Alle dierproeven die in deze studie zijn uitgevoerd, werden goedgekeurd door het Science and Technology Ethics Committee van de Anhui University of Science and Technology (goedkeuringsnummer GZ2025-048) en voldeden strikt aan de nationale normen voor het welzijn van laboratoriumdieren (GB/T 35892-2018) van China. Figuur 1 toont het studieontwerp.
Bereiding van oplossingen
Bereiding van de silica-suspensie:
Kristallijn silica (SiO₂, 80%, deeltjesgrootte 1–5 µm) werd gesteriliseerd door middel van autoclaveren. Het steriele silicapoeder werd vervolgens gedispergeerd in steriele zoutoplossing om een eindconcentratie van 10 mg/mL te verkrijgen, waarna de suspensie vlak voor toediening grondig werd gehomogeniseerd met een ultrasone homogenisator om een uniforme deeltjessuspensie te waarborgen.
Bereiding van DMSO-oplossing:
Onder aseptische omstandigheden werd DMSO (≥99,9%) verdund met steriele fysiologische zoutoplossing om een DMSO-oplossing van ongeveer 10% (v/v) te bereiden, die werd gehomogeniseerd door middel van ultrasone agitatie. Elke muis kreeg een injectie met de DMSO-oplossing in een dosis van 0,9 g/kg, zoals eerder beschreven14,15.
Experimentele dieren
Voor deze studie werden tweeendertig gezonde mannelijke C57BL/6J-muizen in de leeftijd van 8–12 weken gebruikt, die gedurende 1 week werden geacclimatiseerd voorafgaand aan de experimenten. De muizen werden met behulp van een door de computer gegenereerde randomisatiemethode willekeurig toegewezen aan vier experimentele groepen (n = 8 per groep): de controlegroep, de DMSO-groep, de silica-groep en de silica+DMSO-groep. De steekproefomvang werd bepaald op basis van eerdere studies met hetzelfde muismodel voor silicose en onze eigen voorlopige experimentele ervaring, waaruit bleek dat 8 dieren per groep voldoende waren om histopathologische en moleculaire verschillen tussen de groepen te detecteren. De dieren werden gehuisvest onder standaard laboratoriumcondities met een gecontroleerde temperatuur, een licht/donkercyclus van 12 u en vrije toegang tot voedsel en water. Voorafgaand aan de studie werden humane eindpunten vastgesteld; geen enkel dier voldeed aan de vooraf gedefinieerde criteria voor vroegtijdige euthanasie.
Vestiging van een silicosemodel en medicamenteuze interventie
Silicose werd geïnduceerd door een enkele intranasale instillatie van 60 µL steriele kristallijne silica-suspensie (10 mg/mL). Na het induceren van anesthesie werden de muizen in rugligging geplaatst. Zodra een diepe en trage ademhaling werd waargenomen, werd 60 µL van de silica-suspensie voorzichtig druppelgewijs in de neusgaten geïnstilleerd, waardoor de suspensie spontaan in de longen werd geïnhaleerd16. Muizen in de DMSO-administratiegroep ontvingen tweemaal per week intraperitoneale injecties van een DMSO-oplossing in een vaste dosis, met een interval van 3–4 dagen tussen de injecties, gedurende één opeenvolgende maand. Muizen in de overige groepen werden op identieke wijze behandeld met een gelijk volume steriele zoutoplossing. Gedurende het gehele experiment werd het lichaamsgewicht dagelijks gemonitord. Op de 30ste dag na het modelleren werden alle muizen geëuthanaseerd en werden longweefsels onder steriele omstandigheden verzameld. Euthanasie werd uitgevoerd door cervicale dislocatie na intraperitonele toediening van tribromethanol (0,2 mL/10 g) om anesthesie te induceren. Delen van het longweefsel werden bewaard in vloeibare stikstof voor transcriptoomsequencing. Een deel van de weefsels werd gedurende 48 u gefixeerd in 4% paraformaldehyde voorafgaand aan pathologische kleuring, en de resterende weefsels werden bewaard bij -80 °C voor daaropvolgende moleculaire experimenten. Alle dierprocedures waren in overeenstemming met de institutionele ethische richtlijnen voor dieren.
De histopathologische evaluatie, inclusief de Ashcroft-fibrosescore, werd onafhankelijk uitgevoerd door twee onderzoekers die blind waren voor de toewijzing aan de experimentele groepen.
Pathologisch onderzoek van de longen
Gefixeerde longweefsels werden gedehydrateerd, transparant gemaakt en ingebed in paraffineblokken, waarna ze in coupes van 5 µm dik werden gesneden.
hematoxyline- en eosine (HE)-kleuring: De coupes werden 3–5 min gekleurd met hematoxyline, gedifferentieerd in een zure oplossing, blauw gemaakt onder stromend water en 5 min tegengekleurd met eosine. Na dehydratatie via een reeks ethanolconcentraties werden de coupes ontkleurd in xyleen en verzegeld met neutrale hars17.
