Ethische verklaring
De studie is uitgevoerd in overeenstemming met de Verklaring van Helsinki en is goedgekeurd door de Medisch Ethische Commissie van het Ganzhou Hospital of Traditional Chinese Medicine (goedkeuringsnr. GZSZYYKYLL20240092, datum: 2024-12-20).
Alle materialen, reagentia, assaykits en apparatuur die in dit protocol worden gebruikt, staan vermeld in de Tabel met materialen.
Studieopzet
Deze retrospectieve case-controlstudie omvatte 62 patiënten met PCOS, gediagnosticeerd bij de polikliniek gynaecologie van het Ganzhou Hospital of Traditional Chinese Medicine tussen juni 2024 en augustus 2025, en 71 gezonde vrouwen in de reproductieve leeftijd die in dezelfde periode werden onderzocht bij het gezondheidsmanagementcentrum van het ziekenhuis. Controles werden geselecteerd om vergelijkbaarheid op groepsniveau wat betreft leeftijd te bereiken; BMI werd niet gebruikt als matchingvariabele en werd geëvalueerd als een baseline-kenmerk.
Studieonderwerpen
Inclusiecriteria: De inclusiecriteria voor de PCOS-groep waren als volgt: (1) leeftijd >18 jaar; (2) diagnose van PCOS volgens de gewijzigde Rotterdam-criteria zoals ondersteund door de 2023 International Evidence-based Guideline, waarbij ten minste twee van de volgende drie kenmerken vereist zijn na uitsluiting van verwante aandoeningen: oligo-ovulatie of anovulatie, gedefinieerd als menstruatiecycli langer dan 35 dagen of minder dan acht cycli per jaar; klinisch hyperandrogenisme en/of biochemisch hyperandrogenisme, waarbij biochemisch hyperandrogenisme wordt gedefinieerd als een serumtotaal T-concentratie boven de assay-specifieke bovenste referentiewaarde; en polycystische ovariale morfologie, gedefinieerd als ten minste 20 follikels in één eierstok of een ovariaal volume van ten minste 10 mL wanneer een volledige follikel telling niet haalbaar was14; (3) volledige elektronische medische dossiers; (4) geen hormoonsubstitutietherapie, hypoglycemische middelen of immunosuppressiva gedurende de voorafgaande 3 maanden; en (5) beschikbaarheid van een nuchter serummonster dat bij inschrijving is afgenomen en bewaard is in de institutionele biobank.
De inclusiecriteria voor de controlegroep waren als volgt: (1) deelname aan een gezondheidsonderzoek gedurende dezelfde periode; (2) regelmatige menstruatiecycli; (3) normale ovariummorfologie bij transvaginale echografie; (4) geen voorgeschiedenis van endocriene stoornissen, gynaecologische aandoeningen, infertiliteit of klinisch significante lever- of nierfunctiestoornissen; en (5) beschikbaarheid van een nuchter serummonster dat op de dag van het onderzoek is afgenomen en is bewaard in de institutionele biobank.
De exclusiecriteria waren als volgt: (1) endometriose, uterine myomen, eierstoktumoren, bekkenontsteking of andere gynaecologische aandoeningen; (2) schildklierdysfunctie, syndroom van Cushing, hyperprolactinemie, congenitale bijnierschorshyperplasie of een andere endocriene stoornis die de ovulatiestoornis of het hyperandrogenisme zou kunnen verklaren; (3) ernstige hart-, lever-, nier- of longdysfunctie, maligne tumoren, auto-immuunziekten of hematologische aandoeningen; (4) zwangerschap, bevalling of abortus in de voorafgaande 6 maanden; (5) gebruik van glucocorticoiden, orale anticonceptiva of andere medicatie die het glucose- of lipidemetabolisme beïnvloedt gedurende de voorafgaande 3 maanden; (6) psychiatrische stoornissen of cognitieve beperkingen; (7) ontbrekende essentiële klinische informatie; en (8) ernstige serumhemolyse, gedefinieerd als een hemoglobinconcentratie >2,0 g/L, lipemie, icterus, meer dan één vries-dooi-cyclus of onderbroken monsterbewaring. Schildklierdysfunctie, hyperprolactinemie en niet-klassieke congenitale bijnierschorshyperplasie werden respectievelijk uitgesloten op basis van metingen van het thyreostimulerend hormoon, serumprolactine en 17-hydroxyprogesteron; het follikelstimulerend hormoon werd waar nodig gecontroleerd, terwijl bij klinische indicatie werd onderzoek gedaan naar het syndroom van Cushing of een bijniertumor. Dezelfde pre-analytische procedure werd toegepast op alle klinische monsters, en geen enkel monster in de primaire analyse werd onderworpen aan meer dan één vries-dooi-cyclus.
