Identificatie en functionele annotatie van co-expressiegenen voor cuproptose en ferroptose
Vier trainingsdatasets bestaande uit 421 UC-monsters en 97 gezonde controles werden geïntegreerd. Er werden in totaal 551 differentieel tot expressie gebrachte genen geïdentificeerd, waaronder 362 opgereguleerde en 189 neergereguleerde genen. Correlatieanalyse leverde 444 ferroptose-cuproptose-gecorreleerde genen op, en de overlap met de differentieel tot expressie gebrachte genen resulteerde in 32 co-expressie-differentieel tot expressie gebrachte genen voor cuproptose en ferroptose (CF-DEGs).
De 32 CF-DEG's waren verrijkt in responsen op wondgenezing, koperionen, vetzuurtransport, lipopolysacharide, inflammatoire darmziekten, NF-κB-signalering, TNF-signalering en ferroptose (Aanvullende Tabel 4).
Prioritering van kernbiomarkers via geïntegreerde machine learning en WGCNA
Weighted gene co-expression network analysis (WGCNA) identificeerde MEpurple, MEbrown en MEblack als de modules die het sterkst geassocieerd waren met UC. Samen bevatten de geselecteerde modules 1.426 genen (Aanvullende tabel 5).
De least absolute shrinkage and selection operator (LASSO), support vector machine–recursive feature elimination (SVM-RFE) en random forest selecteerden respectievelijk 21, 32 en 19 kenmerken. Dertien genen werden door alle drie de modellen gedeeld. Integratie van de machine-learning consensus, de CytoHubba-gerangschikte proteïne-proteïne interactie-kern en de geselecteerde WGCNA-modules leverde vijf UC-geassocieerde kandidaat-biomarkers op: LCN2, IDO1, CXCL2, NOS2 en CD274.
Diagnostische evaluatie en pathway-verrijking van de biomarker-signatuur
Alle vijf de kandidaat-biomarkers waren positief gecorreleerd en opgereguleerd bij UC in de trainingscohort (Figuur 2A, B). Elke marker behaalde een oppervlakte onder de receiver operating characteristic-curve > 0,80 in de trainingscohort en > 0,75 in de onafhankelijke GSE47908-validatiecohort (Figuur 2C–E).
Het nomogram met vijf genen vertoonde een gunstige kalibratie, met een Hosmer–Lemeshow P > 0.05 en een gemiddelde absolute fout < 0.1, en discriminatie in de geanalyseerde cohort, met een oppervlakte onder de curve en concordantie-index van 0.945 en een 95% betrouwbaarheidsinterval voor de concordantie-index van 0.922–0.968 (Afbeelding 3).
Gene set enrichment-analyse koppelde de vijf kandidaten aan JAK–STAT-, interferon–RIPK1/3- en Toll-like receptor–NF-κB-signalering (Figuur 4).

Figuur 2: Expressie van kandidaat-biomarkers en diagnostische prestaties. (A) Correlatie-heatmap. (B, C) Biomarker-expressie en receiver operating characteristic-curven in de trainingscohort. (D, E) Biomarker-expressie en receiver operating characteristic-curven in de GSE47908 validatiecohort. ROC: receiver operating characteristic; AUC: area under the curve; UC: colitis ulcerosa. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 3: Ontwikkeling en beoordeling van het UC-nomogram. (A) Nomogram van vijf genen. (B) Kalibratieplot. (C) Receiver operating characteristic-curve. ROC: receiver operating characteristic; UC: colitis ulcerosa; AUC: area under the curve; C-index: concordance index. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 4: Gene set enrichment-analyse van de vijf kandidaat-biomarkers. (A–E) Resultaten van de gene set enrichment-analyse voor respectievelijk LCN2, IDO1, CXCL2, NOS2 en CD274. GSEA: gene set enrichment analysis. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Analyse van het landschap van de immuunmicro-omgeving en het regulatoire netwerk
UC-monsters vertoonden verhoogde proporties neutrofielen, geactiveerde memory CD4⁺ T-cellen, M1-macrofagen en geactiveerde mestcellen, met wederkerige afnames in M2-macrofagen, rustende mestcellen en rustende dendritische cellen. Deze patronen werden gereproduceerd in de validatiecohort (Figuur 5A–E).
