Onderzoeksartikel

Tijdsafhankelijke achteruitgang van de zaadmotiliteit en DNA-integriteit tijdens langdurige blootstelling aan sperma

DOI:

10.3791/71515

⸱

7 augustus 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1University Hospitals Fertility Center

In dit artikel

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De fragmentatie van sperma-DNA nam toe en de motiliteit nam significant af bij langdurige blootstelling aan sperma na ejaculatie. In 14 normale monsters nam de DNA-fragmentatie respectievelijk toe met 5,5%, 11,5% en 16,1% na 1 uur, 2 uur en 4 uur, terwijl de motiliteit afnam. Deze bevindingen helpen om vertragingen voor spermaverzameling en verwerking buiten de locatie te minimaliseren.

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fragmentatie van spermad-DNA is bekend als schadelijk voor de kwaliteit van sperma, wat een negatieve invloed kan hebben op de cycli van geassisteerde voortplantingstechnologie (ART). Het onderzoeken van sperma-DNA-fragmentatie (SDF) in zaadvocht in de loop van de tijd kan inzicht geven in de effecten van langdurige sperma-blootstelling op de integriteit van sperma-DNA. In deze voorlopige studie werd op verschillende tijdstippen een SDF-assay uitgevoerd om off-site spermaverzamelingscondities te simuleren met behulp van de spermchromatine-dispersietest op 14 normale spermamonsters. Statistische analyse van DNA-fragmentatiepercentages gedurende de duur van de assay toonde aan dat langdurige stagnatie van zaadvloeistof van ejaculatie tot spermaanalyse de DNA-fragmentatie significant verhoogde. De gemiddelde zaadmotiliteit was significant verminderd met 7,4% na 1 uur, 14,5% na 2 uur en 18,7% na 4 uur, en de gemiddelde SDF was significant toegenomen met 5,5% na 1 uur, 11,5% na 2 uur en 16,1% na 4 uur na spermaverzameling. Deze afname van de spermakwaliteit in de loop van de tijd kan de protocollen van vruchtbaarheidsklinieken beïnvloeden bij het overwegen van spermavoorbereiding op ART-cycli, vooral wanneer spermaverzameling buiten het andrologielab plaatsvindt. Laboratoria kunnen overwegen een acceptabele tijdsgrens vast te stellen voor het ontvangen van sperma uit een externe verzameling.

Inleiding

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De Wereldgezondheidsorganisatie (WHO) identificeert één op de zes mensen, oftewel 17,5% van de wereldbevolking, die op enig moment in hun leven onvruchtbaarheid ervaart1. Ongeveer 20% van de gevallen van onvruchtbaarheid heeft uitsluitend de diagnose mannelijke factor onvruchtbaarheid, met daarnaast 30–40% van de gevallen waarbij de mannelijke factor als secundaire diagnose2 is. Zelfs bij gezonde mannen kunnen de spermaparameters sterk variëren van individu tot individu, waaronder schommelingen in concentratie, motiliteit, morfologie en vitaliteit3. Daarom is het belangrijk om de specifieke factoren te begrijpen die de mannelijke vruchtbaarheid in gevaar brengen om een juiste behandeling in een klinische setting te kunnen bieden.

Een zich ontwikkelend onderzoeksgebied is het effect van de integriteit van sperma DNA op cycli van geassisteerde voortplantingstechnologie (ART) 4,5,6,7,8,9,10,11,12,13. Het WHO-laboratoriumhandboek voor het onderzoek en de verwerking van menselijk sperma, 5e editie, stelt dat sperma-DNA-fragmentatie (SDF) (via enkelvoudige of dubbelstrengige breuken) de embryoontwikkeling, innesteling en zwangerschapsuitkomsten kan beïnvloeden14. Muriel et al. voerden een analyse uit van SDF en ontdekten dat een verhoogde SDF leidde tot verminderde bevruchtingspercentages, embryokwaliteit en innestelingspercentages in ART-cycli10. Er is echter een beter begrip nodig van wat DNA-fragmentatie veroorzaakt.