Afname en bewaring van serummonsters
Nuchter veneus bloed (10 mL) werd in de ochtend afgenomen in buizen zonder antistollingsmiddel, gedurende 30 min bij kamertemperatuur gelaten om te stollen en gecentrifugeerd bij 1,505 x g gedurende 15 min bij 4 °C. Het serum werd verdeeld in aliquoten van 200 µL en bewaard bij −80 °C tot aan de analyse. Dezelfde pre-analytische procedure werd toegepast op alle klinische monsters, en geen enkel monster dat in de primaire analyse was opgenomen, werd blootgesteld aan meer dan één vries-dooi-cyclus.
Voorbereiding van monsters voor methodologische validatie
Tien gepoolde serummonsters van gezonde vrijwilligers werden gebruikt om de effecten te evalueren van centrifugatiesnelheid (1.505, 3.000 en 4.000 x g gedurende 15 min), vries-dooi frequentie (0, 1, 3 en 5 cycli), bewaartemperatuur (4 °C, −20 °C en −80 °C gedurende 7 dagen), bewaarduur (1, 3, 6 en 12 maanden bij −80 °C) en hemolyse (<0,1, 0,1–0,5 en 0,5–2,0 g/L hemoglobine).
Laboratoriumtesten
Alle laboratoriumanalyses werden uitgevoerd door dezelfde getrainde technicus onder gestandaardiseerde omgevingsomstandigheden en volgens vooraf vastgestelde werkprocedures. Serum miRNAs werden gekwantificeerd via qRT-PCR; ADPN, LEP en RBP4 werden gemeten via sandwich ELISA; T en IL-6 werden gemeten via chemiluminescentie-gebaseerde immunoassays; en glucose-metabole variabelen werden verkregen met behulp van routinematige geautomatiseerde laboratoriummethoden.
Kwantificering van serum miRNA via qRT-PCR
Totaal RNA werd geëxtraheerd uit 200 µL serum met behulp van TRIzol-reagens. Spectrofotometrische RNA-concentraties en A260/A280 zuiverheidsgegevens waren niet beschikbaar voor de gearchiveerde serum-RNA-preparaten. De acceptabiliteit van de qRT-PCR-assay werd daarom beoordeeld op basis van de aanwezigheid van een enkele specifieke smeltcurvepiek en concordantie tussen drie technische replica's. Na chloroform-fase-scheiding, isopropanolprecipitatie en twee wasbeurten met 75% ethanol, werd het RNA-pellet opgelost in enzymvrij water. Het reactiesysteem van 20 µL bevatte 4 µL 5x buffer, 1 µL reverse transcriptase, 1 µL 10 µM stem-loop primer en 5 µL RNA-template. De reactiecondities waren 16 °C gedurende 30 min, 42 °C gedurende 30 min en 85 °C gedurende 5 s. De reverse-getranscribeerde producten werden bewaard bij −20 °C. Kwantitatieve PCR werd uitgevoerd met de TaKaRa SYBR Premix Ex Taq II kit. Elke reactie van 20 µL bevatte 10 µL 2× SYBR-mengsel, telkens 0,8 µL forward- en reverse-primers (10 µM) en 2 µL cDNA-template. Amplificatie werd uitgevoerd op een Applied Biosystems 7500 real-time PCR-systeem onder de volgende condities: pre-denaturatie bij 95 °C gedurende 30 s; 40 cycli van 95 °C gedurende 5 s en 60 °C gedurende 30 s; vervolgens werd een smeltcurve-analyse uitgevoerd om de amplificatiespecificiteit te bevestigen. U6 snRNA diende als intern referentiegen, en de relatieve expressieniveaus van miR-146a, miR-642a en miR-2861 werden berekend met de 2-ΔΔCt methode. Elk monster werd in drievoud getest. De sequenties van alle in deze studie gebruikte primers staan vermeld in Tabel 1.
Detectie van serumeiwitmarkers
Serumconcentraties van ADPN, LEP en RBP4 werden gemeten via een double-antibody sandwich ELISA met gebruik van respectievelijk de Human Total ADPN/Acrp30 Quantikine ELISA Kit (analytische sensitiviteit, 0.891 ng/mL; meetbereik, 3.9–250 ng/mL), de Human Leptin Quantikine ELISA Kit (analytische sensitiviteit, 7.8 pg/mL; meetbereik, 15.6–1,000 pg/mL) en de Human RBP4 Quantikine ELISA Kit (analytische sensitiviteit, 0.628 ng/mL; meetbereik, 1.56–100 ng/mL). Elke assay was specifiek voor de overeenkomstige humane analyt en serummonsters werden verdund volgens de instructies van de fabrikant. De absorbentie werd gemeten bij 450 nm en concentraties werden berekend met behulp van vierparameter logistieke standaardcurven. De intra-assay of inter-assay CV's waren 2.5% of 3.2% voor ADPN, 2.7% of 3.4% voor LEP en 2.6% of 3.3% voor RBP4.
