Ethische verklaring
Deze studie was een in vitro bacteriële studie en betrof geen menselijke deelnemers, dierlijke proefpersonen of door patiënten afgeleide materialen. Daarom waren goedkeuring van de institutionele beoordelingscommissie en goedkeuring van dierenethiek niet vereist.
Evaluatie van AO7-afbraak in het vitamine C-ondersteunde Fenton-systeem
Om het effect van vitamine C op het waarneembare oxidatieve gedrag van de Fenton-reactie te beoordelen, werd de afbraak van Acid Orange 7 (AO7) gebruikt als een indirecte chemische meting van oxidatieve activiteit. Deze test kwantificeert niet specifiek individuele reactieve zuurstofsoorten. Ik bereidde 100 mL AO7-oplossing bij 5 mg/L en stelde de oplossing bij op pH 3. H₂O₂ en FeSO₄ toegevoegd aan de uiteindelijke concentraties van respectievelijk 2,2 mM en 0,055 mM. Vitamine C toegevoegd, hetzij als enkele bolus bij het initiëren van de reactie of in een doseringsschema in drie stappen. Voor het dosis-respons-experiment werden Vc: Fe2⁺ molaire verhoudingen van 0, 0,12, 0,24, 0,48, 2, 4, 6 en 8 gebruikt, wat overeenkomt met de uiteindelijke vitamine C-concentraties van respectievelijk 0, 0,0066, 0,0132, 0,0264, 0,110, 0,220, 0,330 en 0,440 mM, wanneer FeSO₄ wordt gebruikt bij 0,055 mM. Voor de drie-stap toevoegingsvoorwaarde werd dezelfde totale hoeveelheid vitamine C gedeeld in drie gelijke aliquots en één aliquot toegevoegd 3, 5 en 7 minuten na het starten van de reactie. Bijvoorbeeld, bij een Vc:Fe2⁺-verhouding van 0,48, werd vitamine C toegevoegd bij 0,0088 mM per aliquot, wat een uiteindelijke totale concentratie van 0,0264 mM opleverde.
De reactieoplossing continu 10 minuten in het donker geroerd terwijl de temperatuur onder de 30 °C bleef. Voor en na de reactie heb ik 2 ml monsters verzameld. De absorptie werd gemeten bij 483 nm met een UV-Vis spectrofotometer, en de AO7-degradatiesnelheid berekend met behulp van Vergelijking 1:
Degradatiesnelheid (%) = [(A₀ − A₁) / A₀] × 100% (1)
Hier vertegenwoordigt A₀ de absorptie van het monster vóór de reactie, terwijl A₁ de absorptie van het monster na de reactie vertegenwoordigt.
Beoordeling van •OH-geassocieerd fluorescentiesignaal met behulp van een TA-sonde
Om hydroxylradicalen-geassocieerde fluorescentiesignalen te beoordelen onder dezelfde zure in vitro omstandigheden als in de antibacteriële experimenten, werd een celvrij chemisch systeem opgezet met dinatriumtereftalaat (TA, 1 mM) als fluorescentieprobe. Deze assay werd gebruikt als een relatieve indicator van •OH-geassocieerde productvorming en werd niet geïnterpreteerd als een absolute kwantificering van hydroxylradicaalgeneratie. Zeven groepen werden opgenomen: (1) blanco (1 mM TA alleen in reactiebuffer), (2) alleen H₂O₂, (3) Fe2⁺ alleen, (4) Vc alleen (stapsgewijs adderen), (5) conventionele Fenton (Fe2⁺ + H₂O₂), (6) vitamine C-ondersteunde Fenton met bolus Vc-toevoeging (Fe2⁺ + H₂O₂ + Vc, bolus), en (7) Vc-ondersteunde Fenton met stapsgewijze Vc-toevoeging (Fe2⁺ + H₂O₂ + Vc, stapsgewijs). In de stapsgewijze toevoegingsvoorwaarde werd Vc geïntroduceerd 3, 5 en 7 minuten na reactiestart in gelijke aliquoten, terwijl de bolusvoorwaarde dezelfde totale hoeveelheid Vc kreeg als een enkele toevoeging.
