Alle procedures zijn goedgekeurd door de Animal Ethics Committee van de Changchun University of Chinese Medicine (Goedkeuring nr. 20251038) en werden uitgevoerd volgens de richtlijnen voor Animal Research: Reporting of In Vivo Experiments (ARRIVE 2.0) en de NIH Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. Alle materialen die in deze studie zijn gebruikt, worden weergegeven in de Materiaallijst.
Experimentele procedures
Proefdieren en groepering
Tachtig specifieke pathogenevrije (SPF) volwassen mannelijke Sprague–Dawley-ratten (220–250 g) werden gekocht bij Hongda Animal Breeding Farm (district Kuancheng, Changchun, China). De dieren werden gehuisvest in het Experimenteel Dierencentrum van de Changchun University of Chinese Medicine onder gecontroleerde omstandigheden van 22–25 °C, 50–60% relatieve luchtvochtigheid en een 12-uur licht/donker-cyclus, met vrije toegang tot voedsel en water. Na 1 week acclimatisatie werden ratten willekeurig toegewezen aan een lege groep (n = 12), een Sham-groep (n = 12) en een modelreservegroep (n = 56). De blanco groep werd opgenomen als een normale, onbehandelde controle om basiswaarden te leveren voor gedragsprestaties, histopathologische kenmerken en moleculaire markerexpressie bij gezonde ratten. De Sham-groep onderging dezelfde anesthesie en chirurgische blootstelling als de MCAO-groep, behalve dat er geen arteriële occlusie werd uitgevoerd; Daarom diende deze groep als controlegroep voor de mogelijke effecten van anesthesie en chirurgische manipulatie. De opname van zowel de Blank- als de Sham-groepen maakte het mogelijk de effecten van ischemische schade te onderscheiden van die gerelateerd aan de chirurgische ingreep zelf.
De modelreservegroep onderging MCAO-modellering. De eerste 3 dagen na de operatie werden gedefinieerd als de model-inductieperiode. In deze periode stierven 8 van de 56 ratten, wat overeenkomt met een sterftecijfer van 14,29%, en 12 ratten werden uitgesloten omdat modellering niet succesvol was. De overige 36 ratten met succesvolle modelopbouw werden willekeurig, met behulp van een random-getalle-tabel, toegewezen aan de MCAO-, SAE- en Baclofen-groepen, met 12 ratten in elke groep. Groepsinterventies waren als volgt: (I) Blanco groep: alleen routinevoeding, zonder interventie. (II) Schijngroep: chirurgische blootstelling van de arteria halsslagader gemeenschappelijke halsslagader, interne en externe halsslagaders en nervus vagus, zonder ligaties of filamentinsertie. (III) MCAO-groep: MCAO werd opgericht onder intraperitoneale anesthesie met 3% natrium pentobarbital, zonder verdere behandeling. (IV) SAE-groep: na succesvolle MCAO-modellering en validatie kregen ratten hoofdhuidacupunctuur gecombineerd met oefening. Isoflurane inhalatie-anesthesie van 1,5%–2,0% werd alleen gebruikt tijdens de korte naaldinbrengingsfase. Loopbandtraining werd pas gestart na volledig herstel van bewustzijn en herstel van spontaan loopvermogen. Acupunctuur werd uitgevoerd bij GV20 en bilaterale EX-HN1. Naalden werden tot een diepte van 1 mm ingebracht en behouden tijdens de loopbandtraining. De gestandaardiseerde 30-minuten naaldretentie-/trainingsperiode werd gedefinieerd als de loopbandtrainingsperiode en bestond uit 6 m/min voor 10 minuten, gevolgd door 12 m/min voor 20 minuten bij 0° helling. De interventie werd eenmaal per dag toegediend gedurende 7 opeenvolgende dagen. (V) Baclofengroep: na succesvolle MCAO-modellering en validatie kregen ratten baclofen via intragastrische gavage van 0,4 mg/kg eenmaal daags gedurende 7 opeenvolgende dagen.