T-meting
Serum T werd gemeten via een elektrochemiluminescentie-immunoassay met gebruik van een Roche Cobas e601 automatische immunoassay-analyzer.
Glucosemetabole en inflammatoire metingen
Nuchtere plasmaglucose, nuchtere insuline en HbA1c-waarden werden verkregen uit klinische laboratoriumgegevens van dezelfde dag, in plaats van uit de gearchiveerde serumaliquots die werden gebruikt voor de miRNA- en metabole proteïne-assays. Nuchtere plasmaglucose werd gemeten met de glucose-oxidase-methode, nuchtere insuline via immunoturbidimetrie en HbA1c via high-performance liquid chromatography. HOMA-IR werd berekend als [nuchtere plasmaglucose (mmol/L) × nuchtere insuline (mIU/L)]/22.5. Serum IL-6 werd gemeten via chemiluminescentie-immunoassay.
Methodologische validatie
De vergelijkingen tussen alternatieve methoden werden uitgevoerd om vast te stellen of de primaire metingen robuust waren voor het assayplatform en werden niet gebruikt om de belangrijkste resultaten tussen de groepen te genereren. De expressieniveaus van de drie miRNA's en vijf biochemische markers werden gemeten onder de verschillende verwerkingscondities die hierboven zijn beschreven, en de variatiecoëfficiënt voor elke indicator werd berekend als CV = (standaarddeviatie/gemiddelde) x 100%. Een CV <15% werd als acceptabel beschouwd voor het evalueren van de stabiliteit van de assayresultaten onder verschillende monstersverwerkings- en opslagcondities. De precisie binnen één dag werd beoordeeld door hetzelfde gepoolde serummonster 10 keer op één dag herhaaldelijk te meten, terwijl de precisie tussen verschillende dagen werd bepaald op basis van metingen die één keer per dag gedurende vijf opeenvolgende dagen werden uitgevoerd. Voor elke indicator werden het gemiddelde, de standaarddeviatie en de overeenkomstige CV berekend. Voor de toetsing van de analytische overeenkomst werden vijf biochemische analyten — ADPN, LEP, RBP4, IL-6 en T — in de validatiemonsters gemeten met behulp van de primaire assay en een op chemiluminescentie gebaseerd immunoassayplatform van Roche. Bland–Altman-analyse werd gebruikt om de 95% overeenstemmingslimieten te berekenen. De primaire qRT-PCR-assay werd gebruikt voor alle klinische miRNA-metingen, terwijl de miScript SYBR Green PCR Kit alleen als orthogonale methode werd gebruikt in het experiment voor analytische overeenkomst; Pearson-correlatiecoëfficiënten werden berekend tussen de twee qRT-PCR-systemen.
Statistische analyse
De data-analyse werd uitgevoerd met behulp van statistische software. Alle continue variabelen werden eerst op normaliteit getest met de Shapiro-Wilk-test. Data met een normale verdeling worden weergegeven als gemiddelde ± standaarddeviatie. Vergelijkingen tussen twee groepen werden gemaakt met de t-test voor onafhankelijke steekproeven, terwijl vergelijkingen tussen meerdere groepen werden uitgevoerd met een eenweg-variantieanalyse, gevolgd door de LSD-t-test voor paarsgewijze vergelijkingen. Data die niet aan een normale verdeling voldeden, worden gepresenteerd als mediaan (interkwartielafstand) [M (P25, P75)]. Vergelijkingen tussen twee groepen werden vervolgens uitgevoerd met de Mann-Whitney U-test, en vergelijkingen tussen meerdere groepen met de Kruskal-Wallis H-test. Categorische gegevens werden gepresenteerd als frequenties en percentages. We gebruikten de χ2-test of de exacte test van Fisher om de groepen te vergelijken. Correlaties tussen variabelen werden beoordeeld met Pearson-correlatieanalyse of Spearman-rangcorrelatieanalyse, afhankelijk van de dataverdeling. Als explorerende analyse werden Pearson-correlaties tussen elk miRNA en de zes metabole markers herhaald binnen niet-obese (BMI <28 kg/m2) en obese (BMI ≥28 kg/m2) PCOS-subgroepen. Correlatiecoëfficiënten werden vergeleken met de r-naar-z-transformatie van Fisher, en de resulterende p-waarden tussen de subgroepen werden gecorrigeerd met de Benjamini–Hochberg-procedure voor de false-discovery-rate. We evalueerden de diagnostische prestaties met behulp van receiver operating characteristic (ROC)-curves en de area under the curve (AUC). Daarnaast analyseerden we gecombineerde detectie met behulp van een logistisch regressiemodel. Alle testen waren tweezijdig, en p < 0,05 werd beschouwd als statistisch significant.