Digitale analyse van intraoperatieve fluoresceïne-channelografie in menselijke ogen tijdens ab-interno canaloplastiek

Samenvatting

Deze studie presenteert een gestandaardiseerde open-source workflow voor het kwantificeren van intraoperatieve fluoresceïne-channelografie tijdens ab-interno canaloplastiek, die kan worden gebruikt om waterige humoruitstromingspatronen te beoordelen en mogelijk het postoperatieve resultaat met betrekking tot intraoculaire druk te voorspellen.

Samenvatting

Ab-interno canaloplastiek (AbiC) is een minimaal invasieve glaucoomoperatie die is ontworpen om de fysiologische waterige humoruitvoer te verbeteren door circumferentieel verwijding van het kanaal van Schlemm. Hoewel fluoresceïne-channelografie intraoperatief is gebruikt tijdens ab-externo canaloplastiek om uitstroompaden te visualiseren, is de kwantitatieve toepassing ervan tijdens AbiC nog niet geëvalueerd. Deze studie introduceert een gestandaardiseerde workflow voor kwantitatieve analyse van intraoperatieve fluoresceïne-channelografie tijdens AbiC, met als doel het beoordelen van waterige humoruitvloeipatronen en hun potentiële voorspellende waarde voor chirurgische uitkomsten. Hiervoor werd AbiC uitgevoerd met fluoresceïne-gekleurde visco-elastische beelden en werden er intraoperatief kanalografiebeelden van vroege en late fase gemaakt. Er is een stapsgewijze workflow voor beeldanalyse ontwikkeld met behulp van de open-source beeldanalysesoftware om subconjunctivale fluoresceïnekleuring te kwantificeren. Drie complementaire benaderingen werden toegepast: meting van de intensiteit van de omtrek van kleuring met concentrische ringen rond het hoornvlies, kwadrantgebaseerde analyse van segmentale kleuring, en kwalitatieve beoordeling van focale kleurpatronen die overeenkomen met mogelijke plaatsen van trabeculaire meshwork-verandering. Voorbeeldige gevallen suggereerden dat uitgebreide en homogene fluoresceïnekleuring over kwadranten geassocieerd was met aanhoudende verlaging van de intraoculaire druk en medicatieonafhankelijkheid, terwijl beperkte en heterogene kleuring werd waargenomen in ogen met minder gunstige uitkomsten. Deze workflow maakt daarom een reproduceerbare, kwantitatieve beoordeling van de waterige humoruitstroom tijdens AbiC mogelijk, zonder dat expertise in beeldanalyse nodig is, en kan worden gebruikt om het succes van minimaal invasieve glaucoomchirurgie te voorspellen.

Inleiding

Glaucoom is een multifactoriële ziekte met progressieve optische neuropathie en een van de meest voorkomende oorzaken van blindheid wereldwijd ^1,2. Er zijn verschillende factoren geïdentificeerd die bijdragen aan de pathogenese van glaucoom - waaronder structurele kwetsbaarheid van de lamina cribrosa, verstoorde oogperfusie, genetica en auto-immuunprocessen - maar de enige aanpasbare risicofactor blijft de verhoogde intraoculaire druk (IOP)3,4,5,6,7,8 . Het meest voorkomende subtype, primair openhoekglaucoom (POAG), wordt gekenmerkt door een verhoogde uitstroomweerstand die leidt tot een verminderde uitstroom van waterig humor en dus tot een langdurige toename van IOP⁹. Dit leidt tot verlies van netvlieszenuwvezels en gezichtsvelddefecten naarmate de ziekte vordert.