Oprichting van het MCAO-model
Het rat MCAO-model werd ontwikkeld met behulp van een aangepaste intraluminale filamentmethode19. Na 12 uur vasten en watertekort werden ratten verdoofd door een intraperitoneale injectie van 3% natriumpentobarbital en in rugligging geplaatst. Na huiddesinfectie werd een middenlijn-cervicale incisie gemaakt om de rechter arteria carotis (CCA) en aangrenzende zenuwen en spieren bloot te leggen. De arteria carotis external (ECA) werd geïdentificeerd en geligeerd, en de arteria carotis internal (ICA) werd geïsoleerd. Ligaturen werden geplaatst bij de proximale ICA en CCA, en de distale CCA werd tijdelijk vastgeklemd. Daarna werd er een kleine arteriotomie uitgevoerd in de CCA proximaal van de klem. Een nylonfilament van 0,26 mm werd ingebracht en 18–20 mm door de ICA gebracht om de oorsprong van de middelste hersenslagader te blokkeren. De ICA en CCA werden vervolgens geligeerd en de incisie werd gehecht. Na de operatie werden ratten tijdens het herstel warm gehouden en kregen ze een intraperitoneale injectie met penicilline (40.000 U) om infectie te voorkomen. In de Sham-groep werd alleen vasculaire blootstelling uitgevoerd, zonder filamentinsertie; wondsluiting en postoperatieve zorg waren identiek aan die in de MCAO-groep. Succesvolle modelopbouw werd gedefinieerd als een Zea Longa-score ≥ 2 3 dagen na de operatie19 en een aangepaste Ashworth Scale (MAS) spiertonusscore ≥ graad 120.
Intervntiemethoden
Hoofdhuidacupunctuur combineert met inspanningsinterventie
Eerdere studies tonen aan dat bij MCAO-ratten neurologische tekorten op dag 3 pieken en binnen 10 dagen na de operatie verhoogd blijven, terwijl de perifere spierweerstand geleidelijk toeneemt van dag 6 tot dag 921. Daarom werd de behandeling gestart op postoperatieve dag 3 en werd deze dagelijks gedurende 7 opeenvolgende dagen voortgezet om de impact van spontane herstel te minimaliseren. Voor het modelleren ondergingen ratten die aan de SAE-groep waren toegewezen 3 dagen adaptieve loopbandtraining op 5 m/min voor 10 minuten/dag 22 minuten. Deze adaptieve training werd gebruikt om ratten vertrouwd te maken met lopen op de loopband en om de kans op worstelen, vallen, weigeren om te rennen of stoppen tijdens de formele interventieperiode te verkleinen. Tijdens adaptieve training en formele interventie werden abnormale loopbandgerelateerde gebeurtenissen gedefinieerd als aanhoudend worstelen, vallen van de hardloopbaan, weigeren om langer dan 1 minuut te rennen, of langer dan 1 minuut stoppen tijdens loopbandtraining. Deze gebeurtenissen werden vastgelegd in experimentele logboeken wanneer ze werden waargenomen. Korte aarzeling of voorbijgaande stoppen leidde niet tot uitsluiting als lopen op de loopband na voorzichtig aansturen kon worden hervat. Gegevens werden alleen uitgesloten als een dier de toegewezen dagelijkse loopbandsessie niet kon voltooien vanwege herhaald vallen, aanhoudend weigeren om te rennen of ernstige nood. Na succesvolle modelvalidatie op dag 3 werd de SAE-interventie eenmaal dagelijks toegediend gedurende 7 opeenvolgende dagen.
