Deze studie werd goedgekeurd door de Ethische Commissie van het Wuhan Rongjun Youfu Ziekenhuis (projectidentificatiecode, YF-IRB202310215) en uitgevoerd in overeenstemming met de principes van de Verklaring van Helsinki. Alle deelnemers waren bewoners van de Chinese gemeenschap en gaven schriftelijke, geïnformeerde toestemming.
Proefpersonen en bloedmonsters
Tien volwassenen met de diagnose schizofrenie en tien gezonde controlevrijwilligers zonder familiegeschiedenis van psychische aandoeningen binnen drie generaties werden ingeschreven. Inclusiecriteria voor schizofreniepatiënten: (1) diagnose schizofrenie volgens DSM-5-criteria bevestigd door twee onafhankelijke senior psychiaters; (2) leeftijd 18–65 jaar; (3) geen verandering in antipsychotica gedurende minstens 4 weken voorafgaand aan bloedafname; (4) bereidheid om schriftelijke geïnformeerde toestemming te geven. Exclusiecriteria: (1) comorbide ernstige medische aandoeningen (bijv. diabetes, hart- en vaatziekten, kanker); (2) middelenmisbruik of afhankelijkheid in de afgelopen 6 maanden; (3) verstandelijke beperking; (4) zwangerschap of lactatie. Inclusiecriteria voor gezonde controles: (1) geen persoonlijke of familiegeschiedenis (binnen drie generaties) van een psychische aandoening; (2) geen huidig of voortijdig gebruik van antipsychotica; (3) leeftijds- en geslachtsgecorreleerd bij de schizofreniegroep; (4) geen ernstige medische aandoeningen. De gemiddelde ziekteduur voor schizofreniepatiënten was 12,5 ± 6,8 jaar; Alle patiënten kregen stabiele antipsychotica (6 op risperidon, 4 op olanzapine); de gemiddelde PANSS-totale score was 76,4 ± 12,3. Controles werden gematcht op leeftijd (±5 jaar) en geslacht (5 mannen, 5 vrouwen per groep). Het verbale geheugen werd beoordeeld met behulp van de totale geheugenscore op de Hopkins Verbal Learning Test–Revised (HVLT-R). Alle proefpersonen werden gerekruteerd uit het Wuhan Rongjun Youfu Ziekenhuis tussen 1 januari en 31 juli 2025. De basisdemografie wordt samengevat in Tabel 1.
De steekproefgrootte werd bepaald met behulp van steekproefgrootteberekeningssoftware voor een tweezijdige onafhankelijke t-test met een effectgrootte van 1,2, α = 0,05 en kracht (1-β) = 0,80, wat resulteerde in minimaal negen proefpersonen per groep.
Veneus bloed werd afgenomen in EDTA-antistollingsbuizen en zonder vertraging verwerkt. Perifere mononucleaire bloedcellen (PBMC's) werden vervolgens van de monsters gescheiden door dichtheidsgradiëntcentrifugatie met behulp van dichtheidsgradiëntmedium. Kort gezegd werd bloed 1:1 verdund met fosfaatgebufferde zoutoplossing (PBS, pH 7,4), gelaagd op het dichtheidsgradiëntmedium en 30 minuten bij 20 °C gecentrifugeerd op 400 × g bij 20 °C met de rem uit. Na centrifugatie werd de PBMC-bevattende interface zorgvuldig overgebracht naar een nieuwe buis. De cellen werden twee keer gespoeld met PBS, waarbij elke wasbeurt gevolgd werd door centrifugatie op 300 × g gedurende 10 minuten bij 4 °C, en de uiteindelijke pellet werd in PBS opgehangen. De levensvatbaarheid werd geëvalueerd met de trypanblauwe kleurstof-uitsluitingsmethode, en alleen preparaten met ≥95% levensvatbare cellen werden gebruikt. Geïsoleerde PBMC's werden gealiquoteerd en opgeslagen bij −80 °C maximaal 3 maanden voordat RNA-extractie plaatsvond.
Microarraygegevens
De werkwijze van de studie is weergegeven in Figuur 1. De microarray-dataset GSE54913 werd gedownload van de GEO-database (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/). Deze dataset is geselecteerd omdat (1) het transcriptomische gegevens bevat van perifere bloedmonsters, die minimaal invasief en klinisch praktisch zijn voor biomarkerontdekking; (2) het omvat een relatief grote steekproef uit publiek beschikbare schizofrenie-microarray-datasets (18 patiënten, 12 controles); (3) de ruwe gegevens beschikbaar waren voor heranalyse. Volgens het GEO-record werden de monsters afkomstig van perifere mononucleaire bloedcellen (PBMC's), niet van plasma. De oorspronkelijke beschrijving 'plasmamonsters' in de vorige versie was een fout en is gecorrigeerd.