Eerdere studies melden dat oxidatieve stress kan leiden tot verminderde zaadbeweging, verminderde enzymatische productie en functie, en, het belangrijkst, DNA-schade8. Dergelijke DNA-schade kan onder meer gendeleties, misvertalingen en SDF omvatten, maar is niet beperkt tot. SDF-assays worden momenteel gebruikt om de integriteit van sperma-DNA te beoordelen. Hoewel studies cryopreservatie, omgangsmedia en oxidatieve stress hebben gecorreleerd met SDF, is er weinig bekend over SDF over de periode van ejaculatie tot analyse 4,5. Dit is een cruciale periode in de levensduur van sperma, gezien de toegenomen prevalentie van thuis-spermaverzamelingen voor spermavoorbereiding in ART-cycli15. Huisincasso's zijn tijdens de COVID-19-pandemie steeds populairder geworden, omdat ze direct contact met de patiënt beperken en het comfort en gemak vergroten. Er zijn echter geen specifieke richtlijnen die een optimale tijd van ejaculatie tot analyse voor thuisinzaadering aangeven. Het primaire doel van onze studie was dus te begrijpen of SDF in de loop van de tijd verandert in stilstaande zaadvloeistof en of dergelijke veranderingen relevant kunnen zijn voor de behandeling van ART-monsters.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De studie werd uitgevoerd in overeenstemming met de Verklaring van Helsinki en goedgekeurd door de Institutionele Beoordelingscommissie van Universitaire Ziekenhuizen (STUDY20201371). Geïnformeerde toestemming werd verkregen van alle betrokken proefpersonen. Veertien spermamonsters werden geselecteerd van patiënten in één academisch vruchtbaarheidscentrum in Noordoost-Ohio. Alle monsters die in dit experiment zijn geanalyseerd, zijn ter plaatse in onze faciliteit verzameld. Spermachromatine-dispersietesten werden uitgevoerd op spermamonsters door een volledig getrainde androloog, volgens de instructies van de fabrikant, om interpersoonlijke variatie te minimaliseren. Met deze kit werden intacte, niet-gefixeerde, verse zaadcellen ondergedompeld in een inerte agarose-microgel op een voorbehandelde preparaat en vervolgens 5 minuten afgekoeld tot 4 °C om de microgel te laten stollen. Een eerste zuurbehandeling werd gebruikt om DNA in spermacellen met gefragmenteerd DNA te denatureren, en er werd een lysebufferoplossing toegepast om nucleaire eiwitten te verwijderen. Na het wassen met gedestilleerd water werden de glaasjes gedehydrateerd in gegradueerde ethanoloplossingen en aan de lucht gedroogd. Wanneer het werd gevisualiseerd onder lichtmicroscopie na kleuring met de door de kit geleverde kleuringsoplossingen, toonden sperma zonder fragmentatie nucleoïden met een grote dispersiehalo (groter dan 1/3 van de diameter van de kern), terwijl sperma met fragmentatie een kleine halo vertoonde (minder dan 1/3 van de diameter van de kern) of de afwezigheid van een halo. Het percentage sperma met DNA-fragmentatie werd berekend als het aantal gefragmenteerde en afgebroken sperma en uitgedrukt als percentage. In totaal werden 300 sperma geteld op een dia, die werden gecategoriseerd als hetzij met een grote of middelgrote dispersiehalo of als het ontbreken van een dispersiehalo. Deze telling werd tweemaal gerepliceerd om de technische variabiliteit te beoordelen, en de twee tellingen werden gemiddeld. De diagnostische gevoeligheid en specificiteit van de kit zijn 93%, en zowel positieve als negatieve controles werden in elk experiment opgenomen. Spermamonsters werden beoordeeld op 0, 1, 2 en 4 uur (0 uur werd gedefinieerd als 15 minuten na de vloeibaarheidsperiode bij 37 °C) en werden op kamertemperatuur (22–25 °C) gehouden.

Op elk monster werd een extra motiliteitsanalyse uitgevoerd bij 0, 1, 2 en 4 uur. De motiliteitsbeoordeling werd uitgevoerd door een ervaren androloog via een telprotocol met een wegwerptelkamer. Driehonderd beweeglijke zaadcellen werden per raster geteld, en de telling werd twee keer herhaald. Een gemiddelde concentratie beweeglijk sperma werd berekend op basis van de twee gerepliceerde tellingen.

Statistische analyses werden uitgevoerd met herhaalde metingen van ANOVA om elke tijdgroep te vergelijken. Wanneer een significant algemeen effect werd vastgesteld, werd de Tukey's honestly significant difference (HSD)-test toegepast voor post-hoc paargewijze vergelijkingen. Een p-waarde < 0,05 werd als statistisch significant beschouwd. Gedetailleerde informatie over materialen is samengevat in de Tabel van Materiaal.