Voor elke behandelsessie werden ratten verdoofd met 1,5%–2,0% isofluran. De narcose werd direct na het inbrengen van de naald stopgezet. In experimentele praktijk herwonnen ratten meestal binnen ongeveer 1–2 minuten na het onttrekken van isofluraan hun volledige bewustzijn. Loopbandtraining werd niet gestart terwijl ratten onder narcose waren. Acupunkturen werden gevonden door ervaren dieracupuncturisten volgens de Nomenclatuur en Lokalisatie van Algemene Acupunkturen bij Proefdieren, uitgegeven door de China Association of Acupuncture-Moxibustion in 2020. GV20 werd gedefinieerd als het middenpunt van de lijn die de voorste en achterste fontanellen op de schedelmiddenlijn verbindt. Bilaterale EX-HN1-punten bevonden zich 2 mm lateraal aan GV20. Wegwerpnaalden van 0,25 mm × 13 mm werden verticaal ingebracht tot een diepte van 1 mm en gedurende de gestandaardiseerde 30 minuten lopende loopbandtraining behouden. Naalden werden vastgezet met ademend medisch tape om verplaatsing te voorkomen, en schedelpenetratie werd uitgesloten door palpatie om procedurele consistentie te waarborgen. De naaldpositie en de fixatie van het tape werden gecontroleerd vóór de loopbandtraining, tijdens korte pauzes als er abnormaal hardloopgedrag optrad, en direct na het voltooien van de training. Daarnaast werd de naaldpositie elke 5 minuten visueel gecontroleerd tijdens de loopbandtraining, ongeacht het gedrag van de dieren. Naaldverplaatsing werd gedefinieerd als zichtbare lossing, een verandering in naaldhoek, gedeeltelijke terugtrekking of volledige losraking tijdens het lopen op de loopband. Als er lichte losser raakte zonder verlies van de naaldpositie, werd de tape voorzichtig versterkt terwijl de loopband kort werd gepauzeerd. Als een naald gedeeltelijk werd teruggetrokken of volledig losgeraakt, werd de naald tijdens die sessie niet opnieuw ingebracht; De rat voltooide de resterende loopbandtraining zonder extra naaldmanipulatie, en het voorval werd vastgelegd in het experimentele logboek. Dieren werden niet uitsluitend uitgesloten vanwege een enkele naaldverplaatsing, tenzij het gebeurde met het onvermogen om de loopbandtraining te voltooien of tekenen van ernstige nood.
De gestandaardiseerde 30 minuten durende naaldretentie/trainingsperiode begon toen de rat begon met lopen op de loopband na volledig herstel van isoflurane anesthesie en eindigde direct na het voltooien van de loopbandtraining, toen de naalden werden verwijderd. Het korte herstelinterval na het stoppen met isoflurane werd niet opgenomen in de gestandaardiseerde trainingsperiode van 30 minuten. Omdat naalden vóór het herstel werden ingebracht, was de daadwerkelijke fysieke verblijfstijd ongeveer 1–2 minuten langer dan de 30 minuten durende trainingsperiode op de loopband. Deze definitie werd consequent toegepast op alle ratten in de SAE-groep. Een rat werd als voldoende hersteld beschouwd om te beginnen met loopbandtraining wanneer aan de volgende criteria was voldaan: volledig bewustzijnsherstel, vermogen om zelfstandig te staan, vermogen om steady op een vlakke ondergrond te lopen en normale reactie op zachte externe stimulatie. Deze criteria werden gecontroleerd voordat ze op de loopband werden geplaatst.
Tijdens het vasthouden van de naald voerden ratten loopbandoefeningen uit bij 0° helling: 6 m/min gedurende 10 minuten, gevolgd door 12 m/min gedurende 20 minuten. Elektrische schok werd op geen enkel moment tijdens het onderzoek gebruikt. Als een rat tijdens de formele training stopte met rennen of weigerde langer dan 1 minuut te rennen, werd milde, niet-aversieve auditieve stimulatie, zoals licht tikken op de loopbandwand, gebruikt om beweging te stimuleren. Het gebruik van dergelijke aansporing, evenals elk worstelen, vallen, stoppen, weigeren om te rennen of naaldverplaatsing, werd gedocumenteerd in het experimentele logboek wanneer het werd waargenomen. Deze gebeurtenissen werden beschrijvend gemonitord en gedocumenteerd in het experimentele logboek wanneer ze werden waargenomen. De intensiteit van de inspanning werd grondig aangepast op basis van eerder gerapporteerde protocollen waarbij hoofdacupunctuur werd gecombineerd met loopbandtraining16,23. De SAE-interventie werd eenmaal dagelijks toegediend gedurende 7 opeenvolgende dagen (Figuur 1A).
