Ethische verklaring:
Alle deelnemers werden volledig geïnformeerd over het doel van ons experiment en hebben het formulier voor geïnformeerde toestemming ondertekend. Dit onderzoek is goedgekeurd door de ethische commissie van Longyan First Affiliated Hospital of Fujian Medical University (Goedkeuringsnummer LYREC2023-k07-01). Alle procedures zijn uitgevoerd in overeenstemming met de relevante richtlijnen, regelgeving en de Verklaring van Helsinki.
Werving van deelnemers, geschiktheidscriteria en monstername
In totaal werden tussen januari 2023 en mei 2025 211 personen met de diagnose AR en 180 gezonde deelnemers (niet-AR) geworven bij de polikliniek voor KNO van het Longyan First Affiliated Hospital van de Fujian Medical University. De diagnostische criteria voor AR waren gebaseerd op de richtlijnen van de Chinese Society of Allergy voor de diagnose en behandeling van allergische rhinitis17. Van patiënten werd vereist dat zij minstens twee klinische symptomen van AR vertoonden, waaronder neusjeuk, niezen, neusverstopping of een loopneus. Daarnaast moest bij onderzoek van het neusslijmvlies bleekheid en oedeem zichtbaar zijn, en moest ofwel het resultaat van de Skin Prick Test (SPT) of het resultaat van de serum IgE-test positief zijn. De SPT werd uitgevoerd door gespecialiseerd personeel in de poliklinische kamer voor allergenentesten om de nauwkeurigheid en consistente resultaten te garanderen. Alle patiënten met AR ondergingen met hulp van medisch personeel assessments met de Rhino conjunctivitis Quality of Life Questionnaire (RQLQ) en de Total Nasal Symptom Score (TNSS), waarbij de scores werden genoteerd voor verdere analyse.
Gezonde vrijwilligers die een routinematig lichamelijk onderzoek ondergingen in het ziekenhuis werden geworven voor de non-AR-groep. In aanmerking komende deelnemers hadden geen persoonlijke of familiale geschiedenis van AR, geen geschiedenis van astma of andere allergische aandoeningen, geen chronische sinusitis of andere ontstekingstypen van de neusholte, en geen luchtweginfectie in de voorafgaande maand. Daarnaast werden personen met een geschiedenis van ernstige hartaandoeningen, lever-, long- of nierziekten, of enige maligne tumoren, uitgesloten van de studie.
De perifere veneuze bloedmonsters van de twee groepen vrijwilligers werden verzameld. Een deel van het anticoagulerende veneuze bloed werd gebruikt voor DNA-extractie en voor het extraheren van plasma-RNA. Een ander deel van het veneuze bloed werd gescheiden om serum te verkrijgen, dat werd gebruikt voor de detectie van serum-gerelateerde factoren (immunoglobuline E (IgE), interleukine-4 (IL-4), IL-6 en IL-10).
DNA-extractie:
Voor DNA-extractie werden 200 µL van de perifere veneuze bloedmonsters geëxtraheerd met behulp van de whole blood genomic DNA extraction kit (zie Tabel met materialen). De bloedmonsters werden verzameld in lithiumheparine-anticoagulatietubes, vervolgens verdeeld in aliquoten en voor bewaring ingevroren bij -20 °C. De specifieke uitvoeringsprocedures moeten strikt gebeuren volgens de instructies van de kit. Tot slot werd 10 µL elutiebuffer gebruikt om het DNA te elueren. De zuiverheid van het geëxtraheerde DNA-monster werd bepaald met een nucleïnezuur-/proteïne-analyser (spectrofotometer) (de OD₂₆₀/OD₂₈₀-ratio lag tussen 1,8 en 2,0). Na de detectie werden de DNA-monsters bewaard bij -20 °C voor toekomstig gebruik in de daaropvolgende genotyperingsexperimenten.
Genotypebepaling
Voor het bepalen van de distributie van miR-146a rs2910164-genotypes werd de TaqMan SNP genotyping kit gebruikt. De informatie over de kit is opgenomen in de lijst met verbruiksartikelen. Het totale reactievolume van de PCR was 10 µL, bestaande uit 5 µL Master Mix, 0,5 µL typeringsprobe-primer-mengsel, 10 ng template-DNA en RNase-vrij water. De DNA-amplificatie werd uitgevoerd met het Roche LightCycler 480 II real-time fluorescentie kwantitatieve PCR-instrument. Reactiecondities: pre-denaturatie bij 95 °C gedurende 10 min; 40 cycli (95 °C gedurende 15 seconden, 60 °C gedurende 1 min), waarbij de FAM/VIC-fluorescentie werd uitgelezen bij 60 °C. Na voltooiing van de amplificatie werden de verzamelde FAM/VIC-dubbele fluorescentiesignalen geanalyseerd met LightCycler 480-software en werden de genotypedata statistisch verwerkt. Een enkel FAM-signaal representeert een homozygoot genotype, een enkel VIC-signaal representeert een ander homozygoot genotype, en de aanwezigheid van beide signalen duidt op een heterozygoot genotype. Monsters met abnormale signalen of inconsistente resultaten bij herhaling worden opnieuw getest. Elk experiment werd uitgevoerd met zowel een template-vrije controle als een positieve controle voor kwaliteitscontrole. Alle monsters werden in drie technische replica's verwerkt.