Er zijn verschillende behandelstrategieën beschikbaar, die worden geselecteerd op basis van de ernst en duur van glaucoom en de gemeten IOP. Als topische IOP-verlagende therapie met oogdruppels niet effectief is of niet door de patiënt wordt getolereerd, kunnen laserprocedures of chirurgische ingrepen^{worden uitgevoerd.} Naast traditionele filteroperaties zoals trabeculectomie zijn er nu verschillende lager-risico minimal-invasieve glaucoomoperaties (MIGS)¹². Deze omvatten ab-interno canaloplastiek (AbiC), die, in tegenstelling tot ab-externo canaloplastiek, geen incisie in de sclera of het maken van een flap¹³ vereist. De ab-interno benadering biedt een aanzienlijk minder invasieve procedure waarbij geen hechting als vreemd materiaal wordt achtergelaten. Ook is aangetoond dat het effect overeenkomt met dat van de ab-externo-benadering, met aanzienlijk eenvoudigere behandeling en minder complicaties^14,15. Een extra voordeel van AbiC is dat het conjunctivale weefsel behouden blijft voor toekomstige interventies, indien nodig.

Bij deze procedure wordt na het beoordelen van de voorste kamer via een corneale incisie een microkatheter in het kanaal van de Schlemm ingebracht met behulp van een gonioscoop, waarbij het trabeculaire gaas wordt ingesneden en er in een 360° cirkel doorheen wordt gegaan. Een visco-elastisch lichaam zet het kanaal van Schlemm en de ostia van de collectorkanalen uit en kan focale microrupturen van het trabeculaire meshwork¹⁶ induceren. Men denkt dat deze effecten de waterige humoruitvoer bevorderen door de weerstand binnen het conventionele uitstroompad te verminderen, in overeenstemming met de anatomie en fysiologie van het oog en door de toegang tot de collectorkanalen te verbeteren, hoewel de exacte mechanismen nog niet volledig zijn begrepen¹⁷. Bovendien kan AbiC worden gecombineerd met staaroperatie, wat zorgt voor een extra IOP-reductie. In deze context kan intraoperatieve visualisatie van de uitstroompaden indirecte informatie geven over de functionele toestand van het trabeculaire meshwerk en het distale uitstroomsysteem.

De ab-externo kanaaloplastiek is al gecombineerd met intraoperatieve kanaalanalyse met fluoresceïne om de uitstroompaden 18,19,20 te visualiseren. Ogen met meer gekleurde gebieden van de sclera en daardoor verbeterde waterige humor vertoonden een lagere IOP één jaar na de ingreep. Intraoperatieve channelografie kan daarom worden gebruikt om het effect van de operatie¹⁹ te voorspellen. Voor zover wij weten is nog niet onderzocht of dit ook geldt voor AbiC. Het doel van deze studie is daarom om een workflow te evalueren voor het analyseren van intraoperatieve channelografie tijdens AbiC. We hebben deze workflow ontwikkeld om de intensiteit en omvang van subconjunctivale fluoresceïnekleuring in een vroege en late fase te kwantificeren. Dit is de eerste evaluatie van het effect van gefluoresceerd visco-elastisch in AbiC.

Vervolgens kan worden onderzocht of er een correlatie is tussen de kwantificering van de gekleurde gebieden en de mate van individuele waterige humoruitvoer, evenals de vermindering van het IOP- of IOP-verlagende medicijn dat postoperatief wordt gebruikt. Er wordt verondersteld dat een sterkere kleuring en dus zichtbaar hogere waterige uitstroom ook een grotere vermindering van IOP- en medicatiegebruik zou betekenen. Indeling in kwadranten wordt gebruikt om te testen of de uitstroom significant veranderd is, afhankelijk van de anatomische lokalisatie.

Op de lange termijn zal de gepresenteerde workflow worden gebruikt om te verduidelijken of het succes van AbiC kan worden voorspeld op basis van kleuring met fluoresceïne en ook kan worden gebruikt voor andere noodzakelijke chirurgische behandelingen.

Protocol

Ethische verklaring:

Deze studie werd uitgevoerd in overeenstemming met de Verklaring van Helsinki. Het werd als niet-interventioneel beschouwd omdat het een retrospectieve review was van patiëntgegevens die als onderdeel van de reguliere medische praktijk waren verzameld. Er werden geen prospectieve therapeutische benaderingen gevolgd en alle behandelingen werden routinematig gegeven als onderdeel van de standaardzorg. De Bonn Ethische Commissie beoordeelde het studieprotocol en deed afstand van geïnformeerde toestemming op basis van het niet-interventionele ontwerp (nr. 2026-220). Patiëntgegevens werden vóór de analyse gede-identificeerd.

