset GSE60438 zijn er 7.63 DEG's, met 3.371 upgereguleerde genen en 4.262 gedownreguleerde genen (Figuur 1C). De aanzienlijke verschillen in het aantal DEG's tussen de drie datasets weerspiegelen waarschijnlijk verschillen in steekproefomvang, weefselherkomst (placentavilli versus decidua basalis) en de classificatie van de ernst van PE, wat de waarde van het nemen van de doorsnede over de datasets verder onderstreept om robuuste gemeenschappelijke DEG's te identificeren.
Functionele verrijkingsanalyse van DEGs
Voor de systematische identificatie van belangrijke DEGs geassocieerd met PE werd een Venn-analyse uitgevoerd op de DEGs uit de PE-datasets GSE75010, GSE1058 en GSE60438, waarbij uiteindelijk 56 gemeenschappelijke DEGs werden geïdentificeerd (Figuur 2A). Er werd een PPI-netwerk geconstrueerd voor deze 56 gemeenschappelijke DEGs met behulp van het online platform STRING (interactiescore ≥0,15), en de top 20 hub-genen werden verder geïdentificeerd op basis van hun connectiegraad binnen het netwerk, gerangschikt met Cytoscape-software (Figuur 2B). Op basis van deze genen werd tevens een GO-enrichmentanalyse uitgevoerd om potentiële functionaliteiten in BP, CC en MF te verkennen (Figuur 2C). De DEGs waren hoogstwaarschijnlijk verrijkt in hormoonsecretie en regulatie van transmembrane receptor serine/threonine kinase signalering. Wat betreft de cellen waren de genen hoofdzakelijk gelokaliseerd in focale adhesies, cel-substraatverbindingen en een verscheidenheid aan vesikel- en lysosoom-gerelateerde genen. Bij de moleculaire functies waren de verrijkte termen prolylhydroxylase-activiteit, hormoonactiviteit en membraantransport van lipide-gerelateerde moleculen. Deze resultaten suggereren dat de DEGs belangrijke rollen kunnen spelen in placentaire cel-signalering, cel-matrixinteractie en het behoud van endocriene functies. Tegelijkertijd werd vastgesteld dat KEGG-pathway enrichment resulteerde in DEGs die hoogstwaarschijnlijk verrijkt waren in cytokine-cytokinereceptorinteractie, celadhesiemolecuulinteractie en de TGF-β en HIF-1 signaleringspaden (Figuur 2D). Verrijking van bepaalde virus-gerelateerde termen (bijv. Hepatitisvirussen, Ebolavirus) weerspiegelt waarschijnlijk een aspecifieke overlap met gedeelde immuunregulerende genen in plaats van een directe biologische associatie met PE; de interpretatieve focus blijft daarom liggen op ontstekings-, adhesie- en hypoxie-gerelateerde paden. Deze paden zijn gerelateerd aan de inflammatoire respons, celadhesie-gemedieerde en hypoxie-gerelateerde signalering en kunnen invloed hebben op de progressie van PE door de immuun-inflammatoire status en cel-celcommunicatie in de placentaire micro-omgeving te variëren.