Resultaten

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Om de impact van langdurige sperma-blootstelling op spermamotiliteit en DNA-fragmentatie te beoordelen, werden in totaal 14 normozoospermische patiëntenmonsters geanalyseerd op vier tijdstippen van de verzameling. De geanalyseerde monsters werden volgens de WHO5e editie14 als "normaal" beschouwd in de spermaanalyseparameters. Alle monsters zijn ter plaatse in ons Fertiliteitscentrum genomen om de nauwkeurigheid van de analyseparameters op elk tijdstip te optimaliseren. De gemiddelde leeftijd van de patiënten was 35,4 jaar (24–45 jaar). De eerste spermaparameters van de groep leverden een gemiddeld spermavolume van 3,7 mL, een gemiddelde concentratie van 42,2 miljoen/mL, gemiddelde motiliteit van 46,9%, gemiddelde normale morfologie van 4% en negatieve witte bloedcellen voor alle monsters volgens kwalitatief onderzoek (Tabel 1).

Er werd in de loop van de tijd een progressieve achteruitgang van de zaadcellen waargenomen. Vergeleken met de basislijn (0 uur) nam de gemiddelde zaadmotiliteit af met 7,4% (bereik 3–16%) na 1 uur, 14,5% (bereik 4–31%) na 2 uur en 18,7% (bereik 8–37%) na 4 uur. De zaadcellen namen geleidelijk af in de loop van de tijd, van 58,6% bij de startlijn tot 42,5% na 4 uur blootstelling (Figuur 1). Over het algemeen was de vermindering van motiliteit over tijdstippen statistisch significant (p = 0,0001585). Tegelijkertijd nam SDF significant toe bij langdurige incubatie in zaadplasma. De gemiddelde SDF steeg van 15,6% bij de beginlijn naar 21,1% na 1 uur, 27,1% na 2 uur en 31,7% na 4 uur. Ten opzichte van de basislijn steeg SDF met 5,5 procentpunt (bereik 4–8 procentpunten) om 1 uur, 11,5 procentpunt (bereik 8–16 procentpunt) om 2 uur en 16,1 procentpunt (bereik 13–22 procentpunt) om 4 uur. Statistisch significante toename van SDF werd op alle daaropvolgende tijdstippen ten opzichte van de basislijn waargenomen, waaronder 1 uur (p = 0,021129), 2 uur (p < 0,00001) en 4 uur (p = 0,000018) (Tabel 2).

BESCHIKBAARHEID VAN GEGEVENS
De patiëntniveau-motiliteits- en SDF-gegevens die voor de analyse zijn gebruikt, zijn weergegeven in Aanvullende Tabel S1.

figure-results-1
Figuur 1. Verandering in de zaadcelligheid na ejaculatie in de loop van de tijd. De zaadmotiliteit werd bij de start en na 1 uur, 2 uur en 4 uur sperma-blootstelling beoordeeld. De motiliteit nam geleidelijk af met toenemende blootstellingstijd. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

ParameterGemiddeldStandaarddeviatie
Leeftijd van de patiënt35,4 (bereik, 24–45 jaar)6.22
Spermavolume3,7 mL2.18
Concentratie42,2 miljoen/mL33.45
Motiliteit46.9%18.77
Witte bloedcellenNegatief (allen)—
Morfologie4.0%0.77

Tabel 1: Kenmerken van het sperma uit de studie als basis. Spermaparameters werden geregistreerd na vloeibaarheid en vóór tijdsafhankelijke beoordeling van sperma-DNA-fragmentatie en -motiliteit.

Tijd0 h1 uur2 uur4 uur
Gemiddelde vermindering van de zaadmotiliteit vanaf 0 uur*—-7.4%-14.5%-18.7%
Gemiddelde SDF15.6%21.1%27.1%31.7%
Standaarddeviatie5.28%5.27%5.31%4.80%
P-waarde versus 0 uur—p = 0,021129p < 0,00001p = 0,000018
*Herhaalde metingen van ANOVA met Tukey HSD post hoc vergelijkingen.

Tabel 2: Tijdsafhankelijke veranderingen in fragmentatie en motiliteit van spermad-DNA. Sperma-DNA-fragmentatie en -motiliteit werden bij de begintijd en na 1 uur, 2 uur en 4 uur sperma-blootstelling beoordeeld. Waarden worden gepresenteerd zoals gerapporteerd door de auteurs, met statistische vergelijkingen uitgevoerd met de basislijn.