1. AbiC en intraoperatieve kanaalanalyse

OPMERKING: Voer AbiC uit in elk oog met behulp van het microkatheter-gebaseerde canaloplastieksysteem. De volgende procedure beschrijft het gebruik van dit apparaat. Voer AbiC uit als een op zichzelf staande procedure of aan het einde van een onopvallende staaroperatie door phacoemulsificatie.

1. Plaats het ooglidspeculum zo dat zoveel mogelijk scleraweefsel zichtbaar is voor verdere analyse.
2. Breng plaatselijke anesthesie aan, zoals proxymetacaïnehydrochloride. Desinfecteer het oog dat geopereerd wordt met jodium. Dien parabulbaire anesthetica toe.
3. Standaardiseer de microscoopinstellingen voor alle patiënten.
   OPMERKING: Voor AbiC stel je de microscoop in op 20% LED-licht, 100% fundusreflex en 0% omgevingslicht. Voor channelografie stel je de microscoop in op 100% LED-licht, 0% fundusreflex en 100–0% omgevingslicht.
4. Pas de instellingen toe op de Zeiss Lumera (oogchirurgische microscoop). De instellingen kunnen variëren voor andere microscoopmodellen.
   OPMERKING: Gebruik een temporele benadering, ongeacht of de procedure op zichzelf staand of gecombineerd is.
5. Maak één of twee paracentesen van 1,0 mm twee uurtjes van de temporale zitplaats, ongeveer 1 mm in het heldere hoornvlies.
6. Vul de voorste kamer met viscoelastisch.
7. Kantel het hoofd van de patiënt van de zijkant van de chirurg naar een hoek van ongeveer 30°. Kantel de microscoop tot een hoek van ongeveer 30°. Focus op het perifere irisweefsel en breng de hoek van de voorste kamer in zicht.
8. Meng het visco-elastische met fluoresceïnekleurstof.
   1. Aspireer 0,05 mL fluorescein zeer langzaam in het visco-elastische met behulp van een steriele canule, zodat er een enkele grot wordt gecreëerd binnen de viscoelastische.
   2. Laat de fluoresceïne 5–10 minuten diffunderen.
   3. Druk langzaam op de zuiger van de visco-elastische spuit om de met fluoresceïne gevulde grot volledig uit te drukken.
9. Vul het microkatheterapparaat met fluoresceïne-gekleurde visco-elastische elementen.
10. Test het apparaat door de microkatheter voorbij de punt van het injectorapparaat te plaatsen.
11. Breng hydroxy-methylcellulose aan op het hoornvlinst. Plaats de Abic-microkatheter via de paracentese in de voorste kamer. Plaats een gonioprisma, zoals een Swan-Jacob gonioprismalens, op het hoornvlies.
12. Gebruik de punt van het apparaat om het trabeculaire gaaswerk in te snijden. Gebruik de blauwe actuator op het apparaat om de microkatheter naar het kanaal van Schlemm te brengen.
13. Beweeg de microkatheter 360° door het kanaal van Schlemm terwijl je twaalf bolussen van 2,5 μL geverfd visco-elastisch toedient door de visco-injector te draaien.
14. Geef één bolus van 2,5 μL per klokuur.
15. Trek de microkatheter langzaam 360° terug terwijl je twaalf visco-elastische bolussen van 2,5 μL toedient.
16. Verwijder de microkatheter uit de voorkamer. Verwijder het gonioprisma van het oogoppervlak.
17. Richt het hoofd van de patiënt en de microscoop weer in een rechte positie om een gestandaardiseerd, recht zicht op het oog te garanderen. Spoel het hoornvlies door om de kleurstof en hydroxymethylcellulose te verwijderen.
    OPMERKING: Gebruik indien nodig een wattenstaafje om eventuele oppervlaktevlekken te verwijderen en zo een verkeerde interpretatie van oppervlakkige verkleuring te voorkomen.
18. Schakel over op het blauwlichtfilter. Leg de vroege fase van channelografie vast met video of een fotoserie.
19. Zoom uit om zoveel mogelijk scleraweefsel te visualiseren en zorg ervoor dat het beeld scherp is.
20. Als dat klaar is, zet je het blauwlichtfilter uit.
    VOORZICHTIG: Gebruik bimanuele irrigatie-/aspiratieprobes om visco-elastisch materiaal uit de voorste kamer te verwijderen. Voorkom bloedreflux door de voorste kamer te laten spoelen met een uitgebalanceerde zoutoplossing totdat de paracentese gehydrateerd is.
21. Injecteer cefuroxime intracameral.
22. Schakel terug naar het blauwlichtfilter. Neem de late fase van channelografie op met video of een fotoserie ongeveer 2 minuten nadat de afbeelding is genomen voor de vroege fase.
23. Zoom uit om zoveel mogelijk scleraweefsel te visualiseren en zorg ervoor dat het beeld scherp is.
24. Zet het blauwe lichtfilter uit en injecteer dexamethason subconjunctief.