Machine learning identificeert SASH1 als een sleutelgen bij PE
Om belangrijke prognostische genen te identificeren, werden vier machine learning-methoden toegepast voor kenmerkselectie. LASSO-regressie met kruisvalidering toonde aan dat het model de minimale kruisvalideratiefout bereikte bij log(λ.min) = -3.8075. Genen met niet-nulcoëfficiënten bij deze λ-waarde werden geselecteerd als belangrijke kenmerken geïdentificeerd door LASSO (Figuur 3A–B). Het Boruta-algoritme evalueert het belang van kenmerken door vergelijking met schaduwkenmerken. Genen met belangrijkheidswaarden hoger dan shadowMax werden gelabeld als Bevestigd en beschouwd als belangrijke kandidaatgenen, terwijl genen met belangrijkheidswaarden lager dan shadowMin werden gelabeld als Afgewezen en werden beschouwd als zij geen significante bijdrage leverden. Genen tussen deze twee drempelwaarden werden gelabeld als Voorlopig, wat duidt op een potentieel maar onzeker belang (Figuur 3C). SVM-RFE-analyse demonstreerde dat wanneer 40–50 kenmerken werden behouden, de kruisvalideratienauwkeurigheid het hoogste of bijna het hoogste niveau bereikte, wat wijst op een optimale voorspellende prestatie bij deze schaal van kenmerken (Figuur 3D). De matige kruisvalideratienauwkeurigheid (~0,6) geeft aan dat geen enkel enkelvoudig algoritme optimaal presteerde voor deze dataset; daarom werd een multi-algoritme intersectiestrategie gehanteerd om de robuustheid van de kenmerkselectie te vergroten. XGBoost kwantificeerde het relatieve belang van genen met behulp van Gain-waarden, waardoor kenmerken met een hogere bijdrage aan de modelvoorspelling werden geïdentificeerd (Figuur 3E). Venn-intersectieanalyse van de resultaten van de vier methoden identificeerde SASH1 als het enige overlappende gen. Hoewel SASH1 door het Boruta-algoritme als Voorlopig werd geclassificeerd, ondersteunt de consistente selectie in alle drie de andere algoritmen de aanwijzing ervan als een consensus-kandidaatgen (Figuur 3F).
Single-cell-analyse
De cellulaire heterogeniteit en moleculaire processen in placentawefsels bij PE werden onderzocht. Cellen werden kwalitatief gefilterd op basis van het aantal gedetecteerde genen, het aantal RNA-counts en het percentage mitochondriale genexpressie. Cellen van lage kwaliteit (minder dan 20 gedetecteerde genen of met meer dan 20% mitochondriaal gengehalte) werden verwijderd om een hoogwaardige single-cell-steekproef voor downstream-analyse te verkrijgen. De kwaliteitscontrolemetrieken en de identificatie van zeer variabele genen worden getoond in Aanvullende figuur 1A–BNa normalisatie en identificatie van sterk variabele genen werd een hoofdcomponentanalyse (PCA) uitgevoerd met de top 2.0 meest variabele genen, waarbij significante hoofdcomponenten werden bepaald middels JackStraw-analyse en ElbowPlot-analyse (Aanvullende figuur 2A–B).
Op basis van de hoofdcomponenten werd uniform manifold approximation and projection (UMAP) gebruikt om de dimensionaliteit te reduceren en unsupervised clustering uit te voeren, waarbij alle cellen werden geclassificeerd in 2 clusters, wat de hoge cellulaire heterogeniteit in placentawevsel benadrukt (Figuur 4A). Door de expressie van clusterspecifieke markergenen te bestuderen en DEGs in een heatmap te visualiseren (Figuur 4B), werd elk cluster geannoteerd op basis van een canonieke marker en teruggeprojecteerd op de UMAP-embedding (Figuur 4C). Op basis hiervan werden de belangrijkste placentacelpopulaties geïdentificeerd, waaronder B-cellen/plasmacellen, endotheelcellen, fibroblasten/stromale cellen, macrofagen/dendritische cellen, natural killer-cellen, T-cellen en trofoblastcellen. Vergelijkingen tussen de controle- en PE-groepen onthullen dat verschillende celtypen een aanzienlijke relatieve distributie vertonen in PE-placentae, wat wijst op een remodellering van de placentaire micro-omgeving (Figuur 4D).
Weefselherkomst en ziektestatus werden gebruikt om cellen in dezelfde UMAP-embedding te volgen op basis van weefselbron (decidua versus villi) en ziektegroepering (controle versus PE) (Figuur 4E). De distributie van het aantal cellen was gedeeltelijk gescheiden naar weefselherkomst, terwijl cellen uit verschillende ziektegroepen sterk onderling verbonden waren. Dit suggereert dat PE de gehele transcriptomische structuur niet wezenlijk herorganiseert, maar mogelijk effecten heeft op individuele celpopulaties of op specifieke moleculaire kenmerken. De expressie van SASH1 werd op de UMAP geprojecteerd om de distributie ervan binnen placentaire celpopulaties te onderzoeken (Figuur 4F–G). SASH1 vertoont een sterke celtype-specifieke expressie, met opvallende verschillen tussen deciduale en villeuze celpopulaties. Statistische vergelijking van de SASH1-expressie tussen PE- en controlegroepen over verschillende celtypes (Wilcoxon rank-sum test) onthulde significante verschillen in meerdere placentaire celpopulaties, waarbij de meest uitgesproken verhoging werd waargenomen in trofoblastcellen uit PE-monsters (Figuur 4H). Deze bevinding levert bewijs op single-cell-niveau dat de dysregulatie van SASH1 bijzonder uitgesproken is in het trofoblastcompartiment, wat het gebruik van de HTR-8/SVneo trofoblast-cellijn voor daaropvolgende functionele experimenten ondersteunt.