Aanvullende Tabel S1. Patiëntniveau sperma-motiliteitsverschil en DNA-fragmentatie-indexwaarden. Waarden worden uitgedrukt als verhoudingen; Vermenigvuldig met 100 om het om te rekenen naar percentages. Klik hier om dit bestand te downloaden.

Discussie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

In de monsters die in dit experiment waren opgenomen, nam SDF toe in de loop van de tijd, terwijl de motiliteit in dezelfde periode afnam. Dit suggereert dat de integriteit van sperma-DNA kan afnemen wanneer zaadvloeistof langer stil blijft tussen ejaculatie en analyse of verwerking. Het verlengen van de tijd dat monsters stilstonden vóór analyse kan de blootstelling aan omstandigheden die geassocieerd worden met oxidatieve stress vergroten. Zoals eerder besproken, kan oxidatieve stress schadelijk zijn voor de kwaliteit van sperma-DNA, wat leidt tot hoge niveaus van DNA-fragmentatie 6,8,13. De resultaten van deze studie kunnen de zaadbehandeling in ART-cycli informeren.

Ten eerste kan het de moeite waard zijn voor klinieken om deze test toe te voegen aan de traditionele spermaanalyseparameters om de kwaliteit van het sperma-DNA te waarborgen voordat het sperma in ART-cycli wordt gebruikt. Het optimaliseren van de spermakwaliteit kan geassocieerd zijn met verbeterde uitkomsten, zoals een hoger aantal ingevroren embryo's, verhoogde euploidiepercentages en hogere percentages positieve zwangerschappen en levendgeborenen, zoals gerapporteerd in eerdere studies16.

Ten tweede geven deze resultaten inzicht in de effecten van spermaverzameling thuis op ART-resultaten. Tijdens de COVID-19-pandemie begonnen veel klinieken spermaafname thuis te gebruiken als een veiligere optie voor patiënten15,17. Toen praktijken deze overstap begonnen te maken, kregen patiënten niet alleen de kans om COVID-blootstelling te verminderen, maar ook om de ophalen in de privacy van hun eigen huis uit te voeren. Onze bevindingen suggereren echter dat deze praktijkveranderingen afwegingen kunnen met zich meebrengen die verband houden met spermakwaliteit en mogelijk ART-uitkomsten.

Eerdere studies met thuisverzamelkits hebben grote fluctuaties in spermaanalyseresultaten aangetoond voor mannen met verschillende mannelijke factordiagnoses, en mannen die doorgaans "normale" spermamonsters produceren18. Deze fluctuatie kan het gevolg zijn van het stagneren van sperma tijdens het transport van huis naar de kliniek, vooral bij het verzenden van spermamonsters 's nachts in sommige gevallen. Andere studies ondersteunen ons resultaat dat SDF snel toeneemt in de eerste 3–4 uur van incubatie in 5% CO2 bij 37 °C na spermavoorbereiding, hetzij in bevroren/ontdooid sperma19 of vers sperma20, wat suggereert dat sperma zo snel mogelijk gebruikt moet worden na spermavoorbereiding voor ART.

Kerdtawee et al. voerden een meta-analyse uit van het effect van de locatie van spermaverzameling op spermaparameters en vruchtbaarheidsuitkomsten. Hoewel ze geen significante verschillen lieten zien tussen thuis- en kliniekmonsters, merkten ze wel significante heterogeniteit op tussen de geanalyseerde studies, waarvan de meeste observationele studieswaren. Belangrijk is dat deze studies ook geen gecontroleerde tijdlijn hadden wanneer monsters die thuis werden verzameld naar de klinieken moesten worden teruggebracht en geanalyseerd. De in deze studie geanalyseerde gegevens maakten echter een gecontroleerde analyse van DNA-fragmentatie over verschillende tijdspunten mogelijk, wat leidde tot grotere precisie en consistentie in de experimentele resultaten.

Hoewel thuisverzameling voor sommige patiënten een optie kan zijn, kan het begrijpen van het percentage SDF helpen om richtlijnen te ontwikkelen om patiënten te identificeren voor wie thuisverzameling nadelig kan zijn voor de ART-uitkomsten. Een systematische review en meta-analyse door Christoforaki et al. toonde aan dat het oxidatieve reductiepotentieel in zaadvloeistof een negatieve invloed heeft op mannelijke onvruchtbaarheid21. Geanalyseerde parameters omvatten spermaconcentratie, aantal, motiliteit en morfologie, die allemaal ongunstig werden beïnvloed door een hoger oxidatieve reductiepotentieel, wat aantoont dat de kwaliteit van sperma mogelijk wordt beïnvloed door oxidatieve stress.