2. Afbeeldingsexport en gegevensopslag

1. Download de beelden van je microscoopsoftware, Zeiss Forum.
2. Open de patiëntenmap die overeenkomt met het patiëntnummer in de microscoopsoftware en gebruik de knop "Exporteren" om de afbeeldingen in een geselecteerde map op te slaan.
3. Verdeel de geëxporteerde afbeeldingen in mappen voor de vroege en de late fase.
4. Geef elke afbeelding een naam in het formaat "Patient No._Eye_Image_No." en sla de afbeeldingen op in JPEG-formaat.

3. Kwantificering van subconjunctivale uitstroom via FIJI

OPMERKING: Pas deze workflow toe op zowel de vroege als late fase van channelografie.

1. Laad een channelografie-afbeelding in FIJI²¹ (open-source beeldanalysesoftware). Knip het beeld zo dat alleen het bediende oog zichtbaar is. Teken een rechthoek met de "Rechthoekgereedschap" en selecteer "Afbeelding > Bijsnijden" in het menu.
2. Teken de wit-wit hoornvliesdiameter op het beeld met het "Straight Line Tool". Meet horizontaal van de neus naar laterale limbus. Stel de wit-wit hoornvliesdiameter in als de schaal met behulp van de bekende hoornvliesdiameter uit de preoperatieve biometrie onder "Analyze > Set Scale > Known Distance (units)".
3. Gebruik het "Polygon Tool" om de grens tussen het hoornvlies en de sclera te markeren met minstens 24 punten. Indien nodig, bekijk de chirurgische video of de afbeelding van de andere fase om de corneale rand beter te identificeren. Gebruik herkenningspunten zoals conjunctivale vaten en de basis van de trabeculaire microruptuur in de vroege fase.
4. Druk op "T" op het toetsenbord of selecteer "Image > Overlay > To ROI Manager" om de ROI Manager te openen en de corneale markering als ROI op te slaan. Bewaar de afbeelding voor latere analyses, indien nodig.
5. Druk op "Del" op het toetsenbord of selecteer "ROI Manager > Meer > Vullen" om het hoornvlies eruit te snijden.
   OPMERKING: Zorg ervoor dat het uitgesneden gebied zwart lijkt. Pas indien nodig de kleur aan met de tool "Color Picker".
6. Zet het stilstaande beeld om naar een binaire zwart-witafbeelding met de tool "Color Threshold" onder "Image > Adjust". Selecteer na het openen van het gereedschap "Standaard" als drempelmethode, "Zwart & Wit" als drempelkleur en "HSB" als kleurruimte. Verwijder de vinkjes uit de "Pass"-vakjes voor elke instelling en uit het vakje "Donkere Achtergrond".
7. Zorg ervoor dat witte gebieden overeenkomen met gele kleuring door gefluoresceineerd visco-elastisch. Pas dit indien nodig aan met de tool "Color Picker".
8. Standaardiseer de binariseerde afbeelding met een van de volgende drie instellingen om betere vergelijkbaarheid tussen afbeeldingen mogelijk te maken.
   1. Voor volledig gestandaardiseerde instellingen voor het gehele patiëntcollectief, zet de bovenste balk op "Hue" = 140, "Saturation" = 205 en "Brightness" = 205. Zet de onderste balk op "Tint", "Verzadiging" en "Helderheid" = 255.
   2. Voor gedeeltelijk gestandaardiseerde instellingen kies je individueel de bovenste balk "Hue" en stel je de bovenste balk in "Verzadiging" en "Helderheid" = 255. Stel de onderste balk in "Tint", "Verzadiging" en "Helderheid" = 255.
   3. Voor volledig aangepaste instellingen kies je elke bovenste balkinstelling afzonderlijk voor elke afbeelding. Stel de onderste balk in "Tint", "Verzadiging" en "Helderheid" = 255.
9. Vergelijk de binarisatie met de originele afbeelding met de "stack"- functie of directe vergelijking.
10. Kies een minimale instelling voor de gedeeltelijk gestandaardiseerde en volledig aangepaste instellingen die toch lichtere gekleurde plekken weerspiegelen, terwijl oververtegenwoordiging van sterk gekleurde plekken wordt vermeden. Verwijder indien nodig lichtreflecties of oppervlakkige kleurstof. Markeer het artefact met de "Polygon Tool" en druk op "Del" of selecteer "ROI Manager > Meer > Invullen".