SASH1-knockdown remt hypoxie-geïnduceerde apoptose van trofoblasten en ontstekingsreacties
Om de bioinformatische voorspellingen te valideren, werd een PE-gerelateerd trofoblastcelmodel opgezet onder hypoxische condities (1% O2). qPCR- en Western blot-analyses werden uitgevoerd om de expressie van SASH1 te beoordelen (Figuur 5A–B). Vergeleken met normoxische HTR-8/SVneo-cellen vertoonden hypoxie-behandelde cellen significant verhoogde expressieniveaus van SASH1 mRNA en -eiwit, wat een eerste experimentele validatie van de bioinformatische resultaten leverde. Om het effect van SASH1-knockdown op PE-gerelateerde pathologische processen te evalueren, werd SASH1 gesilenced in hypoxie-behandelde HTR-8/SVneo-cellen. Kwantitatieve PCR- en Western blot-analyses (Figuur 5C–D) toonden aan dat de SASH1-expressie in alle sh-SASH1-groepen significant was verminderd in vergelijking met de sh-NC-groep. Hiervan vertoonde sh-SASH1#3 de hoogste knockdown-efficiëntie en werd deze daarom geselecteerd voor daaropvolgende experimenten. TUNEL-kleuring en ELISA werden uitgevoerd onder drie condities: normoxische controle (Normal), hypoxie met negatieve controle shRNA (Hypoxia + sh-NC), en hypoxie met SASH1-knockdown (Hypoxia + sh-SASH1). Vergeleken met de Normal-groep vertoonde de Hypoxia + sh-NC-groep een significant verhoogde apoptose en een verhoogde secretie van de pro-inflammatoire cytokines IL-1β, IL-6 en TNF-α, wat de hypoxie-geïnduceerde trofoblastbeschadiging bevestigt. SASH1-knockdown verminderde deze effecten aanzienlijk, waarbij apoptose (Figuur 5E) en cytokineniveaus (Figuur 5F) werden teruggebracht naar niveaus die benaderen die van de Normal-groep, wat suggereert dat SASH1-knockdown hypoxie-geïnduceerde trofoblastapoptose en inflammatoire responsen grotendeels kan herstellen. Om de causale rol van SASH1 verder vast te stellen, werden gain-of-function-experimenten uitgevoerd. qPCR en Western blot bevestigden succesvolle SASH1-overexpressie in HTR-8/SVneo-cellen (Figuur 5G–H). Onder normoxische condities verhoogde SASH1-overexpressie (OE-SASH1) de trofoblastapoptose en de secretie van pro-inflammatoire cytokines significant in vergelijking met de OE-NC-groep, waardoor het hypoxie-geïnduceerde fenotype werd gereproduceerd (Figuur 5I–J). Samen stellen de loss- en gain-of-function-gegevens vast dat SASH1 zowel noodzakelijk als voldoende is om trofoblastapoptose en inflammatoire responsen aan te drijven, wat de causale rol ervan in de PE-gerelateerde pathologie bevestigt.