De vijf kandidaten correleerden positief met neutrofielen, geactiveerde geheugen-CD4⁺ T-cellen en M1-macrofagen, en invers met rustende mestcellen en M2-macrofagen (Figuur 5F–J). Het gen-miRNA-netwerk bevatte 98 knooppunten en 146 verbindingen. hsa-miR-34a-5p en hsa-miR-16-5p vertoonden de hoogste biomarker-connectiviteit, terwijl AR en RELA de meest verbonden transcriptiefactoren waren (Figuur 6).

Figuur 5: Analyse van immuuninfiltratie. (A) Immuuncelsamenstelling. (B) Tussen-groepsverschillen in immuuncelproporties. (C) Correlatie-heatmap van immuuncellen. (D, E) Immuuncelinfiltratie in de trainings- en validatiecohorten. (F–J) Correlaties tussen kandidaat-biomarkers en immuuncelpopulaties. UC: colitis ulcerosa. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 6: Voorspelde miRNA- en transcriptiefactornetwerken. (A) Gen–miRNA-netwerk. Cirkels geven kandidaat-biomarkers aan en vierkanten geven miRNA's aan. (B) Transcriptiefactor–gennetwerk. Ruiten geven kandidaat-biomarkers aan en omgekeerde driehoeken geven transcriptiefactoren aan. miRNA: microRNA; TF: transcriptiefactor. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Spatiotemporele expressiedynamiek op single-cell resolutie
Na kwaliteitscontrole vormden 31.712 cellen 22 clusters die werden geannoteerd als negen belangrijke celpopulaties (Figuur 7A–C). De proporties epitheelcellen en plasmacellen waren hoger bij UC. LCN2 en NOS2 waren verrijkt in epitheelcellen, terwijl IDO1, CXCL2 en CD274 verrijkt waren in myeloïde cellen (Figuur 7D–G).
Subclustering van epitheelcellen identificeerde 11 subsets, met een expansie van inflammatoire colonocyten en een verrijking van LCN2 en NOS2 in deze subset (Figuur 8). Subclustering van myeloïde cellen identificeerde zeven subsets, met een toename van monocyten, een afname van macrofagen en een verrijking van IDO1, CXCL2 en CD274 in monocyten (Figuur 9).
Inflammatoire colonocyten accumuleerden laat in het epitheliale traject, met een toenemende expressie van LCN2 en NOS2 (Figuur 10). Monocyten vertoonden een duidelijk UC-geassocieerd traject, met een dynamische expressie van IDO1, CXCL2 en CD274 (Figuur 11).
Ontstoken colonocyten vertoonden de sterkste uitgaande signalering en een prominente communicatie met monocyten. APP–CD74 was een leidend ligand-receptorpaar tussen deze subsets (Figuur 12).

Figuur 7: Expressie van kandidaat-biomarkers in celpopulaties. (A) Celclusters. (B) Annotatiemarkers. (C) Negen geannoteerde celpopulaties. (D, E) Celverdelingen en proporties in gezonde monsters en UC-monsters. (F, G) Expressie van kandidaat-biomarkers gevisualiseerd via UMAP en bubble plot. UC: colitis ulcerosa; UMAP: uniform manifold approximation and projection. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 8: Subclustering van epitheelcellen en expressie van kandidaten. (A) Initiële epitheelcelclusters. (B) Annotatiemarkers. (C) Geannoteerde epitheelcel-subsets. (D) Proporties van subsets in gezonde monsters en monsters met UC. (E) Expressie van LCN2 en NOS2 over de epitheelcel-subsets. t-SNE: t-distributed stochastic neighbor embedding; UC: colitis ulcerosa. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 9: Subclustering van myeloïde cellen en expressie van kandidaten. (A) Initiële myeloïde-celclusters. (B) Annotatiemarkers. (C) Geannoteerde myeloïde-celsubsets. (D) Proporties van subsets in gezonde monsters en UC-monsters. (E) Expressie van IDO1, CXCL2 en CD274 over de myeloïde-celsubsets. t-SNE: t-distributed stochastic neighbor embedding; UC: colitis ulcerosa. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 10: Pseudotijdanalyse van epitheelcellen. (A) Pseudotiidtraject en toewijzing van toestanden. (B) Distributie van gezonde epitheelcellen en epitheelcellen met UC langs het traject. (C) Expressiedynamiek van LCN2 en NOS2 langs de pseudotijd. UC: colitis ulcerosa. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 11: Pseudotijd-analyse van myeloïde cellen. (A) Pseudotijd-traject en toewijzing van staten. (B) Distributie van gezonde myeloïde cellen en myeloïde cellen bij UC langs het traject. (C) Expressiedynamiek van IDO1, CXCL2 en CD274 langs de pseudotijd. UC: colitis ulcerosa. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 12: Epitheliale–myeloïde communicatie. (A) Aantal interacties en sterkte. (B) Uitgaande en inkomende signaleringssterktes. (C) Interacties met betrokkenheid van inflammatoire colonocyten. (D) Heatmap van communicatiesterkte. (E) Ligand–receptorparen met betrokkenheid van inflammatoire colonocyten. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
In vitro experimentele validatie van interventies bij ferroptose en cuproptose
Blootstelling aan lipopolysaccharide (LPS) verminderde de levensvatbaarheid van Caco-2-cellen en verhoogde de expressie van IL-6 en IL-1β ten opzichte van de voertuigcontrole (Figuur 13A–C en Aanvullende Figuur 5).
LPS verhoogde Fe2⁺, malondialdehyde en de mRNA-abundantie van LCN2, IDO1, CXCL2 en NOS2, terwijl ferrostatin-1 elke LPS-geassocieerde verandering omkeerde (Figuur 13D–I). Voor de vergelijkingen tussen LPS en LPS + ferrostatin-1 varieerden de exacte tweezijdige P-waarden van 9,45 × 10⁻5 tot 0,0027 na het middelen van technische replica's binnen elke biologische replica.
LPS verminderde de levensvatbaarheid en verhoogde IL-6, IL-1β, FDX1/DLAT, CD274 en kopergevoelige fluorescentie, terwijl tetrathiomolybdaat deze veranderingen omkeerde (Figuur 14 A–E). Voor de vergelijkingen tussen LPS en LPS + tetrathiomolybdaat varieerden de exacte tweezijdige P-waarden van < 1 × 10⁻15 tot 0,0008.
Samen identificeerden de analyses vijf diagnostische kandidaten geassocieerd met UC, lokaliseerden zij de expressie hiervan in epitheliale en myeloïde populaties, en toonden zij aan dat LCN2, IDO1, CXCL2 en NOS2 reageerden op ferroptose-inhibitie, terwijl CD274 reageerde op koperchelatie in Caco-2 cellen.

Figuur 13: Ferrostatin-1 vermindert LPS-geassocieerde inflammatoire en ferroptose-gerelateerde veranderingen in Caco-2 cellen. (A) Celviabiliteit. (B, C) IL-6 en IL-1β messenger RNA-expressie. (D, E) Intracellulaire malondialdehyde- en Fe2⁺-niveaus. (F–I) LCN2, IDO1, CXCL2 en NOS2 messenger RNA-expressie. Technische triplicaten zijn gemiddeld binnen elk onafhankelijk biologisch replica; foutbalken geven de standaarddeviatie aan. Beschikbare aantallen biologische replica's waren Controle n = 4 in A en C, Controle n = 2 in F, en n = 6 voor alle andere panel/groepcombinaties. Exacte tweezijdige P-waarden en aannamecontroles zijn gerapporteerd in Aanvullende Tabel 5. Fer-1: ferrostatin-1; LPS: lipopolysacharide; MDA: malondialdehyde. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 14: Tetrathiomolybdaat vermindert LPS-geassocieerde inflammatoire en cuproptose-gerelateerde veranderingen in Caco-2 cellen. (A) Celviabiliteit. (B, C) mRNA-expressie van IL-6 en IL-1β. (D) mRNA-expressie van FDX1 en DLAT. (E) mRNA-expressie van CD274. (F) Intracellulaire Cu2⁺ fluorescentie; schaalbalk = 50 µm. Technische triplicaten werden gemiddeld binnen elk van de zes onafhankelijke biologische replicaten per groep; foutbalken geven de standaarddeviatie aan. Exacte tweezijdige P-waarden en aannamecontroles worden gerapporteerd in Aanvullende Tabel 5. TTM: tetrathiomolybdaat; LPS: lipopolysaccharide. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Ruwe en verwerkte gegevens, analysescripts en bronspreidbladen van cel-experimenten zijn openbaar beschikbaar via https://doi.org/10.5281/zenodo.21202720.
