$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
De studie werd uitgevoerd in overeenstemming met de Verklaring van Helsinki en het protocol werd in november 2024 goedgekeurd door de Ethische Commissie van het Derde Ziekenhuis van de Hebei Medische Universiteit (W2025-065-1). Geïnformeerde toestemming werd verkregen van alle betrokken proefpersonen.
Gegevensbron en preprocessing
RNA-seq-gegevens die met HF geassocieerd zijn, werden verkregen, waaronder twee microarray-datasets uit de Gene Expression Omnibus (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/). Twee perifere bloedmicroarray-datasets werden geselecteerd: GSE59867 (34 HF-monsters en 30 controles) werd gebruikt als trainingsdataset; GSE57338 (177 HF-monsters en 136 controles) werd gebruikt als validatiedataset. Klinische informatie beschikbaar voor GSE57338, waaronder leeftijd, geslacht en ziektestatus, is opgehaald uit GEO en is samengevat in Aanvullende Tabel 1. Daarnaast werden in totaal 3.893 SUMOylatie-gerelateerde genen (SRG's) verkregen uit de dbPTM-database (https://awi.cuhk.edu.cn/dbPTM/index.php) (Aanvullende Tabel 2), terwijl 2.030 mitochondriën-gerelateerde genen (MRG's) werden verzameld op basis van een eerdere studie24 (Aanvullende Tabel 3). Vervolgens werd het R-pakket GEOquery (v 2.72.0)25 gebruikt om datasets uit de GEO-database te downloaden, de expressiematrix te extraheren en de voorbeeldfenotype-informatie te verkrijgen. Annotatie werd uitgevoerd door het annotatiebestand in kaart te brengen en de gen-ID's te matchen. Ongeldige gen-ID's werden verwijderd en de meest uitgedrukte probes werden behouden.
Sleutelgenselectie via machine learning
Er werd een meerstapsbenadering gebruikt om de genen te selecteren die gerelateerd zijn aan de HF, SUMOylatie en mitochondriën. Ten eerste werden de gemeenschappelijke genen tussen de trainingsdataset, de SRG's en de MRG's geïdentificeerd met behulp van intersectieanalyse. De potentiële functie van gemeenschappelijke genen werd vastgesteld door Gene Ontology (GO) en Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG) verrijkingsanalyse met behulp van het R-pakket ClusterProfiler (v 4.12.6)26. Vervolgens werden drie machine learning-benaderingen gebruikt, namelijk LASSO-regressie, XGBoost en random forest (RF), om de genen verder te filteren. Bij LASSO-regressie werd de optimale regularisatieparameter λ via kruisvalidatie geselecteerd om de genetische kenmerken met de grootste voorspellende waarde te identificeren. De niet-nul coëfficiëntengenen werden geselecteerd voor latere analyse. Vervolgens werden XGBoost- en RF-algoritmen gebruikt om de feature-importance scores te berekenen en de top 20 genen te screenen.
Constructie en evaluatie van diagnostische modellen
Er werd een diagnostisch model opgesteld met behulp van logistische regressie op basis van de GSE59867 dataset. Het model werd vervolgens toegepast om de ziektestatus te voorspellen en kansscores te berekenen. Om het model te valideren, werden dezelfde sleutelgenen uit de GSE57338 dataset gehaald, genormaliseerd om overeen te komen met de trainingsdataset en gebruikt voor externe voorspellingen. De modelprestaties werden beoordeeld met behulp van Receiver Operating Characteristic (ROC)-curves, Confusion Matrix, Calibration Curve en Decision Curve Analysis (DCA).
Genensetverrijkingsanalyse (GSEA) en subcellulaire lokalisatie
Spearman-correlatieanalyse werd gebruikt om gecorreleerde genen voor elk sleutelgen te identificeren. GSEA-analyse werd uitgevoerd met het R-pakket ClusterProfiler (v 4.12.6) op de verwante genen van de sleutelgenen. Ondertussen werd hun subcellulaire lokalisatie van de sleutelgenen binnen de cel bepaald met behulp van de GeneCards-database (https://www.genecards.org/).