P-EXOS onderdrukt hypoxie-geïnduceerde apoptose van trofoblasten en ontstekingsreacties door SASH1 te moduleren
Er wordt aangenomen dat P-EXOS een potentiële therapeutische waarde heeft bij PE. In deze studie suggereerde bioinformatische analyse dat SASH1 geassocieerd is met exosoom-gerelateerde signaleringspaden (zoals aangegeven door GO- en KEGG-verrijking, Figuur 2C–D), wat ons leidde tot de hypothese dat P-EXOS een beschermend effect bij PE zou kunnen uitoefenen door SASH1 te reguleren. Voorafgaand aan de functionele studies werden de geïsoleerde P-EXOS eerst gekarakteriseerd. Western blot-analyse bevestigde de aanwezigheid van de exosoommarker-eiwitten PLAP, CD63 en TSG101, zonder detecteerbare expressie van de Golgi-marker GM130, wat duidt op een hoge zuiverheid van de geïsoleerde blaasjes. Transmissie-elektronenmicroscopie onthulde bovendien typische komvormige blaasjesstructuren (Figuur 6A–B). Om te verifiëren of P-EXOS efficiënt geïnternaliseerd konden worden door doelcellen, werd immunofluorescentiekleuring uitgevoerd om de cellulaire opname van P-EXOS te beoordelen. In vergelijking met de controlegroep vertoonden HTR-8/SVneo-cellen behandeld met P-EXOS prominente co-lokalisatiesignalen in de samengevoegde beelden, wat aangeeft dat P-EXOS effectief werden geïnternaliseerd door HTR-8/SVneo-cellen (Figuur 6C).
Vervolgens werden HTR-8/SVneo-cellen gecocultiveerd met P-EXOS onder hypoxische omstandigheden. Zowel kwantitatieve PCR- als Western blot-analyses lieten een uitgesproken afname zien van SASH1 mRNA- en eiwitniveaus in de P-EXOS-behandelde groep in vergelijking met de controles (Figuur 6D–E), wat initieel bewijs leverde voor een regulatoire interactie tussen P-EXOS en SASH1. In overeenstemming met deze moleculaire veranderingen onthulde TUNEL-kleuring een substantiële vermindering van hypoxie-geïnduceerde apoptose in HTR-8/SVneo-cellen na behandeling met P-EXOS (Figuur 6F). Tegelijkertijd toonden ELISA-analyses een merkbaar verlaagde secretie aan van pro-inflammatoire cytokinen, waaronder IL-6, IL-1β en TNF-α (Figuur 6G).
Om vast te stellen of de beschermende effecten van P-EXOS mechanistisch afhankelijk zijn van de onderdrukking van SASH1, werd een rescue-experiment uitgevoerd onder hypoxische omstandigheden. Cellen waarin SASH1 werd overgeëxprimeerd (OE-SASH1 + P-EXOS) werden vergeleken met negatieve controlecellen (OE-NC + P-EXOS). SASH1-overexpressie hief de beschermende effecten van P-EXOS significant op, wat werd aangetoond door een toename van apoptose (Figuur 6H>) en een verhoogde secretie van pro-inflammatoire cytokinen (Figuur 6I>) in vergelijking met de OE-NC + P-EXOS-groep. Deze resultaten tonen aan dat het beschermende effect van P-EXOS specifiek wordt gemedieerd via de onderdrukking van SASH1, en niet via parallelle paden, wat het therapeutische potentieel van P-EXOS bij PE onderstreept.
DATAbeschikbaarheid:
De datasets die de resultaten van deze studie ondersteunen, zijn openbaar beschikbaar en zijn verkregen uit de Gene Expression Omnibus (GEO) database (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/), met accessionnummers GSE75010, GSE1058, GSE60438 en GSE18338. De annotatie van celtypen is uitgevoerd met referentie naar de Cell Classification Database (https://ngdc.cncb.ac.cn/celltaxonomy/). Niet-bijgesneden Western blot-afbeeldingen en alle overige ruwe experimentele gegevens die de resultaten van deze studie ondersteunen, zijn te vinden in de map Supplementary Raw Data.