11. Selecteer zwart als vulkleur onder "Image > Color > Color Picker" zodat de uitgeknipte gebieden niet onterecht als kleurstof worden geteld.
12. Verander het afbeeldingstype naar "32 bit" via "Image > Type". Normaliseer de instellingen via "Process > Enhance Contrast" en stel "% verzadigde pixels = 0,35" in.
13. Kwantificeer de hoeveelheid waterige humor met methode 1, 2 of 3 zoals hieronder vermeld.
    1. Kwantificatiebenadering 1: Percentage fluoresceïnekleuring van het totale oppervlak rond buiten het hoornvlies.
       OPMERKING: Gebruik deze methode om het percentage fluoresceinekleuring van het totale gebied rond het hoornvlies te registreren.
       1. Afhankelijk van het beeldgedeelte en de breedte van de ooglidopening, projecteer je drie ringen rond de eerder getekende hoornvliesafbakening, waarbij elke ring 1 mm breed is.
       2. Selecteer de corneale markering in de ROI Manager en kies "Bewerken > Selectie > Maak Band: 1".
       3. Haal het percentage gekleurde gebied in de eerste ring op. Selecteer "Analyze > Set Measurements > Mean Grey Value > OK" en druk op "Ctrl + M" op het toetsenbord of selecteer "Analyze > Measure".
       4. Noteer de waarden uit de tabel die opent.
       5. Druk op "T" op het toetsenbord of kies "Image > Overlay > To ROI Manager" om de eerste ring in de ROI Manager op te slaan.
       6. Herhaal stappen 3.13.1.2 - 3.13.1.5 voor de tweede en derde ring met 2 of 3 eenheden voor de verlenging van de ringen, beginnend bij het hoornvliesmerk of vanaf 1 eenheid van de eerder getrokken ring.
       7. Controleer de originele afbeelding om te bevestigen dat de ringen alleen conjunctiva bevatten.
       8. Sla de binariseerde afbeelding op onder "File > Save As > Tiff" en geef deze een naam in het formaat "Patient ID_phase_Ring".
       9. Sla de bijbehorende resultaten op via "Bestand > Sla op als" en noem ze dienovereenkomstig.
       10. Sla de bijbehorende ROI Manager op door op "Deselecteren" te klikken, vervolgens op "Meer > opslaan" en deze passend te benoemen.
    2. Kwantificatiebenadering 2: Kwadrantgebaseerde analyse van procentuele kleuring
       OPMERKING: Gebruik deze methode om de procentuele kleuring individueel voor elk kwadrant te analyseren.
       1. Voltooi stappen 3.1–3.13.1.10 voordat u begint met de kwadrantanalyse.
       2. Teken een rechthoek met de "Rechthoek-tool" zodat deze precies de helft van het beeld weergeeft.
       3. Druk op "Del" op het toetsenbord of kies "ROI Manager > Meer > Invullen" zodat slechts één helft van het beeld overblijft.
       4. Teken een tweede rechthoek die de helft van het resterende beeld vertegenwoordigt.
       5. Druk opnieuw op "Del" op het toetsenbord of selecteer opnieuw "ROI Manager > Meer > Invullen" zodat een kwart van de oorspronkelijke binariseerde afbeelding overblijft.
       6. Zelfs als het geselecteerde hoornvlies niet perfect rond is, probeer eerst twee exacte helften te gebruiken om een kwadrant te identificeren die zo dicht mogelijk bij 0,25 meet.
       7. "Deselecteer" de drie ringen van de eerste benadering via de ROI Manager.
       8. Klik op "Meer > Meervoudige Meting > Eén Rij per Schijf" om de gekleurde verhouding te bepalen.
       9. Noteer de resultaten van de tabel die opengaat.
       10. Herhaal stappen 3.13.2.2 - 3.13.2.9 voor de resterende drie kwadranten.
       11. Sla alle binariseerde kwadrantafbeeldingen op onder "File > Save As > Tiff" en noem ze met het formaat "Patient ID_phase_Quadrant".