Gen-ziekte associatie en medicijnvoorspelling
Om de klinische relevantie van de geïdentificeerde sleutelgenen te evalueren, werden systematische ziekte-associatie- en geneesmiddelinteractie-analyses uitgevoerd. Ziekte-genrelaties werden onderzocht met behulp van de Comparative Toxicogenomics Database (CTD; https://ctdbase.org/), waarbij de resultaten werden gerangschikt op zowel inferentiescores als referentietellingen (top 10 gerapporteerde associaties). Gen-geneesmiddelinteractiegegevens voor sleutelgenen werden verkregen uit de Drug-Gene Interactiedatabase (DGIdb), en geneesmiddelen werden uitgesloten op basis van een interactiescore < 0,5. Vervolgens downloadden we de 3D-structuren van eiwitten die overeenkomen met sleutelgenen uit de PDB-database (https://www.rcsb.org/) en de moleculaire structuren van potentiële geneesmiddelen uit PubChem (https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/). Vervolgens werd moleculaire dockinganalyse uitgevoerd met behulp van CB-Dock227 (https://cadd.labshare.cn/cb-dock2/php/index.php) om de bindingsscores tussen de potentiële geneesmiddelen en eiwitten te berekenen. Een lagere bindingsvrije energie duidt op een stabielere interactie, wat suggereert dat de verbinding mogelijk een groter doelpotentiaal heeft.
Immuuninfiltratieanalyse
Immuuncelinfiltratie werd beoordeeld met drie complementaire methoden: Microenvironment Cell Populations-counter (MCP-counter)28, celtype-identificatie door het schatten van relatieve subsets van RNA-transcripten (CIBERSORT)29 en single-sample enrichment analysis (ssGSEA)30. MCP-teller en CIBERSORT-analyse werden uitgevoerd met behulp van het R-pakket IOBR (v 0.99.0)31. MCP-teller werd gebruikt om de abundantie van immuun- en stromale cellen te schatten, terwijl CIBERSORT werd gebruikt om de relatieve verhoudingen van 22 immuunceltypen te kwantificeren. ssGSEA werd uitgevoerd met het GSVA-pakket (v1.52.3)32 om de verrijking op monsterniveau van immuuncelsubtypes te evalueren.
Constructie van het concurrerende endogene RNA (ceRNA) regulerende netwerk
Om de potentiële miRNA–lncRNA-regulerende rollen te onderzoeken die geassocieerd zijn met eerder geïdentificeerde sleutelgenen, werd een ceRNA-regulatienetwerk opgebouwd. Het R-pakket multiMiR (v 1.26.0)33 werd gebruikt om potentiële microRNA (miRNA)–mRNA-interacties voor belangrijke genen te voorspellen, waarbij gegevens van PITA (https://omictools.com/pita-tool/) en de miRDB-database (https://mirdb.org/) werden geïntegreerd. miRNA–mRNA-paren met hoge betrouwbaarheid en consistentie werden geselecteerd. Vervolgens werden lncRNA–miRNA-interacties opgehaald uit de StarBase-database (https://rnasysu.com/encori/) en gefilterd op interacties ondersteund door ≥ 10 CLIP-seq-experimenten en gecategoriseerd als lincRNA's. Een ceRNA-netwerk werd opgebouwd door interacties tussen lncRNA-miRNA-mRNA te integreren.
qPCR-validatie
Om de expressie van belangrijke genen te valideren, werden bloedmonsters van patiënten met HF en gezonde controles afgenomen uit de klinische cohort (n = 6 per groep) in het Derde Ziekenhuis van de Hebei Medical University (W2025-065-1) onder goedgekeurde protocollen en geïnformeerde toestemming. Totaal RNA werd geïsoleerd met behulp van het TRIzol-reagens in combinatie met chloroform en isopropanol. Na extractie werd RNA opgelost in met DEPC behandeld water, en werden de concentratie en zuiverheid ervan beoordeeld met een NanoDrop-spectrofotometer. Voor transcriptieanalyse werd RNA omgekeerd getranscribeerd in cDNA met behulp van de Fast First-Strand cDNA Synthesis Mix for RT (met dsDNase). Vervolgens werd kwantitatieve PCR uitgevoerd met behulp van de Fast Taq qPCR SYBR Green Mix. De specifieke primerreeksen worden beschreven in de Materiaaltabel. Relatieve genexpressieniveaus werden berekend met de 2-ΔΔCT-methode , met passende normalisatie.
Statistische analyse
Alle statistische analyses werden uitgevoerd met R-software en GraphPad Prism. Statistische vergelijkingen tussen twee onafhankelijke groepen werden uitgevoerd met behulp van ofwel de Student's t-test of de Mann-Whitney U-test, afhankelijk van de gegevensverdeling. Een p-waarde van minder dan 0,05 werd beschouwd als statistische significantie.