Baclofeninterventie
Na succesvolle modelvalidatie kregen ratten in de Baclofen-groep baclofenoplossing via intragastrische gavage in een dosis van 0,4 mg/kg. Het medicijn werd eenmaal dagelijks toegediend om 9:00 uur gedurende 7 opeenvolgende dagen.
Uitkomst-betekenis
Algemene observatie
De algemene toestand werd dagelijks gemonitord in alle groepen, inclusief lichaamsgewicht, mentale toestand, voedsel- en waterinname en spontane activiteit.
Neurologische functie en spiertonusbeoordeling
Neurologische tekorten en ledemaatspasticiteit werden beoordeeld op dag 1, 3, 5 en 7 na modelvalidatie met behulp van de Zea Longa-score, de aangepaste neurologische ernstscore (mNSS) en de aangepaste Ashworth-schaal. Alle gedragsbeoordelingen op alle tijdstippen werden onafhankelijk uitgevoerd door twee onderzoekers die gedurende de observatieperiode blind waren voor groepstoewijzing. Gedetailleerde beoordelingscriteria worden weergegeven (Tabellen 1–3).
Bepaling van het volume van cerebrale infarcten
Het volume van het cerebrale infarct werd beoordeeld met behulp van 2,3,5-triphenyltetrazoliumchloride (TTC) kleuring. Na 7 dagen interventie werden drie ratten uit elke groep willekeurig geselecteerd en geëuthanaseerd door een intraperitoneale overdosis natriumpentobarbital, gevolgd door snelle onthoofding voor volledige hersenverzameling. De hersenen werden eerst bevroren bij −20 °C en daarna in 2 mm dikke coronale secties gesneden. De secties werden geïncubeerd in 2% TTC-oplossing bij 37 °C gedurende 30 minuten in het donker, en vervolgens 's nachts gefixeerd in 4% paraformaldehyde bij 4 °C. De volgende dag werden alle secties gefotografeerd met een digitale camera. Normaal hersenweefsel was donkerrood gekleurd, terwijl geïnfarceerd weefsel bleekwit leek. Infarctgebieden werden gekwantificeerd met ImageJ, en infarctvolume werd uitgedrukt als percentage met behulp van de formule:
Infarctvolume (%) = infarctgebied / totale hersensectie X 100%. (1)
Histopathologisch onderzoek van hersenweefsel
Hematoxyline–eosine (HE) kleuring
Hematoxyline- en eosine kleuring werd gebruikt om histopathologische veranderingen in de peri-infarct cortex te evalueren. Na 7 dagen interventie werden ratten geëuthanaseerd door een intraperitoneale overdosis natriumpentobarbital. Daarna werd een snelle transcardperfusie uitgevoerd met 0,01 M fosfaatgebufferde zoutoplossing (PBS) om bloed te verwijderen, gevolgd door 250 mL koude 4% paraformaldehyde (4 °C) voor fixatie. Hele hersenen werden verzameld en peri-infarct corticaal weefsel werd geïsoleerd en gefixeerd in 4% paraformaldehyde bij 4 °C gedurende 24 uur. Weefsels waren paraffine-ingesloten en coronal gesneden op 5 μm. Secties werden op slides gemonteerd, 30 minuten gebakken op 60 °C en gedeparaffiniseerd in xyleen I–III (elk 10 minuten). Daarna werd HE-kleuring uitgevoerd, gevolgd door uitdroging en opruimen. Tot slot werden secties bedekt met neutrale balsem en werden beelden gemaakt met een Nikon-lichtmicroscoop.