Aliquots werden verzameld over een reactieperiode van 10 minuten, onmiddellijk gealkaliniseerd met NaOH om verdere radicale reacties te dempen en fluorescentie te stabiliseren, en opgeslagen bij 4 °C vóór de meting. De fluorescentieintensiteit van het TA-afgeleide product werd gemeten met een microplaatlezer (Ex/Em: 315/425 nm). Radicaalgeneratie werd uitgedrukt als fluorescentieintensiteit na blankaftrekking en gebruikt als een relatieve indicator van radicaalgeneratie. Er werden minstens drie onafhankelijke experimenten uitgevoerd, en de gegevens werden gepresenteerd als tijdsverloopprofielen en eindpuntvergelijkingen na 10 minuten.
Evaluatie van antibacteriële prestaties door kolonietelling
H. pylori-stammen werden opgeslagen bij −80 °C in een hersenhartinfusie (BHI) bouillon met 25% glycerol. De primaire stam die werd gebruikt voor de hoofd-kolonie-telling, reddingsassay, matrix-interferentie-assay, levende/dode fluorescentiekleuring en scanning-elektronenmicroscopie-analyse was H. pylori G27. Voor elk experiment werden bacteriën gestreept op Columbia bloedagarplaten en 3 dagen geïncubeerd bij 37 °C onder microaerofiele omstandigheden bestaande uit 5% O₂, 10% CO₂ en 85% N₂22.
Kolonie-tellingstest in de primaire stam
Er werd gebruik gemaakt van colony-forming unit (CFU) enumeratie om antibacteriële werking onder verschillende behandelomstandigheden te evalueren. Omvatte de volgende groepen: onbehandelde controle, alleen H₂O₂, alleen vitamine C, conventionele Fenton-reactie en vitamine C-geassisteerde Fenton-reactie. Als een Fe2⁺-alleen groep niet in het oorspronkelijke experiment is opgenomen, vermijd dan het interpreteren van de primaire test als volledig scheidend van ijzer-only effecten van Fenton-reactie-gemedieerde oxidatieve effecten. Geoogst gekweekte H. pylori en de bacteriën opnieuw opschorst in fysiologische zoutoplossing. De optische dichtheid bij 600 nm (OD₆₀₀) aangepast naar 0,5, en de suspensie overgezet in fysiologische zoutoplossing met 3 mM ureum, aangepast aan pH 3. H₂O₂, FeSO₄ en vitamine C toegevoegd volgens de toegewezen behandelgroep. Definitieve concentraties van 2,2 mM H₂O₂ en 0,055 mM FeSO₄ gebruikt. Voor vitamine C-ondersteunde Fenton-behandeling werd vitamine C toegevoegd in drie gelijke aliquots na 3, 5 en 7 minuten, met een uiteindelijke totale concentratie van 0,0264 mM.
Na 10 minuten behandeling werd elk monster onmiddellijk 100 keer verdund in fosfaatgebakken zoutoplossing (PBS, pH 7,4) om de zure suspensie te neutraliseren en de overdracht van restoxidanten en ijzer in de plateringsstap te verminderen. De verdunde bacteriële suspensie werd geplateerd op Columbia bloedagarplaten en 3 dagen geïncubeerd bij 37 °C onder microaerofiele omstandigheden van 5% O₂, 10% CO₂ en 85% N₂. Geteld CFU's en berekende antibacteriële activiteit als log₁₀ CFU-reductie ten opzichte van de onbehandelde controle met behulp van Vergelijking 2:
log10 CFU-reductie = log10(CFU-controle) − log10(CFU-behandeld) (2)
Reddingstest
Om te onderzoeken of de antibacteriële activiteit van het vitamine C-geassisteerde Fenton-systeem geassocieerd was met ijzerbeschikbaarheid en radicaalgerelateerde processen, werden reddingsexperimenten uitgevoerd met deferoxamine (DFO) als ijzerchelator en thioureum als hydroxylradicaalverwijderaar. DFO of thiourea werd 5 minuten voor de toevoeging van FeSO₄ en H₂O₂ aan de bacteriële suspensie toegevoegd. DFO en thiourea werden gebruikt bij eindconcentraties van respectievelijk 100 μM en 5 mM.