Figuur 1Identificatie van DEGs in placentaweweefsels en deciduaweefsels bij PE over drie onafhankelijke datasets. (A) Volcano plot van DEGs tussen 157 PE-placentaprofielen en 173 niet-PE-placentaprofielen uit de gecombineerde GSE75010-dataset. (B) Volcano plot van DEGs tussen placentaproben met ernstige PE (n = 17) en normale placentaproben (n = 26) uit de GSE1058-dataset. (C) Volcano plot van DEG's tussen PE-decidua-monsters en normotensieve controle-decidua-monsters uit de GSE60438-dataset. DEG's werden geïdentificeerd met behulp van p < 0,05 en |log2FC| > 0.5. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 2Functionele verrijking en PPI-analyse van gemeenschappelijke DEGs geassocieerd met pre-eclampsie. (A) Venn-diagram van DEG's geïdentificeerd uit PE-gerelateerde datasets GSE75010, GSE1058 en GSE60438. (B) PPI-netwerk van de top 20 hub-genen, geselecteerd uit de 56 gemeenschappelijke DEGs op basis van de graad van connectiviteit en gerangschikt met behulp van Cytoscape-software (STRING-interactiescore ≥0,15). (C) GO- en KEGG-verrijkingsanalyses van de gemeenschappelijke DEG's worden weergegeven als staafdiagrammen. (D) GO- en KEGG-verrijkingsanalyses van de gemeenschappelijke DEG's, weergegeven als chord-diagrammen. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 3Machine learning-gebaseerde screening van kandidaat-hubgenen geassocieerd met pre-eclampsie. (A) LASSO-regressieanalyse die de coëfficiëntprofielen van kandidaatgenen laat zien. (B) Selectie van de optimale regularisatieparameter (λ) via LASSO-regressie met behulp van kruisvalidatie. (C) Boruta-algoritme. (D) SVM-RFE-analyse. (E) XGBoost-algoritme. (F) Venn-diagram dat de overlap van kandidaatgenen laat zien die zijn geïdentificeerd door de LASSO-, Boruta-, SVM-RFE- en XGBoost-algoritmen. Afkortingen: LASSO = least absolute shrinkage and selection operator; SVM-RFE = support vector machine recursive feature elimination. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 4Single-cell transcriptomische analyse onthult celtype-specifieke SASH1-expressiepatronen bij pre-eclampsie. (A) UMAP-clustering van de single-cell dataset. (B) Top vijf marker-annotatieanalyse van de PE single-cell transcriptoomdataset GSE18338. (C) Annotatie van celsubpopulaties. (D) Staafdiagram dat de verdeling van de celproporties in controle- en PE-monsters weergeeft. (E) UMAP-plot gekleurd naar weefselherkomst (decidua en villi) en ziektestatus (controle en PE). (F) UMAP-plot die de SASH1-expressie in placentacelpopulaties laat zien, gegroepeerd naar weefselherkomst (decidua en villi). (G) UMAP-plot die de SASH1-expressie in placentale celpopulaties laat zien, gegroepeerd naar ziektestatus (controle en PE). (H) Violinplot die de expressieverdeling van SASH1 laat zien over verschillende placenta-celtypen. ns p > 0.05; *p < 0.05; **p < 0.01; ***p < 0.01. Afkortingen: UMAP = uniform manifold approximation and projection; ns = niet significant. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 5SASH1 reguleert hypoxie-geïnduceerde apoptose en inflammatie van trofoblasten. (A) qPCR-analyse van de SASH1 mRNA-expressie en densitometrische kwantificering van de SASH1-proteineniveaus in HTR-8/SVneo-cellen onder normale en hypoxische omstandigheden. (B) Representatieve Western blot-afbeeldingen die overeenkomen met de densitometrische gegevens getoond in (A). (C) qPCR-analyse van de SASH1 mRNA-expressie en densitometrische kwantificering van SASH1-proteïneniveaus in hypoxia-behandelde HTR-8/SVneo-cellen getransfecteerd met sh-NC- of sh-SASH1-constructen (sh-SASH1#1, sh-SASH1#2 en sh-SASH1#3). (DRepresentatieve Western blot-afbeeldingen die overeenkomen met de densitometrische gegevens getoond in (C).E) TUNEL-kleuring van HTR-8/SVneo-cellen