RT-qPCR
De totale extractie van plasma-miRNA werd uitgevoerd uit 100 µL plasma met behulp van een specifieke miRNA-extractiekit. De informatie over de kit is opgenomen in de lijst met verbruiksartikelen. De RNA-concentratie werd bepaald met een spectrofotometer. De OD₂₆₀/OD₂₈₀ de ratio van de geëxtraheerde gekwalificeerde miRNA-monsters varieerde van 1,8 tot 2,0. Voor de reverse transcriptie om cDNA te synthetiseren werd 200 ng RNA gebruikt, waarbij de reactieprocedure werd uitgevoerd volgens de standaardinstructies van de kit. De reverse transcriptie werd uitgevoerd in een totaal volume van 20 µL, inclusief incubatie bij 42 °C gedurende 60 min en inactivatie bij 85 °C gedurende 5 min. De qPCR-reactie werd voorbereid volgens het vastgestelde protocol, met een totaal volume van 20 µLHet reactiemengsel werd als volgt samengesteld: 10 µL van qPCR-premix, 0.4 µL van de forwardprimer, 0.4 µL van de reverse primer, 1 µL van cDNA-template, en 8.2 µL van RNase-vrij water. Er werd gebruikgemaakt van specifieke primers voor miR-146a en het interne referentiegen U6. De amplificatie werd uitgevoerd met het Roche LightCycler 480 II real-time fluorescentie kwantitatieve PCR-instrument. De thermische cyclusparameters voor de qPCR waren: 95 °C voor pre-denaturatie gedurende 30 s, gevolgd door 40 cycli van denaturatie bij 95 °C gedurende 5 s en annealing en extensie bij 60 °C gedurende 30 s. Alle monsters werden in drie technische replica's uitgevoerd. De experimentele gegevens werden geanalyseerd met de LightCycler 480 Software. Gebruik U6 als interne referentie om de variatie tussen de monsters te corrigeren en bereken vervolgens ΔCt (de Ct-waarde van miR-146a - de Ct-waarde van U6), bereken vervolgens ΔΔCt (de ΔCt-waarde van de experimentele groep - de ΔCt van de controlegroep), en tot slot werd het relatieve expressieniveau van miR-146a verkregen via 2⁻ΔΔCt.
ELISA
De serumspiegels van IgE, IL-4, IL-6 en IL-10 werden bepaald met ELISA-kits. De experimentele procedures zijn gebaseerd op de handleiding. De specifieke stappen waren als volgt: Ten eerste werd de geconcentreerde wasoplossing verdund en werden de standaarden gradueel verdund om werkoplossingen voor de standaardcurve voor te bereiden. Ten tweede werden 50 µL verdunningsvloeistof, standaardoplossing en het te testen monster aan de wells toegevoegd en 60 min incubated bij 37 °C. Na incubatie werden de wells drie keer gewassen met wasbuffer. Vervolgens werd 50 µL werkoplossing van het enzym-geconjugeerde antilichaam toegevoegd en werden de platen 30 min incubated bij 37 °C. Na voltooiing van de incubatie werd de vloeistof afgevoerd en werden de wells opnieuw gewassen, gevolgd door de toevoeging van chromogene oplossing voor een incubatie van 15 min bij 37 °C in het donker. Na toevoeging van de stopoplossing werd de absorbentie gemeten bij 450 nm met een microplatereader. Monsterconcentraties werden berekend aan de hand van de standaardcurve. Elk monster werd drie keer getest. Gegevens met een variatiecoëfficiënt van minder dan 10% werden als geldig beschouwd. Tijdens het experiment werden blanco wells en controle-wells ingericht voor kwaliteitscontrole. Het detectiebereik en de gevoeligheid van de kit voldeden aan de voorschriften in de handleiding van de fabrikant.
Datastatistiek
De experimentele gegevens werden geanalyseerd met de softwarepakketten SPSS en GraphPad Prism 9. De gegevens werden gepresenteerd als gemiddelde ± standaarddeviatie (gemiddelde ± SD). De Shapiro-Wilk-toets werd gebruikt om de normaliteit van continue variabelen te beoordelen, en de toets van Levene werd toegepast om de homogeniteit van de variantie te evalueren. De vergelijking van continue variabelen tussen de twee groepen werd geanalyseerd met de t-toets voor onafhankelijke steekproeven. Voor vergelijkingen tussen meerdere groepen werd een eenweg-ANOVA uitgevoerd, gevolgd door de post-hoc toets van Tukey, en een tweeweg-ANOVA werd toegepast om de hoofdeffecten van twee onafhankelijke factoren en hun interactie-effect te evalueren. Outliers werden geïdentificeerd en uitgesloten op basis van de 3-standaarddeviatie-regel. In deze studie werden geen ontbrekende gegevens aangetroffen. De receiver operating characteristic (ROC)-curve werd gebruikt om de diagnostische effectiviteit van miR-146a voor AR te analyseren. Relevante ROC-parameters en 95% betrouwbaarheidsintervallen werden berekend met behulp van ingebouwde statistische algoritmen. Pearson-correlatieanalyse werd gebruikt om de lineaire correlatie tussen de expressie van miR-146a en de spiegels van serum-gerelateerde factoren te meten. Univariabele en multivariabele logistische regressieanalyses werden uitgevoerd om risicofactoren voor AR te screenen. Variabelen met p < 0.05 in de univariabele analyse werden opgenomen in het multivariabele logistische regressiemodel. p < 0.05 werd beschouwd als statistisch significant.