Zes experimentele groepen werden opgenomen: onbehandelde controlegroep, vitamine C-geassisteerde Fenton, vitamine C-geassisteerde Fenton met DFO, vitamine C-geassisteerde Fenton met thiourea, alleen DFO en alleen thioureum. Alle andere experimentele parameters, waaronder pH, zoutoplossing/ureumachtergrond, H₂O₂-concentratie, FeSO₄-concentratie, doseringsschema van vitamine C, behandelingsduur, verdunning/neutralisatie vóór het plateren en incubatiecondities, waren identiek aan die gebruikt in de primaire kolonie-telling. De antibacteriële activiteit werd gekwantificeerd door CFU-enumeratie en uitgedrukt als log₁₀ CFU-reductie ten opzichte van de onbehandelde controle.
Multistrainvalidatie
Om beperkte kruis-ondersteuning te bieden voor het antibacteriële effect dat in de primaire stam werd waargenomen, werd de kolonie-tellingstest verder toegepast op twee extra H. pylori-referentiestammen , ATCC 43504 en ATCC 26695. Voor elke stam werden drie experimentele groepen opgenomen: onbehandelde controlegroep, conventionele Fenton-reactie en vitamine C-geassisteerde Fenton-reactie met stapsgewijze toevoeging van vitamine C. De experimentele omstandigheden en procedures waren identiek aan die gebruikt bij de primaire kolonie-telling. De antibacteriële activiteit werd uitgedrukt als log₁₀ CFU-reductie ten opzichte van de onbehandelde controle voor elke stam. Elk experiment werd uitgevoerd met n = 3 onafhankelijke biologische replicata, en de gegevens werden gepresenteerd als individuele datapunten met gemiddelde ± standaarddeviatie.
Matrixinterferentie-assay
Om te evalueren of organische matrixcomponenten de antibacteriële activiteit van het vitamine C-geassisteerde Fenton-systeem konden verminderen, werd een eiwitinterferentiemodel ontwikkeld met behulp van runderserumalbumine (BSA). BSA werd opgenomen bij de uiteindelijke concentraties van 0, 1 en 3 g· L⁻1. Bij elke BSA-concentratie werden drie experimentele groepen opgenomen: (1) onbehandelde controle, (2) conventionele Fenton (Fe2⁺ + H₂O₂), en (3) vitamine C-geassisteerde Fenton met stapsgewijze toevoeging van vitamine C. De assay werd uitgevoerd met de primaire stam volgens hetzelfde protocol als beschreven in de primaire kolonie-telassay, met identieke pH-condities, zoutoplossing/ureumachtergrond, reagentia-concentraties, behandelingsduur (10 min) en platingprocedures. De antibacteriële activiteit werd uitgedrukt als log₁₀ CFU-reductie ten opzichte van de onbehandelde controle bij elke BSA-concentratie. Elk experiment werd minstens drie keer onafhankelijk uitgevoerd. De primaire vergelijking richtte zich op de vraag of de verbeterde Fenton-conditie superieur was, of in ieder geval niet zwakker dan, de conventionele Fenton-conditie onder eiwithoudende omstandigheden.