De sterke punten van deze studie zijn onder andere de nieuwheid, aangezien weinig studies tijdsafhankelijke SDF-veranderingen hebben beoordeeld tijdens langdurige blootstelling aan zaadvocht. Deze studie werd ook uitgevoerd in een gecontroleerde omgeving met een relatief homogene groep mannen zonder onderliggende zaadpathologie. Deze studie was echter beperkt tot een kleine steekproef van 14 patiënten. Verdere experimenten moeten worden uitgevoerd om het vertrouwen in de verzamelde datapunten en afsluitende opmerkingen te maximaliseren.

Verder onderzoek moet ook variabelen onderzoeken die de SDF-percentages kunnen beïnvloeden, specifiek om beter te begrijpen welke factoren bijdragen aan het behoud van spermakwaliteit. Enkele factoren om te overwegen zijn, maar zijn niet beperkt tot, het hanteren van het medium dat wordt gebruikt tijdens de spermavoorbereiding, de temperatuur van de transportomstandigheden van thuis naar de kliniek, cryopreservatiemethoden en onderliggende aandoeningen van mannelijke patiënten. Het verkrijgen van uitgebreide inzichten in de factoren die bijdragen aan SDF stelt klinieken uiteindelijk in staat hun richtlijnen te optimaliseren en hun beslissingen beter te informeren bij het opstellen van protocollen voor de behandeling van patiënten die ART ontvangen.

De waargenomen achteruitgang van de spermakwaliteit toonde een duidelijk tijdsafhankelijk patroon, gekenmerkt door afnemende motiliteit en toenemende DNA-fragmentatie bij langdurige blootstelling aan zaadvocht. Opvallend is dat de meest uitgesproken achteruitgang plaatsvond na 2–4 uur opslag, wanneer SDF meer dan 30% bedroeg, en de motiliteit met bijna een vijfde daalde ten opzichte van de basislijn. Deze bevindingen geven aan dat vertragingen tussen ejaculatie en spermaverwerking een negatieve invloed kunnen hebben op de functionele integriteit van sperma en ondersteunen het belang van het minimaliseren van transport- en verwerkingstijden voor monsters die buiten de locatie worden verzameld voor procedures met geassisteerde voortplantingstechnologie. Andrologielaboratoria kunnen overwegen een acceptabele tijdsgrens vast te stellen en te communiceren aan patiënten voor het ontvangen van sperma uit externe verzameling, vooral bij de voorbereiding op IUI of IVF. De tijd van ejaculatie tot spermaanalyse en/of voorbereiding moet worden meegenomen met betrekking tot SDF, vooral wanneer de verzameling buiten het andrologielab plaatsvindt voor ART.

Vanwege de beperkingen van de kleine steekproefgrootte van deze studie, zouden toekomstige studies het effect van langdurige sperma-blootstelling op SDF moeten evalueren in een breder scala aan spermakwaliteitcategorieën, waaronder steekproeven van mannen met abnormale sperma-parameters. Daarnaast zijn prospectieve gerandomiseerde gecontroleerde onderzoeken nodig om te bepalen of tijdsafhankelijke verhogingen van SDF zich vertalen in klinisch significante verschillen in ART-uitkomsten, waaronder bevruchting, embryoontwikkeling, innesteling, zwangerschap, miskraam en levendgeboortecijfers.

Openbaarmakingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs hoeven geen belangenconflicten aan te geven.

Dankbetuigingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Geen enkele

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
ANOVA CalculatorStatistics KingdomStatistische analyse
https://www.statskingdom.com/anova_manova.html
Halosperm G2HalotechHT-HSG2In vitro diagnostisch kit voor het meten van sperma DNA-fragmentatie
https://halotechdna.com/en/producto/halosperm-g2/
MicrocellVitrolife15423Wegwerpable telkamer voor sperma-analyse
https://www.vitrolife.com/products/sperm-processing/microcell--accessories/
Quality Control voor WBC/pH Test StripsMedical Electronic SystemsA-CA-01752-00Positieve en negatieve controle voor QwikCheck WBC test strips
https://mes-global.com/products/semen-analysis-validation-kits/qwikcheck-test-kits/qwikcheck-wbc-ph-test-strips-quality-control/
QwikCheck WBC/pH Test Reagent StripsMedical Electronic Systems0700Leukocyten (WBC's) in sperma bepalen
https://mes-global.com/products/semen-analysis-validation-kits/qwikcheck-test-kits/