       12. Sla de bijbehorende resultaten op via "Bestand > Sla op als" en geef ze een passende naam.
       13. Sla de bijbehorende ROI Manager op door op "Deselecteren" te klikken, vervolgens op "More > Save" en geef deze een passende naam.
    3. Kwantificatiebenadering 3: Analyse van focale kleurpatronen die overeenkomen met gelokaliseerde veranderingen in trabeculaire meshwork
       OPMERKING: Gebruik deze methode om focale kleurpatronen te beoordelen die kunnen overeenkomen met gelokaliseerde veranderingen van het trabeculaire netwerk. Tijdens de ontwikkeling van het Schlemm-kanaal kan de katheter microrupturen in de binnenwand van het trabeculaire gaaswerk veroorzaken en hernia's van de binnenwand van het trabeculaire gaaswerk beïnvloeden richting collectorkanaalostia. Analyseer daarom de vroegfasebeelden met deze benadering.
       1. Voltooi stappen 3.1 tot 3.4.
       2. Klik op "Bewerken > Inverse maken".
       3. Druk op "Del" op het toetsenbord of selecteer "ROI Manager > Meer > Vullen" om scleraweefsel te verwijderen voor de exclusieve analyse van trabeculaire microrupturen die zich in de hoornvliesring bevinden.
       4. Zorg ervoor dat het gebied buiten de hoornvliesring zwart is. Pas indien nodig het zwart-witscherm aan met de tool "Color Picker".
       5. Teken een iets kleinere ring aan de binnenkant van de corneale ROI door eerst de corneale ROI te selecteren in de ROI Manager.
       6. Klik op "Bewerken > Selectie > Vergroot > -0,2" zodat er een 0,2 mm smallere ring in de hoornvliesring verschijnt.
       7. Druk op "T" op het toetsenbord of kies "Image > Overlay > To ROI Manager".
       8. Klik op "Bewerken > selectie > Band > 0,2" maken zodat er een ring van 0,2 mm breder verschijnt.
       9. Plaats deze ring op de hoornvliesring om de buitenste grens te vormen, zodat alleen het oppervlak tussen de twee ringen kan worden geanalyseerd.
       10. Druk op "T" op het toetsenbord om de ring als ROI op te slaan.
       11. Open "Image > Adjust > Color Threshold" om de drempelinstellingen te controleren.
       12. Gebruik gedeeltelijk gestandaardiseerde instellingen. Kies de bovenste balk "Tint" individueel, stel de bovenste balk in "Verzadiging" en "Helderheid" = 255, en zet de onderste balk "Tint", "Verzadiging" en "Helderheid" = 255.
       13. Kies kleurinstellingen die de kleur toestaan de gebieden in de binnenste ring te vullen waar een trabeculaire breuk verschijnt.
       14. Zorg ervoor dat gekleurde gebieden wit lijken in de gebinariseerde afbeelding.
       15. Verwijder indien nodig artefacten en de locaties waar paracenteses zijn gemaakt. Markeer de gebieden met de "Polygon Tool" en druk op "Del".
       16. Selecteer zwart als vulkleur onder "Image > Color > Color Picker" zodat de uitgeknipte gebieden niet onterecht als kleurstof worden geteld.
       17. Klik op "Meer > Meervoudige Meting > Eén Rij per Schijf".
       18. Noteer de resultaten van de tabel die opengaat.
       19. Sla de binariseerde afbeeldingen op onder "File > Save As > Tiff" en noem ze met het formaat "Patient ID_phase_microruptures".
       20. Sla de bijbehorende resultaten op via "Bestand > Sla op als" en geef ze een passende naam.
       21. Sla de bijbehorende ROI Manager op door op "Deselecteren" te klikken, vervolgens op "Meer > opslaan" en deze passend te benoemen.
14. Voor datacompilatie open je een Excel-spreadsheet.
15. Kopieer alle eerder verzamelde resultaattabellen naar één spreadsheet.
16. Voor de kwadrantanalyseresultaten vermenigvuldigen we elke waarde met vier zodat de waarden kleuring in een volledig beeld weergeven en vergeleken kunnen worden met de andere benaderingen.