Nissl-beitsing
Nissl-kleuring werd gebruikt om de neuronale overleving en de lichaamsdichtheid van Nissl in het peri-infarct gebied te beoordelen. Na 7 dagen interventie werden ratten geëuthanaseerd en transcardiaal geperfuseerd met 0,01 M PBS (37 °C), gevolgd door 250 mL 4% paraformaldehyde (4 °C). Hele hersenen werden verwijderd, en peri-infarct en contralaterale corticale weefsels werden ontleed en 's nachts gefixeerd in 4% paraformaldehyde bij 4 °C. Na paraffine-inbedding werden 5 μm secties voorbereid. Secties werden 10 minuten gedeparaffiniseerd in xyleen, gerehydrateerd via een reeks gegradueerde ethanoloplossingen (95%, 90%, 80%, 70% en 50%; 5 minuten per concentratie), en 30 minuten bij kamertemperatuur gekleurd met Nissl werkoplossing. Na een korte spoeling met gedestilleerd water werden delen gedehydrateerd met gegradueerde ethanol, 2 minuten in xyleen gezuiverd en uiteindelijk gemonteerd met dekmantels. Beelden werden vastgelegd en geanalyseerd onder een lichtmicroscoop.
Western blot-analyse van eiwitexprssie
Western blotting werd uitgevoerd om eiwitten te beoordelen die betrokken zijn bij PI3K/Akt-signalering en synaptische plasticiteit. Na 7 dagen interventie werden ratten geëuthanaseerd met een overdosis natriumpentobarbital, en werd peri-infarct motorisch cortexweefsel verzameld. Weefsels werden volledig gehomogeniseerd in een Radioimmunoprecipitation assay (RIPA) lysisbuffer op ijs en gecentrifugeerd bij 1610 × g bij 4 °C gedurende 30 minuten om het totale eiwit te extraheren. De eiwitconcentratie werd gekwantificeerd met behulp van een commerciële bicinchonininezuur (BCA) eiwitassaykit. Gelijke hoeveelheden eiwit (50 μg per baan) werden gescheiden door natriumdodecylsulfaat-polyacrylamide gelelektroforese (SDS-PAGE) en elektrisch overgebracht naar polyvinylidienfluoride (PVDF) membranen. De membranen werden 1 uur bij kamertemperatuur geblokkeerd met 5% bovine serumalbumine (BSA) oplossing om niet-specifieke binding te elimineren, waarna ze 's nachts geïncubeerd met primaire antilichamen bij 4 °C. Na drie spoelrondes met Tris-gebufferde zoutoplossing met Tween-20 (TBST) buffer, werden membranen 1 uur bij kamertemperatuur geïncubeerd met een secundair antilichaam (verdunningsverhouding 1:1000). Eiwitbanden werden gevisualiseerd met versterkte chemiluminescentie (ECL), en bandintensiteit werd gekwantificeerd met ImageJ. Relatieve eiwitexpressie werd berekend als de verhouding van het doeleiwit tot de interne controle. Primaire antilichamen waren als volgt: GAPDH (1:1000), PI3K (1:1000), phospho-PI3K (1:1000), Akt (1:1000), phospho-Akt (1:1000), GAP-43 (1:1000), SYN (1:1000), PSD-95 (1:1000) en GDNF (1:1000).