Referenties

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. World Health Organization. Infertility prevalence estimates, 1990-2021. 1st ed. World Health Organization; Geneva; 2023. xiv, 79 p.
  2. Leslie SW, Soon-Sutton TL, Khan MA. Male infertility. In: StatPearls [Internet]. StatPearls Publishing; Treasure Island (FL); 2025 [cited 2025 Feb 7]. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK562258/
  3. Alvarez C et al. Biological variation of seminal parameters in healthy subjects. Hum Reprod. 2003;18(10):2082-8.
  4. Schulte RT, Ohl DA, Sigman M, Smith GD. Sperm DNA damage in male infertility: etiologies, assays, and outcomes. J Assist Reprod Genet. 2010;27(1):3-12.
  5. Le MT et al. Does conventional freezing affect sperm DNA fragmentation? Clin Exp Reprod Med. 2019;46(2):67-75.
  6. Zini A, Bielecki R, Phang D, Zenzes MT. Correlations between two markers of sperm DNA integrity, DNA denaturation and DNA fragmentation, in fertile and infertile men. Fertil Steril. 2001;75(4):674-7.
  7. Zini A et al. Potential adverse effect of sperm DNA damage on embryo quality after ICSI. Hum Reprod. 2005;20(12):3476-80.
  8. Aitken RJ, Krausz C. Oxidative stress, DNA damage and the Y chromosome. Reproduction. 2001;122(4):497-506.
  9. Benchaib M et al. Sperm DNA fragmentation decreases the pregnancy rate in an assisted reproductive technique. Hum Reprod. 2003;18(5):1023-8.
  10. Muriel L et al. Value of the sperm deoxyribonucleic acid fragmentation level, as measured by the sperm chromatin dispersion test, in the outcome of in vitro fertilization and intracytoplasmic sperm injection. Fertil Steril. 2006;85(2):371-83.
  11. Tandara M et al. Sperm DNA integrity testing: big halo is a good predictor of embryo quality and pregnancy after conventional IVF. Andrology. 2014;2(5):678-86.
  12. Agarwal A et al. Clinical utility of sperm DNA fragmentation testing: practice recommendations based on clinical scenarios. Transl Androl Urol. 2016;5(6):935-50.
  13. Panner Selvam MK, Agarwal A. A systematic review on sperm DNA fragmentation in male factor infertility: laboratory assessment. Arab J Urol. 2018;16(1):65-76.
  14. World Health Organization. WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen. 5th ed. World Health Organization; Geneva; 2010. 271 p.
  15. Sacha CR et al. The effect of semen collection location and time to processing on sperm parameters and early IVF/ICSI outcomes. J Assist Reprod Genet. 2021;38(6):1449-57.
  16. Kerdtawee P, Salang L, Sothornwit J. Effect of semen collection location on semen parameters and fertility outcomes and implications for practice in the COVID-19 era: a systematic review and meta-analysis of randomized and observational studies. Am J Obstet Gynecol. 2023;228(2):150-60.
  17. Stimpfel M, Jancar N, Vrtacnik-Bokal E. Collecting semen samples at home for IVF/ICSI does not negatively affect the outcome of the fresh cycle. Reprod Biomed Online. 2021;42(2):391-9.
  18. Aznavour Y et al. Semen parameter variability among users of at-home sperm testing kits. BMC Urol. 2022;22(1):184.
  19. Gosálvez J et al. Sperm deoxyribonucleic acid fragmentation dynamics in fertile donors. Fertil Steril. 2009;92(1):170-3.
  20. Nabi A, Khalili MA, Halvaei I, Roodbari F. Prolonged incubation of processed human spermatozoa will increase DNA fragmentation. Andrologia. 2014;46(4):374-9.
  21. Christoforaki V et al. The role of seminal oxidation-reduction potential in male infertility: systematic review and meta-analysis. Reprod Biomed Online. 2026;52(2):104858.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

GeneeskundeEditie 234Encyclopedie van Experimenten Biologische TechniekenEditie 234Editie 234DNA schadeDNA fragmentatiesperma analyse

Gerelateerde artikelen