Figuur 1 geeft een overzicht van de workflow.

Figuur 1: Schematisch overzicht van de workflow die wordt gebruikt om de uitstroom van waterige humor te kwantificeren na ab-interno canaloplastiek (AbiC). De procedure omvat intraoperatieve fluoresceïne-channelografie beeldverwerving, beeldverwerking met open-source beeldanalysesoftware, binarisatie en standaardisatie van beelden, en kwantitatieve analyse van fluoresceïnekleuringspatronen. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Resultaten

Patiënten ouder dan 18 jaar met de diagnose glaucoom die AbiC hadden ondergaan, zowel op zichzelf als in combinatie met staaroperatie, werden opgenomen. Daarnaast moesten channelografiebeelden ten minste in de vroege of late fase beschikbaar zijn. Een eerdere selectieve lasertrabeculoplastiek was geen uitsluitingscriterium, in tegenstelling tot andere glaucoomchirurgie. Daarnaast werden geen patiënten met gevorderde glaucoomschade in de studie opgenomen.

Tot n...

Discussie

Deze workflow biedt een stapsgewijze gids om open-source beeldanalysesoftware te gebruiken om de hoeveelheid waterige humor na AbiC te kwantificeren. De functies van open-source beeldanalysesoftware bieden gebruiksvriendelijke sjablonen die geen programmeerkennis vereisen en door artsen zonder technische ondersteuning kunnen worden toegepast. Deze benadering helpt om de waterige humor na AbiC te evalueren om de potentiële voorspellende waarde voor chirurgische uitkomsten te beoordelen. I...

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel

Naam	Bedrijf	Catalogusnummer	Opmerkingen
Balanced Salt Solution	Bausch & Lomb	Ref.: BL705004
Bi-manuele irrigatie/aspiratie sondes	Zeiss	Ref.: 303060-0165-000
Cefuroxim	Laboratoires Théa	PZN: 09755705	Voorgemengd door de apotheek
Dexamethason	Dr. Winzer	PZN: 02192162
FIJI (ImageJ)	n/a	n/a	Open-source beeldanalysesoftware
Fluoresceïnegeel	Alcon	PZN: 01467007
Healon Pro Viscoelastic	Johnson & Johnson	Ref.: 10-3100-12
Hydroxymethylcellulose	Johnson & Johnson	Ref.: 10310012
Jodiumoplossing	Mundipharma	PZN: 03930490
iPrism S gonioprisma lens	Glaukos	Ref.: OTB/LH-2
iTrack Advance Canaloplasty System	Nova Eye Medical	Ref.: Track-ADS	Microcatheter-based canaloplasty systeem
Lumera 700 chirurgische microscoop + Calysto	Zeiss	Ref.: 6726521526	Oogheelkundige chirurgische microscoop
Proxymetacainehcl	PUREN Pharma GmbH & Co. KG	PZN: 11055866
Steriele canule	Braun	Ref.: 4657683