Bacteriële levende/dode fluorescentiekleuring
Na behandeling werd de bacteriële suspensie 100 keer verdund in PBS zoals hierboven beschreven om de resterende zure en oxidatieve overdracht te verminderen. Centrifugeerde de suspensie op 1.800 × g gedurende 10 minuten bij kamertemperatuur en gooide het supernatant weg. De bacteriële pellet werd opnieuw gesuspendeerd in 200 μL fysiologische zoutoplossing. SYTO9 en propidiumjodide (PI) toegevoegd aan de uiteindelijke concentraties van respectievelijk 6 μM en 30 μM. De suspensie 20 minuten in het donker op kamertemperatuur laten incuberen. 5–10 μL van de gekleurde bacteriële suspensatie op een schoon glazen schuilstuk geplaatst en het bedekt met een dekmantel. Verkregen fluorescentiebeelden met een fluorescentiemicroscoop met groene en rode fluorescentiekanalen onder identieke belichtingsinstellingen voor alle behandelgroepen. Voor elke groep werden minstens drie willekeurig geselecteerde velden veroverd. Ik gebruikte de beelden als kwalitatief visueel bewijs van levende/dode kleurpatronen in plaats van als een kwantitatieve meting van de levensvatbaarheid van bacteriën.
Bacteriële morfologieanalyse met scanning-elektronenmicroscopie
Na behandeling werden de bacteriële monsters verzameld en vastgezet in 2,5% glutaraldehyde, bereid in 0,1 M fosfaatbuffer (pH 7,4) bij 4 °C gedurende 12 uur. Na fixatie werden de monsters gewassen met fosfaatbuffer om het resterende fixatiemiddel te verwijderen. De monsters werden vervolgens sequentieel gedehydrateerd in gegradueerde ethanoloplossingen van 50%, 70%, 90% en 100%. Na uitdroging werd critical point droog uitgevoerd. De gedroogde monsters werden op SEM-stompjes gemonteerd en met een dunne goudlaag van ongeveer 10 nm gesputtercoat. De bacteriële morfologie werd onderzocht met behulp van scanning-elektronenmicroscopie bij een versnellingsspanning van 5 kV. Representatieve beelden werden gemaakt bij lage en hoge vergroting voor elke behandelgroep. SEM-beelden werden gebruikt als kwalitatieve morfologische waarnemingen in plaats van als kwantitatief bewijs van een gedefinieerd schademechanisme.
Statistische analyse
Statistische analyses werden uitgevoerd met GraphPad Prism versie 10.0. Alle kwantitatieve experimenten werden uitgevoerd met n = 3 onafhankelijke biologische replicata, en de gegevens worden gepresenteerd als gemiddelde ± standaarddeviatie (SD). Voor TA-fluorescentietests werden statistische vergelijkingen tussen meerdere behandelgroepen uitgevoerd met behulp van eenrichtingsvariantieanalyse (ANOVA), gevolgd door Tukey's meervoudige vergelijkingstest. Voor kolonie-tellingsassays in de primaire stam met meerdere behandelomstandigheden werden statistische vergelijkingen uitgevoerd met eenrichtings-ANOVA, gevolgd door Tukey's meervoudige vergelijkingstest. Voor reddingstests werden vergelijkingen tussen groepen uitgevoerd met eenrichtings-ANOVA, gevolgd door Dunnett's meervoudige vergelijkingstest, met de vitamine C-geassisteerde Fenton-groep als referentie. Voor beperkte kruis-stam validatie-experimenten werden log₁₀ CFU-reducties vergeleken tussen de conventionele Fenton- en vitamine C-ondersteunde Fenton-groepen binnen elke stam met behulp van een ongepaarde tweezijdige t-test. Voor matrix-interferentie-assays werd tweerichtings-ANOVA uitgevoerd met behandeling en BSA-concentratie als factoren, inclusief de interactieterm. Paargewijze vergelijkingen tussen behandelingen bij elke BSA-concentratie werden uitgevoerd met behulp van Šídáks meervoudige vergelijkingstest. Statistische significantie werd gedefinieerd als P < 0,05. Significantieniveaus worden aangegeven als *p < 0,05, ** P < 0,01, ***P < 0,001 en ****p < 0,0001.