Trichroomkleuring van Masson: De coupes werden opeenvolgend gekleurd met hematoxyline, Lichun Red–zuurfuchsine, fosfomolybdeenzuur en Bright Green. Na zure differentiatie werden de coupes gedehydrateerd, ontkleurd in xyleen en ingebed in neutrale hars18,19.
Transcriptoomsequencing
Longweefsels van muizen uit de vier experimentele groepen werden direct na opoffering verzameld en gesnapfrozen in vloeibare stikstof. Totaal RNA werd geëxtraheerd met TRIzol-reagens volgens de instructies van de fabrikant. De RNA-concentratie en -zuiverheid werden bepaald, en de RNA-integriteit werd geëvalueerd met een Bioanalyzer met ingebouwde software. Monsters met RIN-waarden groter dan 8,0 werden als acceptabel beschouwd. De bibliotheekpreparatie omvatte poly(A) mRNA-verrijking met Oligo(dT)-beads, RNA-fragmentatie, cDNA-synthese, adapterligatie en PCR-amplificatie. Sequencing werd uitgevoerd op een Illumina-platform, waarbij ongeveer 6,2–6,4 Gb aan schone data per monster werd gegenereerd. Alle in deze studie gegenereerde ruwe sequencingdata zijn gedeponeerd in de Gene Expression Omnibus (GEO)-database onder toegangsnummer GSE311671.
Schone reads werden uitgelijnd op het referentiegenoom van Mus musculus (mm8) met behulp van de STAR aligner. Genexpressieniveaus werden gekwantificeerd als ruwe read counts. De analyse van differentiële expressie werd uitgevoerd met het limma-pakket in R. Voorafgaand aan de lineaire modellering werden de ruwe count-gegevens getransformeerd met de voom-functie om de gemiddelde-variantie-relatie te schatten en precisiegewichten te genereren. Ruwe P-waarden werden gecorrigeerd voor meervoudig testen met de Benjamini-Hochberg (BH)-methode, en genen met |log₂FoldChange| > 1,5 en een false discovery rate (FDR) < 0,05 werden beschouwd als differentieel tot expressie gebracht. Functionele verrijkingsanalyses werden uitgevoerd met het clusterProfiler-pakket in R. Een Gene Ontology (GO)-verrijkingsanalyse werd uitgevoerd om significant verrijkte categorieën voor biologische processen (BP), cellulaire componenten (CC) en moleculaire functies (MF) te identificeren, terwijl een Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG)-pathwayverrijkingsanalyse werd uitgevoerd om significant verrijkte signaleringspaden te identificeren. De significantie van de verrijking werd beoordeeld met een hypergeometrische test, en P-waarden werden gecorrigeerd voor meervoudige vergelijkingen met de Benjamini-Hochberg-methode. GO-termen en KEGG-paden met een gecorrigeerde P-waarde (padj) < 0,05 werden als significant verrijkt beschouwd20,21,22,23.
Western blot-detectie
Vers longweefsel van muizen werd verzameld en gehomogeniseerd met een geschikt volume radioimmunoprecipitation assay (RIPA) lysisbuffer. Na centrifugatie werd het supernatant verzameld en werd de proteïneconcentratie bepaald met behulp van de BCA proteïne-assaykit. De monsters werden vervolgens gemengd met loadingbuffer en 10 min gedurende 100 °C verhit. Proteïnescheiding werd uitgevoerd op 10% sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) gels bij een stroomsterkte van 200 V gedurende 30 min. Vervolgens werden de proteïnen elektrotransfergeactiveerd naar polyvinylidefluoride (PVDF) membranen met een constante stroom van 300 mA gedurende 30 min. Het membraan werd geblokkeerd met 5% magere melk en daarna overnight bij 4 °C geïncubeerd met primaire antilichamen tegen β-Actin (1:1500), IL-6 (1:1000), STAT3 (1:800), p-STAT3 (1:1500) en MMP12 (1:800). De volgende dag werd het membraan gewassen met TBST en gedurende 1 h bij kamertemperatuur geïncubeerd met een secundair antilichaam, gevolgd door aanvullende wasbeurten met TBST. Proteïnebanden werden gevisualiseerd met behulp van een chemiluminescent substraat, en de proteïnekwantificatie werd uitgevoerd met ImageJ software.
Western blot-analyse werd uitgevoerd met drie onafhankelijke biologische replica's per experimentele groep. Eiwitmonsters werden bereid uit individuele longweefsels van muizen, waarbij elke biologische replica één onafhankelijk dier vertegenwoordigde.
Statistische analyse
Alle experimentele gegevens werden geanalyseerd met GraphPad Prism 9.5. Voorafgaand werden tests voor normaliteit en homogeniteit van variantie uitgevoerd. De t-toets van Student werd gebruikt voor de vergelijking tussen twee groepen, en een eenweg-ANOVA in combinatie met de post-hoc toets van Tukey werd toegepast voor vergelijkingen tussen meerdere groepen. P ≤ 0,05 werd beschouwd als statistisch significant.