Datapreprocessing en differentieel expressief gen (DEG) screening
Ruwe data (. CEL-bestanden) werden voorbewerkt met behulp van microarray-voorverwerkingssoftware. Achtergrondcorrectie werd uitgevoerd met behulp van de Robust Multichip Average (RMA)-methode, gevolgd door quantielnormalisatie en log2-transformatie. Probesets zonder enige genannotatie werden eruit gefilterd. Sondes met >20% ontbrekende waarden over de steekproeven werden uitgesloten; Ontbrekende waarden voor de resterende probes werden geïimputeerd met behulp van het k-dichtstbijzijnde buren-algoritme (k = 10), geïmplementeerd in ontbrekende waarde imputatiesoftware. Batch-effecten waren niet aanwezig omdat alle monsters in één batch werden verwerkt volgens het GEO-record. Na preprocessing werden expressiewaarden voor 17.200 genen verkregen voor downstream analyse. DEG's tussen schizofreniepatiënten en gezonde controles werden geïdentificeerd met behulp van differentiële expressieanalysesoftware. Genen met een valse ontdekkingsrate (FDR) < 0,05, absolute vouwverandering (FC) > 1,2 en P < 0,05 werden als differentieel geexpresseerd beschouwd. Een relatief lage FC-drempel (absolute FC > 1,2) werd gekozen omdat schizofrenie een complexe psychiatrische aandoening is waarbij individuele genexpressieverschillen vaak subtiel zijn in plaats van dramatisch.
GO- en padverrijkingsanalyses
Functionele verrijkingsanalyses voor Gene Ontology (GO)-termen en Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG) routes werden uitgevoerd met behulp van functionele verrijkingsanalysesoftware. De achtergrondgenen bestond uit alle genen die de preprocessing doorstonden (17.200 genen). Verrijkingstermen en -routes met ruwe P-waarden < 0,05 werden gerapporteerd. Omdat ruwe P-waarden werden gebruikt voor GO- en KEGG-verrijkingsuitgangen, moeten deze resultaten als verkennend worden geïnterpreteerd.
PPI-netwerkanalyse en hubgenidentificatie
Een eiwit-eiwit interactiedatabase werd gebruikt om een PPI-netwerk op te bouwen, met een gecombineerde interactiescore > 0,9 als drempel vastgesteld. Het netwerk werd gevisualiseerd met behulp van netwerkvisualisatiesoftware. Hubgenen werden geïdentificeerd met behulp van een hubgenidentificatie-plugin met het Degree-algoritme. De top 10 nodes met de hoogste graadscores werden geselecteerd als hubgenen. Het subnetwerk van belangrijke hubgenen werd geëxtraheerd met behulp van een subnetwerkextractie-plugin met standaardparameters (degree cutoff = 2, node score cutoff = 0,2, K-core = 2, maximale diepte = 100).
Totale RNA-isolatie en qRT-PCR
β-Actine werd gebruikt als het interne referentiegen (huishouding). De stabiliteit van β-actine-expressie tussen de monsters werd bevestigd door geen significant verschil in CT-waarden tussen de schizofrenie- en controlegroepen (P > 0,05). Relatieve kwantificatie werd uitgevoerd met de 2−ΔΔCt-methode . Alle reacties werden in drievoud uitgevoerd, en de gemiddelde Ct-waarde werd gebruikt voor de berekening (zie primersequenties in Tabel 2). De top tien DEG's (vijf die het meest significant upreguleerd zijn en vijf die het meest significant worden gedownreguleerd door vouwverandering) werden geselecteerd voor initiële qRT-PCR-validatie om de algehele betrouwbaarheid van de microarraygegevens te bevestigen. Vervolgens werden SUCNR1 en GPR37L1 geselecteerd voor gerichte validatie op basis van drie criteria: (1) ze werden geïdentificeerd als hubgenen in de PPI-netwerkanalyse (graad ≥ 7); (2) ze waren significant geassocieerd met de top verrijkte GO-term 'ionenkanaalactiviteit' en de KEGG-route 'insulinesecretie'; (3) beide coderen GPCR's, die bekende doelwitten zijn bij schizofrenie.
Statistische analyse
De normaliteit werd geëvalueerd met de Shapiro–Wilk-test. Variabelen met een ongeveer normale verdeling (P > 0,05) werden geanalyseerd met parametrische methoden, waaronder de Student's t-test voor tweegroepsvergelijkingen en eenrichtings-ANOVA voor vergelijkingen met meer dan twee groepen. Wanneer aan de normaliteitsaanname niet werd voldaan, werden Mann–Whitney U of Kruskal–Wallis-tests gebruikt, waar van toepassing. Alle statistische tests waren tweezijdig. Voor meerdere vergelijkingen (bijvoorbeeld in ANOVA post-hoc tests) werd de Benjamini-Hochberg false discovery rate (FDR) methode toegepast, met een FDR-drempel van 0,05. Voor correlatieanalyses werd geen meervoudige vergelijkingscorrectie toegepast, omdat slechts twee correlaties werden uitgevoerd; de ruwe P-waarden worden met voorzichtigheid gerapporteerd.