Aanvullende figuur 1: Data-preprocessering en diagnostiek van differentiële expressie. (A–F) Steekproefverdelingen voor (A–C) en na (D–F) batchcorrectie. (G) Volcano plot van differentiële tot expressie gebrachte genen. (H) Heatmap van genormaliseerde expressiepatronen. DEGs: differentially expressed genes; GEO: Gene Expression Omnibus.Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullende figuur 2: Verrijkingsanalyse van CF-DEG's. (A) Verrijking van de Gene Ontology. (B) Verrijking van de Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes. CF-DEG's: cuproptose-ferroptose co-expressie differentieel tot expressie gebrachte genen; GO: Gene Ontology; KEGG: Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes.Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullende figuur 3: WGCNA-screeningsdiagnostiek. (A) Selectie van de soft-threshold. (B) Module-eigengene clustering. (C) Gen-module dendrogram. (D) Module-trait associaties. (E–G) Relaties tussen gensignificantie en module-lidmaatschap voor de paarse, bruine en zwarte modules. WGCNA: weighted gene co-expression network analysis; UC: colitis ulcerosa.Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullende figuur 4: Biomarker-screening in meerdere stadia. (A, B) LASSO-kenmerkselectie. (C, D) SVM-RFE-kenmerkselectie. (E, F) Random-forest-kenmerkrangschikking. (G) Consensus tussen de drie modellen. (H, I) PPI-netwerk en CytoHubba-kernknopen. (J) Integratie van machine learning, WGCNA- en PPI-resultaten. (K) Chromosomale locaties van de vijf kandidaten. LASSO: least absolute shrinkage and selection operator; SVM-RFE: support vector machine–recursive feature elimination; RF: random forest; PPI: proteïne-proteïne-interactie; WGCNA: weighted gene co-expression network analysis.Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullende figuur 5: Validatie van het LPS-model in Caco-2-cellen. (A) Celviabiliteit. (B, C) Expressie van IL-6 en IL-1β messenger RNA. Technische triplicaten werden gemiddeld binnen zes onafhankelijke biologische replica's per groep; foutbalken geven de standaarddeviatie aan. LPS: lipopolysaccharide.Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullende tabel 1: GEO-datasets gebruikt voor ontdekking en validatie. Accessienummers van datasets, platforms, monstersamenstelling en cohorttoewijzingen voor de GEO-datasets die zijn opgenomen in de ontdekkings- en validatieanalyses. GEO: Gene Expression Omnibus.Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullende tabel 2: Primersequenties voor reverse transcriptie kwantitatieve PCR. Primersequenties gebruikt voor reverse transcriptie kwantitatieve PCR-analyse van de genen die in deze studie zijn geëvalueerd.Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullende Tabel 3: Statistische details voor Figuren 13, 14 en Aanvullende Figuur 1. Aantallen biologische replica's, controles van aannames, statistische analysemethoden en exacte P-waarden voor de aangegeven experimentele vergelijkingen.Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullende tabel 4: Co-expressie van differentieel tot expressie gebrachte genen bij cuproptose-ferroptose. Lijst van CF-DEG's geïdentificeerd door de intersectie van ferroptose- en cuproptose-gecorreleerde genen met differentieel tot expressie gebrachte genen.Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullende tabel 5: Genen in de WGCNA-modules geselecteerd voor biomarker-screening. Lijst van genen opgenomen in de WGCNA-modules die zijn geselecteerd voor daaropvolgende biomarker-screening. WGCNA: gewogen gen-co-expressienetwerkanalyse.Klik hier om dit bestand te downloaden.