in de groepen Normaal, Hypoxie + sh-NC en Hypoxie + sh-SASH1(#3). Schaalbalk = 20 µm. (F) ELISA-analyse van inflammatoire cytokinen (IL-1β, IL-6 en TNF-α) in de groepen Normal, Hypoxia + sh-NC en Hypoxia + sh-SASH1(#3). (G) qPCR-analyse van de SASH1-mRNA-expressie en densitometrische kwantificering van SASH1-proteïneniveaus in HTR-8/SVneo-cellen getransfecteerd met OE-NC- of OE-SASH1-constructen. (H) Representatieve Western blot-afbeeldingen die overeenkomen met de densitometrische gegevens weergegeven in (G). (I) TUNEL-kleuring van HTR-8/SVneo-cellen in de Normal + OE-NC en Normal + OE-SASH1 groepen. Schaalbalk = 20 µm. (J) ELISA-analyse van inflammatoire cytokinen (IL-1β, IL-6 en TNF-α) in de groepen Normal + OE-NC en Normal + OE-SASH1. *p < 0.05; **p < 0.01; ***p < 0.01. Gegevens zijn weergegeven als gemiddelde ± SD van drie onafhankelijke biologische replica's (n = 3). Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 6P-EXOS verlicht door hypoxie geïnduceerde schade aan trofoblasten via suppressie van SASH1. (A) Western blot-analyse van P-EXOS-markerproteïnen PLAP, CD63 en TSG101, waarbij GM130 als negatieve controle dient. (B) Transmissie-elektronenmicroscopie (TEM)-analyse van de morfologie van P-EXOS. Schaalbalk = 1.0 µm. (CConfocale laserscanningmicroscopie-beelden die de opname tonen van met PKH67 gelabelde P-EXOS (groen) in HTR-8/SVneo-cellen (rood). Kernen werden tegengekleurd met DAPI (blauw). Schaalbalk = 20 µm. (D) qPCR-analyse van de SASH1-mRNA-expressie en densitometrische kwantificering van SASH1-proteineniveaus in HTR-8/SVneo-cellen in de Controle- en P-EXOS-groepen. (E) Representatieve Western blot-afbeeldingen die overeenkomen met de densitometrische gegevens weergegeven in (D). (F) TUNEL-kleuring van HTR-8/SVneo-cellen in de Control- en P-EXOS-groepen. Schaalbalk = 20 µm. (G) ELISA-analyse van inflammatoire cytokinen (IL-1β, IL-6 en TNF-α) in hypoxia-behandelde HTR-8/SVneo-cellen in de Controle- en P-EXOS-groepen. (H) TUNEL-kleuring van HTR-8/SVneo-cellen in de OE-NC + P-EXOS- en OE-SASH1 + P-EXOS-groepen. Schaalbalk = 20 µm. (I) ELISA-analyse van inflammatoire cytokinen (IL-1β, IL-6 en TNF-α) in hypoxia-behandelde HTR-8/SVneo-cellen in de OE-NC + P-EXOS en OE-SASH1 + P-EXOS groepen. Afkortingen: P-EXOS = placenta-afgeleide exosomen; TEM = transmissie-elektronenmicroscopie; PLAP = placentale alkalische fosfatase; TSG101 = tumor susceptibility gene 101. *p < 0.05; **p < 0.01. Gegevens zijn weergegeven als gemiddelde ± SD van drie onafhankelijke biologische replicaten (n = 3). Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Aanvullende figuur 1: Kwaliteitscontrole van single-cell RNA-seq-data. (A) Violinplot van genexpressieniveaus na kwaliteitscontrole. (B) Variabel feature-plot met weergave van sterk variabele genen die na kwaliteitscontrole zijn geïdentificeerd.Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullende Figuur 2: Bepaling van statistisch significante hoofdcomponenten voor single-cell clustering. (A) JackStraw dot plot gebruikt om statistisch significante hoofdcomponenten te identificeren. (B) Elbow-dotplot die de variantie laat zien die wordt verklaard door hoofdcomponenten.Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullende Tabel 1: shRNA-doelsequenties gebruikt voor SASH1-knockdown. shRNA-doelsequenties (5′–3′) voor de negatieve controle (sh-NC) en drie SASH1-doelconstructen (sh-SASH1#1, sh-SASH1#2 en sh-SASH1#3) gebruikt voor gene silencing.Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullende Tabel 2: Primersequenties gebruikt voor kwantitatieve PCR. Forward- en reverse-primersequenties (5′–3′) voor SASH1 en β-actin (interne referentiecontrole) gebruikt in qPCR-analyse.Klik hier om dit bestand te downloaden.