Synaptische ultrastructuurobservatie
Transmissie-elektronenmicroscopie (TEM) werd gebruikt om het aantal synapsen en de structurele integriteit te beoordelen. Na 7 dagen interventie werden ratten verdoofd en transcardiaal geperfuseerd met een gemengd fixatiemiddel dat 4% paraformaldehyde en 2,5% glutaraldehyde bevatte. Peri-infarct corticale weefselblokken (1 mm × 1 mm × 1 mm) werden verzameld en vastgezet in 2,5% glutaraldehyde gedurende 2 uur, gevolgd door postfixatie met 1% osmiumtetroxide gedurende 1 uur. De monsters werden vervolgens verwerkt met gegradueerde ethanoldehydratie, epoxyhars-inbedding, ultradunne sectie (50 nm dikte) en dubbele kleuring met uranylacetaat en loodcitraat. De synaptische ultrastructuur werd onderzocht met behulp van een transmissie-elektronenmicroscoop. Beelden werden gemaakt op 8.000× voor structurele beoordeling, en synapsen werden geteld op 5.000×. Drie willekeurige neuropilvelden per groep werden geanalyseerd om het gemiddelde synapsegetal te berekenen, en de gegevens werden vergeleken met eenrichtings-ANOVA.
Immunofluorescentie dubbel-labeling assay
Immunofluorescentie dubbellabeling kleuring werd uitgevoerd om de expressie en distributie van SYN en p-Akt in de peri-infarct cortex te beoordelen. Na 7 dagen interventie werden ratten geëuthanaseerd door een intraperitoneale overdosis natriumpentobarbital, en werd het peri-infarct corticaal weefsel snel gedissecteerd. Monsters werden 24 uur vastgezet in 4% paraformaldehyde, ingebed in optimale snijtemperatuurverbinding (OCT) en gesneden in secties van 10 μm dik. Secties werden 1 uur aan de lucht gedroogd op kamertemperatuur en drie keer gewassen met TBST-buffer om de resterende OCT-verbinding te verwijderen. Secties werden permeabiliseerd met 0,3% Triton X-100 gedurende 20 minuten op kamertemperatuur, afgespoeld met PBS en 1 uur op kamertemperatuur afgedicht met 5% BSA-oplossing. Onder donkere omstandigheden werden secties 's nachts geïncubeerd bij 4 °C met konijn anti-SYN (verdunning 1:200) en konijn anti-p-Akt (verdunning 1:200) primaire antilichamen. De volgende dag werden secties drie keer gewassen met PBS en in het donker geïncubeerd met een secundair antilichaam (verdunning 1:400) gedurende 50 minuten op kamertemperatuur. Na zes verdere washes met TBST-buffer werden celkernen 5 minuten bij kamertemperatuur tegengekleurd met 4′,6-diamidino-2-fenylindol (DAPI) werkoplossing. Beelden werden gemaakt onder identieke belichtings- en achtergrondomstandigheden met behulp van een fluorescentiemicroscoop. Representatieve beelden werden gebruikt om expressiepatronen van SYN en p-Akt in de motorische cortex over groepen heen te evalueren.
Statistische analyse
Statistische analyses werden uitgevoerd met behulp van GraphPad Prism 10.1.2 en IBM SPSS Statistics 25. De gegevens worden gepresenteerd als gemiddelde ± standaarddeviatie (SD). Gedragsgegevens die op meerdere tijdstippen zijn verzameld, waaronder de Zea Longa-score, de aangepaste Neurologische Severity Score en de aangepaste Ashworth Scale, werden geanalyseerd met behulp van een tweeweg herhaalde metingen (ANOVA) waarbij groep de factor tussen de proefpersonen en de tijd de factor binnen de proefpersonen is. Wanneer significante hoofdeffecten of interacties werden gedetecteerd, werd Sidaks meervoudige vergelijkingstest gebruikt voor post hoc analyse. Andere gegevens werden geanalyseerd met eenrichtings-ANOVA, gevolgd door Sidaks meervoudige vergelijkingstest voor post hoc vergelijkingen. Een tweezijdige p. < 0,05 werd als statistisch significant beschouwd. In staafdiagrammen wordt de statistische significantie aangegeven door asterisken zoals gedefinieerd in de bijbehorende figuurlegendes.